ES2197249T3 - Membrana de polisulfona para la purificacion de la sangre. - Google Patents
Membrana de polisulfona para la purificacion de la sangre.Info
- Publication number
- ES2197249T3 ES2197249T3 ES96933609T ES96933609T ES2197249T3 ES 2197249 T3 ES2197249 T3 ES 2197249T3 ES 96933609 T ES96933609 T ES 96933609T ES 96933609 T ES96933609 T ES 96933609T ES 2197249 T3 ES2197249 T3 ES 2197249T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- segment
- membrane
- polysulfone
- hydrophobic
- hydrophilic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 239000012528 membrane Substances 0.000 title claims abstract description 194
- 239000008280 blood Substances 0.000 title claims abstract description 52
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 title claims abstract description 52
- 238000000746 purification Methods 0.000 title claims description 30
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims abstract description 45
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 claims abstract description 39
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 36
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 33
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 claims abstract description 30
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 claims abstract description 30
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 claims abstract description 21
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 claims abstract description 21
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims abstract description 15
- 229920002492 poly(sulfone) Polymers 0.000 claims description 114
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 claims description 74
- 239000000178 monomer Substances 0.000 claims description 58
- 229920000578 graft copolymer Polymers 0.000 claims description 52
- 239000012510 hollow fiber Substances 0.000 claims description 38
- 239000002019 doping agent Substances 0.000 claims description 33
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 claims description 27
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 claims description 27
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 claims description 27
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 25
- 229920001400 block copolymer Polymers 0.000 claims description 23
- FXHOOIRPVKKKFG-UHFFFAOYSA-N N,N-Dimethylacetamide Chemical compound CN(C)C(C)=O FXHOOIRPVKKKFG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 21
- ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N N,N-Dimethylformamide Chemical compound CN(C)C=O ZMXDDKWLCZADIW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- ZFPGARUNNKGOBB-UHFFFAOYSA-N 1-Ethyl-2-pyrrolidinone Chemical compound CCN1CCCC1=O ZFPGARUNNKGOBB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 abstract description 35
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 abstract description 18
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 abstract description 9
- 238000011084 recovery Methods 0.000 abstract description 9
- ZZUFCTLCJUWOSV-UHFFFAOYSA-N furosemide Chemical compound C1=C(Cl)C(S(=O)(=O)N)=CC(C(O)=O)=C1NCC1=CC=CO1 ZZUFCTLCJUWOSV-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract 1
- 229920002959 polymer blend Polymers 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 41
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 22
- WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N N-Vinyl-2-pyrrolidone Chemical compound C=CN1CCCC1=O WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 21
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 21
- PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N Styrene Chemical group C=CC1=CC=CC=C1 PPBRXRYQALVLMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 19
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 16
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 13
- OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N 2-(2-cyanopropan-2-yldiazenyl)-2-methylpropanenitrile Chemical compound N#CC(C)(C)N=NC(C)(C)C#N OZAIFHULBGXAKX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 101710088194 Dehydrogenase Proteins 0.000 description 12
- 238000005481 NMR spectroscopy Methods 0.000 description 12
- 238000005227 gel permeation chromatography Methods 0.000 description 11
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 description 11
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 description 11
- 238000004833 X-ray photoelectron spectroscopy Methods 0.000 description 10
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 10
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 10
- 230000003252 repetitive effect Effects 0.000 description 10
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N Phosphoric acid Chemical compound OP(O)(O)=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 229920001477 hydrophilic polymer Polymers 0.000 description 8
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 7
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 7
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 7
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 7
- 125000003011 styrenyl group Chemical group [H]\C(*)=C(/[H])C1=C([H])C([H])=C([H])C([H])=C1[H] 0.000 description 7
- NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N Sulfur Chemical compound [S] NINIDFKCEFEMDL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 6
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 6
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 5
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 5
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 5
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 5
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 5
- 229920006316 polyvinylpyrrolidine Polymers 0.000 description 5
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 239000011593 sulfur Substances 0.000 description 5
- 229910052717 sulfur Inorganic materials 0.000 description 5
- 229910000147 aluminium phosphate Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 4
- 238000011158 quantitative evaluation Methods 0.000 description 4
- 239000011343 solid material Substances 0.000 description 4
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- 238000004811 liquid chromatography Methods 0.000 description 3
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 3
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 3
- ADNXYZUJPHVRPJ-UHFFFAOYSA-N 1-ethenylpyrrolidin-2-one;styrene Chemical compound C=CN1CCCC1=O.C=CC1=CC=CC=C1 ADNXYZUJPHVRPJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SOGAXMICEFXMKE-UHFFFAOYSA-N Butylmethacrylate Chemical compound CCCCOC(=O)C(C)=C SOGAXMICEFXMKE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L Calcium chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Ca+2] UXVMQQNJUSDDNG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N Methacrylic acid Chemical compound CC(=C)C(O)=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- MZRVEZGGRBJDDB-UHFFFAOYSA-N N-Butyllithium Chemical compound [Li]CCCC MZRVEZGGRBJDDB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HEDRZPFGACZZDS-MICDWDOJSA-N Trichloro(2H)methane Chemical compound [2H]C(Cl)(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-MICDWDOJSA-N 0.000 description 2
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 2
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 2
- 238000010539 anionic addition polymerization reaction Methods 0.000 description 2
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 2
- 238000001631 haemodialysis Methods 0.000 description 2
- 230000000322 hemodialysis Effects 0.000 description 2
- 238000002615 hemofiltration Methods 0.000 description 2
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 description 2
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 2
- 239000003999 initiator Substances 0.000 description 2
- AMXOYNBUYSYVKV-UHFFFAOYSA-M lithium bromide Chemical compound [Li+].[Br-] AMXOYNBUYSYVKV-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 2
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 238000005191 phase separation Methods 0.000 description 2
- 229920003229 poly(methyl methacrylate) Polymers 0.000 description 2
- 239000003505 polymerization initiator Substances 0.000 description 2
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 229920005604 random copolymer Polymers 0.000 description 2
- JHPBZFOKBAGZBL-UHFFFAOYSA-N (3-hydroxy-2,2,4-trimethylpentyl) 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CC(C)C(O)C(C)(C)COC(=O)C(C)=C JHPBZFOKBAGZBL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QRIMLDXJAPZHJE-UHFFFAOYSA-N 2,3-dihydroxypropyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CC(=C)C(=O)OCC(O)CO QRIMLDXJAPZHJE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JAHNSTQSQJOJLO-UHFFFAOYSA-N 2-(3-fluorophenyl)-1h-imidazole Chemical compound FC1=CC=CC(C=2NC=CN=2)=C1 JAHNSTQSQJOJLO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OQUFOZNPBIIJTN-UHFFFAOYSA-N 2-hydroxypropane-1,2,3-tricarboxylic acid;sodium Chemical compound [Na].OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O OQUFOZNPBIIJTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JLBJTVDPSNHSKJ-UHFFFAOYSA-N 4-Methylstyrene Chemical compound CC1=CC=C(C=C)C=C1 JLBJTVDPSNHSKJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NLHHRLWOUZZQLW-UHFFFAOYSA-N Acrylonitrile Chemical group C=CC#N NLHHRLWOUZZQLW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XDTMQSROBMDMFD-UHFFFAOYSA-N Cyclohexane Chemical compound C1CCCCC1 XDTMQSROBMDMFD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QOSSAOTZNIDXMA-UHFFFAOYSA-N Dicylcohexylcarbodiimide Chemical compound C1CCCCC1N=C=NC1CCCCC1 QOSSAOTZNIDXMA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IMROMDMJAWUWLK-UHFFFAOYSA-N Ethenol Chemical compound OC=C IMROMDMJAWUWLK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010020056 Hydrogenase Proteins 0.000 description 1
- WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N Hydroxyethyl methacrylate Chemical compound CC(=C)C(=O)OCCO WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-M Methacrylate Chemical compound CC(=C)C([O-])=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N Methyl methacrylate Chemical compound COC(=O)C(C)=C VVQNEPGJFQJSBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- WYURNTSHIVDZCO-UHFFFAOYSA-N Tetrahydrofuran Chemical class C1CCOC1 WYURNTSHIVDZCO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XTXRWKRVRITETP-UHFFFAOYSA-N Vinyl acetate Chemical compound CC(=O)OC=C XTXRWKRVRITETP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N acrylic acid group Chemical group C(C=C)(=O)O NIXOWILDQLNWCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- -1 acrylic ester Chemical class 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 1
- AOJOEFVRHOZDFN-UHFFFAOYSA-N benzyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CC(=C)C(=O)OCC1=CC=CC=C1 AOJOEFVRHOZDFN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SNBMGLUIIGFNFE-UHFFFAOYSA-N benzyl n,n-diethylcarbamodithioate Chemical compound CCN(CC)C(=S)SCC1=CC=CC=C1 SNBMGLUIIGFNFE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MPMBRWOOISTHJV-UHFFFAOYSA-N but-1-enylbenzene Chemical compound CCC=CC1=CC=CC=C1 MPMBRWOOISTHJV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 1
- 239000001110 calcium chloride Substances 0.000 description 1
- 229910001628 calcium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012986 chain transfer agent Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- LMBWSYZSUOEYSN-UHFFFAOYSA-N diethyldithiocarbamic acid Chemical compound CCN(CC)C(S)=S LMBWSYZSUOEYSN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 238000004821 distillation Methods 0.000 description 1
- 150000004659 dithiocarbamates Chemical group 0.000 description 1
- 229950004394 ditiocarb Drugs 0.000 description 1
- 239000000428 dust Substances 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 1
- 229920006351 engineering plastic Polymers 0.000 description 1
- SUPCQIBBMFXVTL-UHFFFAOYSA-N ethyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CCOC(=O)C(C)=C SUPCQIBBMFXVTL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 1
- 230000005251 gamma ray Effects 0.000 description 1
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 1
- VOZRXNHHFUQHIL-UHFFFAOYSA-N glycidyl methacrylate Chemical compound CC(=C)C(=O)OCC1CO1 VOZRXNHHFUQHIL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001519 homopolymer Polymers 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 238000010552 living cationic polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 238000010550 living polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 1
- 239000012567 medical material Substances 0.000 description 1
- 125000002496 methyl group Chemical group [H]C([H])([H])* 0.000 description 1
