ES2284242T3 - Anticuerpos contra il-12 humana. - Google Patents
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Abstract
Un anticuerpo monoclonal para IL-12 humana que consiste en una subunidad p35 y una subunidad p40 que forman un heterodímero p75, en donde dicho anticuerpo monoclonal (a) reacciona inmunológicamente con un epítopo presentado por el heterodímero p75 de IL-12 humana, pero no es inmunológicamente reactivo con ningún epítopo presentado por dicha subunidad p40 sola; y (b) neutraliza al menos aproximadamente 90% de la bioactividad de IL-12 humana según se mide (i) inhibiendo la proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA estimulada por IL-12, en donde la concentración de dicho anticuerpo es 0, 5 mi/ml y la concentración de dicha IL-12 humana es 0, 25 ng/ml; o (ii) inhibiendo la producción de IFN-gamma estimulada por IL-12, en donde la concentración del anticuerpo es 0, 5 mig/ml y la concentración de dicha IL-12 humana es 0, 25 ng/ml.
Description
Anticuerpos contra IL-12
humana.
Esta invención se refiere generalmente a
anticuerpos para IL-12 y más particularmente a
anticuerpos policlonales y monoclonales
anti-IL-12 humana.
La interleuquina-12
(IL-12), primeramente conocida como factor de
maduración de linfocitos citotóxicos o factor estimulante de
células asesinas naturales, es una citoquina heterodímera de 75 kDa
(p75) compuesta por subunidades de 40 kDa (p40) y 35 kDa (p35)
unidas por disulfuro. Las subunidades p40 y p35 son polipéptidos que
contienen 306 residuos de aminoácido y 197 residuos de aminoácido,
respectivamente (Gubler U. y otros, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
Vol. 88, 4143-4147 (1991)).
El heterodímero p75 es la forma biológicamente
activa de IL-12 (Gubler, U. y otros, 1991, Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 88: 4143; Wolf, S.F. y otros, 1991, J.
Immunol., 146: 3074). El heterodímero p75 de IL-12
tanto activa como refuerza respuestas inmunitarias mediadas por
células contra antígenos extraños estimulando la producción de
células cooperadoras Th 1, estimulando células T activadas y células
asesinas naturales (NK), potenciando la actividad lítica de células
NK/LAK y estimulando la producción de IFN-\gamma
por células T y NK en reposo y activadas.
Se ha observado que la subunidad p40 de
IL-12 es producida en exceso de la subunidad p35 y
se encuentra en las formas tanto monómera como dímera (Podlaski,
F.J. y otros, 1992, Arch. Biochem. Biophys. 294: 230; D'Andrea, A.
y otros, 1992, J. Exp. Med., 176: 1387). El homodímero p40 de
IL-12 es un potente antagonista de
IL-12 (Ling, P. y otros, 1995, J. Immunol., 154:
116; Gillessen, S. y otros, 1995, Eur. J. Immunol., 25: 200). En
contraste con la subunidad p40, la subunidad p35 de
IL-12 no tiene actividad biológica conocida y la
proteína p35 solo se ha encontrado en asociación con la subunidad
p40 como parte del heterodímero p75 de IL-12. Por
lo tanto, existen dos tipos importantes de epítopos presentados por
IL-12 humana: (1) epítopos presentados por la
subunidad p40 y (2) epítopos presentados por la conformación
tridimensional del heterodímero p75 de IL-12. Por
consiguiente, los presentes inventores diseñan anticuerpos que
reconocen epítopos presentes sobre la proteína heterodímera p75 de
IL-12 pero no reconocen epítopos presentes sobre la
proteína de la subunidad p40 de IL-12 llamados
anticuerpos "específicos para el heterodímero".
D'Andrea y otros describen la producción de
factor estimulante de células asesinas naturales (IL12) mediante
células mononucleares de sangre periférica (Journal of Experimental
Medicine. 1992, Vol. 176. Nº 5, pp 1387-1389).
En WO95/24918A se describe un método para tratar
en un mamífero un estado autoinmune, que comprende la administración
de una cantidad terapéuticamente eficaz de un antagonista de
IL-12.
Se ha encontrado que los anticuerpos para
IL-12 no son óptimamente eficaces para neutralizar
substancialmente la bioactividad de IL-12. Los
anticuerpos para IL-12 que reaccionan
inmunológicamente con la subunidad p40 no bloquean óptimamente la
bioactividad de IL-12 humana. Por ejemplo, el uso de
anticuerpos que reaccionan con epítopos presentados por la
subunidad p40 es particularmente problemático debido a que se ha
observado que la producción de heterodímero p75 de
IL-12 da como resultado un exceso de subunidades p40
inactivas con relación al heterodímero p75 bioactivo (Podlaski,
F.J., 1992, Arch. Biochem. Biophys. 294: 230; D'Andrea, A. y otros,
1992, J. Exp. Med., 176: 1387). Como resultado, los anticuerpos para
p40 no son tan eficaces como los anticuerpos específicos para el
heterodímero para reducir los efectos perjudiciales de la
IL-12 debido a que la subunidad p40 sola no es
bioactiva, y los anticuerpos para p40 tienden a unirse a las
subunidades p40 inactivas en vez de a aquellas subunidades p40 que
son parte de un heterodímero p75 bioactivo.
Ni siquiera los anticuerpos conocidos que
reaccionan solo con el heterodímero p75 neutralizan eficazmente la
bioactividad de IL-12. Por ejemplo, un anticuerpo
específico para el heterodímero p75 de IL-12
previamente identificado, llamado 20C2 (Chizzonite y otros,
Cytokine, 6: A82a (1994) y D'Andrea y otros, J. Exp. Med., Vol.
176, 1387-1398 (1992)), no puede bloquear
substancialmente la proliferación de linfoblastos activados por PHA
ni la producción de IFN-\gamma estimuladas por
IL-12 humana.
Anticuerpos específicos para el heterodímero que
neutralicen más eficazmente la bioactividad de IL-12
son necesarios para reducir efectos perjudiciales de
IL-12. Se sabe que los niveles incrementados de
IL-12 en suero o tejido están implicados en el
desarrollo y el avance de trastornos autoinmunes. Así, los
anticuerpos para IL-12 son antagonistas útiles para
controlar enfermedades con patologías que están mediadas a través
de mecanismos inmunes, particularmente enfermedades asociadas con
actividad de células cooperadoras tipo Th1 aberrantes. Ejemplos de
tales trastornos autoinmunes incluyen esclerosis múltiple,
enfermedad inflamatoria del intestino (IBD), incluyendo enfermedad
de Crohn y colitis ulcerativa, artritis reumatoide y diabetes
mellitus autoinmune. Otros estados patológicos que se ha observado
que se benefician de la administración de anticuerpos para
IL-12 incluyen enfermedad del trasplante/injerto
contra el huésped y choque séptico.
De acuerdo con esta invención, se ha encontrado
que anticuerpos para IL-12 obtenidos de un mamífero
deficiente en el gen que codifica la subunidad p35 y/o el gen que
codifica la subunidad p40 neutralizan substancialmente la
bioactividad de IL-12.
\newpage
De acuerdo con esta invención, por primera vez,
se producen anticuerpos que neutralizan substancialmente la
bioactividad de IL-12 humana usando los métodos
descritos aquí. A diferencia de otros anticuerpos específicos para
el heterodímero p75 de IL-12, los anticuerpos
específicos para el heterodímero de la presente invención
neutralizan al menos 90% de la bioactividad de IL-12
humana. Además, los anticuerpos específicos para el heterodímero
p75 de IL-12 de la presente invención reaccionan
cruzadamente con IL-12 de mono Rhesus.
Los anticuerpos para IL-12
específicos para el heterodímero p75 descritos aquí son agentes
terapéuticos eficaces para el uso en el bloqueo de la bioactividad
de IL-12 para tratar estados mediados por respuestas
inmunológicas estimuladas por IL-12 no deseables.
Los anticuerpos para IL-12 específicos para el
heterodímero altamente neutralizadores descritos aquí son
inhibidores particularmente útiles de la proliferación de
linfoblastos humanos activados por PHA estimulada por
IL-12 y la producción de
IFN-\gamma por linfoblastos humanos activados por
PHA.
La Fig. 1 es una gráfica que muestra la captura
de IL-12 humana marcada con ^{125}I por
anticuerpos contenidos en sobrenadantes de hibridomas
HIL-12F3-5F2 (denominado aquí
"5F2"), HIL-12F3-16F2
(denominado aquí "16F2"),
HIL-12F3-16G2 (denominado aquí
"16G2"), HIL-12F3-20E11
(denominado aquí "20E11") y
HIL-12F1-17E2 (denominado aquí
"17E2") (barras abiertas). La presencia de la subunidad p40 de
IL-12 humana no marcada durante la reacción de
inmunoprecipitación (barras sólidas) no bloqueaba la captura de
IL-12 humana marcada con ^{125}I por anticuerpos
monoclonales 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11, demostrando que estos
anticuerpos no tienen alta afinidad para la subunidad p40 de
IL-12 sola.
La Fig. 2 muestra patrones de enfoque
isoeléctrico de anticuerpos monoclonales
anti-IL-12 humana específicos de
heterodímero p75, 20C2, 16G2, 16F2, 20E11 y 5F2. Según se muestra en
la Fig. 2, los anticuerpos monoclonales 20C2, 20E11 y 5F2 son
inmunoglobulinas únicas. Los anticuerpos monoclonales 16G2 y 16F2
aparecen idénticos mediante enfoque isoeléctrico, pero ambos son
diferentes de 20C2, 20E11 y 5F2.
