ES2322756T3 - Tratamiento de infeccion por microorganismos. - Google Patents
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Abstract
Un anticuerpo que tiene la secuencia de la SEC ID Nº 2 o un fragmento de unión a antígeno del mismo.
Description
Tratamiento de infección por microorganismos
La presente invención se refiere al tratamiento
de infecciones del cuerpo humano o animal por microorganismos tales
como S. aureus, particularmente cepas resistentes a
antibióticos de organismos tales como MRSA. Se proporcionan
medicamentos para el tratamiento de una infección por
microorganismos tales como S. aureus, procedimientos de
fabricación de medicamentos para el tratamiento de la infección,
envases de productos farmacéuticos que contienen medicamentos para
el tratamiento de la infección, y procedimientos para el tratamiento
del cuerpo humano o animal para la infección por dichos
microorganismos.
La resistencia a múltiples fármacos (MDR) es un
problema creciente entre las bacterias
gram-positivas (Banergee, S.N. y col. 1991, Am. J.
Med. 91: 865-895; Shaberg, D.R. y col., 1991, Am. J.
Med. supl., 88: 72-75; Gaynes, R.P. y col., 1994,
Infect. Dis. Clin. Pract., 6: 452-455),
particularmente en hospitales. En particular, Staphylococcus
aureus resistente a meticilina (MRSA) y estafilococos
coagulasa-negativos (CNS), particularmente CNS
resistentes a meticilina, resultan problemáticos, siendo
resistentes a todas las penicilinas y cefalosporinas. La resistencia
a otros agentes tales como quinolonas está generalizada (Malabarta,
A. y col., 1997, Eur. J. Med. Chem., 32: 459-478;
Lewis, K., 1994, TIBS, 19: 119-123; Traub, W.H. y
col., 1996, Chemotherapy, 42: 118-132). El
tratamiento se realiza típicamente usando vancomicina o
teicoplanina. Sin embargo, la resistencia a estos agentes se está
propagando y por tanto se necesitan nuevas terapias. Por ejemplo,
Hubert SK y col., (J Clin Microbiol. Nov 1999; 37 (11):
3590-3; PMID: 10523558) analiza aislados de S.
aureus con susceptibilidad reducida a la vancomicina y
teicoplanina. También se ha descubierto que ciertas cepas epidémicas
de MRSA, incluyendo EMRSA-15 (www.phls.org.uk,
Public Health Laboratories, Colindale, UK), pueden dar lugar a
subclones con resistencia aumentada a la vancomicina (Burnie J y
col., Clin Infect Dis. Sep 2000; 31 (3):684-9; PMID:
11017816). Se esperaba que el linezolid proporcionara una
alternativa muy necesitada a las terapias actuales, pero Tsiodras S.
y col. (Lancet. 21 Jul 2001; 358 (9277): 207-8;
PMID: 11476839) han informado de un aislado clínico de NIRSA
resistente a linezolid en un paciente que se estaba tratando con
este antibiótico para peritonitis asociada con diálisis.
Además la administración de grandes cantidades
de dichos antibióticos a pacientes para realizar el tratamiento de
las infecciones, especialmente de infecciones que presentan
resistencia al(a los) antibiótico(s) que se está(n)
administrando, puede ser citotóxica y nefrotóxica y aunque esté
ayudando a salvar la vida del paciente puede provocar graves
efectos secundarios.
El tratamiento y diagnóstico de infecciones por
estafilococos se analiza ampliamente en la técnica anterior y las
publicaciones particularmente relevantes incluyen los documentos WO
98/01154, WO 99/50418, y EP 0786519. Las causas de la resistencia a
antibióticos también se analiza en publicaciones tales como Allignet
J. (Gene 20 Nov 1997; 202
(1-2):133-8; PMID: 9427556).
Por tanto existe una clara necesidad de terapias
nuevas y potenciadas para infecciones por microorganismos,
particularmente S. aureus.
Los presentes inventores ahora han descubierto
que una combinación particular de agentes, concretamente un
anticuerpo (detallado a continuación) que tiene una parte de unión a
antígeno nueva y un antibiótico glicopeptídico (tal como
vancomicina o teicoplanina), tiene un efecto terapéutico sinérgico
muy sorprendente - la eficacia terapéutica del antibiótico
glicopeptídico está sustancialmente potenciada en comparación con su
eficacia terapéutico cuando se usa solo. Éste es particularmente el
caso cuando el microorganismo que se está tratando es resistente al
antibiótico glicopeptídico. De forma importante, la presente
invención es capaz de realizar el tratamiento de cepas con
resistencia completa a vancomicina y resistencia intermedia a
vancomicina de S. aureus usando vancomicina junto con el
anticuerpo de la SEC ID Nº 2. En ninguna parte de la técnica
anterior se sugiere que esto pueda conseguirse. Los antibióticos
glicopeptídicos funcionan afectando a la pared celular bacteriana.
Otros antibióticos tales como las penicilinas también afectan a la
pared celular bacteriana. Sin embargo, los presentes inventores han
descubierto que su eficacia no se mejora usándolos con el anticuerpo
de la SEC ID Nº 2, en particular, los experimentos han demostrado
que la eficacia de la flucloxacilina no se mejora usándola con el
anticuerpo de la SEC ID Nº 2. Las bacterias resistentes a la
flucloxacilina no han reducido su resistencia por el uso del
anticuerpo de la SEC ID Nº 2.
De acuerdo con la presente invención, se
proporciona un anticuerpo que tiene la secuencia de la SEC ID Nº 2
o un fragmento de unión a antígeno del mismo. El anticuerpo está
codificado por la secuencia de nucleótidos de la SEC ID Nº 1
aunque, por supuesto, la secuencia de nucleótidos se puede modificar
fácilmente para, por ejemplo, optimizar los codones para
microorganismos específicos usados para sintetizarla o por otras
razones que se
deseen.
deseen.
El anticuerpo de la SEC ID Nº 2 (también
mencionado como "Aurograb" RTM) es un anticuerpo recombinante
genético humano. Se une al antígeno de superficie celular
inmunodominante, GrfA, una proteína trasportadora ABC de
estafilococos (documento WO 99/50418; Burnie JP y col., Infect
Immun. Jun 2000; 68(6): 3200-9; PMID:
10816464). Se obtuvo originalmente de pacientes que se habían
recuperado de septicemia por S. aureus y estaban produciendo
anticuerpos contra GrfA. Tiene actividad
anti-estafilococos intrínseca y muestra sinergia con
vancomicina y otros antibióticos glicopeptídicos, tanto in
vitro como in vivo, contra un amplio intervalo de cepas
de S. aureus incluyendo MRSA y MRSA resistente a vancomicina.
La actividad antibacteriana del anticuerpo de la SEC ID Nº 2, tanto
solo como en combinación con antibióticos glicopeptídicos, es de
beneficio significativo en el tratamiento de infecciones por S.
aureus.
Tanto la inmunoglobulina derivada de plasma
humano (Ramisse F y col., J Infect Dis. Oct 1993; 168(4):
1030-3; PMID: 8376815) como el antisuero
hiperinmune de conejo creados contra GrfA son protectores en modelos
de infecciones por estafilococos (véase la sección
"Experimentos" a continuación). Los anticuerpos recombinantes
humanos específicos para GrfA son protectores en modelos de ratón
de infección por MRSA. Se descubrió que una secuencia de
aminoácidos particular de GrfA, el epítope de la SEC ID Nº 3, estaba
frecuentemente marcada por la respuesta inmune humoral en pacientes
que se recuperan de septicemia por S. aureus (Burnie JP y
col., 2000 supra).
Sin embargo, en ninguna parte de la técnica
anterior se sugiere que el tratamiento mejorado de infecciones por
microorganismos tales como S. aureus puede realizarse usando
una combinación de un antibiótico glicopeptídico tal como
vancomicina, o teicoplanina, y un anticuerpo
anti-GrfA, particularmente no un anticuerpo
específico para el epítope de la SEC ID Nº 3, y más particularmente
no el anticuerpo que tiene la secuencia de la SEC ID Nº 2.