- LVHBHZANLOWSRM-UHFFFAOYSA-N methylenebutanedioic acid Natural products OC(=O)CC(=C)C(O)=O LVHBHZANLOWSRM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WFKDPJRCBCBQNT-UHFFFAOYSA-N n,2-dimethylprop-2-enamide Chemical compound CNC(=O)C(C)=C WFKDPJRCBCBQNT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZIUHHBKFKCYYJD-UHFFFAOYSA-N n,n'-methylenebisacrylamide Chemical compound C=CC(=O)NCNC(=O)C=C ZIUHHBKFKCYYJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PSHKMPUSSFXUIA-UHFFFAOYSA-N n,n-dimethylpyridin-2-amine Chemical compound CN(C)C1=CC=CC=N1 PSHKMPUSSFXUIA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OMNKZBIFPJNNIO-UHFFFAOYSA-N n-(2-methyl-4-oxopentan-2-yl)prop-2-enamide Chemical compound CC(=O)CC(C)(C)NC(=O)C=C OMNKZBIFPJNNIO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- YPHQUSNPXDGUHL-UHFFFAOYSA-N n-methylprop-2-enamide Chemical compound CNC(=O)C=C YPHQUSNPXDGUHL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- URXNVXOMQQCBHS-UHFFFAOYSA-N naphthalene;sodium Chemical compound [Na].C1=CC=CC2=CC=CC=C21 URXNVXOMQQCBHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920002113 octoxynol Polymers 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 229920000110 poly(aryl ether sulfone) Polymers 0.000 description 1
- 229920000151 polyglycol Polymers 0.000 description 1
- 239000010695 polyglycol Substances 0.000 description 1
- 229920001451 polypropylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 238000000425 proton nuclear magnetic resonance spectrum Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 238000001226 reprecipitation Methods 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 1
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000004611 spectroscopical analysis Methods 0.000 description 1
- 238000009987 spinning Methods 0.000 description 1
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 1
- 150000003440 styrenes Chemical class 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 125000000391 vinyl group Chemical group [H]C([*])=C([H])[H] 0.000 description 1
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920003169 water-soluble polymer Polymers 0.000 description 1
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D71/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D71/06—Organic material
- B01D71/76—Macromolecular material not specifically provided for in a single one of groups B01D71/08 - B01D71/74
- B01D71/80—Block polymers
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D67/00—Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
- B01D67/0002—Organic membrane manufacture
- B01D67/0009—Organic membrane manufacture by phase separation, sol-gel transition, evaporation or solvent quenching
- B01D67/0016—Coagulation
- B01D67/00165—Composition of the coagulation baths
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D69/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by their form, structure or properties; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D69/08—Hollow fibre membranes
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D71/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D71/06—Organic material
- B01D71/28—Polymers of vinyl aromatic compounds
- B01D71/281—Polystyrene
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D71/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D71/06—Organic material
- B01D71/44—Polymers obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, not provided for in a single one of groups B01D71/26-B01D71/42
- B01D71/441—Polyvinylpyrrolidone
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D71/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D71/06—Organic material
- B01D71/66—Polymers having sulfur in the main chain, with or without nitrogen, oxygen or carbon only
- B01D71/68—Polysulfones; Polyethersulfones
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D71/00—Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
- B01D71/06—Organic material
- B01D71/76—Macromolecular material not specifically provided for in a single one of groups B01D71/08 - B01D71/74
- B01D71/78—Graft polymers
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2323/00—Details relating to membrane preparation
- B01D2323/12—Specific ratios of components used
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2323/00—Details relating to membrane preparation
- B01D2323/30—Cross-linking
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2325/00—Details relating to properties of membranes
- B01D2325/34—Molecular weight or degree of polymerisation
- B01D2325/341—At least two polymers of same structure but different molecular weight
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Manufacturing & Machinery (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
- Other Resins Obtained By Reactions Not Involving Carbon-To-Carbon Unsaturated Bonds (AREA)
Abstract
SE REVELA UNA MEMBRANA DE POLISULFONA PARA PURIFICAR SANGRE, QUE POSEE UNA EXCELENTE COMPATIBILIDAD CON ESTA, Y EL PROCESO DE PRODUCCION DE DICHA MEMBRANA. LA MEMBRANA COMPRENDE UNA FASE CON UNA MEZCLA DE POLIMEROS FORMADA POR UN COPOLIMERO INJERTADO Y/O UN COPOLIMERO SECUENCIADO CON UN PESO MOLECULAR DE 3 X 10 5 DALTONS O MAS Y QUE CONTIENE (A) UN SEGMENTO HIDROFILO Y (B) UN SEGMENTO HIDROFOBO (QUE NO CUENTA CON POLISULFONA) EN UNA CANTIDAD TOTAL QUE VA DESDE 0,5 A 30 PARTES POR PESO HASTA 100 PARTES POR PESO DE POLISULFONA, CON UNA PROPORCION DE UNIDADES DE MONOMERO (A/B) ENTRE LOS SEGMENTOS A Y B QUE VA DESDE 0,5 A 5. EL COPOLIMERO ES PREFERENTEMENTE UN COPOLIMERO INJERTADO EN EL QUE EL SEGMENTO HIDROFILO ES UN SEGMENTO POLIVINILPIRROLIDONA Y EL SEGMENTO HIDROFOBO ES UN SEGMENTO POLIESTIRENO. LA MEMBRANA PUEDE PREPARARSE AL APLICAR UN PROCESO DE FORMACION DE PELICULA HUMEDA A UN BARNIZ QUE CONTIENE UN DISOLVENTE APROPIADO DEL POLIMERO MEZCLADO, COMO N,N - DIMETILACETAMIDA. LA MEMBRANA PARA PURIFICAR SANGRE REDUCE LA INCOMODIDAD DEL LAVADO DE LA MEMBRANA COAGULADA DURANTE EL PROCESO DE FORMACION DE LA PELICULA Y PERMITE LA RECUPERACION DEL DISOLVENTE A PARTIR DE LA SOLUCION DE COAGULACION EN UNA ELEVADA TASA DE RECUPERACION PORQUE EL COPOLIMERO CONTENIDO EN LA ESTRUCTURA DE LA MEMBRANA ESTA SUSTANCIALMENTE NO ELUIDO EN EL AGUA CON LA QUE ENTRA EN CONTACTO DURANTE EL PROCESO DE FORMACION DE LA PELICULA Y DEL PASO DE LAVADO.
Description
Membrana de polisulfona para la purificación de
la sangre.
La presente invención se refiere a una membrana
para la purificación de la sangre tal como la hemodiálisis y la
hemofiltración, y más específicamente, la presente invención se
refiere a una membrana de polisulfona para la purificación de sangre
que tiene una excelente compatibilidad entre la sangre y la
membrana, en la cual la eficiencia en producción de la membrana
presenta una mejora en la capacidad del lavado de la membrana y en
la recuperabilidad del disolvente utilizado en la producción de la
misma.
La resina de polisulfona es una de las resinas
extensamente aplicadas y desarrolladas como material médico por su
excelente resistencia al calor, resistencia química y resistencia a
los rayos gamma. La resina de polisulfona se utiliza también como
material en los dializadores artificiales altamente transmisibles.
Sin embargo, la polisulfona en sí misma es hirofóbica y exhibe una
baja compatibilidad con la sangre por sí misma. Hasta ahora, se han
desarrollado varios métodos con el intento de mejorar la
compatibilidad con la sangre. Por ejemplo, la patente japonesa
publicada (no examinada) (Kokai) Nº 61-93801 da a
conocer un método que consiste en añadir polivinilpirrolidona para
así mejorar la compatibilidad de la membrana con la sangre, y la
patente japonesa publicada (no examinada) (Kokai) Nº
6-165926 da a conocer una membrana de polisulfona de
fibra hueca que contiene un polímero basado en vinilpirrolidona y un
poliglicol.
Se puede mejorar la compatibilidad con la sangre
mezclando un polímero hidrofílico tal como lo manifiestan estas
técnicas, sin embargo, el polímero hidrofílico mezclado con la
resina de polisulfona es soluble en agua y se requiere esencialmente
un lavado meticuloso de la membrana. Debido a esto, la etapa de
lavado necesita generalmente un tiempo largo y el proceso de la
formación de la película es ineficiente. Por otro lado, cuando se
añade el polímero hirofílico soluble en agua, además del problema
del difícil proceso de lavado, surgen problemas serios, en la
producción, tales que el polímero soluble en agua añadido durante la
formación de la película se diluye en grandes cantidades en la
solución de coagulación. Más específicamente, en el momento de
recuperar el disolvente de la membrana a partir de la solución de la
coagulación, el disolvente llega a ser difícil de recuperar dado que
la viscosidad de la solución de la coagulación aumenta bastante
debido a la presencia del polímero hidrofílico.
Desde el punto de vista de suprimir la elución
del polímero hirofílico añadido, por ejemplo, las patentes japonesas
publicadas (no examinadas) (Kokai) Nº 63-97205 y
4-300636 dan a conocer una técnicaque consiste en
someter una membrana basada en polisulfona a la cual se le añade un
polímero hidrofílico como polivinilpirrolidona, a un tratamiento de
calor o un tratamiento de radiación. Sin embargo, el tratamiento de
calor debe ser realizado a una temperatura medianamente elevada
(170º o más) y el funcionamiento de la membrana se puede mantener
solamente con dificultad. Adicionalmente, el método para llevar a
cabo el reticulado de alta potencia por irradiación de rayos gamma o
similar puede reducir la compatibilidad de la membrana con la
sangre. Más aún, estos métodos no pueden superar la problemática que
acompaña la elución del polímero hidrofílico en la solución de
coagulación.
A fin de mejorar la permeabilidad al agua de la
membrana de polisulfona, se puede añadir un polímero hidrofílico que
tiene una baja solubilidad en agua. A este respeto, se da a conocer,
por ejemplo, en las patentes japonesas publicadas (no examinadas)
(Kokai) Nº. 62-168503, 62-199621,
62-201603, 63-88003,
63-84603 y 2-140234, un método para
la formación de una membrana que comprende la adición de un
copolímero de injerto o bien un copolímero en bloque que consiste en
un segmento de polisulfona y un segmento de un polímero
hidrofílico.
Un objeto de la presente invención es
proporcionar una membrana para la hemocatarsis basada en polisulfona
que tiene una excelente compatibilidad con la sangre.
Otro objeto adicional de la presente invención es
dar a conocer un procedimiento para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre que tiene una
excelente compatibilidad con la sangre mediante una simple etapa de
lavado y con una elevada recuperación del disolvente utilizado para
el dopante de la membrana formada.
La presente invención se ha conseguido al
observar el hecho de que una membrana de polisulfona que contiene un
copolímero de injerto y/o copolímero en bloque, que consiste en un
segmento hidrofílico y un segmento hidrofóbico, exhibe una excelente
compatibilidad con la sangre y el copolímero de injerto y/o
copolímero en bloque, no se eluye fácilmente en la solución de
coagulación a la hora de la formación de la membrana.
Más específicamente, los objetos de la presente
invención han sido alcanzados con una membrana de polisulfona para
la purificación de la sangre que comprende un copolímero de injerto
y/o copolímero en bloque que consiste en (A) un segmento hidrofílico
y (B) un segmento hidrofóbico (exclusivo de polisulfona), siendo la
proporción de la unidad monomérica (A/B) de A respecto a B de 0,5 a
5, y el total de A y B de 0,5 a 30 partes en peso por 100 partes en
peso de polisulfona.
La unidad monomérica A o B tal como está
utilizada en la presente invención significa la unidad repetitiva en
el polímero que constituye el segmento hidrofílico o hidrofóbico,
respectivamente. Por ejemplo, en el copolímero de injerto o en
bloque que consiste en un segmento de polivinilpirrolidona y un
segmento de poliestireno, las unidades monoméricas A y B son la
unidad repetitiva que se representa con las siguientes formulaciones
[I] y [II], respectivamente:
Mediante el análisis de la superficie de la
membrana, se ha encontrado que la mejora de la propiedad de lavado y
la excelente compatibilidad con la sangre de la membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre en la presente
invención se consiguen poniendo el segmento hidrofóbico embebido en
la membrana de polisulfona, o unido a ella por la fuerza de unión de
la afinidad utilizando un copolímero de injerto y/o en bloque que
comprende los segmentos hidrofílicos y hidrofóbicos, en los cuales
la proporción del segmento hidrofóbico respecto al segmento
hidrofílico en la superficie de la membrana resulta menor que la
proporción del segmento hidrofóbico respecto al segmento hidrofílico
en toda la membrana.