La Fig. 3 es una gráfica que muestra la
inhibición de la proliferación de linfoblastos humanos activados por
PHA estimulada por IL-12 humana natural por
anticuerpos monoclonales para IL-12 específicos para
el heterodímero p75 20C2 (+), 16G2 (\Delta), 16F2 (\bigcirc),
20E11 (+) y 5F2 (\ding{115}). La inhibición de la proliferación de
linfoblastos humanos activados por PHA estimulada por
IL-12 humana natural se determinó con respecto al
nivel de 0,25 ng/ml de proliferación de linfoblastos humanos
activados por PHA estimulada por IL-12 humana en
ausencia de anticuerpos para IL-12, mostrado en la
Fig. 3 como una línea punteada horizontal a 9940 cpm, y niveles de
fondo de proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA,
es decir, en ausencia tanto de IL-12 como de
anticuerpos para IL-12, mostrados en la Fig. 3 como
una línea punteada horizontal a 1480 cpm. Según se muestra en la
Fig. 3, los anticuerpos monoclonales para IL-12
16G2 (\Delta), 16F2 (\bigcirc), 20E11 (+) y 5F2 (\ding{115})
inhiben la proliferación de linfoblatos activados por PHA
estimulada por 0,25 ng/ml de IL-12 humana en al
menos 90%. En contraste, según se muestra en la Fig. 3, el
anticuerpo 20C2 (+) previamente conocido no inhibe substancialmente
la proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA
estimulada por IL-12.
La Fig. 4 es una gráfica que muestra la
inhibición de la proliferación de linfoblatos humanos activados por
PHA estimulada por IL-12 de mono Rhesus por
anticuerpos monoclonales para IL-12 específicos para
el heterodímero p75 16G2 (\Delta), 16F2 (\bigcirc), 20E11 (+)
y 5F2 (\ding{115}) de la presente invención en comparación con el
anticuerpo 20C2 (+) previamente conocido. El nivel de proliferación
de linfoblastos en presencia de 0,5 ng/ml de IL-12
de mono Rhesus y en ausencia de anticuerpos para
IL-12 está representado por la línea punteada
horizontal en el extremo superior de la gráfica. El nivel de fondo
de proliferación de linfoblastos, es decir, en ausencia tanto de
IL-12 como de anticuerpos para
IL-12, está representado por una línea punteada
horizontal en el extremo inferior de la gráfica. Según se muestra
en la Fig. 4, los anticuerpos de la presente invención son potentes
inhibidores de la proliferación de linfoblastos activados por PHA
estimulada por IL-12 de mono Rhesus, en contraste
con el anticuerpo 20C2 (+) que tiene un efecto inhibidor mínimo
sobre la proliferación de linfoblastos estimulada por
IL-12 de mono Rhesus.
La Fig. 5 es una gráfica que muestra la
inhibición de la producción de IFN-\gamma por
anticuerpos monoclonales específicos para el heterodímero p75, 16F2
(\bigcirc), 16G2 (\ding{110}), 20E11 1 (\ding{115}), 5F2
(\ding{108}) y 20C2 (*). Según se muestra en la Fig. 5, los
anticuerpos 16F2 (\bigcirc), 16G2 (\ding{110}), 20E11
(\ding{115}) y 5F2 (\ding{108}) inhiben la producción de
INF-\gamma estimulada por 0,25 ng/ml de
IL-12 humana en al menos 90%. La línea horizontal
punteada en el extremo inferior de la gráfica representa la
producción de IFN-\gamma de fondo en ausencia de
IL-12. En contraste, según se muestra en la Fig. 5,
el anticuerpo monoclonal 20C2 (*) es incapaz de inhibir la
producción de IFN-\gamma estimulada por 0,25
ng/ml de IL-12 en más de 65%.
La Fig. 6 es una secuencia de nucleótidos que
codifica una porción de la región variable de la cadena pesada del
anticuerpo 16G2 específico para el heterodímero p75 y la secuencia
de aminoácidos deducida de esta secuencia de nucleótidos.
La Fig. 7 es una secuencia de nucleótidos que
codifica una porción de la región variable de la cadena pesada del
anticuerpo 20E11 específico para el heterodímero p75, y la secuencia
de aminoácidos deducida de esta secuencia de nucleótidos.
De acuerdo con la presente invención, se ha
encontrado que cuando se producen anticuerpos para
IL-12 a partir de mamíferos deficientes en el gen
que codifica la subunidad de IL-12 p35 y/o el gen
que codifica la subunidad de IL-12 p40, se obtienen
anticuerpos para IL-12 que reaccionan
inmunológicamente de forma selectiva con epítopos del heterodímero
p75 de IL-12 y se identifican por su capacidad para
reaccionar inmunológicamente de forma selectiva con el heterodímero
p75 de IL-12 humana, pero no reaccionar
inmunológicamente con la subunidad p40 sola.
A diferencia de anticuerpos para p75 de
IL-12 previamente conocidos, se producen mediante
los métodos descritos aquí anticuerpos que neutralizan
substancialmente la bioactividad de IL-12 humana, es
decir, neutralizan al menos aproximadamente 90% de la bioactividad
de IL-12 humana. Además, los anticuerpos específicos
para el heterodímero p75 de IL-12 de la presente
invención reaccionan cruzadamente con IL-12 de mono
Rhesus.
Los anticuerpos para IL-12
descritos aquí neutralizan al menos aproximadamente 90% de la
bioactividad de IL-12 humana inhibiendo al menos
aproximadamente 90% de la proliferación de linfoblastos humanos
activados por PHA inducida por IL-12 a
concentraciones de al menos aproximadamente 0,5 \mug/ml, y/o
inhibiendo al menos aproximadamente 90% de la producción de
IFN-\gamma estimulada por IL-12
por linfoblastos humanos activados por PHA a concentraciones de al
menos aproximadamente 0,5 \mug/ml. Por otra parte, se ha observado
que los anticuerpos descritos aquí inhiben especialmente la
proliferación inducida por IL-12, pero no inducida
por IL-2, de linfoblastos humanos activados por
PHA. Los linfoblastos humanos activados por PHA se preparan como
sigue. Células mononucleares de sangre periférica (PBMC) se
aislaron (Gately y otros, J. Natl. Cancer Inst., 69:1245 (1982)) y
se estimularon con PHA-P (Difco Labs., Detroit,
MI) al 0,1%. Después de 3 días, los cultivos se dividieron 1:1 con
medio reciente y 50 U/ml de IL-2 humana según se
describe en Gately, M.K., Chizzonite, R. y Presky, D.H., Measurement
of human and mouse interleukin 12, Current Protocols in
Immunology, vol. 1. J.E. Coligan, A.M. Kruisbeek, D.H.
Margulies, E.M. Shevach y W. Strober, eds., John Wiley & Sons,
Inc., Nueva York, 1995, pp. 6.16.1-6.16.15. Los
linfoblastos activados por PHA se usaron después de un período de
incubación adicional de un día.
De acuerdo con la presente invención, los
anticuerpos para IL-12 se identifican por su
capacidad para unirse selectivamente al epítopo presentado por el
heterodímero p75, pero no reaccionan inmunológicamente con ningún
epítopo presentado por la subunidad p40. Esta selectividad se define
por el hecho de que los anticuerpos IL-12 de esta
invención reaccionarán, a una cierta concentración mínima, con un
epítopo solamente presentado por una cantidad dada del heterodímero
p75 pero no reaccionarán a esa concentración con un epítopo
presentado por la subunidad p40 de esa misma cantidad dada de este
heterodímero p75. De este modo, los anticuerpos de esta invención
tienen una afinidad superior para un epítopo presentado solamente
por el heterodímero p75 que cualquier epítopo presentado por la
subunidad p40. Puede usarse cualquier ensayo convencional para
identificar la unión selectiva de los anticuerpos al heterodímero
p75. Generalmente, en tal ensayo, los anticuerpos se incuban con
heterodímero p75 de IL-12 humana para determinar si
los anticuerpos se unen al heterodímero p75. Los anticuerpos
también se incuban con heterodímero p75 de IL-12
humana en presencia y ausencia de la subunidad p40 para determinar
si la presencia de la subunidad p40 bloquea la unión del anticuerpo
o la captura del heterodímero p75. Por ejemplo, pueden usarse
ensayos de inmunoprecipitación competitiva (véase el Ejemplo 7 aquí)
para demostrar que los anticuerpos descritos aquí reaccionan
inmunológicamente de forma selectiva con el heterodímero p75 de
IL-12 humana, pero no son inmunológicamente
reactivos con la subunidad p40 sola.
De acuerdo con la presente invención, los
anticuerpos para IL-12 descritos aquí se producen a
través del uso de mamíferos con inactivación total de expresión
("knock-out"). Los mamíferos con inactivación
total de expresión son deficientes en el gen que codifica la
subunidad p35 y/o el gen que codifica la subunidad p40 de
IL-12 y así no expresan el heterodímero p75 de
IL-12. Cuando se inmuniza con el heterodímero p75 de
IL-12, el mamífero con inactivación total de
expresión deficiente en la subunidad p35 de IL-12
y/o deficiente en la subunidad p40 de IL-12
reconoce el heterodímero p75 de IL-12 como extraño y
produce anticuerpos para el mismo. Preferiblemente, el mamífero con
inactivación total de expresión es un ratón. De acuerdo con la
presente invención, los mamíferos con inactivación total de
expresión se producen mediante métodos que se han descrito en la
técnica. Los mamíferos con inactivación total de expresión pueden
producirse por medios convencionales tales como mutación del gen
que codifica la subunidad de IL-12 p35 y/o la
subunidad de IL-12 p40. Por ejemplo, ratones que
tienen una mutación en el gen de la subunidad p35 de
IL-12 pueden producirse como se describe por
Mattner, F. y otros, Eur. J. Immunol., 26:1553-1559
(1996). Ratones que tienen una mutación en el gen de la subunidad
p40 de IL-12 pueden producirse como se describe por
Magram, J. y otros, Immunity, 4: 471-481 (1996).