Por tanto, de acuerdo con la presente invención,
se proporciona un medicamento que comprende una cantidad
terapéuticamente eficaz de un antibiótico glicopeptídico y un
anticuerpo específico contra GrfA, particularmente un anticuerpo
específico contra el epítope de la SEC ID Nº 3. También se
proporcionan procedimientos de fabricación de medicamentos y
envases de productos farmacéuticos que todos comprenden y usan lo
mismo. El medicamento puede ser para el tratamiento de infección
por S. aureus. El término "tratamiento" como se usa en
este documento significa cualquier tratamiento que esté diseñado
para curar, aliviar, eliminar o reducir los síntomas de, o prevenir
o reducir la posibilidad de contraer dicha infección, e incluye la
profilaxis.
La proteína GrfA, que es una proteína
transportadora ABC, se ha aislado y purificado de S. aureus,
pero existen homólogos que realizan la misma función en otros
organismos y pueden usarse como la diana para la terapia. Por
tanto, puede prepararse un anticuerpo contra un homólogo de GrfA
producido por un microorganismo diferente de S. aureus y
puede usarse junto con un antibiótico glicopeptídico para realizar
el tratamiento de la infección por el microorganismo en un
paciente. Ejemplos de otros microorganismos en que puede realizarse
el tratamiento son otros estafilococos, particularmente
estafilococos coagulasa-negativos, tales como S.
haemolyticus, S. epidermidis y saprophyticus. La
infección por enterococos, particularmente E. faecalis y
E. faecium, también puede tratarse, como también se puede la
infección por corinebacterias tales como C. jeikeium y C.
xerosis.
El homólogo de GrfA puede tener una homología de
secuencia de al menos el 60%, por ejemplo al menos el 70, 80, 85,
90, 95, 96, 97, 98, 99 ó 99,5% con GrfA. Las homologías de secuencia
se determinan usando los programas NCBI BLASTN (comparaciones de
secuencias de nucleótidos) o BLASTP (comparaciones de polipéptidos),
versión 2.1.2, con parámetros por defecto. El programa NCBI BLAST
se encuentra en www.ncbi.nbnnihgov/bL-tst/. La
expresión identidad de secuencia usada en este documento se refiere
a restos aminoacídicos en secuencias alineadas de forma óptima que
coinciden exactamente en posiciones relativas correspondientes.
En organismos diferentes de S. aureus,
particularmente otros estafilococos, el epítope (SEC ID Nº 3) contra
el que se producen los anticuerpos y que se usa como base para el
tratamiento puede permanecer igual.
Por tanto, de acuerdo con la presente invención,
se proporciona un medicamento para el tratamiento de una infección,
particularmente una infección por S. aureus, comprendiendo
dicho medicamento una cantidad terapéuticamente eficaz de un
antibiótico glicopeptídico y el anticuerpo de la SEC ID Nº 2 o un
fragmento de unión a antígeno del mismo.
También se proporciona un antibiótico
glicopeptídico y el anticuerpo de la SEC ID Nº 2 o un fragmento de
unión a antígeno del mismo para su uso en un procedimiento de
fabricación de un medicamento para el tratamiento de
infecciones.
Para realizar una terapia contra una infección,
particularmente una infección por S. aureus, el antibiótico
glicopeptídico y el anticuerpo o fragmento de unión a antígeno
pueden administrarse a un paciente por separado o secuencialmente.
También se proporciona, de acuerdo con la presente invención, un
envase de producto farmacéutico que comprende una cantidad
terapéuticamente eficaz de un antibiótico glicopeptídico y el
anticuerpo de la SEC ID Nº 2 o un fragmento de unión a antígeno del
mismo.
También se proporciona, de acuerdo con la
presente invención, el uso de un antibiótico glicopeptídico y el
anticuerpo de la SEC ID Nº 2 o un fragmento de unión a antígeno del
mismo para la fabricación de un medicamento para el tratamiento de
una infección, particularmente una infección por S.
aureus.
Antibióticos glicopeptídicos de utilidad
particular en la presente invención son vancomicina y teicoplanina,
aunque, por supuesto, la presente invención se extiende a otros
miembros de la familia de antibióticos glicopeptídicos.
El término "anticuerpo" en sus diversas
formas gramaticales se usa en este documento para hacer referencia
a moléculas de inmunoglobulina y partes inmunológicamente activas de
moléculas de inmunoglobulina, es decir, moléculas que contienen un
sitio de combinación de anticuerpos o parátope. Dichas moléculas
también se mencionan como "fragmentos de unión a antígeno" de
las moléculas de inmunoglobulina.
Moléculas de anticuerpo ilustrativas son
moléculas de inmunoglobulina intactas, moléculas de inmunoglobulina
sustancialmente intactas y aquellas partes de una molécula de
inmunoglobulina que contienen el parátope, incluyendo aquellas
partes conocidas en la técnica como Fab, Fab', F(ab')2, scFv
y F(v).
La expresión "sitio de combinación de
anticuerpos" se refiere a la parte estructural de una molécula de
anticuerpo compuesta por regiones variables e hipervariables de
cadena pesada y ligera que se unen específicamente
(inmunorreaccionan con) el antígeno.
En cuanto al anticuerpo de la SEC ID Nº 2, puede
modificarse fácilmente para alterar su secuencia de aminoácidos
presentando al mismo tiempo el mismo parátope y reteniendo su
especificidad de unión a antígeno. Hablando en líneas generales, su
estructura se organiza (secuencia amino a carboxi terminal) como un
dominio de cadena pesada variable (V_{H}) y un dominio de cadena
ligera variable (V\kappa) de inmunoglobulina humana unidos
covalentemente por un enlazador y que tiene una secuencia His
carboxi-terminal.
Cada una de las regiones variables está
compuesta por las regiones determinantes de complementariedad
CDR_{1}, CDR_{2} y CDR_{3}, y son fundamentales para definir
la especificidad de unión a antígeno del anticuerpo, es decir, el
parátope. Los presentes inventores han descubierto que de estas
regiones, la parte CDR_{3} de la región V_{H} es la más
importante para definir la especificidad de antígeno. Están
ampliamente disponibles en la técnica contenidos adicionales sobre
anticuerpos, por ejemplo Harlow, E. y Lane, D., "Using Antibodies:
A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory Press, Nueva
York, 1998. Con el conocimiento general común acerca de las partes
que definen un parátope de un sitio de combinación de anticuerpos y
los contenidos anteriores, un especialista en la técnica es capaz
de modificar fácilmente la secuencia de la SEC ID Nº 2 para producir
anticuerpos alternativos con el mismo parátope y que posibiliten
conseguir el mismo efecto terapéutico o similar.
Por ejemplo, un fragmento de unión a antígeno
del anticuerpo de la SEC ID Nº 2 puede prepararse fácilmente
eliminando simplemente uno o más de los restos His
carboxi-terminales. Otros ejemplos de modificaciones
incluyen el injerto de las regiones hipervariables (regiones
determinantes de complementariedad) del anticuerpo de la SEC ID Nº
2 en regiones flanqueantes variables diferentes a las de la SEC ID
Nº 2 de modo que el anticuerpo resultante aún tenga el mismo
parátope (véase, por ejemplo, el documento EP 239400 y
similares).
Por "tratamiento mejorado" se entiende que
una cantidad dada de un antibiótico glicopeptídico tiene un afecto
terapéutico mayor cuando se administra a un paciente junto con el
anticuerpo de la presente invención que cuando se administra solo.
Asimismo, puede conseguirse un efecto terapéutico deseado en un
paciente con una dosificación más pequeña de un antibiótico
glicopeptídico cuando se administra a un paciente junto con el
anticuerpo de la presente invención que cuando el antibiótico
glicopeptídico se administra solo. Éste es particularmente el caso
cuando el microorganismo tal como S. aureus es resistente al
antibiótico glicopeptídico. Esto puede ser extremadamente útil para
reducir cualquier efecto secundario del tratamiento.