Más específicamente, la presente invención da a
conocer adicionalmente una membrana de polisulfona para la
purificación de la sangre que comprende un copolímero de injerto y/o
un copolímero en bloque que consisten en (A) un segmento hidrofílico
y (B) un segmento hidrofóbico (exclusivo de polisulfona), siendo la
proporción de la unidad monomérica (A/B) de A respecto a B de 0,5 a
5, el total de A y B de 0,5 a 30 partes en peso por 100 partes en
peso de la polisulfona, y siendo menor la proporción de la unidad
monomérica (U = B'/A') entre el segmento hidrofóbico (B') y el
segmento hidrofílico (A') presente en la superficie de la membrana
que la proporción de la unidad monomérica (V = B/A) entre el
segmento hidrofóbico (B) y el segmento hidrofílico (A) presente en
toda la membrana.
La proporción de la unidad monomérica ``U'' tal
como está utilizada en la presente invención se define como un valor
derivado de las proporciones de abundancia de la unidad hidrofílica
en el copolímero, de la unidad hidrofóbica en el copolímero y la
polisulfona, obtenidas determinando las cantidades de los elementos
característicos de ambas unidades y la polisulfona, elementos en el
estado de enlace químico característico (si se desea, la cantidad se
determina mediante el proceso de ``peak spilt'') y los elementos
constituyentes de acuerdo con la ESCA (Espectroscopia de Electrón
para Análisis Químico). Por ejemplo, se describe un método para
determinar la proporción de la unidad monomérica ``U'' en el caso de
una membrana de resina de polisulfona que comprende una unidad
repetitiva representada por la siguiente formula [IV] que contiene
un copolímero que consiste en un segmento de polivinilpirrolidona y
un segmento de poliestireno. Se determinan mediante ESCA las
proporciones de abundancia de nitrógeno originado de la unidad
vinilipirrolidona y de azufre originado de la polisulfona. Del mismo
modo, se determinan mediante ESCA la proporción de abundancia de
nitrógeno en la película del polivinilipirrolidona y la proporción
de abundancia de azufre en la membrana de polisulfona sin aditivos.
A partir de las proporciones de abundancia determinadas, se
determinan la proporción de recubrimiento de la unidad de
vinilpirrolidona y la proporción de exposición de la polisulfona. A
continuación, a partir la proporción de recubrimiento de la unidad
de vinilpirrolidona y de la proporción de exposición de la
polisulfona, se determina la proporción de recubrimiento de la
unidad de estireno. A partir de la proporción de recubrimiento de la
unidad de vinilpirrolidona y de la proporción del recubrimiento de
la unidad estireno, se obtiene la proporción de la unidad monomérica
``U'' de la membrana.
La polisulfona tal como está utilizada en la
presente invención es un polímero de poliaril éter sulfona,
caracterizado por la estructura que contiene la unidad repetitiva
representada por la siguiente fórmula [III]. Ejemplos del mismo
incluyen un polímero que comprende la unidad repetitiva representada
por la formula [IV] y un polímero que comprende la unidad repetitiva
representada por la formula [III].
El copolímero de injerto y/o el copolímero en
bloque que consiste en (A) un segmento hidrofílico y (B) un segmento
hidrofóbico (exclusivo de polisulfona) tal como están utilizados en
la presente invención consiste en un copolímero en bloque que tiene
una forma de A-B,
A-B-A,
B-A-B,
(A-B)_{x}-A,
B-(A-B)_{x}, comprendiendo el copolímero de
injerto una cadena principal de (A) un segmento hidrofílico y una
rama de (B) un segmento hidrofóbico, o bien un copolímero de injerto
que comprende un tronco de (B) un segmento hidrofóbico y una rama de
(A) un segmento hidrofílico.
El copolímero tiene preferiblemente un peso
molecular de 3 x 10^{4} a 2 x 10^{6} daltones.
Ejemplos del segmento hidrofílico de la presente
invención incluyen un segmento que comprende un polímero o
copolímero de un monómero tal como ácido metacrílico, ácido
acrílico, ácido itacónico, metacrilato de
2-hidroxietil, acrilato de
2-hidroxietil, metacrilato de
2-hidroxipropil, acrilato de
2-hidroxipropil, metacrilato de glicerol,
metacrilato de polietilénglicol,
N,N'-dimetilacrilamida,
N-metilacrilamida, metacrilato de
dimetilaminoetilo, metilénbisacrilamida, acrilamida de diacetona,
N-vinilpirrolidona o alcohol vinílico, o bien un
polímero tal como un segmento de polietilénglicol o un segmento de
polipropilénglicol.
Ejemplos del segmento hidrofóbico de la presente
invención incluyen un segmento que comprende un polímero o
copolímero de un monómero de éster metacrílico o éster acrílico tal
como metacrilato de metilo, metacrilato de etilo, metacrilato de
n-propilo, metacrilato de n-butilo o
metacrilato de bencilo, un monómero de estireno tal como estireno,
metilestireno o etilestireno, un monómero de carboxilado de vinilo
tal como acetato de vinilo, o un monómero de acrilonitrilo.
El copolímero puede polimerizarse mediante un
método normalmente conocido. Por ejemplo, se puede sintetizar un
copolímero en bloque a partir de un monómero hidrofílico y de un
monómero hidrofóbico por polimerización aniónica en vivo,
polimerización catiónica en vivo o por polimerización
fotoiniferter (Ver Nipón Gomu Kyokaishi (Journal of Japan Rubber
Association), Vol. 59, Nº. 12, p. 658 (1986)). El método de síntesis
del copolímero de injerto se describe, por ejemplo, en la patente
japonesa publicada (no examinada) (Kokai) Nº.
50-77526 y en Angew Makromol. Chem. Vol. 132, 81
(1985). Varios ejemplos de síntesis están descritos a continuación
con detalle. Se describe a continuación un ejemplo de síntesis de un
copolímero tipo en bloque mediante la polimerización fotoiniferter.
Se disuelve en un disolvente un monómero hidrofílico o un monómero
hidrofóbico y un iniciador de fotopolimerización en vivo que
contiene un grupo ditiocarbamato (por ejemplo,
N,N-dietilditiocarbamato de bencilo,
p-xilenbis
(N,N-dietilditiocarbamato)), y se polimeriza
mediante irradiación con luz ultravioleta para sintetizar el
polímero que contiene un terminal creciente. A partir de esta
solución de reacción, se purifica y se separa el polímero que
contiene un terminal creciente. Este polímero y un monómero
hidrofóbico en el caso de un polímero obtenido a partir de un
monómero hidrofílico, o un monómero hidrofílico en el caso de un
polímero obtenido a partir de un monómero hidrofóbico, se disuelven
en un disolvente y se polimerizan empezando desde el terminal
creciente mediante irradiación nuevamente con la luz ultravioleta
para obtener un copolímero en bloque. Se puede obtener un copolímero
en bloque que contiene una unidad repetitiva de
(A-B)_{x}-A o
(B-A)_{x}-B repitiendo la
etapa de purificación-separación del polímero que
contiene un terminal creciente y la polimerización con un monómero
bajo irradiación con luz ultravioleta.
Se describe a continuación un ejemplo de una
síntesis de un copolímero tipo en bloque mediante la polimerización
aniónica en vivo. Se polimeriza en un disolvente deshidratado
un monómero hidrofílicodeshidratado o un monómero hidrofóbico con
un iniciador de polimerización(por ejemplo, naftaleno de
sodio) para sintetizar un polímero que contiene un terminal
creciente. Después de que la reacción del monómero se completa, se
añade un monómero hidrofóbico deshidratado en el caso de un polímero
obtenido a partir de un monómero hidrofílico, o un monómero
hidrofílico deshidratado en el caso de un polímero obtenido a partir
de un monómero hidrofóbico, a la solución de reacción obtenida
anteriormente para llevar a cabo la polimerización empezando a
partir del terminal creciente. Como resultado, se obtiene un
copolímero en bloque. Se puede obtener un copolímero en bloque que
contiene una unidad repetitiva de
(A-B)_{x}-A o
(B-A)_{x}-B repitiendo la
operación de adición del monómero después de la finalización de la
reacción del monómero.
A continuación se describe un ejemplo de síntesis
de un copolímero tipo de injerto mediante la copolimerización de un
macromonómero y de un monómero. Los macromonómeros tales como
polietilénglicol o poliestireno que tienen un doble enlace en un
terminal son comercialmente disponibles, sin embargo, si se desea,
se puede sintetizar el macromonómero mediante el siguiente método.
Se polimeriza un monómero hidrofílico o un monómero hidrofóbico
utilizando azobisisobutironitrilo (AIBN) como iniciador de
polimerización y ácido 3-mercaptopropoinico como
agente de transferencia de cadena para sintetizar un prepolímero que
tiene un grupo carboxilo en un terminal. Se hace reaccionar el
prepolímero obtenido con metacrilato de glicidil y, como resultado,
se obtiene un macrómero hidrofílico o un macrómero hidrofóbico.
Aparte de esto, se puede obtener también el macromonómero mediante
el método de la polimerización de un monómero hidrofílico o un
monómero hidrofóbico mediante la polimerización aniónica y añadiendo
ácido metacrílico clorhídrico al mismo para reaccionar con el
polímero, obteniendo así un macrómero hidrofílico o un macrómero
hidrofóbico que tiene un doble enlace en un terminal.
Se polimerizan un macrómero hidrofílico y un
monómero hidrofóbico o un macrómero hidrofóbico y un monómero
hidrofílico en la presencia de un iniciador de polimerización y se
obtiene un copolímero de injerto que consiste en un segmento
hidrofóbico y un segmento hidrofílico.
Se puede preparar la membrana para la
hemocatarsis basada en polisulfona de la presente invención mediante
el proceso llamado formación de película húmeda, en el que
polisulfona y un copolímero de injerto y/o copolímero en bloque que
comprende (A) un segmento hidrofílico y (B) un segmento hidrofóbico
en la cantidad total de 0,5 a 30 partes en peso por 100 partes en
peso de la polisulfona, con la proporción de la unidad monomérica
(A/B) entre los segmentos A y B de 0,5 a 5, se disuelven en un
disolvente determinado para obtener una concentración de polisulfona
de 12 a 25 % en peso basada en el dopante preparado. Se moldea el
dopante así preparado para fabricar la membrana en forma de una
membrana plana o bien de fibra hueca, la membrana plana o de fibra
hueca formada está en contacto con una solución de coagulación
predeterminada, se elimina el disolvente y se lava el residuo.
La membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre de la presente invención es ventajosa en que la
membrana, cuya estructura está descrita anteriormente, está formada
durante el proceso de coagulación y el copolímero de injerto y/o
copolímero en bloque no se eluye sustancialmente en la solución de
coagulación o en la solución de lavado después de la coagulación.
Como consecuencia, en el proceso de recuperación del disolvente de
la membrana a partir de la solución de coagulación por destilación o
similar, no ocurre un incremento de la viscosidad atribuida a la
elución del polímero y se puede conseguir una elevada recuperación
del disolvente. Adicionalmente, mientras que el polímero no se eluye
durante el lavado después de la coagulación, la etapa del lavado se
puede completar en un tiempo corto.