De acuerdo con la presente invención,
anticuerpos policlonales y monoclonales que reaccionan
inmunológicamente de forma selectiva con el heterodímero p75 de
IL-12 humana se producen a partir de células
activadas del mamífero con inactivación total de expresión mediante
cualquier medio convencional conocido en la técnica. Generalmente,
los anticuerpos se producen (a) inmunizando un mamífero con
inactivación total de expresión deficiente en un gen que codifica
la subunidad p35 y/o la subunidad p40 con heterodímero p75 humano
para producir anticuerpos; (b) obteniendo anticuerpos del mamífero
inmunizado; y (c) rastreando los anticuerpos con respecto a su
capacidad para unirse selectivamente al epítopo presentado por el
heterodímero p75 para obtener los anticuerpos que se unen
selectivamente.
Los anticuerpos monoclonales para
IL-12 de la presente invención que reaccionan
inmunológicamente de forma selectiva con el heterodímero p75 de
IL-12 humana se producen generalmente mediante un
método que incluye las siguientes etapas:
- (1)
- inmunizar a un mamífero con inactivación total de expresión, tal como, por ejemplo, un ratón deficiente en el gen que codifica la subunidad p35 de IL-12 y/o la subunidad p40 de IL-12, con heterodímero p75 de IL-12 humana;
- (2)
- seleccionar células del mamífero con inactivación total de expresión inmunizado que se han activado para expresar anticuerpos contra IL-12, tales como esplenocitos o células de nódulos linfáticos;
- (3)
- fusionar las células recogidas con células de mieloma para formar células de hibridoma;
- (4)
- seleccionar células de hibridoma que secretan anticuerpos que reconocen IL-12 humana, por ejemplo, probando medio acondicionado para hibridomas con respecto a la presencia de anticuerpos anti-IL-12 humana; por ejemplo, a través del uso de ELISA o ensayos de inmunoprecipitación que emplean IL-12 humana marcada o no marcada; y
- (5)
- determinar si los anticuerpos son específicos para el heterodímero p75 demostrando que los anticuerpos reaccionan inmunológicamente con un epítopo del heterodímero de IL-12 p75, pero no son inmunológicamente reactivos con ningún epítopo de la subunidad p40, incubando los anticuerpos con heterodímero p75 de IL-12 humana para determinar si los anticuerpos se unen al heterodímero p75, y a continuación incubando los anticuerpos con heterodímero p75 de IL-12 humana en presencia y ausencia de la subunidad p40 para determinar si la presencia de la subunidad p40 bloquea la unión o la captura por el anticuerpo del heterodímero p75. Por ejemplo, pueden usarse ensayos de inmunoprecipitación competitiva (véase el Ejemplo 7 aquí) para demostrar que los anticuerpos descritos aquí reaccionan inmunológicamente de forma selectiva con el heterodímero p75 de IL-12 humana, pero no son inmunológicamente reactivos con la subunidad p40 sola.
El método para producir los anticuerpos
monoclonales para IL-12 específicos para el
heterodímero p75 de la presente invención puede comprender además
la etapa de determinar la capacidad de los anticuerpos para
IL-12 específicos para el heterodímero para inhibir
la bioactividad de IL-12 tanto humana como de mono
Rhesus en cualquier sistema de ensayo in vitro o in
vivo para la bioactividad de IL-12, tal como
ensayos para determinar la proliferación estimulada por
IL-12 de linfocitos activados, la producción
estimulada por IL-12 de IFN-\gamma
o la potenciación estimulada por IL-12 de la
actividad citolítica.
Los anticuerpo
anti-IL-12 humana de la presente
invención pueden aislarse hasta una forma substancialmente pura
mediante métodos estándar conocidos en la técnica, tales como, por
ejemplo, precipitación con sulfato amónico, cromatografía de
afinidad o cromatografía de intercambio iónico.
Variaciones del método para obtener los
anticuerpos de la presente invención que están bajo el alcance de
las reivindicaciones también están abarcadas dentro de la presente
invención. Métodos conocidos en la técnica tales como, por ejemplo,
transferencia Western, ensayos de inmunoprecipitación competitiva o
ensayos de unión de bloqueo cruzado pueden usarse para determinar
si los anticuerpos son específicos para el heterodímero p75.
Además de ratones, mamíferos tales como ratas y
conejos deficientes en el gen de la subunidad p35 de
IL-12 y/o el gen de la subunidad p40 de
IL-12 pueden inmunizarse con el heterodímero p75 de
IL-12 para producir los anticuerpos descritos aquí.
La deficiencia o la mutación en el gen de la subunidad p35 de
IL-12 y/o el gen de la subunidad p40 de
IL-12 puede ser cualquier deficiencia o mutación que
dé como resultado una falta de expresión de heterodímero p75 de
IL-12. Por otra parte, puede usarse cualquier método
convencional para obtener células mamíferas que tengan una mutación
en el gen de la subunidad p35 de IL-12 y/o el gen de
la subunidad p40 de IL-12 que dé como resultado
fenotipo deficiente en p75 de IL-12.
De acuerdo con la presente invención, células
mamíferas activadas que expresan anticuerpos para el heterodímero
p75 de IL-12 humana pueden obtenerse inmunizando a
un ratón u otro mamífero con IL-12 humana natural o
IL-12 recombinante. La IL-12 humana
natural y la IL-12 humana recombinante pueden
prepararse mediante cualquier técnica convencional conocida en la
especialidad, tales como las técnicas proporcionadas en los ejemplos
aquí.
Líneas celulares de mieloma, es decir, los
socios de fusión, adecuadas para el uso en la producción de los
hibridomas que secretan los anticuerpos para IL-12
de la presente invención incluyen líneas celulares de mieloma bien
conocidas en la especialidad, tales como, por ejemplo, líneas
celulares SP 2/0 y NS/O. Se prefieren células de mieloma de ratón
SP2/0. Preferiblemente, el socio de fusión de mieloma y la célula
mamífera activada contra el heterodímero p75 de
IL-12 se derivan de la misma especie.
Células de hibridoma que producen los
anticuerpos de la presente invención pueden seleccionarse y aislarse
mediante cualesquiera métodos convencionales conocidos en la
técnica. Preferiblemente, células de mieloma y linfocitos activados
contra el heterodímero p75 de IL-12 se cultivan
juntos en medio que contiene un agente de selección capaz de
destruir las células de mieloma pero no los linfocitos. Se forman
hibridomas a partir de las células de mieloma que se fusionan con
los linfocitos activados contra el heterodímero p75 de
IL-12. Tales células de hibridoma son capaces de
crecer en el medio que contiene el agente de selección debido a que
el DNA de los linfocitos suministra a la línea celular de mieloma el
gen necesario que codifica una enzima que evita los efectos tóxicos
del agente de selección permitiendo una ruta metabólica alternativa
para reemplazar la ruta metabólica bloqueada por el agente de
selección. Cualesquiera linfocitos no fusionados mueren debido a
que no están transformados y tienen tiempos de vida finitos cortos
in vitro. De acuerdo con la presente invención un agente de
selección adecuado para el uso en la selección de células de
hibridoma es la aminopterina. Un medio preferido para cultivar las
células de hibridoma es Medio de Dulbecco modificado de Iscove
(IMDM) complementado con 10% de FBS (Hyclone), 100 unidades/ml de
penicilina G (BioWhittaker), 100 \mug/ml de estreptomicina
(BioWhittaker), 250 ng/ml de Fungizone (BioWhittaker), 2 mM de
glutamina (BioWhittaker), 100 \mug/ml de sulfato de gentamicina
(BioWhittaker), 50 \muM de 2-mercaptoetanol
(BioRad), 100 \muM de hipoxantina (Sigma), 400 nM de aminopterina
(Sigma), 16 \muM de timidina (Sigma) y 2,5% de sobrenadante P388D1
(producido como se describe por Nordan, R.P. y otros, J. Immunol.,
139:813 (1987)).
La potencia de los anticuerpos para
IL-12 de la presente invención se determina con
respecto a la concentración de anticuerpos para
IL-12 a la que se produce 50% de inhibición máxima
de bioactividad de IL-12 según se mide mediante
ensayos de proliferación de linfoblastos humanos o producción de
IFN-\gamma estimuladas por IL-12.
Los anticuerpos anti-IL-12 humana de
la presente invención exhiben una potencia superior que anticuerpos
para IL-12 específicos de heterodímero
caracterizados previamente. Además, los anticuerpos
anti-humanos de la presente invención exhiben mayor
eficacia, según se mide mediante la extensión de la inhibición
máxima de la proliferación de linfocitos o la producción de
IFN-\gamma estimuladas por IL-12,
que anticuerpos para IL-12 específicos de
heterodímero caracterizados previamente.
La potencia y la eficacia de los anticuerpos
descritos aquí pueden determinarse mediante cualquier ensayo
convencional conocido en la especialidad, tales como, por ejemplo,
ensayos de proliferación de linfoblastos o ensayos de síntesis de
IFN-\gamma inducidos por
IL-12.