Proporcionando antibióticos glicopeptídicos
existentes con un "nuevo aliento" y permitiéndoles que sean
terapéuticamente eficaces contra, por ejemplo, una infección por
S. aureus, incluso cuando S. aureus es resistente a
ellos, la presente invención proporciona medicamentos y tratamientos
cuya seguridad y eficacia puede evaluarse fácilmente y que no
implican nuevas clases de sustancias - los parámetros de seguridad
para antibióticos glicopeptídicos ya son bien conocidos y pueden
aplicarse a la presente invención. Asimismo, el uso de anticuerpos
como el otro ingrediente activo en la presente invención es una
cuestión de seguridad relativamente simple. En particular, cuando
el anticuerpo está en forma de un fragmento de anticuerpo
recombinante derivado de secuencias de anticuerpos humanos, su
inmunogenicidad será extremadamente baja. Además, el uso de
regímenes de tratamiento en que el anticuerpo se administra durante
un periodo de tiempo muy corto (por ejemplo unos pocos días)
significa que hay pocas oportunidades para el sistema inmune del
paciente de desarrollar una respuesta inmune contra el mismo. Por
tanto, las reacciones adversas de tipo hipersensibilidad causadas
por la producción de anticuerpos contra el anticuerpo de la
presente invención y la formación/deposición de complejos inmunes es
son muy pequeñas.
El anticuerpo de la SEC ID Nº 2 también tiene
varias ventajas específicas - no tiene la parte F_{c} que puede
desencadenar la deposición del complemento y la unión de macrófagos
y por tanto es poco probable que cause la activación inapropiada de
la cascada del complemento que puede causar inflamación y daño
tisular.
Produciendo los anticuerpos de la presente
invención sin el uso de productos derivados de animales, puede
evitarse la posibilidad de introducir agentes de enfermedades
infecciosas humanas o animales u oncogenes en pacientes.
Los regímenes de tratamiento y las
dosificaciones de los medicamentos de la presente invención se
describen a continuación, y la modificación de los mismos será muy
evidente para un especialista en la técnica, que en particular será
consciente de los regímenes de tratamiento usados con el antibiótico
glicopeptídico y será capaz de modificarlos apropiadamente. Por
ejemplo, los ensayos de respuesta a dosis simples pueden usarse
fácilmente y los resultados del tratamiento en modelos de mamífero
tales como modelos murinos simplemente pueden extrapolarse a
seres
humanos.
humanos.
La presente invención será adicionalmente
evidente a partir de la siguiente descripción con referencia a la
Figura adjunta, que muestra a modo de ejemplo solamente formas de
tratamiento de una infección por S. aureus.
Figura 1 muestra la farmacocinética de elevadas
dosis de Aurograb. El eje X es el tiempo en minutos. El eje Y es
\mug/ml de Aurograb en muestras sanguíneas.
Los experimentos detallados a continuación
muestran que Aurograb (es decir las SEC ID Nº 1 y 2), el fragmento
de anticuerpo recombinante humano de la presente invención
específico contra GrfA, tiene actividad
anti-estafilococos intrínseca in vitro y en
infecciones murinas por estafilococos y que muestra actividad
sinérgica con antibióticos glicopeptídicos, particularmente el
antibiótico glicopeptídico de amplio espectro vancomicina.
La actividad sinérgica con antibióticos
glicopeptídicos se manifiesta por:
(1) una reducción en la concentración inhibidora
mínima de vancomicina en presencia de Aurograb in vitro
y
(2) recuentos reducidos de colonias en los
órganos en modelos murinos de infección por S. aureus cuando,
después de la estimulación con S. aureus, se da una única
dosis de Aurograb (2 mg/kg) junto con una única dosis de
vancomicina (6 mg/kg).
Salvo que se indique de otro modo, todos los
procedimientos detallados en este documento se realizaron usando
protocolos convencionales y siguiendo las instrucciones del
fabricante cuando fueran aplicables. Los protocolos convencionales
para diversas técnicas incluyendo PCR, clonación molecular,
manipulación y secuenciación, la fabricación de anticuerpos,
mapeado de epítopes y diseño de mimótopes, cultivo celular y
presentación de fagos, se describen en textos tales como McPherson,
M.J. y col. (1991, PCR: A practical approach, Oxford University
Press, Oxford), Sambrook, J. y col. (1989, Molecular cloning: a
laboratory manual, Cold Spring Harbour Laboratory, Nueva York),
Huynh y Davies (1985, "DNA Cloning Vol I - A Practical
Approach", IRL Press, Oxford, Ed. D.M. Glover), Sanger, F. y
col. (1977, PNAS USA 74(12): 5463-5467),
Harlow, E. y Lane, D. ("Using Antibodies: A Laboratory
Manual", Cold Spring Harbor Laboratory Press, Nueva York, 1998),
Jung, G. y Beck-Sickinger, A.G. (1992, Angew. Chem.
Int. Ed. Eng., 31: 367-486), Harris, M.A. y Rae,
I.F. ("General Techniques of Cell Culture", 1997, Cambridge
University Press, ISBN 0521 573645), "Phage Display of Peptides
and Proteins: A Laboratory Manual" (Eds. Kay, B.K., Winter, J.,
y McCafferty, J., Academic Press Inc., 1996, ISBN
0-12-402380-0).
Los reactivos y el equipo útiles en, entre
otros, los procedimientos detallados en este documento están
disponibles en Amersham (www.amersham.co,uk), Boehringer Mannheim
(www.boehringer-ingeltheim.com), Clontech
(www.clontech.com), Genosys (www.genosys.com), Millipore
(www.millipore.com), Novagen (www.novagen.com), Perkin Elmer
(www.perkinelmer.com), Pharmacia (www.pharmacia.com), Promega
(www.promega.com), Qiagen
(www.quiagen,com), Sigma (www.sigma-aldrich.com) y Stratagene (www.stratagene.com) y similares.
(www.quiagen,com), Sigma (www.sigma-aldrich.com) y Stratagene (www.stratagene.com) y similares.
Cuando se dan números de referencia "PMID"
para las publicaciones, estos son números de identificación de
PubMed asignados a las mismas por la US National Library of
Medicine, a partir de la cual está disponible la información
bibliográfica completa y el resumen de cada publicación en
www.ncbi.nlm.nih.gov. Éste también puede proporcionar acceso directo
a copias electrónicas de las publicaciones completas,
particularmente en el caso de, por ejemplo, publicaciones PNAS, JBC
y MBC.
\vskip1.000000\baselineskip
Para este estudio, se da Aurograb junto con
vancomicina para reducir la mortalidad y/o morbilidad de pacientes
con infección por MRSA profundamente arraigada confirmada por
cultivo. Este estudio se realiza en tres partes:
i) Un estudio de tolerancia y de aumento de
dosis en que a cohortes de 3 pacientes con infección por MRSA se
les dan dosis escalonadas en fases de Aurograb, comenzando con una
dosis sub-terapéutica (0,1 mg/kg) y elevándola
hasta 1 mg/kg b.d., durante lo cual cada paciente se controla
cuidadosamente para cualquier efecto secundario adverso.
ii) Un estudio provisional de etiqueta
descubierta en que a 5 pacientes con infección por MRSA se les da el
transcurso terapéutico previsto de Aurograb, concretamente 1 mg/kg
b.d. durante 7 días, y se les controla cuidadosamente para la
tolerancia y la farmacocinética. Puede hacerse una evaluación
preliminar de la eficacia en base a los controles históricos.
iii) Un ensayo prospectivo, doble ciego,
aleatorizado de fase II.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La composición completa de Aurograb se da en la
Tabla 2, a continuación. Consta de polvo liofilizado (secado por
congelación) proporcionado a 10 mg por vial. El fármaco se
administra por resuspensión del polvo en 5 ml de agua inyectable
estéril por antes de la inyección iv. No debe sustituirse el agua
por otro disolvente ya que Aurograb es sensible a fluctuaciones de
pH y se ha formulado especialmente para resuspensión en agua.