En el copolímero de injerto y/o copolímero en
bloque para el uso en la presente invención, el segmento hidrofílico
(A) es preferiblemente un segmento de polivinilpirrolidona o un
segmento de polietilénglicol, más preferiblemente un segmento de
polivinilpirrolidona. El segmento hidrofóbico (B) es preferiblemente
un segmento de metacrilato de polimetilo o un segmento de
poliestireno, más preferiblemente un segmento de poliestireno.
Se utiliza preferiblemente un copolímero de
injerto. El copolímero de injerto es preferiblemente un copolímero
de injerto que tiene un tronco de un segmento de metacrilato de
metilo o un segmento de poliestireno y una rama de un segmento de
polietilénglicol, o un copolímero de injerto que tiene un tronco de
un segmento de polivinilpirrolidona y una rama de un segmento de
metacrilato de polimetilo o un segmento de poliestireno, y más
preferiblemente un polímero de injerto que tiene un tronco de
polivinilpirrolidona y una rama de un segmento de poliestireno.
Se pueden preparar fácilmente estos copolímeros
de injerto y/o copolímeros en bloque mediante el conocido método de
síntesis descrito en detalle a continuación.
El copolímero tiene preferiblemente un peso
molecular de 3 x 10^{4} a 2 x 10^{6} daltones, más
preferiblemente de 5 x 10^{4} a 1,5 x 10^{6} daltones, aún más
preferiblemente de 1 x 10^{5} a 1 x 10^{6} daltones. Si el peso
molecular es demasiado bajo, no se pueden obtener resultados
satisfactorios debido a que aún permanece la adición o el problema
de la voluminosidad en la etapa del lavado con agua, mientras que si
el peso molecular es demasiado grande, la mezcla con la resina de
polisulfona se realiza mal y en la práctica no se obtiene una
membrana uniforme. El peso molecular tal como está utilizado en la
presente invención significa un peso molecular en el pico
correspondiente al peso molecular del estireno obtenido por
cromatografía de permeación en gel (GPC). Más específicamente, es un
peso molecular obtenido por GPC en el pico en términos de estireno,
obtenido utilizando un Shodex (marca registrada) serie GPS
KD-800® como columna, N,N- dimetilformamida que
contiene 0,01 mol/l de bromuro de litio como eluyente y un
refractómetro diferencial como detector.
La proporción del segmento hidrofílico (A)
respecto al segmento hidrofóbico (B) de la presente invención es, en
términos de la proporción de la unidad monomérica (A/B) de A
respecto a B, de 0,5 a 5, preferiblemente de 1 a 4, más
preferiblemente de 1,2 a 3. La proporción del segmento hidrofílico
respecto al segmento hidrofóbico se decide teniendo en cuenta el
balance entre la insolubilidad en agua y la mejora en la
compatibilidad con la sangre de la membrana basada en polisulfona.
Más específicamente, en el caso de que la proporción del segmento
hidrofílico respecto al segmento hidrofóbico es muy grande, el
problema de la voluminosidad en la etapa del lavado con agua no se
supera o la elución en la solución de coagulación no se suprime
suficientemente, como resultado, se puede incrementar con dificultad
la recuperación del disolvente. Por otro lado, si la proporción del
segmento hidrofílico respecto al segmento hidrofóbico es muy baja,
la compatibilidad de la membrana de polisulfona con la sangre no se
mejora suficientemente.
La membrana basada en polisulfona de la presente
invención debe contener tanto el segmento hidrofílico (A) como el
segmento hidrofóbico (B) en cantidad tal que la cantidad total de A
y de B es de 0,5 a 30 partes en peso, preferiblemente de 3 a 25
partes en peso, más preferiblemente de 6 a 20 partes en peso, por
100 partes en peso de polisulfona. Si la cantidad del segmento
hidrofílico y del segmento hidrofóbico contenido en la membrana es
muy grande, se produce un problema de resistencia al calor o de
fuerza mecánica de la membrana. Por otro lado, si el contenido de
estos segmentos es muy bajo, desventajosamente no se alcanza una
buena compatibilidad con la sangre.
La membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre descrita en la presente invención preferiblemente tiene
una forma tal que en la estructura de la sección transversal, la
proporción de la unidad monomérica (U = B'/A') entre el segmento
hidrofóbico (B') y el segmento hidrofílico (A') presentes en la
superficie de la membrana es más baja que la proporción de la unidad
monomérica (V = B/A) entre el segmento hidrofóbico (B) y el segmento
hidrofílico (A) presentes en toda la membrana. Por ejemplo, cuando
se utiliza como índice un valor (W, decremento del segmento
hidrofóbico en la superficie de la membrana) obtenido de tal manera
que la proporción de la unidad monomérica (U = B'/A') entre el
segmento hidrofóbico (B') y el segmento hidrofílico (A') presentes
en la superficie de la membrana está sustraída de la proporción de
la unidad monomérica (V = B/A) entre el segmento hidrofóbico (B) y
el segmento hidrofílico (A) presentes en toda la membrana y el
resultado se divide por la proporción de la unidad monomérica (V =
B/A) entre el segmento hidrofóbico (B) y el segmento hidrofílico (A)
de toda la membrana, el valor del índice es preferiblemente de 0,3 a
1, más preferiblemente de 0,5 a 1, y aún más preferiblemente de 0,7
a 1.
Se puede obtener la membrana de la hemocatarsis
basada en polisulfona de la presente invención mediante un proceso
de formación de película húmeda que es una técnica convencional y
comúnmente conocida. Se puede utilizar cualquier membrana así
llamada de fibra hueca en forma de fibra hueca o membrana plana. El
dopante (solución stock para fabricar una membrana) para el uso en
la formación de la película húmeda es un solución que se obtiene
disolviendo y mezclando la polisulfona y el copolímero descrito
anteriormente en un disolvente que disuelve ambos la polisulfona y
el copolímero. El disolvente no está particularmente limitado, sin
embargo, los disolventes tales como
N,N-dimetilacetamida,
N,N-dimetilformamida,
N-etilpirrolidona y dimetilsulfóxido tienen una
elevada solubilidad y se pueden disponer fácilmente y por lo tanto,
se pueden utilizar convenientemente. Entre estos disolventes, el
N,N-dimetilacetamida es el más preferido desde el
punto de vista de solubilidad para la polisulfona, seguridad para el
organismo y coste. Desde luego, se puede utilizar este disolvente
individualmente pero se pueden utilizar en combinación de dos o más
disolventes para ajustar la solubilidad para el polímero.
Con respecto a la concentración de la
polisulfona, si es demasiada baja, la membrana se forma únicamente
con dificultad y la resistencia de la membrana puede ser baja,
mientras que si es demasiado alta se puede empeorar la propiedad de
giro o el tamaño del hueco puede reducirse. De acuerdo con ello, la
concentración de la polisulfonaes es preferiblemente de 12 a 25% en
peso, más preferiblemente de 15 a 20% en peso, y aún más
preferiblemente de 16 a 18% en peso, basada en el dopante. Sin
embargo, la concentración de la polisulfona no está limitada a este
rango y se puede utilizar una concentración más baja o más alta que
este rango de tal modo que se pueda obtener una membrana con las
características deseadas.
El copolímero añadido al dopante está apenas
eluido en el baño de coagulación durante la formación de la película
y por consiguiente no se debe tener en consideración la cantidad
eluida. Se puede añadir el copolímero en una cantidad
correspondiente a la cantidad del copolímero que se pretende que
esté presente en la membrana.
Se puede obtener la membrana plana vertiendo el
dopante descrito anteriormente en un sustrato tal como una placa de
vidrio con la ayuda de una cuchilla tangente (doctor blade) y luego
sumergiendo en un baño de coagulación. Se puede obtener la membrana
de fibra hueca mediante la extrusión del dopante de la parte de la
tobera de hilatura del tubo con orificio, extrusión al mismo tiempo
de la solución de coagulación interna a partir de la parte del
núcleo, después se pasa en el aire y las fibras se sumergen en un
baño de coagulación. Cada solución interna de coagulación y la
solución del baño de coagulación para el uso en la formación de
película es principalmente una solución que comprende un disolvente
pobre de la polisulfona y del polímero, tal como agua o un alcohol.
Sin embrago, para obtener las propiedades descritas anteriormente de
la membrana de fibra hueca, se puede utilizar una mezcla de un
disolvente de polisulfona y un copolímero con agua o un alcohol.
Después de sumergir en un baño de coagulación, se lava la membrana
plana o de fibra hueca, si así se desea, con agua en un baño de
lavado de agua. Se puede eliminar el disolvente no lavado que se
quedó en la membrana obtenida lavando la membrana con agua caliente
o similar. A continuación, si se desea, se puede secar la membrana
después de fijar a ella un agente de retención del tamaño del hueco
tal como la glicerina.
Se puede analizar la cantidad del segmento
hidrofílico o del segmento hidrofóbico contenido en la membrana
basada en polisulfona por NMR (método de espectroscopía de
resonancia magnética nuclear), por ejemplo, a partir del espectro
NMR de protón utilizando un disolvente capaz de disolver o inflar
completamente la membrana. Por ejemplo, en el caso de la membrana de
polisulfona que comprende la unidad repetitiva representada por la
fórmula [IV] y que contiene un copolímero que consiste en un
segmento de polivinilpirrolidona y un segmento de poliestireno, en
el caso en que se usa el cloroformo d_{1} como disolvente para el
análisis, se pueden determinar relativamente las cantidades de la
polisulfona, segmento de polivinilpirrolidona y segmento de
poliestireno, a partir de los picos presentes en el espectro en los
cuales el desplazamiento químico está alrededor de 7,85 (4
protones), 3,2 (2 protones), y/o 3,7 (1 protón), y 6,55 (2
protones), respectivamente. Se puede convertir cada una de estas
cantidades en un partes en peso utilizando la fórmula peso por
unidad. En el caso de que el sistema sea complicado y difícil de
analizar, se pueden analizar fracciones divididas por cromatografía
de permeación en gel (GPC) o cromatografía líquida (LC), una después
de otra, por NMR.
Analizando la composición del dopante para
fabricar la membrana, se eliminan sustancias de bajo peso molecular
tal como un disolvente por evaporación o similar, el polímero
obtenido se granula en polvo y en el caso de que haya el polímero
hidrofílico y/o homopolímero hidrofóbico, éstos se eliminan por
lavado o reprecipitación, y luego se seca el residuo obteniéndose
una muestra de la composición del polímero. Se puede analizar la
composición del polímero finalmente obtenida tal como está descrito
anteriormente utilizando la NMR. Después de fraccionar la
composición del polímero por GPC o LC, se puede también analizar la
composición sometiendo cada fracción al análisis NMR o a un análisis
cuantitativo.
La presente invención se describe en mayor
detalle a continuación refiriéndose a los ejemplos, sin embargo, la
presente invención no debe ser interpretada como limitada a estos
ejemplos.
Los métodos de evaluación utilizados en los
ejemplos están descritos a continuación.