De acuerdo con la presente invención, cualquier
método convencional conocido en la técnica puede usarse para
determinar la inhibición de la proliferación de linfoblastos
estimulada por IL-12 humana mediante los anticuerpos
para IL-12. En general, los linfocitos humanos
pueden activarse mediante un número de métodos, incluyendo el
tratamiento con lectinas mitógenas, por ejemplo fitohemaglutinina A
(PHA), u otros agentes activantes, solos o en combinación, tales
como citoquinas, ésteres de fobol y ionóforos, anticuerpos dirigidos
contra moléculas de la superficie celular o cualquier otro método
que conduzca a la activación de los linfocitos. Los linfocitos
activados se incuban a continuación con y sin IL-12
en ausencia o presencia de los anticuerpos, y se mide la velocidad
de proliferación de linfocitos determinando la velocidad de síntesis
de DNA midiendo la incorporación de
^{3}H-timidina en DNA, contando el número de
células presente después de varios períodos de tratamiento o
cualquier otro método que pueda usarse para verificar la velocidad
de proliferación celular. La inhibición de la proliferación se
determina comparando la proliferación de linfocitos a una
concentración definida de IL-12 en ausencia y
presencia de diversas concentraciones de anticuerpos para
IL-12.
En un ensayo de proliferación de linfocitos
estándar, la inhibición de la proliferación de linfoblastos humanos
activados por PHA estimulada por IL-12 humana se
determina con respecto a los niveles de proliferación de
linfoblastos humanos activados por PHA estimulada por
IL-12 humana sin anticuerpos añadidos y niveles de
fondo de proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA,
es decir, la proliferación en ausencia tanto de
IL-12 como de anticuerpos. En general, los niveles
estimulados por IL-12 de proliferación dan
aproximadamente 10.000-80.000 cpm en el presente
ensayo de proliferación de linfocitos humanos estándar, dando los
niveles de fondo de proliferación aproximadamente
5.000-20.000 cpm. Debido a la variabilidad inherente
entre partidas de linfoblastos humanos activados por PHA
estimulados, solo los ensayos en los que la relación de
proliferación estimulada a proliferación de fondo (es decir, el
índice de estimulación) era igual a o mayor que 3 se consideran
válidos para la medida de la proliferación estimulada por
IL-12.
De acuerdo con la presente invención, puede
usarse cualquier método convencional para determinar la inhibición
de la producción de IFN-\gamma por los anticuerpos
para IL-12. Por ejemplo, linfocitos humanos
activados, preparados como se describe aquí, o células
mononucleares de sangre periférica (PBMC) humanas activadas,
preparadas tratando sangre entera o PBMC aisladas con agentes
mitógenos incluyendo lectinas, citoquinas, ésteres de fobol,
ionóforos o anticuerpos dirigidos contra moléculas de la superficie
celular, solos o en combinación, o mediante cualquier otro método
que conduzca a la proliferación de PBMC humanas activadas, se
incuban con o sin IL-12 y varios otros agentes, por
ejemplo IL-2 y/o IL-1\beta, en
ausencia y presencia de los anticuerpos. La producción de
IFN-\gamma se determina a continuación, por
ejemplo muestreando el medio de cultivo y determinando la
concentración de IFN-\gamma mediante ELISA o
cualquier otro método que pueda medir cuantitativamente
IFN-\gamma. La inhibición de la producción de
IFN-\gamma se determina comparando la producción
de IFN-\gamma a una concentración definida de
IL-12 en ausencia y presencia de diversas
concentraciones de anticuerpos
anti-IL-12.
En un ensayo de síntesis de
IFN-\gamma estándar, la inhibición de
IFN-\gamma se determina con respecto a la
producción de IFN-\gamma estimulada por
IL-12 y niveles de fondo de producción de
IFN-\gamma, es decir, síntesis de
IFN-\gamma en presencia o ausencia de
IL-12. En general, los niveles estimulados por
IL-12 de producción de IFN-\gamma
son aproximadamente 7-220 ng/ml, dando los niveles
de producción de fondo aproximadamente 1-3
ng/ml.
Los presentes anticuerpos neutralizan la
bioactividad de IL-12 de mono Rhesus con una
potencia similar a su potencia para inhibir la bioactividad de
IL-12 humana, haciéndolos antagonistas de
IL-12 útiles para estudios in vivo en el
mono Rhesus. La potencia y la eficacia incrementada de estos
anticuerpos anti-IL-12 humana y su
reactividad cruzada con IL-12 de mono Rhesus los
hacen candidatos excelentes para diseñar antagonistas de
IL-12 eficaces para el uso en seres humanos.
En particular, la presente invención proporciona
cuatro anticuerpos, 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11, para el heterodímero
p75 de IL-12 humana. Las líneas celulares de
hibridoma correspondientes que producen estos anticuerpos se han
depositado el 11 de diciembre de 1997 bajo las condiciones del
Tratado de Budapest en the American Type Culture Collection bajo
los números de registro del ATCC HB-12446,
HB-12447, HB-12449 y
HB-12448, respectivamente. Sin embargo, la presente
invención no se limita a estos cuatro anticuerpos. Cualesquiera
anticuerpos que tengan las características que se reivindican son
abarcados dentro de la presente invención.
La Fig. 6 proporciona la secuencia de
nucleótidos que codifica una porción de la región variable de la
cadena pesada del anticuerpo 16G2 específico para el heterodímero
p75 y la secuencia de aminoácidos deducida de esta secuencia de
nucleótidos. La secuencia de nucleótidos que codifica una porción de
la región variable de la cadena pesada del anticuerpo 20E11
específico para el heterodímero p75 y la secuencia de aminoácidos
deducida de esta secuencia de nucleótidos se proporcionan en la
Fig. 7. Se entenderá por los expertos en la técnica que pueden
hacerse cambios de aminoácidos conservativos en las regiones
constantes de los anticuerpos para IL-12
específicos para el heterodímero presentes sin afectar
significativamente a la especificidad/afinidad de unión a
antígenos. Puede esperarse que los anticuerpos para
IL-12 específicos para el heterodímero que
contienen cambios de aminoácidos en las regiones estructurales
variables o más específicamente en las regiones que determinan la
complementariedad tengan un mayor efecto sobre la
especificidad/afinidad de unión a antígeno.
Los anticuerpos para IL-12 de la
presente invención pueden ser anticuerpos completos que incluyen dos
cadenas pesadas de longitud completa y dos cadenas ligeras de
longitud completa. Alternativamente, los anticuerpos para
IL-12 pueden ser constructos tales como anticuerpos
monocatenarios o "mini"-anticuerpos que retienen la actividad
de unión a uno o más epítopos del heterodímero p75 de
IL-12. Tales constructos pueden prepararse mediante
métodos conocidos en la técnica, tales como, por ejemplo, la
clonación y el ensamblaje mediados por PCR de anticuerpos
monocatenarios para la expresión en E. coli (según se
describe en Antibody Engineering, The practical approach series, J.
McCafferty, H.R. Hoogenboom y D. J. Chiswell, editores, Oxford
University Press, 1996). En este tipo de constructo, las porciones
variables de las cadenas pesada y ligera de una molécula de
anticuerpo se amplifican por PCR a partir de cDNA. Los amplicones
resultantes se ensamblan a continuación, por ejemplo en una segunda
etapa de PCR, a través de un DNA conector que codifica un conector
proteínico flexible compuesto por los aminoácidos GLY y SER. Este
conector permite que las porciones de la cadena pesada y ligera
variables se plieguen de tal modo que el bolsillo de unión a
antígeno se regenere y el antígeno se una con afinidades a menudo
comparables a la molécula de inmunoglobulina dímera de longitud
completa parental.
Los anticuerpos
anti-IL-12 humana descritos aquí
pueden humanizarse para formar anticuerpos que poseen afinidad
igual o substancialmente similar para el heterodímero p75 de
IL-12 que anticuerpos
anti-IL-12 humana mamíferos, pero
son substancialmente no inmunogénicos en seres humanos. Por ejemplo,
un anticuerpo para IL-12 humanizado de acuerdo con
la presente invención puede incluir regiones estructurales de la
cadena pesada y ligera de anticuerpos humanos. Preferiblemente, las
secuencias de aminoácidos de las regiones estructurales de
anticuerpos humanizados son de aproximadamente 60% a 95% idénticas
a las regiones estructurales donantes. Los anticuerpos humanizados
pueden producirse mediante técnicas recombinantes bien conocidas en
la especialidad. Métodos para producir inmunoglobulinas humanizadas
se describen, por ejemplo, en la Patente de EE.UU. Nº 5.530.101.
Los anticuerpos para IL-2 de la
presente invención son antagonistas útiles para controlar
enfermedades con patologías que están mediadas a través de
mecanismos inmunitarios, particularmente enfermedades asociadas con
una bioactividad de IL-12 incrementada que dan como
resultado actividad de células cooperadoras tipo Th1 aberrante. De
acuerdo con la presente invención, los anticuerpos para
IL-12 se usan para tratar trastornos autoinmunes en
seres humanos u otros mamíferos, tales como, por ejemplo, esclerosis
múltiple, artritis reumatoide, diabetes mellitus autoinmune y
enfermedad inflamatoria del intestino (IBD), incluyendo enfermedad
de Crohn y colitis ulcerativa. Los anticuerpos descritos aquí
también pueden usarse para tratar otros estados patológicos que se
ha observado que se benefician de la administración de anticuerpos
para IL-12, incluyendo, por ejemplo, enfermedad de
trasplante/injerto contra el huésped y choque séptico.
Los intervalos de dosis para la administración
de los anticuerpos para IL-12 presentes pueden
determinarse por los expertos normales en la técnica sin
experimentación excesiva. En general, dosificaciones apropiadas son
aquellas que son suficientemente grandes para producir el efecto
deseado, es decir, neutralizar al menos 90% de bioactividad de
IL-12. Sin embargo, la dosificación no debe ser tan
grande que provoque efectos secundarios adversos, tales como
reacciones cruzadas no deseadas, reacciones anafilácticas y
similares. Generalmente, la dosificación variará con la edad, el
estado, el sexo y la extensión de la enfermedad en el paciente, las
contraindicaciones, si las hay, la tolerancia inmunitaria y otras
variables tales, que han de ser ajustadas por el médico
individual.