La L-arginina y la urea están
presentes para mantener el equilibrio de pH de la formulación y
asegurar la solubilidad del Aurograb. Ambas están presentes en
dosificaciones que se consideran seguras para administración
intravenosa clínica. Por ejemplo, una dosis sencilla de Aurograb
(37,5 ml para 75 Kg de peso corporal del paciente) contiene 7,5
mmoles de arginina. Esto es 26 veces menos que la dosis diaria
permitida máxima de L-arginina cuando se administra
durante la medición de los niveles de hormona del crecimiento en
niños (ABPI compendium, 1998-99). Para la urea, una
dosis sencilla de 35 ml de Aurograb contiene 1,125 g de urea. De
nuevo, esto es mucho menos que la dosis diaria permitida máxima de
150 g de urea (esta es la dosis máxima indicada para el tratamiento
de presión intracraneal aguda por suministro intravenoso - ABPI
compendium, 1998-99).
El fármaco liofilizado se almacena en viales de
vidrio a 4ºC en la oscuridad. Es aceptable el transporte durante
una noche a temperaturas ambientales. Se evita la exposición
prolongada a luz brillante o humedad excesiva. No se han observado
cambios en la actividad de Aurograb después de almacenamiento a 4ºC
(3 meses).
Después de su reconstitución con agua, Aurograb
debe almacenarse a 4ºC y debe usarse en 14 horas. La actividad se
deteriorará lentamente si se deja a temperatura ambiente.
\vskip1.000000\baselineskip
Aurograb, proporcionado a 10 mg por vial, se
administra por resuspensión del polvo en 5 ml de agua inyectable
estéril poco antes de la inyección intravenosa (iv). Un ejemplo de
dosis para seres humanos es 1 mg/kg b.d. Se introduce agua estéril
directamente en los viales por inyección a través del tapón de goma
con una jeringa/aguja hipodérmica.
Para reconstituir:
se añade la mitad del volumen final de agua (2,5
ml por vial) y agitar para disolver, filtrar (si es necesario) para
retirar cualquier material no disuelto
se añade el resto del agua.
NB. Si se retrasa la
administración, se almacena a 4ºC (durante hasta 14
horas).
\vskip1.000000\baselineskip
No debe sustituirse el agua por otro disolvente
ya que Aurograb es sensible a fluctuaciones de pH y se ha formulado
especialmente para resuspensión en agua.
Aurograb debe administrarse por inyección en
embolada iv lenta, por ejemplo a través de un equipo de
administración iv que primero debe lavarse abundantemente con
solución salina para retirar los restos de cualquier otro fluido iv
y otra vez de nuevo después de la administración del fármaco.
No se requieren precauciones especiales para la
limpieza de derrames o el desecho de residuos.
La solución salina para uso iv es compatible con
Aurograb reconstituido (a una dilución 50:50). Es menos compatible
con glucosa al 20% y tampón bicarbonato sódico, como se muestra por
una reducción en la actividad ELISA, y por lo tanto si se está
dando mediante el mismo equipo de administración iv que estos u oros
fluidos, la vía de inyección debe lavarse abundantemente a su
través con solución salina y después de administra el Aurograb.
\vskip1.000000\baselineskip
Aurograb muestra actividad antibacteriana, tanto
in vitro como in vivo, contra un amplio intervalo de
cepas de S. aureus. Además Aurograb ha demostrado ejercer un
efecto antibacteriano sinérgico cuando se usa junto con
vancomicina.
\vskip1.000000\baselineskip
Aurograb muestra actividad sinérgica en
combinación con vancomicina contra un amplio intervalo de cepas de
MRSA, incluyendo cepas de EMRSA con resistencia intermedia a la
vancomicina ("VISA" - MRSA insensible a vancomicina).
Estos datos se prepararon usando la misma
metodología MIC aplicada de rutina a los antibióticos.
Propósitos: Demostrar la sinergia cuando se usa
en combinación con vancomicina, contra un amplio intervalo de cepas
epidémicas de NMA.
Objetivo: La sinergia se demuestra por una
reducción en la MIC de la vancomicina cuando se usa Aurograb en
combinación.
\vskip1.000000\baselineskip
Las cepas epidémicas de MRSA dan lugar
fácilmente a sub-poblaciones de resistencia
intermedia a la vancomicina (es decir, MIC de 4 o 8 \mug/ ml) por
pases en serie en caldo nutriente con concentraciones crecientes de
vancomicina (Burnie J y col., Clin Infect Dis. Sep 2000; 31 (3):
684-9; PMID: 11017816). Éstas son responsables
probablemente de muchos de los fallos de tratamiento asociados con
la terapia con vancomicina. En este estudio se examinó la actividad
de Aurograb tanto contra estas VISA como contra la cepa
EMRSA-15 precursora completamente sensible a la
vancomicina.
\vskip1.000000\baselineskip
Se cultivaron cepas de MRSA durante una noche en
caldo nutriente y se diluyeron para dar un inóculo de 1x10^{3}
células por ml. Se colocaron alícuotas de 100 \mul de cultivo en
placas de microtitulación de fondo plano y se añadió vancomicina en
el intervalo de 0,125 - 250 \mug/ml. Los cultivos se incubaron
durante 2 días adicionales. La concentración inhibidora del
crecimiento mínima (MIC) se define como la concentración más alta
de antibiótico a la que no existe crecimiento bacteriano y se
determina por evaluación espectrofotométrica de la ausencia de
turbidez (crecimiento) en cultivo. Las MIC se determinaron en
presencia de Aurograb exógeno o en presencia de tampón de
formulación de Aurograb (control negativo).
Resultados:
\vskip1.000000\baselineskip
Espectro de Actividad: La actividad
antibacteriana potenciada es evidente en todas las cepas ensayadas,
lo que demuestra un amplio espectro de actividad contra cepas de
MRSA.
Sinergia: Aurograb tiene la capacidad de
aumentar la sensibilidad de MRSA a la vancomicina, incluyendo MRSA
con sensibilidad reducida a la vancomicina.
Se emprendieron experimentos adicionales
para determinar la MIC de vancomicina para varias cepas de MRSA y
el efecto del anticuerpo Aurograb sobre la MIC. Los experimentos
también se realizaron usando flucloxacilina en lugar de vancomicina
para investigar cómo se veía afectada la eficacia de antibióticos
tipo penicilina por Aurograb. Los resultados se dan en la Tabla
3a:
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados obtenidos con flucloxacilina
mostraron que la MIC obtenida era >256 \mug/ml para todas las
cepas EMRSA. Flucloxacilina + Aurograb daba los mismos resultados y
no mostró disminución en la MIC de flucloxacilina.
Conclusión: El uso de Aurograb en
combinación con vancomicina debe aumentar aumentarla eficacia
terapéutica e impedir la aparición de cepas resistentes a
vancomicina. Debido a la estructura y función del anticuerpo con
respecto a la molécula diana, pueden esperarse que se consigan
resultados similares usando otros antibióticos glicopeptídicos
tales como teicoplanina, siendo los mecanismos de resistencia
empleados por S. aureus contra ellos los mismos que para la
vancomicina y por lo tanto siendo también una diana para el
anticuerpo y siendo susceptibles a terapia usándolo.
\vskip1.000000\baselineskip
El modelo murino de infección por estafilococos
se usa ampliamente y se usa rutinariamente en la evaluación de
fármacos antimicrobianos. Es un buen factor de predicción de la
eficacia en seres humanos infectados ya que S. aureus se
introduce por vía intravenosa para crear una bacteremia, a partir de
la cual el patógeno se propaga a otros órganos, incluyendo el
riñón, el hígado y el bazo. Por tanto, la naturaleza de la infección
(septicemia) se análoga a la situación en paciente infectados.
Además, la vía intravenosa de administración de Aurograb, usada en
los modelos animales (datos dados a continuación) es la misma vía
que la usada típicamente en pacientes, mejorando la probabilidad de
farmacocinética comparable, biodisponibilidad y eficacia del
fármaco.