La muestra de toda la sangre ha sido tomada de un
individuo sano utilizando una jeringa que contiene previamente 3.8%
en peso de solución de citrato de sodio (proporción 1 volumen
respecto a 9 volumen de sangre) y se preparó un plasma rico en
plaquetas mediante separación centrífuga. Se añaden al plasma
heparina (concentración final: 10 U/ml) y una solución de cloruro de
calcio (concentración final: 5 mM), se pone en contacto el plasma
resultante con la membrana plana y se deja reposar a 37º durante 1
hora. A continuación, se lavó la membrana con solución salina
fisiológica tamponada con ácido fosfórico y luego se añade una
solución salina fisiológica tamponada con ácido fosfórico que
contiene 0.5% en peso de tritonX®-100 a las plaquetas adheridas
disueltas. Se midió la actividad de la dehidrogenasa del ácido
láctico en la solución obtenida utilizando un kit de medida LDH
(fabricado por Boelinger Manheim) y se evaluó cuantitativamente el
cambio (\Delta ABS) en la absorbancia. Se utiliza el valor
obtenido y convertido en una equivalencia de la unidad de área
(unidad: IU/m^{2}) como un índice para la cantidad de las
plaquetas adheridas.
La muestra de toda la sangre ha sido tomada de un
individuo sano utilizando una jeringa que contiene previamente 3.8%
en peso de solución de ácido cítrico sódico (proporción 1 volumen
respecto a 9 volumen de sangre) y se le añadió heparina
(concentración final: 10 U/ml) y una solución de cloruro de calcio
(concentración final: 5 mM). La sangre resultante se pasa a través
de la fibra hueca a 37º y a una velocidad lineal de 1 cm/s durante
10 minutos. Se lavó el interior de la fibra hueca con solución
salina fisiológica tamponada con ácido fosfórico y se disolvieron
las plaquetas adheridas en una solución salina fisiológica tamponada
con ácido fosfórico que contiene 0,5% en peso del agente activo en
la superficie Triton-X. Se midió la actividad de la
dehidrogenasa de ácido láctico en la solución eluida utilizando un
kit de medida LDH (fabricado por Boelinger Manheim) y se evaluó
cuantitativamente el cambio (\Delta ABS) en la absorbancia. Se
utiliza el valor obtenido y convertido en una equivalencia a la
unidad de área (unidad: IU/m^{2}) como un índice para la cantidad
de las plaquetas adheridas.
Se combinaron la solución del baño de coagulación
utilizada en la fabricación de una membrana y el agua caliente
utilizada en el lavado de la membrana y se sometieron a una
superfraccionación bajo presión reducida utilizando una columna de
fraccionamiento hasta que la cantidad de la viscosidad de la
solución llega a 500 pma.s (temperatura de medida: 25º), de este
modo se recuperó el disolvente utilizado en el dopante y en la
solución de coagulación. A partir de la cantidad del disolvente
recuperado y de la cantidad del disolvente utilizado (suma de la
cantidad del disolvente en el dopante utilizado y la cantidad del
disolvente en la solución de coagulación utilizada), se obtuvo el
porcentaje del disolvente recuperado (%).
Se seca completamente la membrana y se disuelve
en cloroformo d_{1} y se mide la NMR de la solución obtenida. Se
determinan relativamente las cantidades de polisulfona, segmento de
polivinilpirrolidona y segmento de poliestireno a partir de los
picos en el espectro cuando el desplazamiento químico está alrededor
de 7,85 (4 protones), 3,2 y 3,7 (3 protones en total) y 6,55 (2
protones) respectivamente. Cada una de estas cantidades se convierte
en partes en peso utilizando la fórmula peso por unidad. Se obtiene
la proporción de la unidad monomérica A/B de (A) segmento de
polivinilpirrolidona respecto a (B) segmento de poliestireno
mediante la determinación relativa de los valores.
Se seca completamente la membrana y se determinan
las proporciones de la abundancia del nitrógeno originado a partir
de la unidad de vinilpirrolidona y del azufre originado en el
polímero de polisulfona sobre la superficie de la membrana, por ESCA
(espectroscopía de electrón para análisis químico). Similarmente, se
determinan por ESCA la proporción de la abundancia del nitrógeno
originado en la membrana de polivinilpirrolidona y la proporción de
abundancia de azufre originado en la membrana de polisulfona sin
aditivos. A partir de las proporciones de abundancia obtenidas, se
determinan la proporción de recubrimiento (X %) de la unidad de
vinilpirrolidona y la proporción de la exposición (Y %) de la
polisulfona en la superficie de la membrana de acuerdo con las
siguientes ecuaciones (1) y (2):
Ecuación
(1)
Proporción de recubrimiento (X %) de la unidad de
vinilpirrolidona = (proporción de abundancia de nitrógeno en la
superficie de la membrana/proporción de abundancia de nitrógeno en
la película de polivinilpirrolidona) x 100 (%)
Ecuación
(2)
Proporción de exposición (Y %) de la polisulfona
= (proporción de abundancia de azufre sobre la superficie de la
membrana/proporción de abundancia de azufre en la membrana de la
polisulfona sin aditivos) x 100 (%)
A partir de la proporción de exposición (Y %) de
la polisulfona y de la proporción de recubrimiento (X %) de la
unidad de vinilpirrolidona obtenidas mediante el método descrito en
el método de la evaluación (5), se determinan la proporción de la
unidad monomérica (U = B'/A') entre la unidad estireno (B') y la
unidad de vinilpirrolidona (A') presentes en la superficie de la
membrana, de acuerdo con la siguiente ecuación (3). Adicionalmente,
se determinan la proporción de la unidad monomérica (V = B/A) entre
la unidad estireno (B) y la unidad de vinilpirrolidona (A) presentes
en toda la membrana mediante el método descrito en el método de
evaluación (4). Además, de acuerdo con la siguiente ecuación (4), se
divide el valor obtenido por sustracción de la proporción de la
unidad monomérica (U = B'/A') entre la unidad de estireno (B') y la
unidad de vinilpirrolidona (A') presentes en la superficie de la
membrana a partir de la proporción de la unidad monomérica (V = B/A)
entre la unidad de estireno (B) y la unidad de vinilpirrolidona (A)
presentes en toda la membrana, por la proporción de la unidad
monomérica (V = B/A) entre la unidad de estireno (B) y la unidad de
vinilpirrolidona (A) presentes en toda la membrana, para obtener un
valor (W, decremento del segmento hidrofóbico en la superficie de la
membrana).
Ecuación
(3)
U =
(100-X-Y)/X
Ecuación
(4)
W = V-U/V
Se cargan 15 partes en peso del macromonómero de
estireno (AS-6®, producido por Toa Gosei KK, peso
molecular obtenido por GPC en el pico superior: 14.000 daltones), 85
partes en peso de N-vinilpirrolidona, 0,2 partes en
peso de azobisisobutironitrilo y 100 partes en peso de
dimetilacetamida en un frasco de color marrón y se mezcla hasta la
disolución, agitándolo con un agitador de rotor. Se transfiere la
solución mezclada obtenida a una ampolla de cristal y la ampolla se
desoxigena en frío al vacío y luego se sella la ampolla.
Se calienta la solución mezclada en la ampolla en
un baño de agua a temperatura constante de 60º durante 8 horas para
llevar a cabo la polimerización. A partir de la solución resultante,
se elimina el disolvente por calentamiento al vacío y se granula el
material sólido obtenido en un polvo fino. Se lava el polvo fino
obtenido con ciclohexano en un extractor de Soxhlet, se seca y luego
se lava con metanol en un extractor de Soxhlet para eliminar por
extracción el macrómero de estireno que no ha reaccionado, los
subproductos de polivinilpirrolidona y similares. Se seca
completamente el residuo en un secador de vacío para obtener el
polímero de injerto en forma de polvo fino de color blanco. El
polímero de injerto obtenido tiene la proporción de la unidad
monomérica (A/B) de (A) segmento de polivinilpirrolidona respecto a
(B) segmento de poliestireno de 2,3 y un peso molecular obtenido por
GPC en el pico de 2,1 x 10^{5} daltones. Como consecuencia, se
prepara el dopante que comprende 18 partes en peso de polisulfona
(UDEL P-1700® (marca registrada), producido por
Teijin Acomo Engineering Plastics KK) y que comprende la unidad
repetitiva de la fórmula [VI] y 79 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida por 3 partes en peso del
copolímero de injerto obtenido anteriormente. Se vierte la dosis
obtenida en un plato de vidrio con la ayuda de una cuchilla
tangente, se sumerge en un baño de agua ajustado a una temperatura
de 40º para llevar a cabo la separación de la fase y luego se lava
tres veces con agua caliente a 70º durante una hora, intercambiando
el agua caliente. Como resultado, se obtiene la membrana plana A. La
membrana plana A está sujeta a una evaluación cuantitativa de las
plaquetas adheridas, y el resultado está presentado en la tabla 1
como un valor relativo de la actividad de la dehidrogenasa de ácido
láctico por unidad del área de la membrana, que es un índice de la
cantidad de las plaquetas adheridas en la membrana de polisulfona,
en el ejemplo comparativo 1 tomado como 100. La cantidad del
copolímero de injerto que se quedó en la membrana y que se calculó a
partir del contenido del copolímero de injerto de la membrana plana
determinado por análisis NMR, y la cantidad del copolímero de
injerto añadido al dopante, está presentada también en la tabla 1
junto con la composición del polímero de injerto (A/B) en la
membrana. Adicionalmente, la composición de la superficie de la
membrana (la proporción de la exposición del polímero de polisulfona
y la proporción del recubrimiento de la unidad de vinilpirrolidona)
determinada por ESCA se presenta en la tabla 6, y el decremento del
segmento hidrofóbico en la superficie de la membrana determinado por
ESCA y análisis de NMR está presentado en la tabla 7.
Se prepara la membrana plana B del mismo modo que
en el ejemplo 1 excepto por el uso de una composición del dopante
que comprende 1 parte en peso del copolímero de injerto, 18 partes
en peso de la polisulfona y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. Del mismo modo que en el
ejemplo 1, se evalúa la membrana plana B midiendo la cantidad de las
plaquetas adheridas, la cantidad residual del copolímero de injerto,
la composición del polímero de injerto en la membrana, la
composición de la superficie de la membrana y el decremento del
segmento hidrofóbico en la superficie de la membrana. Los resultados
obtenidos están presentados en las tablas 1, 6 y 7.
Ejemplo comparativo
1
Se prepara la membrana plana C del mismo modo que
en el ejemplo 1 excepto por no usar el copolímero de injerto y
utilizando una composición del dopante que comprende 18 partes en
peso de polisulfona y 82 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. Se evalúa la membrana plana C
midiendo la cantidad de las plaquetas adheridas, y se toma como 100
la actividad de la dehidrogenasa del ácido láctico por área de la
unidad de la membrana obtenida.
Ejemplo comparativo
2
Se prepara la membrana plana D del mismo modo que
en el ejemplo 2 excepto por el uso de una composición del dopante
que comprende 1 parte en peso de polivinilpirrolidona
(K-90®, producido por ISP Japón KK), 18 partes en
peso de polisulfona y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. Se evalúa la cantidad de las
plaquetas adheridas del mismo modo que en el ejemplo 1, y se evalúa
la cantidad de polivinilpirrolidona que permanece en la membrana por
NMR del mismo modo que en el ejemplo 1. Los resultados están
presentados en la tabla 1.
Ejemplo comparativo
3
Se prepara la membrana plana E del mismo modo que
en el ejemplo 2 excepto por el uso de una composición del dopante
que comprende 5 partes en peso de polivinilpirrolidona
(K-90®), 18 partes en peso de polisulfona y 77
partes en peso de N,N-dimetilacetamida. Se evalúa la
cantidad de las plaquetas adheridas del mismo modo que en el ejemplo
1, y se evalúa la cantidad de polivinilpirrolidona que permanece en
la membrana por NMR del mismo modo que en el ejemplo 1. Los
resultados están presentados en la tabla 1.