Los anticuerpos para IL-12
pueden administrarse parenteralmente mediante inyección o mediante
perfusión gradual a lo largo del tiempo. Pueden administrarse
intravenosamente, intramuscularmente o subcutáneamente. Las
preparaciones para administración parenteral incluyen soluciones,
suspensiones y emulsiones estériles o acuosas o no acuosas.
Ejemplos de disolventes no acuosos son propilenglicol,
polietilenglicol, aceites vegetales tales como aceite de oliva y
ésteres orgánicos inyectables tales como oleato de etilo. Portadores
acuosos incluyen agua, soluciones, emulsiones o suspensiones
alcohólicas/acuosas, incluyendo solución salina y medio tamponado.
Vehículos parenterales incluyen solución de cloruro sódico,
dextrosa de Ringer, dextrosa y cloruro sódico, solución de Ringer
con lactato, o aceites fijos. Los vehículos intravenosos incluyen
reponedores de fluidos y nutrientes, reponedores de electrolitos,
tales como los basados en dextrosa de Ringer, y similares. También
pueden estar presentes conservantes y otros aditivos, tales como,
por ejemplo, antimicrobianos, antioxidantes, agentes quelantes,
gases inertes y similares. Véase, generalmente, Remington's
Pharmaceutical Science, 16ª Ed., Mack Eds., 1980.
Dosificaciones preferidas de los anticuerpos
para IL-12 de la presente invención son de
aproximadamente 0,1 mg/kg a aproximadamente 10 mg/kg, de dos a tres
veces a la semana. Sin embargo, la dosificación y el esquema de
dosificación para la administración de los anticuerpos para
IL-12 presentes pueden variar dependiendo del
individuo que ha de tratarse, del anticuerpo administrado y de las
variables analizadas anteriormente. De acuerdo con la presente
invención, los anticuerpos para IL-12 pueden
administrarse solos o en combinación con otros agentes
terapéuticamente activos.
Se extrajo sangre de donantes voluntarios
normales en jeringas que contenían heparina libre de conservante
(Sigma, St. Louis, MO, EE.UU. de A.) para dar una concentración
final de -5 unidades de heparina/ml de sangre. Un volumen de sangre
heparinizada se diluyó en 9 volúmenes de medio que consistía en una
mezcla 1:1 de RPMI 1640 y medio de Eagle modificado de Dulbecco,
complementado con aminoácidos no esenciales 0,1 mM, 60 \mug/ml de
HCl de arginina, tampón de HEPES 10 mM, L-glutamina
2 mM, 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina
(todos disponibles de GIBCO BRL, Grand Island, NY, EE.UU. de A.),
2-mercaptoetanol 50 \muM (Fisher Scientific, Fair
Lawn, NJ, EE.UU. de A.) y 1 mg/ml de dextrosa (Fisher). Se añadió a
esta mezcla interferón-\gamma humano, 20 U/ml,
(PeproTech, Inc., Rocky Hill, NJ, EE.UU. de A.) y células de
Pansorbin (Staphylococcus aureus formalinizadas, cepa Cowan,
Calbiochem, San Diego, CA, EE.UU. de A.) a una dilución final de
1/4000. (Antes del uso en los cultivos, las células de Pansorbin se
lavaron 2 veces con solución salina tamponada con fosfato de
Dulbecco (GIBCO BRL) y se reconstituyeron hasta el mismo volumen que
el suministrado por el fabricante). La suspensión de células
resultantes se dividió en partes alícuotas en matraces de cultivo
tisular de 162 cm^{2} (Costar, Cambridge, MA, EE.UU. de A.), 80
ml/matraz, y los matraces se incubaron horizontalmente a 37ºC en
una atmósfera humidificada de CO_{2} al 5%/aire al 95% durante 24
horas. Los fluidos del sobrenadante de cultivo se recogieron a
continuación mediante centrifugación y se esterilizaron mediante
filtración a través de un filtro de 0,22 \mum (Costar).
Heterodímero de IL-12 más p40 de
IL-12 se purificaron de los sobrenadantes de
cultivo mediante cromatografía de inmunoafinidad usando una columna
de proteína G-Sepharose (PGS) 2-4A1,
según se describe posteriormente para la purificación de
IL-12 de Rhesus, excepto que el tampón de elución
contenía 0,01% de gelatina (Sigma) para minimizar la pérdida de
proteína debida a la adsorción no específica a las superficies. El
eluato se dializó durante de 4 a 6 horas frente a
100-200 volúmenes de solución salina tamponada con
fosfato de Dulbecco, y a continuación durante la noche frente al
mismo volumen de RPMI 1640 que contenía 100 \mug/ml de
gentamicina. Los eluatos dializados se esterilizaron mediante el
paso a través de un filtro de 0,22 \mum y a continuación se
ensayaron mediante ELISA con respecto al contenido de heterodímero
de IL-12 y p40 de IL-12 (Gately,
M.K., Chizzonite, R. y Presky, D.H., Measurement of human and mouse
interleukin 12, Current Protocols in Immunology, vol. 1.
J.E. Coligan, A.M. Kruisbeek, D.H. Margulies, E.M. Shevach y W.
Strober, eds., John Wiley & Sons, Inc., Nueva York, 1995, pp.
6.16.1-6.16.15) y con respecto a la bioactividad de
IL-12 (ibid.). Típicamente, la relación en peso de
p40 de IL-12:heterodímero de IL-12,
según se mide mediante ELISA, era aproximadamente 5:1.
IL-12 humana recombinante se
preparó, se caracterizó y se generó como se indica en la Patente de
EE.UU. Nº 5.536.657.
Las secuencias de cDNA para las subunidades p35
y p40 para IL-12 de mono Rhesus (F. Villinger y
otros, J. Immunol., 155: 3946-3954 (1995)) se
sometieron a ingeniería para la expresión en células
CHO-dhfr menos sobre dos plásmidos separados usando
procedimientos estándar (Current protocols in molecular biology, F.
Ausubel, ed., J. Wiley and Sons, Inc., Nueva York (1993)). Se
obtuvieron clones de una población de células no amplificada y su
producción de IL-12 se verificó mediante un ELISA
específico para IL-12. Un clon óptimamente productor
se seleccionó y se adoptó al crecimiento en medio libre de suero de
CHO (Sigma). Las células se hicieron crecer subsiguientemente en
cultivos giratorios con propósitos de producción de proteínas.
IL-12 de mono Rhesus se purificó de los
sobrenadantes mediante cromatografía de afinidad a anticuerpos. La
columna de afinidad se produjo reticulando 10 mg de mAb
2-4A1 anti-p40 de
IL-12 humana (Chizzonite y otros, J. Immunol.,
147:1548-1556 (1991)) a proteína
G-Sepharose (Pharmacia Biotech) usando 10 mM de
pimelimidato de dimetilo (Pierce, Rockford, IL, EE.UU. de A.) a una
densidad de 1 mg de mAb/ml de gel (Stem y Podlaski, Tech. In Protein
Chem. IV, Acad. Press, Nueva York, 353-360 (1993)).
El sobrenadante de CHO libre de suero que contiene
IL-12 de Rhesus se filtró a través de un filtro de
0,2 \mum y se cargó directamente sobre la columna PGS
2-4A1 de 10 ml previamente equilibrada en PBS, pH
7,2. El caudal era 1 ml/min. La columna se lavó con 10 volúmenes de
PBS y se eluyó con HCl de glicina 0,1 M, NaCl 0,15 M, pH 3,0. El
eluato se neutralizó inmediatamente con Tris-HCl 3
M, pH 9. La columna de afinidad era capaz de unirse a -2 mg de
IL-12 de Rhesus/pasada, incluyendo monómero p40 en
exceso, según se determina mediante Bradford y
SDS-PAGE. Otros contaminantes estaban a niveles
traza. Para concentrar y purificar adicionalmente la
IL-12 de Rhesus, el eluato que contiene
IL-12 se dializó frente a fosfato Na 20 mM, pH 7, y
se cargó sobre una columna de S-Sepharose
acondicionada con la misma solución tamponadora. El caudal era 1
ml/min. Toda la proteína se unía. La columna se lavaba con 10
volúmenes de tampón de fosfato y a continuación se eluía con tampón
de fosfato que contenía NaCl 0,3 M. La fracción reunida eluida se
ensayó con respecto a endotoxina usando el estuche LAL de
Biowittaker y se encontró que era < 10 EU/mg de proteína. El
análisis por transferencia Western usando el mAB
2-4A1 como reactivo de detección mostraba el
heterodímero de IL-12 de Rhesus a -80 kDa así como
un exceso aparente de monómero p40 a 40 kDa.
SDS-PAGE teñida con Coomassie muestra una proteína
prominente adicional de igual intensidad al heterodímero p80 a
\sim70 kDa. Las proteínas tanto de 80 como de 70 kDa se reducen
hasta sus forman monómeras después del tratamiento con
2-mercaptoetanol, pero la última banda de proteína
no reacciona con mAb 2-4A1.
Ratones que tienen una mutación en el gen de la
subunidad p35 de IL-12 sobre el fondo de Balb/c se
produjeron como se describe en Mattner, F. y otros, Eur. J.