\vskip1.000000\baselineskip
Propósitos: Demostrar que Aurograb es
terapéutico cuando se da solo en ratones infectados con una cepa
sensible a vancomicina de MRSA, la cepa
EMRSA-15.
Objetivo: Se demuestra la actividad
anti-estafilococos por una reducción en la
mortalidad o una reducción en la carga bacteriana (unidades
formadoras de colonias) en el riñón, el hígado o el bazo en
presencia de Aurograb.
Procedimiento: A 20 ratones CD-1
hembra se les dio una estimulación sub-letal (1,3 x
10^{7} cfu) de una cepa sensible a vancomicina, resistente a
meticilina, de S. aureus (EMRSA-15, Aislado
Hospitalario Tipado, Central Manchester Healthcare Trust) en un
bolo iv de 100 \mul (todas las inyecciones iv se hicieron por la
vena de la cola lateral). Después de 1 hora, dos grupos de 10
ratones recibieron, en forma de un bolo iv de 100 \mul:
1. tampón de formulación
(Arginina-Urea), como control negativo o
2. Aurograb (2,0 mg/kg) en tampón de
formulación.
Todos los animales se sacrificaron después de 48
h adicionales y se determinaron las cfu viables por gramo de
órgano.
\newpage
Resultados:
Actividad anti-bacteriana - Se
encontraron estafilococos viables en el riñón, el hígado y el bazo
con localización preferente en el riñón. La administración de
Aurograb provocó una reducción logarítmica (factor 10) en los
organismos viables encontrados en los tres órganos. Esto sugiere que
Aurograb reduce la viabilidad de S. aureus en infecciones
experimentales de ratones en ausencia de cualquier otro agente
antimicrobiano exógeno usando el modelo murino de infección
profundamente arraigada.
\vskip1.000000\baselineskip
Propósitos: Estudio de escala de dosis para el
uso de Aurograb frente a la cepa EMRSA-15 de S.
aureus.
Objetivo: La actividad antibacteriana se
demuestra por la mayor reducción en la carga bacteriana (cfu en el
órgano) en el riñón, el hígado o el bazo cuando se da Aurograb, como
único agente, en comparación con el control de placebo. El
intervalo de dosis se determina comparando las cfu (expresadas como
el log de las cfu por gramo de tejido) para diferentes órganos a
diferentes dosis.
Procedimiento: se estimularon 40 ratones
CD-1 hembra (24-26 g) con un bolo iv
de S. aureus seguido 2 horas después por una única dosis iv
de placebo o Aurograb (2 mg/kg, 1 mg/kg o 20 mg/kg). Todos los
animales se sacrificaron a las 48 horas para el cultivo del riñón,
el hígado y el bazo para determinar los recuentos de viabilidad en
los órganos.
Resultados: expresados como log cfu por gramo de
tejido
Experimento 1: S. aureus (1,5 x 10^{7}
cfu): EMRSA-15.
\vskip1.000000\baselineskip
Experimento 2: S. aureus (9 x 10^{6}
cfu): aislado clínico EMRSA-15 - dosis baja de
Aurograb.
Experimento 1: Se consiguió una reducción de 10
a 100 veces en las bacterias viables bacteria para el hígado y el
bazo en el intervalo de 1,0 a 2,0 mg/kg de Aurograb. A 0,2 mg/kg de
Aurograb, la eliminación del bazo aún es buena, pero reducida en el
hígado. La dosis más elevada provocaba una reducción de 0,8 log en
los recuentos de bacterias en el riñón pero no existía reducción
con las dosis inferiores.
Experimento 2: A dosis tan bajas como 0,2 mg no
es evidente la reducción en los estafilococos viables en los
riñones, pero existen evidencias de eliminación bacteriana en el
hígado y el bazo.
Conclusión: La administración de Aurograb
a 2 mg/kg provoca una reducción en los organismos viables encontraos
en los tres órganos, pero particularmente el bazo y el hígado.
Aurograb a una dosis de 1 mg/kg también mostró actividad
antibacteriana significativa en el bazo y el hígado, pero perdía
actividad en el riñón. Dosis tan bajas como 0,2 mg/kg, aún
mostraban actividad antibacteriana en el bazo, y a un menor grado,
en el hígado.
Extrapolación a seres humanos: Una única dosis
de 2,0 mg/kg en ratones daba una disminución de aproximadamente 2,0
log en los recuentos del hígado y el bazo y una disminución de 0,8
log en los recuentos del riñón. Esto equivale, en una base de peso
corporal, a 1 mg/kg dado dos veces al día a seres humanos.
\vskip1.000000\baselineskip
Propósitos: Demostrar que Aurograb es
antibacteriano cuando se da solo y sinérgico cuando se da junto con
vancomicina en ratones infectados con una dosis
sub-letal de S. aureus.
Objetivo: La actividad antibacteriana se
demuestra por una reducción en la carga bacteriana (unidades
formadoras de colonias) en el riñón, el hígado o el bazo en
presencia de Aurograb solo. La sinergia se demuestra por una mayor
reducción en los recuentos de colonias en los órganos cuando se dan
juntos Aurograb y vancomicina que cuando cualquiera de los agentes
antibacterianos se da solo.
Procedimientos: A 60 ratones
CD-1 hembra (22-24 g) se les da 1 x
10^{7} cfu de EMRSA-15 en forma de un bolo iv de
100 \mul. Después de 2 horas, en grupos de 10 ratones, recibieron,
en forma de un único bolo iv de 100 \mul:
Grupo 1 - 6,0 mg/kg de vancomicina + 2,0 mg/kg
de Aurograb
Grupo 2 - 6,0 mg/kg de vancomicina + 0,2 mg/kg
de Aurograb
Grupo 3 - 6,0 mg/kg de vancomicina + placebo
(tampón de formulación)
Grupo 4 - placebo + 2,0 mg/kg de Aurograb
Grupo 5 - placebo + 0,2 mg/kg de Aurograb
Grupo 6 - placebo + 2,0 mg/kg de Aurograb
Todos los ratones se sacrificaron a las 48 horas
para el cultivo del riñón, el hígado y el bazo.
Resultados: expresados como log cfu por gramo de
tejido, salvo que la mayoría de los ratones (>5) lo eliminaran
(es decir, los órganos fueran negativos al cultivo). N/A = no
aplicable.
Solo: Aurograb administrado solo a 2,0 mg/kg
(grupo 4) dio resultados comparables a vancomicina sola (grupo 3),
eliminándose cada uno de los hígados de 8 ratones y los bazos de 4 y
5 ratones, respectivamente, en comparación con un ratón con
eliminación del hígado y el bazo en el grupo de control negativo
(grupo 6). La eliminación renal fue mejor con vancomicina que con
Aurograb, aunque ninguno de los ratones eliminó la infección
renal.
Sinergia: Los ratones (grupo 1) que recibieron
2,0 mg/kg de Aurograb más vancomicina (6 mg/kg) mostraron
eliminación completa de los estafilococos de los hígados de los 10
ratones, y eliminación potenciada de los bazos, siendo el cultivo
negativos en 9 ratones, en comparación con 4-5 que
tenían eliminación en el grupo de Aurograb o vancomicina solos y 1
que tenía eliminación en el grupo sin tratar. Los recuentos de
colonias renales en los que recibieron terapia de combinación
(grupo 1) se redujeron en 0,5 log adicionalmente en comparación con
los ratones que recibieron vancomicina sola (grupo 3), y se
redujeron en 1,6 log en comparación con los ratones de control
negativo (grupo 6).
\vskip1.000000\baselineskip
Propósitos: Demostrar que Aurograb es
antibacteriano cuando se da solo y sinérgico cuando se da junto con
vancomicina en ratones infectados con una dosis letal de S.
aureus.
Objetivo: La actividad antibacteriana se
demuestra por una reducción en la mortalidad con Aurograb solo. La
sinergia se demuestra por una reducción mayor en la mortalidad
cuando se da Aurograb en combinación con vancomicina, en lugar de
vancomicina sola.