Se prepara el copolímero de injerto del mismo
modo que en el ejemplo 1 excepto por el uso de 13 partes en peso del
macromonómero de estireno, 87 partes en peso de
N-vinilpirrolidona y 0,15 partes en peso de
azobisisobutironitrilo. El copolímero obtenido tiene la proporción
de la unidad monomérica (A/B) de (A) segmento de
polivinilpirrolidona respecto a (B) segmento de poliestireno de 2,5
y un peso molecular obtenido por GPC en el pico de 3,8 x 10^{5}
daltones.
Posteriormente, se hace girar la fibra hueca,
utilizando este copolímero de injerto, como se describe a
continuación. Se prepara un dopante que comprende 18 partes en peso
de polisulfona (UDEL P-1700®) y 79 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida por 3 partes en peso del
copolímero de injerto obtenido anteriormente. Se gira el dopante
alrededor de la fibra hueca cuyo diámetro interno es de 200 \mum,
y diámetro externo es de 290 \mum utilizando una solución acuosa
de N,N-dimetilacetamida a 40% como solución de
coagulación interna y agua como solución de coagulación externa. Se
lava la fibra hueca A, tomando una muestra inmediatamente después de
sacarla fuera del baño de coagulación, ocho veces con agua caliente
a 90º durante 20 minutos. Se toma una muestra de la fibra hueca en
cada lavado y se determina la cantidad del copolímero de injerto que
se quedó en la fibra hueca por NMR del mismo modo que en el ejemplo
1. El resultado obtenido está presentado en la tabla 2.
A partir de las soluciones de coagulación y del
agua caliente utilizadas en el lavado de la fibra hueca, se recupera
el disolvente y se determina el porcentaje del disolvente
recuperado. El resultado está presentado en la tabla 3.
Ejemplo comparativo
4
Se hace girar la fibra hueca del mismo modo que
en el ejemplo 3 excepto por el uso de un dopante que comprende 5
partes en peso de polivinilpirrolidona (K-90®), 18
partes en peso de polisulfona y 77 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. Se determina la fibra hueca B,
tomando una muestra inmediatamente después de sacarla fuera del baño
de coagulación, mediante la cantidad de polivinilpirrolidona que se
quedó en la fibra hueca durante el proceso de lavado del mismo modo
que en el ejemplo 3. El resultado obtenido está presentado en la
tabla 2.
A partir de las soluciones de coagulación y del
agua caliente utilizadas en el lavado de la fibra hueca, se recupera
el disolvente y se determina el porcentaje del disolvente
recuperado. El resultado está presentado en la tabla 3.
Se evalúa la fibra hueca (fibra hueca A') después
del lavado con agua caliente (90º, 20 minutos, 8 veces) de la fibra
hueca A obtenida en el ejemplo 3 midiendo la cantidad de las
plaquetas adheridas. El valor relativo de la actividad de la
hidrogenasa del ácido láctico por unidad de área, que es un índice
para medir la cantidad de plaquetas adheridas en la fibra hueca de
la polisulfona, en el ejemplo comparativo 5, tomado como 100 está
presentado en la tabla 4.
Ejemplo comparativo
5
Se hace girar una fibra hueca (fibra hueca C) del
mismo modo que en el ejemplo 3 excepto por el uso de un dopante que
comprende 1 parte en peso de polivinilpirrolidona
(K-90®), 18 partes en peso de polisulfona y 81
partes en peso de N,N-dimetilacetamida. Se evalúa la
fibra hueca C después del lavado con agua caliente (90º, 20 minutos,
8 veces) midiendo la cantidad de las plaquetas adheridas y se toma
como 100 la actividad de la dehidrogenasa del ácido láctico por
unidad de área en la superficie interna de la fibra hueca C.
Se hace girar una fibra hueca (fibra hueca D) del
mismo modo que en el ejemplo 3 excepto por el uso de un dopante que
comprende 1 parte en peso del copolímero de injerto, 18 partes en
peso de polisulfona y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. Se evalúa la fibra hueca D
después del lavado con agua caliente (90º, 20 minutos, 8 veces)
midiendo la cantidad de las plaquetas adheridas. El valor relativo a
la actividad de la dehidrogenasa del ácido láctico por unidad de
área, que es un índice de la cantidad de las plaquetas adheridas en
la fibra hueca de la polisulfona, en el ejemplo comparativo 5 tomado
como 100, está presentado en la tabla 4.
Se prepara un copolímero de injerto del mismo
modo que en el ejemplo 1 excepto por el uso de 20 partes en peso del
macromonómero del estireno, 80 partes en peso de
N-vinilpirrolidona y 0,10 partes en peso de
azobisisobutironitrilo. El copolímero de injerto obtenido tiene una
proporción de la unidad monomérica (A/B) de (A) segmento de
polivinilpirrolidona respecto a (B) segmento de poliestireno de 1,8
y un peso molecular obtenido por GPC en el pico de 7,9 x 10^{5}
daltones. Posteriormente, se prepara un dopante que comprende 18
partes en peso de polisulfona (UDEL P-1700®) y 79
partes en peso de N,N-dimetilacetamida por 3 partes
en peso del copolímero de injerto obtenido anteriormente. Se vierte
el dopante obtenido en una placa de vidrio con la ayuda de una
cuchilla tangente, se sumerge en un baño de agua ajustado a la
temperatura de 40º para completar la fase de la separación, y luego
se lava tres veces con agua caliente a 70º durante una hora
cambiando el agua caliente. Como resultado, se obtiene la membrana
plana F. Dicha membrana F está sujeta a la evaluación cuantitativa
de las plaquetas adheridas. El valor relativo de la actividad de
dehidrogenasa de ácido láctico por la unidad de área de la membrana,
que es un índice de la cantidad de las plaquetas adheridas a la
membrana de polisulfona, en el ejemplo comparativo 6 tomado como
100, y el contenido del copolímero de injerto (partes en peso) de la
membrana plana por 100 partes en peso de la polisulfona determinado
por análisis de NMR están presentados en la tabla 5.
Se fabrica la membrana plana G del mismo modo que
en el ejemplo 6 excepto por el uso de un dopante que comprende 1
parte en peso del copolímero de injerto, 18 partes en peso de
polisulfona y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. La actividad de dehidrogenasa
de ácido láctico y el contenido del copolímero de injerto
determinado del mismo modo que en el ejemplo 6 están presentados en
la tabla 5.
Se fabrica la membrana plana H del mismo modo que
en el ejemplo 6 excepto por el uso de un dopante que comprende 0,5
partes en peso del copolímero de injerto, 18 partes en peso de
polisulfona y 81,5 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. La actividad de dehidrogenasa
de ácido láctico y el contenido del copolímero de injerto
determinado del mismo modo que en el ejemplo 6 están presentados en
la tabla 5.
Se fabrica la membrana plana I del mismo modo que
en el ejemplo 6 excepto por el uso de un dopante que comprende 0,2
partes en peso del copolímero de injerto, 18 partes en peso de
polisulfona y 81,8 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida. La actividad de dehidrogenasa
de ácido láctico y el contenido del copolímero de injerto
determinado por el mismo modo que en el ejemplo 6 están presentados
en la tabla 5.
Se cargan 100 partes del estireno deshidratado y
500 partes de tetrahidrofurano deshidratado en un matraz y se le
añaden 1,4 partes de 1,6 mol/l de n-butil litio
manteniendo la temperatura a –20º con agitación y bajo atmósfera de
nitrógeno. Después de agitar la mezcla durante 8 horas, se
transfiere la solución de la reacción a un matraz que contiene nieve
carbónica y se agita. A continuación, se vierte la solución en una
gran cantidad de solución de ácido clorhídrico en metanol y luego se
obtiene un precipitado blanco. Se separa el precipitado por
filtración, se lava con agua y se seca bajo calentamiento al vacío
obteniéndose un polímero de estireno que tiene un grupo terminal
carboxilo en forma de un material sólido de color blanco. Se ponen
en un matraz 40 partes en peso del material sólido obtenido, 60
partes en peso de polivinilpirrolidona (K-60®, ISP
Japón KK), 0,2 partes en peso de dimetilaminopiridina y 400 partes
en peso de cloroformo purificado y se mezcla la disolución mediante
agitación. Luego, se añade a la mezcla de la disolución 0,25 partes
en peso de diciclohexilcarbodiimida y se agita la mezcla de la
disolución durante 6 horas. De la solución resultante, se elimina el
disolvente por calentamiento al vacío y a continuación se obtiene un
material sólido de color blanco. Se granula el material sólido en un
polvo fino. Se lava el polvo fino obtenido con tolueno en un
extractor de Soxhlet, se seca y se lava con metanol en un extractor
de Soxhlet. Después, se seca completamente el polvo fino en un
desecador de vacío obteniéndose un copolímero en bloque en forma de
un polvo fino de color blanco. El copolímero en bloque obtenido
tiene una proporción de la unidad monomérica (A/B) de (A) segmento
de polivinilpirrolidona respecto a (B) segmento de poliestireno de
2,2 y un peso molecular obtenido por GPC en el pico máximo de
270.000 daltones. Posteriormente, se prepara la membrana plana J del
mismo modo que en el ejemplo 6 excepto en el uso del dopante que
comprende 18 partes en peso de polisulfona (UDEL
P-1700®) y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida por 1 parte en peso del
copolímero obtenido anteriormente. La actividad de dehidrogenasa de
ácido láctico y el contenido del copolímero de injerto determinado
del mismo modo que en el ejemplo 6 están presentados en la tabla
5.
Ejemplo comparativo
6
Se evalúa la membrana plana C obtenida en el
ejemplo comparativo 1 midiendo la cantidad de las plaquetas
adheridas simultáneamente respecto a las membranas planas obtenidas
en los ejemplos 6 a 9. La actividad de dehidrogenasa de ácido
láctico por el área de la unidad de la membrana determinada para la
membrana plana C está tomada como 100.
Se prepara el copolímero de injerto del mismo
modo que en el ejemplo 1 excepto por el uso de 40 partes en peso del
macromonómero de estireno, 60 partes en peso de
N-vinilpirrolidona y 0,25 partes en peso de
azobisisobutironitrilo. El copolímero de injerto obtenido tiene una
proporción de la unidad monomérica (A/B) de (A) segmento de
polivinilpirrolidona respecto a (B) segmento de poliestireno de 0,9
y un peso molecular obtenido por GPC en el pico de 2,5 x 10^{5}
daltones. Posteriormente, se prepara un dopante que comprende 18
partes en peso de polisulfona (UDEL P-1700®) y 81,5
partes en peso de N,N-dimetilacetamida por 0,5
partes en peso del copolímero de injerto obtenido anteriormente. Se
vierte el dopante obtenido en una placa de vidrio con la ayuda de
una cuchilla tangente, se sumerge en un baño de agua ajustado a una
temperatura de 40º para llevar a cabo la separación de fase y se
lava tres veces con agua caliente a 70º durante una hora
intercambiando el agua caliente. Como resultado, se obtiene la
membrana plana K. Se evalúa la membrana plana K midiendo la
composición de la superficie de la membrana y el decremento del
segmento hidrofóbico en la superficie de la membrana del mismo modo
que en el ejemplo 1. Los resultados están presentados en las tablas
6 y 7.