Immunol., 26:1553-1559 (1996). Los ratones
deficientes en p35 de IL-12 se inmunizaron
intraperitonealmente con 5 \mug de IL-12 humana
recombinante humana purificada en adyuvante completo de Freund. Los
ratones recibían 3 inyecciones de refuerzo intraperitoneales
subsiguientes de 5 \mug de IL-12 humana en
adyuvante incompleto de Freund durante un período de 2,5 meses. Las
inyecciones finales de 75 \mug de IL-12 humana en
PBS (50 \mug i.p. y 25 \mug i.v.) se administraron tres y dos
días antes de la esplenectomía, seguido por una inyección i.p. de 50
\mug de Il-12 humana en PBS un día antes de la
esplenectomía. Los esplenocitos se recogieron de estos ratones y se
fusionaron a células SP2/0 de mieloma de ratón a una relación de
1:1 usando polietilenglicol a 1500 (Boehringer Mannheim) al 50% p/v
de acuerdo con el método de Oi y Herzenberg, en Selected Methods in
Cellular Immunology, ed. B. Mishell y S. Shiigi, W. H. Freeman and
Co., Nueva York, 1980, pp. 351-372. Las células
fusionadas se cultivaron en placa a una densidad de 60.000 células
totales/pocillo en placas apilables de 96 pocillos en IMDM
complementado con FBS (Hyclone) al 10%, 100 unidades/ml de
penicilina G (BioWhittaker), 100 \mug/ml de estreptomicina
(BioWhittaker), 250 ng/ml de Fungizone (BioWhittaker), 2 mM de
glutamina (BioWhittaker), 100 \mug/ml de sulfato de gentamicina
(BioWhittaker), 2-mercaptoetanol (BioRad) 50 \muM,
hipoxantina (Sigma) 100 \muM, aminopterina (Sigma) 400 nM,
timidina (Sigma) 16 \muM y 2,5% de sobrenadante P388D1 (producido
como se describe por Nordan, R.P. y otros, J. Immunol., 139:813
(1987)). Los sobrenadantes de hibridoma se ensayaron con respecto a
anticuerpos anti-IL-12 humana
específicos mediante inmunoprecipitación de IL-12
marcada con ^{125}I según se describe posteriormente. Las líneas
celulares de hibridoma que secretan anticuerpos
anti-IL-12 humana se clonaron
mediante dilución limitativa. Los anticuerpos se purificaron de
ascitis mediante tratamiento secuencial con ácido caprílico y
sulfato amónico según se describe previamente (Reik, L. y otros, J.
Immunol. Methods, 100:123-130 (1987)).
IL-12 humana recombinante se
radiomarcó hasta una actividad específica de aproximadamente 2200
Ci/mmol usando una modificación del procedimiento Iodogen (Pierce
Chemical Co.) descrito previamente en Chizzonite y otros, J.
Immunol., 147: 1548-1556 (1991) y Chizzonite y
otros, J. Immunol., 148: 3117-3124 (1992), que se
incorporan aquí mediante referencia. Iodogen se disolvió en
cloroformo y 0,05 mg se secaron en un tubo de vidrio de borosilicato
de 12 x 15 mm. Para el radiomarcaje, se añadió 1,0 mCi de
Na[^{125}I] (Amersham, Chicago, Ill., EE.UU. de A.) a un
tubo revestido con Iodogen que contenía 0,05 ml de
Tris-tampón de yodación (25 mM de
Tris-HCl, pH 7,5, 0,4 M de NaCl y 1 mM de EDTA) y
se incubaron durante 6 min a temperatura ambiente. La solución de
^{125}I activada se transfirió a un tubo que contenía 0,1 ml de
IL-12 (31,5 \mug) en Tris-tampón
de yodación y la reacción se incubó durante 6 minutos a temperatura
ambiente. Al final de la incubación, se añadieron 0,05 ml de tampón
de parada Iodogen (10 mg/ml de tirosina, 10% de glicerol en PBS de
Dulbecco, pH 7,4) y se hicieron reaccionar durante 5 minutos. La
mezcla se diluyó a continuación con 1% (p/v) de BSA en 1,0 ml de
Tris-tampón de yodación, y se aplicó a una columna
de desalado Bio-Gel P10DG (BioRad Laboratories
(BRL)) para cromatografía. La columna se eluyó con 1% (p/v) de BSA
en Tris-tampón de yodación y las fracciones (1 ml)
que contenían las cantidades máximas de proteína marcada se
combinaron y se diluyeron hasta 1 x 10^{8} cpm/ml con 1% (p/v) de
BSA en Tris-tampón de yodación. La radiactividad
precipitable con TCA (10% de concentración final de TCA) estaba
típicamente por encima de 95% de la radiactividad total. La
actividad radioespecífica de la IL-12 humana
recombinante era típicamente aproximadamente 2200 Ci/mmol.
Placas divisibles de 96 pocillos Nunc Maxisorp
se revistieron con anticuerpo de conejo purificado por afinidad
para IgG de ratón (Cappel. Durham, NC, EE.UU. de A.) incubando 18 h
a 4ºC con 100 \mul/pocillo de 5 \mug/ml de anti-(IgG de ratón)
de conejo en tampón de revestimiento de carbonato (Na_{2}CO_{3}
15 mM/NaHCO_{3} 35 mM), pH 9,6. Los pocillos revestidos se
lavaron con PBS/Tween 20 al 0,05%/Thimerosol al 0,01% y a
continuación se bloquearon mediante incubación con 200 \mul de 1%
(p/v) de BSA/PBS/0,01% de Thimerosol durante 4 h a 37ºC.
Sobrenadantes de hibridoma (75 \mul) se añadieron a los pocillos
revestidos con anti-IgG de ratón y se incubaron
durante 3 h a 22ºC. Los pocillos se lavaron tres veces con 300
\mul de PBS/Tween-20 al 0,05%/Thimerosol al 0,01%
y a continuación 100.000 cpm de IL-12 humana marcada
con ^{125}I se añadieron a cada pocillo con 100 \mul de tampón
de dilución de anticuerpo (PBS/PSA al 1% (p/v)/NaCl 0,5
M/Tween-20 al 0,05%/Thimerosol al 0,01%). Después
de 18 h a 4ºC, los pocillos se lavaron tres veces con 200 \mul de
PBS/Tween-20 al 0,05%/Thimerosol al 0,01%. Los
pocillos se separaron a continuación y la cantidad de radiactividad
unida a los pocillos se determinó usando un contador gamma. En
algunos experimentos, después de la incubación de los sobrenadantes
en hibridoma en los pocillos revestidos con anti-(IgG de ratón) de
conejo, 100 \mul de sobrenadante acondicionado procedente de
células COS transfectadas con p40 de IL-12 humana
preparadas como se describe previamente (Gubler y otros, Proc.
Natl. Acad. Sci. 88: 4143-4147 (1991)) se incubaron
en los pocillos durante 1 h a 37ºC antes de la adición de
IL-12 humana marcada con ^{125}I para determinar
si los anticuerpos anti-IL-12 humana
de ratón capturados se unían a la subunidad p40 de
IL-12 humana.
Un ensayo de inmunoprecipitación basado en
placas de 96 pocillos se usó para identificar hibridomas que
secretan anticuerpos anti-IL-12
humana. Los sobrenadantes de hibridoma se incubaron en ausencia y
presencia de 100 \mul de sobrenadante de células COS que contiene
subunidad p40 de IL-12 humana según se describe
anteriormente. Se añadió IL-12 humana marcada con
^{125}I (100.000 cpm/pocillo) y se determinó la cantidad de
IL-12 humana marcada con ^{125}I capturada sobre
los pocillos. La Fig. 1 muestra los anticuerpos contenidos en
sobrenadantes procedentes de IL-12 humana marcada
con ^{125}I capturada en los hibridomas 5F2, 16F2, 16G2, 20E11 y
17E2. Además, la presencia de la subunidad p40 de
IL-12 humana no marcada durante la reacción de
inmunoprecipitación no bloqueaba la captura de
IL-12 humana marcada con ^{125}I por los
anticuerpos 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11, demostrando que estos
anticuerpos no tienen alta afinidad para la subunidad p40 de
IL-12 sola. En contraste, la presencia de subunidad
p40 de IL-12 humana no marcada durante la reacción
de inmunoprecipitación bloqueaba completamente la captura de
IL-12 humana marcada con ^{125}I por 17E2,
demostrando que 17E2 reconocía la subunidad p40 de
IL-12
humana.
humana.
El enfoque isoeléctrico analítico se realizó
usando una pH 3,5-9,5 Ampholine PAGplate de
Pharmacia Biotech (Nº de código
80-1124-80, Uppsala, Suecia). El
enfoque isoeléctrico se realizó de acuerdo con las instrucciones
del fabricante usando soluciones de electrodo de ácido fosfórico 1 M
e hidróxido sódico 1 N. El gel se cargó con 5 muestras, cada una de
las cuales contenía una sola inmunoglobulina, es decir, 20E11, 5F2,
20C2, 16G2 y 16F2. Los patrones eran del Isoelectric Focusing pH
3-10 Calibration Kit de Pharmacia Biotech (Nº de
código 17-0471-01). Las condiciones
de avance eran 1000 voltios, 10 vatios, 2,5 horas, 4ºC. El gel se
tiñó con plata usando el Pharmacia Biotech PlusOne Silver Staining
Kit para proteína (Nº de código
17-1150-01) de acuerdo con las
directrices del fabricante. La Fig. 2 muestra los patrones de
enfoque isoeléctrico de anticuerpos monoclonales
anti-IL-12 humana 20C2, 16G2, 16F2,
20E11 y 5F2.
Según se muestra en la Fig. 2, los anticuerpos
monoclonales 20C2 (Chizzonite y otros, Cytokine, 6: A82a (1994)),
20E11 y 5F2 son inmunoglobulinas únicas. Los anticuerpos
monoclonales 16G2 y 16F2 parecen idénticos mediante enfoque
isoeléctrico, pero ambos son diferentes de 20C2, 20E11 y 5F2. El pI
de estos anticuerpos está en el intervalo de pH
5-6.