Procedimiento: A 60 ratones CD-1
hembra (22-24 g) se les da S. aureus (un
aislado clínico fresco de EMRSA-15) a una dosis de
8 x 10^{7} cfu en un bolo iv de 100 \mul. Después de 2 horas, en
grupos de 10 ratones, recibieron, en forma de un único bolo iv de
100 \mul:
Grupo 1 - 4,0 mg/kg de vancomicina + 2,0 mg/kg
de Aurograb
Grupo 2 - 4,0 mg/kg de vancomicina
Grupo 3 - 2,0 mg/kg de vancomicina + 2,0 mg/kg
de Aurograb
Grupo 4 - 2,0 mg/kg de vancomicina
Grupo 5 - 2,0 mg/kg de Aurograb
Grupo 6 - placebo
Todos los ratones se sacrificaron a las 48 horas
para el cultivo del riñón, el hígado y el bazo. Los ratones muertos
antes del sacrificio a las 48 horas no se sometieron a recuentos de
colonias en los órganos.
Resultados: expresados como log cfu por gramo de
tejido, salvo que la mayoría de los ratones (>5) estuvieran
muertos.
\vskip1.000000\baselineskip
Mortalidad: Esta cepa de S. aureus,
probablemente debido a que era un aislado clínico fresco, era más
virulenta en el modelo de ratón que la cepa de laboratorio usada
previamente de EMRSA-15, y se observó un elevado
grado de mortalidad. La administración de Aurograb solo (2,0 mg/kg)
se asoció con una reducción en la mortalidad (4 muertes) en
comparación con el grupo no tratado (7 muertes), comparable con la
mortalidad del grupo de vancomicina sola (6 y 5 muertes). Esto
sugiere que Aurograb tiene actividad
anti-estafilococos intrínseca comparable con la
vancomicina a 4,0 mg/kg.
Sinergia: Los ratones que recibieron terapia de
combinación (Aurograb 2,0 mg/kg y vancomicina 4,0 mg/kg) tuvieron
índices mayores de supervivencia que con vancomicina o Aurograb solo
lo que sugiere un efecto sinérgico con los dos fármacos.
\vskip1.000000\baselineskip
Las características farmacocinéticas (PK) de
Aurograb se han estudiado en ratones. Se usó un modelo murino a
causa de la eficacia y se han realizado estudios de escala de dosis
en esta especia tal como eran los estudios de toxicología de dosis
repetidos. A los ratones se les dio una única dosis elevada en forma
de un bolo iv y después se examinaron por duplicado para los
niveles sanguíneos y la distribución orgánica. También se analizaron
muestras de orina. Las muestras se analizaron para la actividad
funcional, medida por ELISA (muestras sanguíneas solamente) y la
concentración de fármaco (SDS PAGE/inmunotransferencias).
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados se muestran en la Figura 1. Los
ratones a los que se les dio una única inyección en embolada
intravenosa de Aurograb (10 mg/kg) mostraron niveles sanguíneos
satisfactorios.
En todos los órganos (pulmones, cerebro, hígado,
bazo, corazón, riñón y sangre) hubo eliminación en 24 horas.
\vskip1.000000\baselineskip
Este estudio se realizó por el departamento de
Farmacología Bioquímica en Inveresk Research, Escocia, para evaluar
la idoneidad de Aurograb para administración intravenosa.
Se tomaron muestras sanguíneas de voluntarios
humanos sanos, se transfirieron a tubos que contenían Aurograb,
vehículo de Aurograb, saponina o solución salina y se incubaron a
37ºC durante 1 hora. Después de centrifugación, se evaluó la
cantidad de hemoglobina en el sobrenadante para determinar la
hemólisis. De acuerdo con la American Society for Testing and
Materials classification system (ASTM F756-93, 1993)
los datos indicaban que 0,1 mg/ml de Aurograb y el vehículo de
Aurograb eran no hemolíticos. Era comparable con solución salina
fisiológica que era no hemolítica, y estaba en contraste total con
el compuesto de referencia positivo (saponina) que se descubrió que
era muy hemolítico.
\vskip1.000000\baselineskip
Aurograb se produce en E. coli en forma
de cuerpos de inclusión. El aislamiento, solubilización,
desnaturalización y replegamiento de los cuerpos de inclusión se ha
documentado bien previamente (véase "Antibodies: A Laboratory
Manual". Harlow, E. y Lane, D. 1988, Cold Spring Harbor
Laboratory Press; "Inclusion bodies and purification of proteins
in biologically active forms". Mukhopadhyay, A. 1997, Adv.
Biochem. Eng. Biotechnol.; 56:61-109). Un ejemplo
de dicho procedimiento se perfila en esta solicitud. En resumen, se
extrajeron los cuerpos de inclusión de la masa celular, se
solubilizaron/desnaturalizaron, replegaron y se purificaron usando
cromatografía. La sobre-expresión de Aurograb es a
partir del promotor T7 potente en el vector pET29b (Novagen). La
masa celular se produce en formad de un cultivo puro, de calidad
controlada, preparado en un fermentador estéril (1000 l) usando
medios sin productos animales. La cepa de E. coli usada está
genéticamente incapacitada (incapaz de colonizar/persistir en el
entorno) y es avirulenta. Las impurezas eliminadas durante el
procesamiento aguas abajo son por tanto (1) las proteína de la
célula huésped E. coli (HCP), (2) los pirógenos de E.
coli (principalmente endotoxinas), (3) los aditivos de
fermentación (antibióticos), (4) los aditivos del procesamiento
aguas abajo (tampones y NiSO_{4}).
Se eliminan grandes cantidades de contaminantes
de E. coli y casi todos los contaminantes derivados del
medio de fermentación durante la extracción de proteínas del
procedimiento a partir de los cuerpos de inclusión. Para esto, se
aísla la masa celular por centrifugación y se rompe usando un
microfluidizador. Los cuerpos de inclusión de Aurograb se separan
de la masa celular por tres etapas de
centrifugación-resuspensión-microfluidización
lavando de este modo extensivamente los cuerpos de inclusión. Los
cuerpos de inclusión se solubilizan y se repliegan en un periodo de
dos días en presencia de cloruro de cobre, que sirve como
catalizador de oxidación, estableciendo de este modo la estructura
correcta y biológicamente activa de la molécula de Aurograb. Se
realiza diafiltración extensiva para eliminar las pequeñas
moléculas de la reacción de replegamiento y los restos de
kanamicina residual (de la reacción de fermentación). El resto de
las proteínas de la célula huésped se eliminan por cromatografía de
afinidad al metal níquel inmovilizado (IMAC) e intercambio aniónico.
En particular, las endotoxinas, que es una cuestión de seguridad
significativa para los fármacos fabricados en E. coli, se
eliminan de forma eficaz durante la IMAC por la adición de ácido
desoxicólico. Los últimos restos de HCP de E. coli se
eliminan durante la etapa de intercambio aniónico. Los restos de
níquel de la etapa de IMAC se eliminan usando una columna de
afinidad al níquel. Finalmente, las pequeñas moléculas del sistema
tampón de cromatografía se eliminan usando diafiltración frente al
tampón de formulación. El producto a granel se liofiliza en viales
para su uso en pacientes. Los siguientes párrafos numerados detallan
específicamente la fabricación del anticuerpo Aurograb.
\global\parskip0.930000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La fermentación y el procesamiento aguas abajo
se realizaron usando un total de nueve etapas del siguiente
modo:
- 1.
- Fermentación
- 2.
- Recolección y aislamiento de los cuerpos de inclusión
- 3.
- Replegamiento
- 4.
- Concentración y diafiltración
- 5.
- Filtración y filtración estéril
- 6.
- Purificación - Cromatografía de afinidad al metal níquel (Ni^{2+}) inmovilizado (IMAC)
- 7.
- Purificación - Eliminación del níquel por cromatografía en sepharose quelante
- 8.
- Purificación - Cromatografía de intercambio aniónico
- 9.
- Diafiltración y carga a granel.