Ejemplo comparativo
7
Se concentra una emulsión de un copolímero
aleatorio de
N-vinilpirrolidona-estireno
(ANTARA430®, producido por ISP) y se seca para que se solidifique.
Como resultado, se obtiene el copolímero aleatorio de
N-vinilpirrolidona-estireno. Luego
se fabrica la membrana plana L del mismo modo que en el ejemplo 2
excepto en el uso de un dopante que comprende 18 partes en peso de
polisulfona (UDEL P-1700®) y 81 partes en peso de
N,N-dimetilacetamida por 1 parte en peso del
copolímero aleatorio obtenido anteriormente. Se evalúa la membrana
plana L midiendo la composición de la superficie de la membrana y el
decremento del segmento hidrofóbico en la superficie de la membrana
del mismo modo que en el ejemplo 1. Los resultados están presentados
en las tablas 6 y 7.
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|c|c|c|c|c|}\hline \+ Membrana \+ Cantidad de \+ Proporción del \+ \\ \+ \+ plaquetas \+ copolímero que \+ A/B \\ \+ \+ adheridas \+ permanece en la \+ \\ \+ \+ \+ membrana (%) \+ \\\hline Ejemplo 1 \+ Membrana \+ \+ \+ \\ \+ plana A \+ 23 \pm 6 \+ 96 \+ 2,3 \\\hline Ejemplo 2 \+ Membrana \+ \+ \+ \\ \+ plana B \+ 36 \pm 16 \+ 97 \+ 2,4 \\\hline Ejemplo \+ Membrana \+ \+ \+ \\ comparativo 1 \+ plana C \+ 100 \pm 29 \+ - \+ - \\\hline Ejemplo \+ Membrana \+ \+ \+ \\ comparativo 2 \+ plana D \+ 51 \pm 19 \+ 48 \+ - \\\hline Ejemplo \+ Membrana \+ \+ \+ \\ comparativo 3 \+ plana E \+ 27 \pm 12 \+ 45 \+ - \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
La desviación estándar SD de la cantidad de
plaquetas adheridas es un valor obtenido a partir de 5 puntos de
medida.
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|c|c|c|}\hline Número de veces del \+ Ejemplo 3 \+ Ejemplo comparativo 4 \\ lavado \+ (fibra hueca A) \+ (fibra hueca B) \\\hline 0 \+ 96 \+ 62 \\\hline 1 \+ 97 \+ 51 \\\hline 2 \+ 97 \+ 47 \\\hline 3 \+ 96 \+ 45 \\\hline 4 \+ 98 \+ 44 \\\hline 5 \+ 96 \+ 46 \\\hline 6 \+ 96 \+ 45 \\\hline 7 \+ 97 \+ 45 \\\hline 8 \+ 96 \+ 45 \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|}\hline \+ Recuperación del disolvente \\\hline Ejemplo 3 \+ 96% \\\hline Ejemplo comparativo 4 \+ 78% \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|}\hline Fibra hueca \+ Cantidad de plaquetas adheridas \\\hline Ejemplo 4 (fibra hueca A') \+ 30 \pm 6 \\\hline Ejemplo 5 (fibra hueca D) \+ 66 \pm 19 \\\hline Ejemplo comparativo 5 \+ 100 \pm 15 \\ (fibra hueca C) \+ \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
La desviación estándar SD de la cantidad de
plaquetas adheridas es un valor obtenido a partir de 5 puntos de
medida.
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|l|c|c|}\hline \+ \+ \+ Cantidad de copolímero \\ \+ \+ Cantidad de \+ de injerto o cantidad \\ \+\multicolumn{1}{|c|}{Membrana }\+ plaquetas \+ de copolímero en \\ \+ \+ adheridas \+ bloque \\\hline Ejemplo 6 \+ Membrana plana \+ 10 \pm 3 \+ 16 partes en peso \\ \+ F \+ \+ \\\hline Ejemplo 7 \+ Membrana plana \+ 27 \pm 8 \+ 5,3 partes en peso \\ \+ G \+ \+ \\\hline Ejemplo 8 \+ Membrana plana \+ 56 \pm 16 \+ 2,7 partes en peso \\ \+ H \+ \+ \\\hline Ejemplo 9 \+ Membrana plana \+ 50 \pm 3 \+ 1,1 partes en peso \\ \+ I \+ \+ \\\hline Ejemplo 10 \+ Membrana plana \+ 31 \pm 7 \+ 5,4 partes en peso \\ \+ J \+ \+ \\\hline Ejemplo \+ Membrana plana \+ 100 \pm 9 \+ 0 partes en peso \\ Comparativo 10 \+ C \+ \+ \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
La desviación estándar SD de la cantidad de
plaquetas adheridas es un valor obtenido a partir de 5 puntos de
medida.
La cantidad del copolímero de injerto y la
cantidad del copolímero en bloque son los partes en peso del
copolímero de injerto y los partes en peso del copolímero en bloque,
respectivamente, cuando la cantidad de la polisulfona en la membrana
plana está tomada como 100 partes en peso.
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|c|}\hline \+ Proporción de recubrimiento (X) \+ Proporción de \\ \+ de la unidad vinilpirrolidona \+ exposición (Y) de \\ \+ % \+ polisulfona (%) \\\hline Ejemplo 1 \+ 43,2 \+ 56,3 \\\hline Ejemplo 2 \+ 34,5 \+ 64,3 \\\hline Ejemplo 11 \+ 18,2 \+ 73,7 \\\hline Ejemplo \+ 15,5 \+ 49,0 \\ comparativo 7 \+ \+ \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
\nobreak\vskip.5\baselineskip\centering\begin{tabular}{|l|c|}\hline \+ Decremento del segmento hidrofóbico en la \\ \+ superficie de la membrana \\\hline Ejemplo 1 \+ 0,97 \\\hline Ejemplo 2 \+ 0,92 \\\hline Ejemplo 11 \+ 0,60 \\\hline Ejemplo comparativo 7 \+ 0,02 \\\hline\end{tabular}\par\vskip.5\baselineskip
La membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre de la presente invención tiene una excelente
compatibilidad con la sangre y es útil como membrana para la
purificación de la sangre, tal como para la hemodiálisis y para la
hemofiltración.
La membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre de la presente invención utiliza un copolímero de
injerto hidrofóbico y/o un copolímero en bloque que contiene una
cantidad apropiada de un componente hidrofóbico con una molécula
como un aditivo compatible con la sangre y por lo tanto, el aditivo
tiene una fuerte afinidad para la resina de polisulfona y que no se
eluye fácilmente incluso cuando la membrana está en contacto con
agua de lavado, agua de imprimación o similar. Debido a esto, la
membrana de la presente invención puede producirse por un proceso
simplificado en la etapa del lavado con agua y se puede aumentar la
eficiencia de la recuperación del disolvente. Adicionalmente, se
puede producir la membrana por un proceso que prescinde de trabajar
para prevenir la elución del polímero, tal como el tratamiento de
reticulación.
Claims (17)
1. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre que comprende un copolímero de injerto y/o copolímero
en bloque que consiste en (A) un segmento hidrofílico y (B) un
segmento hidrofóbico en la que el segmento hidrofóbico no es la
polisulfona, siendo la proporción de la unidad monomérica (A/B) de A
respecto a B de 0,5 a 5, y siendo el total de A y B de 0,5 a 30
partes en peso por 100 partes de la polisulfona en la membrana
entera.
2. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que el segmento
hidrofílico y el segmento hidrofóbico forman un copolímero de
injerto.
3. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que el segmento
hidrofílico y el segmento hidrofóbico (exclusivo de polisulfona)
forman un copolímero en bloque.
4. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que el segmento
hidrofílico es un segmento de polivinilpirrolidona.
5. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que el segmento
hidrofóbico es un segmento de poliestireno.
6. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que la proporción de
la unidad monomérica (A/B) del segmento hidrofílico (A) respecto al
segmento hidrofóbico (B) es de 1 a 4.
7. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que la proporción de
la unidad monomérica (A/B) del segmento hidrofílico (A) respecto al
segmento hidrofóbico (B) es de 1,2 a 3.
8. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que el total del
segmento hidrofílico (A) y del segmento hidrofóbico (B) es de 3 a 25
partes en peso por 100 partes en peso de la polisulfona en la
membrana entera.
9. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 8, en la que el total del
segmento hidrofílico (A) y del segmento hidrofóbico (B) es de 6 a 20
partes en peso por 100 partes en peso de la polisulfona en la
membrana entera.
10. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 1, en la que la proporción de
la unidad monomérica (U = B'/A') del segmento hidrofóbico (B')
respecto al segmento hidrofílico (A') medida en la superficie de la
membrana es más baja que la proporción de la unidad monomérica (V =
B/A) del segmento hidrofóbico (B) respecto al segmento hidrofílico
(A) presente en la membrana entera.
11. Membrana de polisulfona para la purificación
de la sangre, según la reivindicación 10, en la que el valor (W)
obtenido por la división de un valor que resulta de la sustracción
de la proporción de la unidad monomérica (U = B'/A') del segmento
hidrofóbico (B') respecto al segmento hidrofílico (A') medida en la
superficie de la membrana, sobre la proporción de la unidad
monomérica (V = B/A) del segmento hidrofóbico (B) respecto al
segmento hidrofílico (A) presente en la membrana entera, por la
proporción de la unidad monomérica (V = B/A) del segmento
hidrofóbico (B) respecto al segmento hidrofílico (A) presente en la
membrana entera es de 0,3 a 1.
12. Proceso para la producción de una membrana
basada en polisulfona para la purificación de la sangre, que
comprende disolver la polisulfona y un copolímero de injerto y/o
copolímero en bloque que consiste en (A) un segmento hidrofílico y
(B) un segmento hidrofóbico, en el que el segmento hidrofóbico no es
polisulfona, una cantidad total de 0,5 a 30 partes en peso por 100
partes en peso de polisulfona, siendo la proporción de la unidad
monomérica (A/B) del segmento A respecto al segmento B de 0,5 a 5,
en un disolvente seleccionado del grupo que consiste en
N,N-dimetilacetamida,
N,N-dimetilformamida,
N-etil-pirrolidona y
dimetilsulfóxido o una mezcla de ello para obtener una
concentración de polisulfona de 12 a 25% basada en el dopante
preparado, convertir la película de la solución del dopante en una
membrana plana o fibra hueca, poner en contacto la membrana plana o
fibra hueca formada con una solución de coagulación que comprende
agua o un alcohol o una mezcla de solución de un disolvente para la
polisulfona y el copolímero en agua o un alcohol, eliminar el
disolvente y lavar el residuo.
13. Proceso para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre, según la
reivindicación 12, en el que el segmento hidrofílico y el segmento
hidrofóbico forman un copolímero de injerto.
14. Proceso para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre, según la
reivindicación 12, en el que el segmento hidrofílico y el segmento
hidrofóbico forman un copolímero en bloque.
15. Proceso para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre, según la
reivindicación 12, en el que el segmento hidrofílico es un segmento
polivinilpirrolidona.
16. Proceso para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre, según la
reivindicación 12, en el que el segmento hidrofóbico es un segmento
poliestireno.