Se usaron células mononucleares de sangre
periférica (PBMC) humanas activadas por PHA de 4 días para
determinar la proliferación tanto inducida por
IL-12 humana natural como inducida por
IL-12 de mono de Rhesus. Las PBMC se aislaron
(Gately y otros, J. Natl. Cancer Inst., 69:1245 (1982)) y se
estimularon con 0,1% de PHA-P (Difco Labs.,
Detroit, MI, EE.UU. de A.). Después de 3 días, los cultivos se
dividieron 1:1 con medio reciente y 50 U/ml de IL-2
humana recombinante según se describe (Gately, M.K., Chizzonite, R.
y Presky, D.H., Measurement of human and mouse interleukin 12,
Current Protocols in Immunology, vol. 1., J.E. Coligan, A.M.
Kruisbeek, D.H. Margulies, E.M. Shevach y W. Strober, eds., John
Wiley & Sons, Inc., Nueva York, 1995, pp.
6.16.1-6.16.15). El medio complementado usado para
el cultivo celular era como el descrito previamente para la
producción de IL-12 humana natural con la adición
de 5% de suero AB humano (Irvine Scientific, Santa Ana, CA, EE.UU.
de A.).
\newpage
Los efectos de los diversos anticuerpos
monoclonales anti-IL-12 humana sobre
la proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA
estimulada por IL-12 e IL-2 se
determinaron mediante un método basado en M. K. Gately y otros
(Gately, M.K., Chizzonite, R. y Presky, D.H., Measurement of human
and mouse interleukin 12, Current Protocols in Immunology, vol.
1. J.E. Coligan, A.M. Kruisbeek, D.H. Margulies. E.M. Shevach y
W. Strober, eds., John Wiley & Sons, Inc., Nueva York, 1995,
pp. 6.16.1-6.16.15). El día 4, linfoblastos
activados por PHA, preparados como se describe anteriormente, se
recogieron, se lavaron y se resuspendieron en medio complementado a
4 x 10^{5} células/ml y se incubaron en placas de 96 pocillos (2 x
10^{4} células/pocillo) con anticuerpo
anti-IL-12 humana monoclonal
purificado y la citoquina pertinente, es decir IL-12
humana o de mono. Partes alícuotas de 25 \mul tanto de
IL-12 humana natural a 1 ng/ml como de
IL-12 de mono a 2 ng/ml se mezclaron con partes
alícuotas de 25 \mul de diversas diluciones de anticuerpos
monoclonales (mAbs) anti-IL-12
humana. La concentración de anticuerpo final en los pocillos
variaba de 0,0005 \mug/ml a 0,5 \mug/ml. Un grupo idéntico
separado de pocillos que contenían los diversos mAbs
anti-IL-12 humana e
IL-12 recombinante se preparó para determinar los
efectos de los mAbs anti-IL-12
humana sobre la proliferación estimulada por IL-2
como una medida de la especificidad inhibidora. Una curva de
respuesta a la dosis estándar que variaba de 250 pg o 500 pg por
pocillo de IL-12 de ser humano o de mono,
respectivamente, hasta 0 pg sin anticuerpos añadidos también se
incluyó para determinar la sensibilidad a IL-12.
Placas que contenían mezclas de citoquinas y anticuerpos se
incubaron durante 30 minutos a 37ºC y a continuación partes
alícuotas de 50 \mul de suspensión de células se añadieron a los
pocillos. Las placas del cultivo se mantuvieron a 37ºC en una
atmósfera humidificada de CO_{2} al 5% en aire durante 48 horas
antes de someter a impulsos con ^{3}H-timidina.
Cincuenta \mul de 10 \muCi/ml de
^{3}H-timidina (diluida en medio complementado con
FCS al 5% en lugar de suero AB humano al 5%) se añadieron a cada
pocillo. Después de la incubación durante 6 h adicionales a 37ºC,
los contenidos de los pocillos se recogieron sobre filtros de fibra
de vidrio a través de un recogedor de células y la incorporación de
^{3}H-timidina en DNA celular se medía mediante el
uso de un contador de centelleo de líquidos. Los valores mostrados
en las Figs. 3 y 4 son las medias de pocillos por triplicado.
La proliferación de linfoblastos humanos
activados por PHA estimulada con 0,25 ng/ml de IL-12
se inhibió de un modo dependiente de la dosis mediante los
anticuerpos 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11 (Fig. 3). Las potencias de
estos anticuerpos antihumanos, definida como la concentración que
produce 50% de inhibición máxima (IC_{50}) de la proliferación
estimulada por 0,25 ng/ml de IL-12, son 0,03
\mu/ml para 5F2, 0,01 \mug/ml para 16F2, 0,01 \mug/ml para
16G2 y 0,01 \mug/ml para 20E11. Los niveles máximo (9440 cpm) y de
fondo (1480 cpm) de proliferación de linfoblastos se representan
mediante las líneas punteadas horizontales en los extremos superior
e inferior de las gráficas, respectivamente. Según se muestra en la
Fig. 3, los anticuerpos 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11 eran capaces de
inhibir la proliferación de linfoblastos activados por PHA
estimulada por IL-12 humana en al menos 90%. En
contraste, como también se muestra en la Fig.3, el anticuerpo
específico para p75 anti-IL-12
humana previamente identificado, 20C2 (Chizzonite y otros, Cytokine,
6: A82a (1994)), no es capaz de inhibir substancialmente la
bioactividad de IL-12 humana.
Además, según se muestra en la Fig. 4, 5F2,
16F2, 16G2 y 20E11 inhibían potentemente la proliferación de
linfoblastos humanos activados por PHA estimulada con 0,5 mg/ml de
IL-12 de mono Rhesus, con una IC_{50} similar a la
observada con la proliferación estimulada por IL-12
humana. En contraste, 20C2 solo tiene un efecto inhibidor mínimo
sobre la proliferación estimulada por IL-12 de mono
Rhesus. Por lo tanto, los anticuerpos 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11
parecen exhibir buena reactividad cruzada con IL-12
de mono Rhesus, mientras que la reactividad cruzada de 20C2 es
mucho menor. Ninguno de estos anticuerpos monoclonales inhibía la
proliferación inducida por IL-12, demostrando que
su efecto sobre la proliferación estimulada por
IL-12 era específico para IL-12 y
no se debía a una inhibición general de la proliferación
celular.
Las síntesis de
interferón-\gamma (IFN-\gamma)
se indujo usando linfoblastos humanos activados por PHA de 4 días
producidos como se describe anteriormente. El medio usado era una
mezcla 1:1 de RPMI 1640 y medio de Eagle modificado de Dulbecco
como se describe anteriormente para la preparación de
IL-12 humana natural que contiene, además, 5% de
suero bovino fetal (Hyclone, Logan, UT, EE.UU. de A.) inactivado
térmicamente (56ºC, 30 min) al 5% en lugar de suero AB humano.
Cultivos de 1 ml duplicados se establecieron en los pocillos de
placas de cultivo tisular de 24 pocillos (Costar). A cada pocillo se
añadieron 5 x 10^{5} linfoblastos activados con PHA, 0,25 ng/ml
de IL-12 humana natural purificada, 20 unidades/ml
de IL-2 humana recombinante, 1 ng/ml de
IL-1\beta humana recombinante (proporcionada por
el Dr. R. Chizzonite, Hoffmann-La Roche) y las
concentraciones indicadas de anticuerpos
anti-IL-12 humana. Inicialmente,
todos los reactivos excepto los linfoblastos se añadían a los
pocillos y se incubaban a 37ºC durante 30 min, seguido por la
adición de los linfoblastos. Los cultivos se incubaron a
continuación durante 24 h a 37ºC en una atmósfera humidificada de
CO_{2} al 5% en aire. Al final de este tiempo, los fluidos del
sobrenadante de cultivo se recogieron mediante centrifugación y se
ensayaron con respecto a su contenido de
IFN-\gamma mediante el uso de un ELISA. La
cantidad de IFN-\gamma producida en cultivos que
contenían linfoblastos con IL-2 +
IL-1 pero no IL-12 era siempre
menor que 15% y habitualmente menor que 5% de la producida en
cultivos que contenían 0,25 ng/ml de IL-12 además
de IL-2 + IL-1.
El ELISA para medir IFN-\gamma
humano usaba anticuerpos
anti-IFN-\gamma humano
monoclonales de Endogen (Woburn, MA). Placas Nunc EIA (Fisher) se
revistieron durante la noche a 4ºC con 100 \mul/pocillo de 1
\mug/ml de anti-IFN-\gamma
humano (Endogen Nº M-700A) en tampón de
revestimiento (Na_{2}CO_{3} 0,015 M + NaHCO_{3} 0,035 M en
agua destilada, pH 9,6). A la mañana siguiente, el tampón de
revestimiento se succionó de los pocillos y los pocillos se
bloquearon mediante la adición de 200 \mul/pocillo de solución
salina tamponada con fosfato de Dulbecco (D-PBS;
Fisher) que contenía 1% de albúmina de suero bovino (Sigma). Después
de la incubación durante 1 h a temperatura ambiente, las placas se
lavaron con D-PBS que contenía 0,05% de Tween 20
(Sigma) y partes alícuotas de 100 \mul de patrón de
IFN-\gamma humano recombinante (Endogen) o
sobrenadantes de cultivo diluidos en tampón de ensayo
(D-PBS + albúmina de suero bovino al 0,5% + Tween 20
al 0,05%) se añadieron a los pocillos. Las placas se incubaron a
continuación durante 2 horas a temperatura ambiente con agitación.