\vskip1.000000\baselineskip
Se inoculó una solución madre congelada de E.
coli que expresa Aurograb (Clon JM109 (DE3) (pSaABC4)) en 4
matraces cónicos de vidrio de 500 ml, para preparar el inóculo antes
de transferirlo a un fermentador agitado de 1000 l (MBR). Los
precultivos (suplementados con kanamicina) se incubaron a 37ºC con
agitación, durante 15-20h, hasta que el precultivo
tuviera una DO_{578} = 4,0-8,0, que representa
7-8 divisiones celulares. A escala de producción,
los precultivos se transfirieron en un fermentado de 1000 l (MBR)
que contenía 1000 l de caldo nutriente. El cultivo de producción se
incubó a 37ºC durante un total de 14-18 h, que
representa 7 divisiones celulares. Aproximadamente
10-13 h después de la inoculación, cuando la
DO_{578} = 5-8, se indujo el cultivo de
producción a través de la adición de 23,8 g de IPTG (100
\muM).
\vskip1.000000\baselineskip
Las células se recogieron por centrifugación (4
h después de la inducción) a 12.800 g en una centrífuga Alfa Laval
BTPX 205 con un caudal de aprox. 400 l/h. La pasta celular de E.
coli recogida se almacenó a -50ºC en bolsas de PE (Kendro). El
procesamiento aguas abajo del 100% de la masa de pasta celular a
partir de un único lote de fermentación que se había almacenado a
-50ºC constituía un único lote de purificación. La pasta celular se
descongeló y se resuspendió en 1000 l de tampón de lisis. Las
células bacterianas resuspendidas se sometieron a homogeneización
de elevada presión (APV Gaulin MC15) a aprox. 1000 bar (15.000 psi)
con un caudal de aprox. 500 l/h. Los cuerpos de inclusión se
sedimentaron por centrifugación a aprox. 12.800 g con un caudal de
aprox. 400 l/h. Los cuerpos de inclusión después se lavaron con 400
l de tampón de lisis, y se sedimentaron por centrifugación a aprox.
12.800 g con un caudal de aprox. 400 l/h, para un total de tres
veces. Los cuerpos de inclusión lavados se almacenaron en forma de
una suspensión a -70ºC antes de la etapa de replegamiento. Los
cuerpos de inclusión se solubilizaron por agitación fuerte durante
5-10 minutos en 40 l de urea 6 M/Tris 100 mM pH
12,5 a temperatura ambiente.
\vskip1.000000\baselineskip
Para el replegamiento, la solución de cuerpos de
inclusión se compuso a 560 l con tampón de replegamiento, y se
añadió CuCl_{2}\cdot2 H_{2}O a una concentración final de 100
\muM. La preparación se incubó durante 48 h a
2-8ºC con agitación fuerte. Los cuerpos de inclusión
se filtraron (Sartorius GF 30'', 3,0/0,8 \mum) y después se
esterilizaron por filtración (Seitz Supradisc SDPEK 1, filtro
profundo).
\global\parskip1.000000\baselineskip
Las etapas de concentración y diafiltración se
realizaron usando casetes (15 m^{2}) del canal de selección omega
con un punto de corte de 10 kDa (Pall) alojado en un portador de
acero inoxidable "Centrasette" (Pall), bajo el control de una
bomba con pistón de membrana 1000 (bomba quattro). La preparación de
proteína replegada se concentró a 150 l, seguido de diafiltración
con 3000 litros de tampón acetato amónico 10 mM, pH 9,5. La
preparación se ajustó a urea 6 M, Tris 50 mM, DCA 10 mM, NaCl 1 M y
se compuso a un volumen final de 300 l con agua RO. La proteína
replegada diafiltrada se almacenó durante una noche a
2-8ºC. El pH después se ajustó a 8,0 a través de la
adición de HCl.
\vskip1.000000\baselineskip
La proteína replegada diafiltrada se filtró
(Seitz Supradisc SDPEK1, filtro profundo) y después se esterilizó
por filtración (Millipore Opticap 10'', 0,2 \mum). El producto
estéril se almacenó a 2-8ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
La etapa de IMAC se realizó en una columna
BPG300/500 (Amersham Pharmacia). La esterilización de la columna de
cromatografía tuvo lugar durante la limpieza de la resina en el
sitio (CIP). La resina de cromatografía IMAC (18 l) se cargó
inicialmente con 2 volúmenes de columna (CV) de
NiSO_{4}\cdot6H_{2}O 100 mM. La cromatografía utilizó 5,5 CV
de tampón de equilibrado (IMAC A); 5,5 CV de tampón de lavado I
(IMAC B); 3,3 CV de tampón de lavado II (IMAC C); 5,5 CV de tampón
de elución (IMAC D). Las fracciones recogidas del producto eluido
se esterilizaron por filtración (Millipore Opticap 10'', 0,2 \mum)
y se almacenaron durante una noche a 2-8ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
La cromatografía para la eliminación del níquel
se realizó en una columna Bag 140/500 (Amersham Pharmacia) usando 2
l de resina Sepharose quelante. La columna se equilibró y se lavó
con 5 CV de tampón (IMAC D) y se aplicó la solución que contenía el
anticuerpo Aurograb, se lavó la columna con 2 CV de tampón
aniónico/acondicionante (Tris 50 mM, urea 6 M pH 8,7) y el producto
eluido se retuvo antes de la cromatografía de intercam-
bio aniónico.
bio aniónico.
\vskip1.000000\baselineskip
La etapa de cromatografía de intercambio
aniónico se realizó en una columna Bug 300/500 (Amersham Pharmacia)
usando 18 l de resina (Q-Sepharose FF). La columna
se equilibró usando tampón de equilibrado y después tampón
aniónico/acondicionante. Se aplicó la solución que contenía el
anticuerpo Aurograb, se lavó con 2 CV de tampón
aniónico/acondicionante, y el flujo continuo se esterilizó por
filtración (Millipore Opticap 10'', 0,2 \mum) y se almacenó
durante una noche a 2-8ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
El pH del flujo continuo estéril (que contenía
el anticuerpo Aurograb) se ajustó a 9,5, y después se diafiltró
frente a 10 volúmenes de renovación (TOV) de acetato amónico 10 mM;
urea 0,5 M, pH 9,5. Lo siguió otra etapa de diafiltración, frente a
5 TOV de urea 0,5 M, arginina 0,2 M pH 9,5. La proteína se concentró
a 2 mg/ml, se esterilizó por filtración (Millipore Opticap 10'',
0,2 \mum) en una bolsa Stedim, y se almacenó a
2-8ºC.
\newpage
Los medios se controlaron para la contaminación
microbiana antes de la inoculación.
Las sustancias pre-pesadas de la
tabla anterior se disuelven en 2,5 l de agua RO 1. Después de
esterilización del caldo, se añadieron 10 ml de sulfato de
kanamicina (62,5 mg en 50 ml de WFI).
\vskip1.000000\baselineskip
El fermentador de 1000 l se esterilizó durante
30 minutos a 121ºC.
\newpage
\global\parskip0.930000\baselineskip
Se disolvieron 23,8 g de IPTG (Sigma) en 200 ml
de WFI y se filtraron a esterilidad (0,2 \mum).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La composición de la reacción de replegamiento
diafiltrada de 150 l se ajustó con los reactivos anteriores.
\vskip1.000000\baselineskip
Solución de níquel: NiSO_{4}\cdot6 H_{2}O
100 mM (2 CV)
IMAC A/Tampón de equilibrado: Tris 100 mM; urea
6 M; NaCl 1 M; DCA 10 mM, pH 8,0
IMAC B/Tampón de lavado: Tris 100 mM; urea 6 M;
NaCl 1 M; imidazol 50 mM; DCA 10 mM, pH 8,0
IMAC C/Tampón de elución I: Tris 100 mM; urea 6
M; NaCl 1 M; imidazol 150 mM; pH 8,0 (10-15 CV)
IMAC D/Elución II: Tris 100 mM; urea 6 M; NaCl 1
M; imidazol 300 mM pH 8,0 (7 CV) CIP: NaOH 1 M (3 volúmenes de
columna, tiempo de incubación 1 hora)
Los tampones se prepararon con Tris (USP,
E.Merck), Urea (USP, E.Merck o Riedel de Haen), NaCl (Ph.Eur,
E.Merck), Imidazol (p.a., Fluka), DCA (Ácido desoxicólico, sal
sódica monohidrato, Microselect, Fluka), NiSO_{4}\cdot6
H_{2}O (p.a., E.Merck).
