DK172285B1 - Deletionsmutant af et herpesvirus og vaccine indeholdende dette virus - Google Patents

Deletionsmutant af et herpesvirus og vaccine indeholdende dette virus Download PDF

Info

Publication number
DK172285B1
DK172285B1 DK486684A DK486684A DK172285B1 DK 172285 B1 DK172285 B1 DK 172285B1 DK 486684 A DK486684 A DK 486684A DK 486684 A DK486684 A DK 486684A DK 172285 B1 DK172285 B1 DK 172285B1
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
virus
deletion
pigs
nia
prv
Prior art date
Application number
DK486684A
Other languages
English (en)
Other versions
DK486684D0 (da
DK486684A (da
Inventor
Antonius Jozef Maria Berns
Arnold Leonard Jozef Gielkens
Original Assignee
Centraal Diergeneeskundig Inst
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centraal Diergeneeskundig Inst filed Critical Centraal Diergeneeskundig Inst
Publication of DK486684D0 publication Critical patent/DK486684D0/da
Publication of DK486684A publication Critical patent/DK486684A/da
Application granted granted Critical
Publication of DK172285B1 publication Critical patent/DK172285B1/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/245Herpetoviridae, e.g. herpes simplex virus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16722New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16734Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/815Viral vaccine for porcine species, e.g. swine
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/822Drug, bio-affecting and body treating compositions involving tk- virus