17. Proceso para la producción de una membrana de
polisulfona para la purificación de la sangre, según la
reivindicación 12, en el que el segmento hidrofílico es un segmento
polivinilpirrolidona y el segmento hidrofóbico es un segmento
poliestireno.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP28633295 | 1995-10-09 | ||
JP28633295 | 1995-10-09 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2197249T3 true ES2197249T3 (es) | 2004-01-01 |
Family
ID=17703020
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES96933609T Expired - Lifetime ES2197249T3 (es) | 1995-10-09 | 1996-10-09 | Membrana de polisulfona para la purificacion de la sangre. |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6113785A (es) |
EP (1) | EP0856352B1 (es) |
DE (1) | DE69629042T2 (es) |
ES (1) | ES2197249T3 (es) |
WO (1) | WO1997013575A1 (es) |
Families Citing this family (35)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU2001241085A1 (en) * | 2000-03-10 | 2001-09-17 | Asahi Medical Co. Ltd. | Novel leukapheretic filter |
DE60236696D1 (de) * | 2001-04-27 | 2010-07-22 | Millipore Corp | Neue beschichtete Membranen und andere Artikel |
US7721898B2 (en) * | 2001-07-31 | 2010-05-25 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Coating material for leukocyte removal filter and the filter |
DE10217440A1 (de) * | 2002-04-18 | 2003-11-06 | Basf Ag | Verwendung hydrophob modifizierter Copolymere auf Basis von N-Vinylmonomeren zur Herstellung von Membranen |
KR100593816B1 (ko) * | 2002-11-27 | 2006-06-28 | 중앙대학교 산학협력단 | 폴리술폰계 폴리머와 친수성 코폴리머를 포함하는 단일상블렌드로 이루어진 친수성 폴리머막 |
JP3642065B1 (ja) * | 2004-03-22 | 2005-04-27 | 東洋紡績株式会社 | 選択透過性分離膜および選択透過性分離膜の製造方法 |
JP3636199B1 (ja) * | 2004-03-23 | 2005-04-06 | 東洋紡績株式会社 | ポリスルホン系選択透過性中空糸膜束とその製造方法および血液浄化器 |
JP5420836B2 (ja) * | 2005-08-09 | 2014-02-19 | 旭化成株式会社 | 親水化剤によって親水化された芳香族エーテル系高分子からなる液体処理分離膜 |
DE102006045282C5 (de) * | 2006-09-22 | 2012-11-22 | Helmholtz-Zentrum Geesthacht Zentrum für Material-und Küstenforschung GmbH | Isoporöse Membran und Verfahren zu ihrer Herstellung |
US20080135481A1 (en) * | 2006-12-06 | 2008-06-12 | General Electric Company | Polyarylethernitrile hollow fiber membranes |
US7977451B2 (en) * | 2006-12-15 | 2011-07-12 | General Electric Company | Polyarylether membranes |
US7669720B2 (en) * | 2006-12-15 | 2010-03-02 | General Electric Company | Functional polyarylethers |
US20110168631A1 (en) * | 2006-12-15 | 2011-07-14 | General Electric Company | Methods and apparatuses for water filtration using polyarylether membranes |
US7695628B2 (en) * | 2006-12-15 | 2010-04-13 | General Electric Company | Polyarylether membranes |
JP5714852B2 (ja) * | 2009-09-01 | 2015-05-07 | 東レ株式会社 | 分離膜および分離膜モジュール並びに分離膜の製造方法および分離膜モジュールの製造方法 |
US8753515B2 (en) | 2009-12-05 | 2014-06-17 | Home Dialysis Plus, Ltd. | Dialysis system with ultrafiltration control |
EP2365022B1 (en) | 2010-03-11 | 2012-10-03 | Gambro Lundia AB | Process for preparing graft copolymers by reactive blending |
US8939294B2 (en) | 2010-03-31 | 2015-01-27 | General Electric Company | Block copolymer membranes and associated methods for making the same |
US8501009B2 (en) | 2010-06-07 | 2013-08-06 | State Of Oregon Acting By And Through The State Board Of Higher Education On Behalf Of Oregon State University | Fluid purification system |
WO2012035402A1 (en) * | 2010-09-14 | 2012-03-22 | Council Of Scientific & Industrial Research | High flux hollow fiber ultrafiltration membranes and process for the preparation thereof |
EP2567750B1 (en) * | 2011-09-08 | 2014-12-24 | Gambro Lundia AB | Hollow fiber membrane |
AU2012318561B2 (en) | 2011-10-07 | 2017-04-20 | Outset Medical, Inc. | Heat exchange fluid purification for dialysis system |
WO2015075178A1 (en) * | 2013-11-22 | 2015-05-28 | Basf Se | Polymeric antifouling additives for membranes |
CN103706266B (zh) * | 2013-12-12 | 2016-01-27 | 四川大学 | 原位聚合微交联聚乙烯吡咯烷酮改性聚醚砜中空纤维膜及其制备方法和用途 |
EP3838308A1 (en) | 2014-04-29 | 2021-06-23 | Outset Medical, Inc. | Dialysis system and methods |
EP3137200A1 (en) * | 2014-05-01 | 2017-03-08 | SABIC Global Technologies B.V. | Composite membrane with support comprising poly(phenylene ether) and amphilphilic polymer; method of making; and separation module thereof |
CN105435659B (zh) * | 2014-09-02 | 2018-06-12 | 中国科学院上海高等研究院 | 一种耐酸碱、耐有机溶剂的隔膜材料及其制备方法和应用 |
US9724649B2 (en) | 2015-06-25 | 2017-08-08 | Pall Corporation | Self-wetting porous membranes (I) |
US10239023B2 (en) * | 2015-06-25 | 2019-03-26 | Pall Corporation | Self-wetting porous membranes (II) |
CN106466562B (zh) * | 2015-08-21 | 2018-10-23 | 江苏朗生生命科技有限公司 | 抗凝血血液透析膜的制备方法 |
JP7025408B2 (ja) | 2016-08-19 | 2022-02-24 | アウトセット・メディカル・インコーポレイテッド | 腹膜透析システム及び方法 |
WO2019014400A1 (en) | 2017-07-14 | 2019-01-17 | Fresenius Medical Care Holdings, Inc. | PROCESS FOR OBTAINING SURFACE MODIFICATION COMPOSITION WITH ENHANCED BY-PRODUCT REMOVAL |
CN112588125B (zh) * | 2020-12-08 | 2022-05-27 | 中南大学湘雅医院 | 表面改性聚砜/聚醚砜膜及其制备方法 |
CN114522546B (zh) * | 2022-02-24 | 2022-11-29 | 泰州南潇新材料科技有限公司 | 一种高亲水聚砜超滤膜及其制备方法 |
CN117209762A (zh) * | 2023-10-30 | 2023-12-12 | 金发科技股份有限公司 | 一种砜聚合物及其提纯方法 |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5750506A (en) * | 1980-09-11 | 1982-03-25 | Mitsubishi Rayon Co Ltd | Polysulfone semipermeable membrane and its production |
JPS60206404A (ja) * | 1984-03-30 | 1985-10-18 | Nitto Electric Ind Co Ltd | 選択性透過膜及びその製造方法 |
JPH0628713B2 (ja) * | 1986-02-28 | 1994-04-20 | ダイセル化学工業株式会社 | 親水化ポリスルホン膜 |
JPH02115028A (ja) * | 1988-10-25 | 1990-04-27 | Daicel Chem Ind Ltd | 濾過膜及びその製造方法 |
JPH02160026A (ja) * | 1988-12-14 | 1990-06-20 | Daicel Chem Ind Ltd | 親水性分離膜 |
JP2878736B2 (ja) * | 1989-11-20 | 1999-04-05 | 日東電工株式会社 | ポリスルホン系樹脂よりなる中空糸多孔質膜 |
JP3117575B2 (ja) * | 1992-04-29 | 2000-12-18 | 株式会社クラレ | ポリスルホン系中空繊維膜とその製造方法 |
DE4217335C2 (de) * | 1992-05-26 | 1996-01-18 | Seitz Filter Werke | Hydrophile Membran und Verfahren zu ihrer Herstellung |
US5543465A (en) * | 1993-03-19 | 1996-08-06 | Gambro Dialysatoren Gmbh & Co. | Process for the production of hydrophilic membranes |
-
1996
- 1996-10-09 WO PCT/JP1996/002940 patent/WO1997013575A1/ja active IP Right Grant
- 1996-10-09 DE DE69629042T patent/DE69629042T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1996-10-09 US US09/051,335 patent/US6113785A/en not_active Expired - Fee Related
- 1996-10-09 EP EP96933609A patent/EP0856352B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1996-10-09 ES ES96933609T patent/ES2197249T3/es not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0856352A1 (en) | 1998-08-05 |
US6113785A (en) | 2000-09-05 |
WO1997013575A1 (en) | 1997-04-17 |
DE69629042T2 (de) | 2004-04-22 |
JP4000196B1 (es) | 2007-10-31 |
EP0856352B1 (en) | 2003-07-09 |
DE69629042D1 (de) | 2003-08-14 |
EP0856352A4 (en) | 2001-08-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2197249T3 (es) | Membrana de polisulfona para la purificacion de la sangre. | |
Chung et al. | Inner core segment design for drug delivery control of thermo-responsive polymeric micelles | |
CA1081891A (en) | Materials for self-reinforcing hydrogels | |
US4267295A (en) | Polymeric compositions and hydrogels formed therefrom | |
US4300820A (en) | Water absorptive composition | |
US4379864A (en) | Polymeric compositions and hydrogels formed therefrom | |
FI59114C (fi) | Foer medicinska aendamaol anvaendbar svagt tvaerbunden hydrogelsampolymer och foerfarande foer dess framstaellning | |
WO2016158388A1 (ja) | 共重合体並びにそれを用いた医療デバイス、医療用分離膜モジュール、および血液浄化器 | |
Wang et al. | Preparation and evaluation of a self-anticlotting dialyzer via an interface crosslinking approach | |
BRPI0622191A2 (pt) | copolÍmero de metacrilato insolével em Água, mÉtodo para produzir um copolÍmero de metacrilato insolével em Água, e dispositivo mÉdico | |
EP3315190A1 (en) | Separation membrane for blood treatment, and blood treatment device incorporating separation membrane | |
CN112588132B (zh) | 一种中空纤维膜及其制备方法 | |
Liu et al. | Phase separation control of PDMS/PNIPAAm IPNs and the effect on drug release | |
EP3520886A1 (en) | Separation membrane module | |
WO2015028286A1 (en) | Polymeric synthetic antidote | |
Song et al. | Probing the neutralization behavior of zwitterionic monomer-containing dental adhesive | |
Yang et al. | Preparation of SBS‐g‐VP copolymer membrane by UV radiation without degassing | |
Sastre et al. | Cytarabine trapping in poly (2‐hydroxyethyl methacrylate‐co‐acrylamide) hydrogels: drug delivery studies | |
Ito et al. | Silicon-containing block copolymer membranes | |
JP4000196B2 (ja) | ポリスルホン系血液浄化膜 | |
JP2006124714A (ja) | 耐汚染性材料および耐汚染性半透膜 | |
RU2627896C2 (ru) | Гидрофильная термопереключаемая чувствительная к давлению адгезионная композиция | |
JP3077329B2 (ja) | 抗血栓性ポリマ組成物およびその製造方法 | |
CN112705054B (zh) | 一种中空纤维膜及其制备方法和透析器 | |
KR20040046521A (ko) | 폴리술폰계 폴리머와 친수성 코폴리머를 포함하는 단일상블렌드로 이루어진 친수성 폴리머막 |