\global\parskip1.000000\baselineskip
Tampón de equilibrado: Tris 100 mM; urea 6 M;
NaCl 50 mM; imidazol 300 mM; pH 8,0 (5 CV).
\vskip1.000000\baselineskip
Equilibrado: Tris 100 mM; urea 6 M; NaCl 50 mM;
Imidazol 300 mM pH 8,7
CIP: NaOH 1 M (3 CV, tiempo de incubación 1
hora).
\vskip1.000000\baselineskip
Para la esterilización y almacenamiento, los
casetes de diafiltración se lavaron abundantemente con agua RO, se
reciclaron durante al menos 45 minutos con NaOH 0,5 M y se
almacenaron con NaOH 0,1 M.
Tampón de diafiltración: urea 0,5 M; acetato
amónico 10 mM pH 9,5
Tampón de diafiltración (formulación): urea 0,5
M; arginina 0,2 M pH 9,5
Diafiltración y concentración (2 casetes, canal
de selección Omega, 10 KD, Pall).
\vskip1.000000\baselineskip
Para determinar la Concentración Inhibidora
Mínima (MIC), la Concentración Inhibidora Fraccional (FIC) y el FIX
(índice inhibidor fraccional), se usó el siguiente
procedimiento.
Se cultivaron representantes de cada una de las
cepas EMRSA más comunes; varias subpoblaciones resistentes a
vancomicina, y tres cepas resistentes a Linzolid durante una noche
en caldo nutriente. Las células se diluyeron en Caldo Isosensitest
(Oxoid, UK) para dar un inóculo final de 1 x 10^{3} células por
ml. Se colocaron alícuotas de 100 \mul de cultivo en placas de
microtitulación de fondo plano y se añadió vancomicina en el
intervalo de 0,125 - 250 \mug/ml. A esto se añadió Aurograb
exógeno en el intervalo de 0,3 - 25 \mug/ml en una formación de
tablero de ajedrez. También se preparó una serie de control negativo
que contenía tampón de formulación de Aurograb solo. Los cultivos
se incubaron durante 48 horas a 37ºC.
La concentración inhibidora mínima (MIC) se
define como la concentración más baja de agente a la que no sucede
crecimiento bacteriano y se determinó por evaluación
espectrofotométrica de la ausencia de turbidez (crecimiento) en
cultivo.
Esta eliminación óptica era equivalente a
>99% de muerte de estafilococos.
\vskip1.000000\baselineskip
Los valores de MIC se obtuvieron para
vancomicina y Aurograb (RTM) solos y en combinación. Se calcularon
las concentraciones inhibidoras fraccionales (FIC) y los valores de
FIX. La actividad sinérgica entre los dos agentes se definió como
un valor de FIX <0,5. La actividad indiferente se definió como un
valor de 0,5 - 4, y un valor >4 definía antagonismo.
Los resultados del experimento se dan a
continuación en las Tablas 9 y 10. VAN indica vancomicina. La
columna MIC (Solo) indica la concentración inhibidora mínima del
agente cuando se administraba solo. La columna MIC (En combinación)
indica la concentración inhibidora mínima de cada fármaco en cuando
se usó en combinación.
\vskip1.000000\baselineskip
Como puede observarse a partir de las Tablas 9 y
10, la administración de Aurograb con vancomicina provoca que se
consiga un efecto terapéutico sinérgico, estando los niveles de MIC
sustancialmente reducidos, que a su vez indica que la terapia de
los pacientes puede realizarse con dosificaciones inferiores de
antibióticos y con mayor efecto terapéutico, con una reducción
esperada en los posibles efectos secundarios provocados por el
antibiótico. Los resultados indican que incluso en casos en los que
un paciente se infecta con S. aureus resistente a
vancomicina puede tratarse satisfactoriamente con el anticuerpo de
la presente invención y su uso en combinación con antibióticos
tales como vancomicina puede posibilitar una terapia eficaz a
niveles de dosificación no tóxicos previamente ineficaces de
antibiótico.
\vskip1.000000\baselineskip
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> NBUTEC PHARMA PLC
\hskip1cm BURNIE, James P
\hskip1cm MATTHEWS, Ruth C
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Tratamiento de Infección Por
Microorganismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> N01/0697/PCT
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> GB 0127983.5
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
22-11-2001
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 795
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> anticuerpo recombinantes de cadena
sencilla humano (scFv)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(792)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
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<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 264
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
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<223> anticuerpo recombinante de cadena
sencilla humano (scFv)
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Staphylococcus aureus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm27
Claims (18)
1. Un anticuerpo que tiene la secuencia de la
SEC ID Nº 2 o un fragmento de unión a antígeno del mismo.
2. El uso de un anticuerpo específico para el
epítope presentado por el péptido que tiene la secuencia de
aminoácidos de la SEC ID Nº 3 en un procedimiento para fabricar un
medicamento para el tratamiento de infecciones diferentes a una
infección por estafilococos.
3. Un medicamento, que comprende una cantidad
terapéuticamente eficaz de un antibiótico glicopeptídico y un
anticuerpo específico contra el epítope presentado por el péptido
que tiene la secuencia de aminoácidos de la SEC ID Nº 3.
4. Un medicamento de acuerdo con la
reivindicación 3 para su uso en el tratamiento o diagnóstico del
cuerpo humano o animal.
5. Un medicamento de acuerdo con la
reivindicación 3, que es para el tratamiento de una infección por
bacterias gram positivas.
6. Un procedimiento de fabricación de un
medicamento para el tratamiento de una infección,
caracterizado por el uso de una cantidad terapéuticamente
eficaz de un antibiótico glicopeptídico y un anticuerpo específico
contra el epítope presentado por el péptido que tiene la secuencia
de aminoácidos de la SEC ID Nº 3.
7. Un envase de producto farmacéutico para el
tratamiento de una infección, que comprende una cantidad
terapéuticamente eficaz de un antibiótico glicopeptídico y un
anticuerpo específico contra el epítope presentado por el péptido
que tiene la secuencia de aminoácidos de la SEC ID Nº 3.
8. Un medicamento, procedimiento de fabricación,
o envase de producto farmacéutico de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 3, 6 y 7, teniendo dicho anticuerpo la
secuencia de la SEC ID Nº 2.
9. Un medicamento, procedimiento de fabricación,
o envase de producto farmacéutico de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 3 y 6-8, seleccionándose dicho
antibiótico glicopeptídico entre el grupo constituido por
vancomicina y teicoplanina.
10. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 3 y 6-9, siendo
dicha infección de una bacteria gram positiva.
11. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 10, siendo dicha bacteria un estafilococo.
12. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 11, siendo dicha bacteria un estafilococo
coagulasa-negativo.
13. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 12, seleccionándose dicho estafilococo entre el
grupo constituido por S. haemolyticus, S.
epidermidis y S. saprophyticus.
14. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 11, siendo dicha bacteria un estafilococo
coagulasa-positivo.
15. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 14, siendo dicho estafilococo S. aureus.
16. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 10, seleccionándose dicha bacteria entre el grupo
constituido por Enterococcus sp., Enterococcus faecalis,
Enterococcus faecium, Corynebacterium sp., Corynebacterium
jeikeium, y Corynebacterium xerosis.
17. Un medicamento, procedimiento de
fabricación, o envase de producto farmacéutico de acuerdo con la
reivindicación 10, siendo dicha bacteria resistente al tratamiento
por dicho antibiótico glicopeptídico solo.
18. Un anticuerpo específico para el epítope
presentado por el péptido que tiene la secuencia de aminoácidos de
la SEC ID Nº 3 para su uso en el tratamiento de infecciones
diferentes a una infección por estafilococos.
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