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

i DK 172285 B1
Opfindelsen angår en levende deletionsmutant af et herpesvirus, specielt et virus, der stammer fra Pseudorabi-es-virus (PRV), også betegnet Aujeszky's syge-virus (ADV). Pseudorabies er en sygdom hos alle husdyr, bortset 5 fra hesten, og forårsager betydelige tab specielt blandt svin og kvæg. Svinet er den naturlige vært for herpesvi-ruset fra Aujeszky's syge. Dyrene inficeres via den nasale vej og efter en primær virusopformering i slimhinderne i de øvre luftveje og fordøjelseskanalen, spreder viruset 10 sig til hjernen. Infektionen skrider fremad akut til sub-klinisk, hovedsagelig afhængigt af virusets virulens og svinenes alder. Pseudorabies-virus giver som andre her-pesvira latente infektioner, specielt i nervevævene.
15 Man udfører vaccinationer for i nogen grad at begrænse de økonomiske tab på grund af dødsfald blandt dyrene og hæmning af væksten. Til dette formål forefindes vacciner, der er baseret henholdsvis på svækket levende virus og på inaktiveret virus. Vaccinerne baseret på svækket levende 20 virus er enklere at fremstille og derfor billigere end de vacciner, der er baseret på inaktiveret virus. Yderligere har de vacciner, der indeholder svækket levende virus den fordel, at de også kan anvendes intranasalt. Intranasal podning bevirker en bedre beskyttelse over for sygdommen 25 end parenteral vaccination med svækket levende virus eller med inaktiveret virus.
Svækkede levende virusvacciner, der for øjeblikket anvendes, udviser forskellige ulemper: 30 1) De fremstilles sædvanligvis ved rækkefortyndinger af virulente eller mildt virulente stammer i vævskultur (50-900 passager). Dette frembringer ukonrollerede mutationer i det virale genom.
35 DK 172285 B1 2 2) De fleste præparater af kommercielle vacciner er ikke homogene. Vaccinerne indeholder nemlig et vist antal virusvarianter, hvis virulens eller vaccinationsevne ikke er veldefineret.
5 3) Der er fare for tilbagevenden til virulens.
4) Der er risiko for indførelse af latente infektioner.
10 Genomstrukturen af DNA'en hos Pseudorabies-virus (PRV) er beskrevet i litteraturen (Virology 97 (1979) side 151- 163) . På basis af arrangementet af de gentagne sekvenser hører PRV til gruppen af D-herpesvira. De indeholder et genom på ca. 160 000 nucleotidpar indeholdende to omvend-15 te gentagelser og to unikke sekvenser, betegnet Us og Ui. Viruset forekommer i to isomere former, der begge er in-fektiøse. For at få et indblik i genomets struktur og i variabiliteten mellem de mange forekommende isolater blev DNA'erne fra en række vaccinestammer og fra nogle af de 20 omkring 100 uafhængige PRV-isolater, der er opnået i Holland og andre lande fra dyr, der led af sygdommen, sammenlignet ved hjælp af restriktionskortlægning. Denne analyse, der udførtes med et antal restriktionsenzymer, viste følgende: 25 a) De enkelte isolater udviser en høj grad af sekvensho-mologi, dvs. en nick-translateret sonde fra viruset NIA-3 (Northern Ireland Aujeszky-3) anvendt som reference genkendte under strenge hybridiseringsbetingel- 30 ser alle brudstykker af feltisolaterne.
b) Strukturerne af de forskellige isolater viste en høj gensidig lighed. Almindeligvis er tilsvarende sekvenser lokaliseret i de samme områder.
35 DK 172285 B1 3 c) Visse regioner viser mere variabilitet end andre.
F.eks. viste de overlappende fragmenter af omvendt gentagelse til unik sekvens en stærk heterogenitet.
5 d) Stammerne, der anvendtes i vaccinerne, indeholdt, selv om de mest var heterogene med hensyn til DNA'sammensætningen og dårligt definerbare, en deletion varierende fra 1000 til 4000 nucleotidpar i et tilsvarende restriktionsfragment.
10
Opfindelsens formål er at modificere genomet af PRV på en sådan måde, at der opnås et virus, som er avirulent, ikke frembringer latent infektion, er genetisk stabilt og derfor ikke forøges i virulens efter dyrepassage, og har go-15 de immunogene egenskaber.
For at opnå dette blev genomet fragmenteret ved hjælp af restriktionsenzymer, og fragmenterne blev adskilt under anvendelse af agarosegel-elektrophorese og glycerolha-20 stighedsgradienter. Hefter blev de enkelte fraktioner undersøgt for biologisk aktivitet ved hjælp af transfektion i svinenyreceller. Transfektion med intakt DNA gav anledning til virusproduktion fra 5-10 ng DNA pr. kulturflaske. Transfektion med kombinerede restriktionsfragmenter 25 gav i nogle tilfælde virus på ca. 50 ng pr. kulturflaske. Vira produceret af de inficerede celler blev karakteriseret. Det viste sig, at ved transfektion uden forudgående ligering skete der små deletioner omkring restriktionsstederne for det enzym, hvormed genomet var blevet frag-30 menteret. Som forventet tolereres en deletion kun ved et begrænset antal steder.