Después de esto, las placas se lavaron de nuevo y cada pocillo
recibía 100 \mul de 300 ng/ml de
anti-IFN-\gamma humano
biotinilado (Endogen Nº M-701-B) en
tampón de ensayo. Las placas se incubaron durante 1 h a 37ºC,
seguido por agitación. Partes alícuotas de 100 \mul de
estreptavidina-peroxidasa (Sigma) diluidas 1:1000 en
tampón de ensayo se añadieron a continuación a cada pocillo y las
placas se incubaron durante 30 min a 37ºC. Las placas se lavaron de
nuevo y a continuación se revelaron mediante la adición de partes
alícuotas de 100 \mul de una mezcla 1:1 de TMB Peroxidase
Substrate y Peroxidase B Solution (Kirkegaard & Perry
Laboratories, Gaithersburg, MD, EE.UU. de A.). La reacción se
detuvo después de -12 min mediante la adición de 50 \mul/pocillo
de H_{3}PO_{4} 1 M y la absorbancia se leyó a 450 nm con
substracción del fondo a 650 nm.
La producción de IFN-\gamma
por linfoblastos humanos activados con PHA estimulada con 0,25 ng/ml
de IL-12 humana se inhibió de un modo dependiente
de la dosis mediante los anticuerpos 5F2, 16F2, 16G2 y 20E11 (Fig.
5). Las potencias de estos anticuerpos antihumanos, definida como la
concentración que produce 50% de inhibición máxima (IC_{50}) de
la producción de IFN-\gamma estimulada por 0,25
ng/ml de IL-12 humana, son 0,02 \mug/ml para 5F2,
0,02 \mug/ml para 16F2, 0,01 \mug/ml para 16G2 y 0,02 \mug/ml
para 20E11. Estos anticuerpos para IL-12
específicos de heterodímero antihumanos eran capaces de inhibir más
de 90% de la producción de IFN-\gamma estimulada
por IL-12 cuando se usaban en 0,05 \mug/ml. En
contraste, el anticuerpo específico de p75 de IL-12
antihumano 20C2 (Chizzonite y otros, Cytokine, 6: A82a (1994)) es
menos potente y es incapaz de inhibir la producción de
IFN-\gamma estimulada por IL-12 en
más de 65% a concentraciones menores que o iguales a 0,5
\mug/ml.
Se extrajo RNA total de células de hibridoma
usando el sistema de aislamiento de RNA Ultraspec siguiendo el
protocolo del fabricante (Biotecx, Houston, TX, EE.UU. de A.). Se
sintetizó cDNA de primera hebra a partir de 10 \mug de RNA total
y cebadores oligo-dT en un volumen de 20 \mul. Una
parte alícuota de 4 \mul de la mezcla de reacción de cDNA se usó
como plantilla para la amplififación por PCR de la región variable
de la cadena pesada de IgG de ratón usando cebadores que se
diseñaban de acuerdo con la información de secuencia de la
estructura 1 y 4 según se presenta por Dattamajumdar y otros (A.K.
Dattamajumdar y otros, Immunogenetics 43:141-151
(1996)). Se realizó una reacción de PCR de 30 ciclos usando una
temperatura de reasociación de 50ºC. Toda la reacción de PCR se
extrajo con fenol, se precipitó con etanol y se hizo recorrer un gel
de agarosa de bajo punto de fusión al 1% para aislar el amplicón.
El fragmento de DNA se cortó del gel, se fundió a 70ºC y 5 \mul
se reamplificaron en una reacción de PCR de 30 ciclos para generar
más material. El amplicón reamplificado se purificó en gel y se
sometió a secuenciación usando un método de secuenciación de Sanger
basado en fluorescencia con un secuenciador automático de Applied
Biosystems Incorporated.
Las secuencias de nucleótidos de una porción de
la región variable del gen de la cadena pesada de inmunoglobulina
que abarca la región estructural (FR) 1, la región que determina la
complementariedad (CDR) 1, FR2, CDR2, FR3, CDR3 y FR4 de
anticuerpos para IL-12 producidos por las líneas
celulares de hibridoma HIL-12F3-16G2
y HIL-12F3-20E11 y sus secuencias
de aminoácidos deducidas se muestran en la Fig. 6 y la Fig. 7,
respectivamente. Las secuencias de las CDR están subrayadas. La
comparación de la información de secuencias disponible mostraba que
las cadenas pesadas de anticuerpos producidos por los hibridomas
HIL-12F3-16G2 y
HIL-12F3-20E11 exhiben 94% de
homología a nivel de DNA y 93% de similitud a nivel de
aminoácidos.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: F. Hoffmann-La Roche AG
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: Grenzacherstrasse 124
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: Basilea
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO: BS
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: Suecia
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL (ZIP): CH-4002
\vskip0.500000\baselineskip
- (H)
- TELEFAX: 061-6881395
\vskip0.800000\baselineskip
- (I)
- TELEX: 962292/965542 hlr ch
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: ANTICUERPOS CONTRA IL-12 HUMANA
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 4
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- FORMA LEIBLE POR COMPUTADORA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: Disco flexible
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: PC compatible con IBM
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: Patent In Release Nº 1.0, Versión Nº 1.25 (EE.UU. de A.)
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA EL Nº ID SEC: 1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 321 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: cDNA
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- POSICIÓN: 1..321
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: Nº ID SEC: 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA EL Nº ID SEC: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 107 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: Nº ID SEC: 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA EL Nº ID SEC: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 308 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: cDNA
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- RASGO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- POSICIÓN: 1..306
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: Nº ID SEC: 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA EL Nº ID SEC: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 102 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: Nº ID SEC: 4:
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (16)
1. Un anticuerpo monoclonal para
IL-12 humana que consiste en una subunidad p35 y una
subunidad p40 que forman un heterodímero p75, en donde dicho
anticuerpo monoclonal
- (a)
- reacciona inmunológicamente con un epítopo presentado por el heterodímero p75 de IL-12 humana, pero no es inmunológicamente reactivo con ningún epítopo presentado por dicha subunidad p40 sola; y
- (b)
- neutraliza al menos aproximadamente 90% de la bioactividad de IL-12 humana según se mide
- (i)
- inhibiendo la proliferación de linfoblastos humanos activados por PHA estimulada por IL-12, en donde la concentración de dicho anticuerpo es 0,5 \mug/ml y la concentración de dicha IL-12 humana es 0,25 ng/ml; o
- (ii)
- inhibiendo la producción de IFN-\gamma estimulada por IL-12, en donde la concentración del anticuerpo es 0,5 \mug/ml y la concentración de dicha IL-12 humana es 0,25 ng/ml.
2. El anticuerpo de acuerdo con la
reivindicación 1, en donde el anticuerpo reacciona cruzadamente con
IL-12 de mono Rhesus.
3. El anticuerpo de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones 1 ó 2, en donde el anticuerpo se produce a
partir de una línea celular del ratón.
4. El anticuerpo de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-3, en donde el anticuerpo
es un anticuerpo monoclonal.
5. El anticuerpo de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-4, en donde el anticuerpo
es producido por un hibridoma, específicamente un hibridoma que
tiene el número de denominación del ATCC HB-12446,
HB-12447, HB-12448 o
HB-12449.
6. El anticuerpo de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-5, en donde el anticuerpo
está humanizado.
7. Un hibridoma que produce un anticuerpo de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones
1-6.
8. Una composición farmacéutica que comprende al
menos un anticuerpo de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 1-6.
9. Un método para producir el anticuerpo de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones
1-6, que comprende las etapas de:
- (a)
- inmunizar a un mamífero deficiente en un gen que codifica dicha subunidad p35 o dicha subunidad p40 con el heterodímero p75 de IL-12 humana para producir anticuerpos;
- (b)
- obtener anticuerpos del mamífero inmunizado;
- (c)
- rastrear dichos anticuerpos con respecto a su capacidad para unirse selectivamente a un epítopo presentado por el heterodímero p75 para obtener dicho anticuerpo que se une selectivamente.
10. Un método para producir el anticuerpo
monoclonal de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones
1-6, que comprende las etapas de:
- (a)
- inmunizar a un mamífero deficiente en un gen que codifica dicha subunidad p35 o dicha subunidad p40 con el heterodímero p75 de IL-12 humana para producir anticuerpos;
- (b)
- recoger células productoras de anticuerpo del mamífero inmunizado;
- (c)
- formar un hibridoma que produce anticuerpo monoclonal a partir de dichas células y obtener dicho anticuerpo monoclonal;
- (d)
- rastrear dicho anticuerpo monoclonal producido por dicho hibridoma con respecto a la capacidad para unirse selectivamente a un epítopo presentado por el heterodímero p75 para obtener anticuerpo monoclonal que se une selectivamente.
11. El método de acuerdo con la reivindicación
10, en el que los anticuerpos producidos a partir del hibridoma se
rastrean y seleccionan adicionalmente con respecto a su capacidad
para reaccionar cruzadamente con IL-12 de mono
Rhesus.
12. El anticuerpo de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-6, siempre que se haya
producido por procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 9-11 o un procedimiento que
comprende un procedimiento de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 9-11.
13. Uso de cualquiera de los anticuerpos de una
cualquiera de las reivindicaciones 1-6 en la
preparación de un medicamento para el tratamiento de trastornos
autoinmunes.
14. El uso de acuerdo con la reivindicación 14,
en el que el trastorno autoinmune es esclerosis múltiple, artritis
reumatoide, diabetes mellitus autoinmune o enfermedad inflamatoria
del intestino.
15. El uso de acuerdo con la reivindicación 14,
en el que la enfermedad inflamatoria del intestino es enfermedad de
Crohn o colitis ulcerativa.
16. Uso de cualquiera de los anticuerpos de una
cualquiera de las reivindicaciones 1-6 en la
preparación de un medicamento para el tratamiento de la enfermedad
del injerto contra el huésped o el choque séptico.
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