Ved hjælp af de ovenfor beskrevne analyser er der blevet defineret to områder af PRV-genomet, som tolererer dele-35 tioner. Vira, hvis genom udviser en eller flere af disse deletioner, viser sig at være væsentlig mindre virulente DK 172285 B1 4 end udgangsviruset. De modificerede vira viser klart forandrede in-vitro vækstegenskåber. Infektionen skrider langsommere frem, og den cytopatologiske virkning er klart forskellig fra virkningen af de oprindelige stam-5 mer. Også in-vivo viser deletionsmutanterne sig at opføre sig helt anderledes. Efter intranasal inoculering viste smågrise kun en lille temperaturforøgelse uden nogen som helst yderligere kliniske fænomener. Under infektionen kunne viruset atter isoleres fra spyttet.
10
Det viste sig yderligere, at tilstedeværelsen af et funktionelt thymidinkinase-gen kan føre til uønsket latens af viruset. Som følge heraf kan deletionsmutanterne ifølge opfindelsen have en deletion i thymidinkinase-genet.
15
Opfindelsen angår en levende deletionsmutant af et herpesvirus opnået ved, at der ved hjælp af rekombinant-DNA-teknikker i genomet af en virulent udgangsstamme, som består af ca. 160 000 nucleotidpar og er karakteriseret ved 20 et restriktionskort, der er typisk for Pseudorabies-virus-DNA, f.eks. ved restriktionskortet i fig. 1, hvori rektanglerne repræsenterer omvendte gentagelser, og de lodrette linier repræsenterer spaltningsstederne for re-striktionsendonucleaserne Hindlll, Kpnl, BamHI og Bglll, 25 og som omfatter en lille unik sekvens Us, som har et restriktionskort, der er typisk for den lille unikke sekvens af Pseudorabies-virus-DNA, f.eks. restriktionskortet afbildet i fig. 2, hvori pilene repræsenterer spaltningsstederne for restriktionsendonucleaserne angivet i 30 fig. 2, er indført en eller flere af følgende deletioner: (a) en deletion i de omvendte gentagelser beliggende mellem spaltningsstederne for Kpnl (mellem henholdsvis fragment E eller fragment H og fragment K + M) og spaltnings-35 stederne for BamHI (mellem BamHI fragmenter 5 og 8); DK 172285 B1 5 (b) en deletion i området, der er skraveret på restriktionskortet over den lille unikke sekvens (fig. 2); (c) en deletion i thymidinkinase-genet.
5
Deletion (a) omfatter fortrinsvis ca. 100 nucleotider, og deletion (c) omfatter fortrinsvis ca. 100-500 nucleotider.
10 I den ovennævnte definition af deletionsmutanterne ifølge opfindelsen er mutanternes genomer defineret som genomer, der adskiller sig fra udgangsstammegenomerne ved tilstedeværelsen af 1, 2 eller 3 deletioner. I betragtning af den kendte variabilitet af udgangs-Pseudorabies-virus-15 stammerne er opfindelsen ikke begrænset til mutanter afledt fra udgangsstammer, der har genomer nøjagtig svarende til restriktionskortet i fig. 1. Restriktionskortene for den lille unikke sekvens Us i udgangsstammerne kan også være forskellige fra restriktionskortet i fig. 2, 20 skønt genomerne af alle udgangsstammerne indeholder en lignende unik sekvens. Imidlertid er alle udgangsstammer Pseudorabies-virus-stammer, der frembringer de kliniske symptomer på Pseudorabies.
25 Opfindelsen omfatter også vacciner indeholdende en levende virusmutant som defineret ovenfor. Vaccinerne fremstilles på sædvanlig måde.
Deletionsmutanter med de ovenfor beskrevne egenskaber op-30 nås ved at indføre deletioner i det virale genom ved hjælp af molekylærbiologiske teknikker på en af følgende måder: a) Nedbrydning af klonede eller uklonede subgenomfrag-35 menter med restriktionsendonucleaser og efterfølgende religering af en del af de således frembragte frag- DK 172285 B1 6 menter med deletion af et eller flere fragmenter i det respektive subgenomfragment, indførsel af et således modificeret fragment, evt. efter ligering med resten af den overlappende eller ikke-overlappende 5 genetiske information fra det virale genom, i følsom me celler til produktion af det modificerede virus.
b) Nedbrydning af klonede eller uklonede subgenomfragmenter med restriktionsendonucleaser og frembringelse 10 af en deletion ved spaltningsstedet ved behandling af fragmenterne med en exonuclease og, evt. efter re-ligering med resten af den overlappende eller ikke-overlappende genetiske information fra det virale genom, indførsel af de modificerede fragmenter i føl-15 somme celler til produktion af det modificerede vi rus .
c) Nedbrydning af klonede eller uklonede subgenom-fragmenter med restriktionsendonucleaser og frembrin- 20 gelse af en deletion ved spaltningsstedet ved trans- fektion af de dannede fragmenter (uden forudgående ligering) sammen med resten af den overlappende eller ikke-overlappende genetiske information fra det virale genom i følsomme celler. Disse celler vil produce-25 re det modificerede virus. Deletionen vil blive frem bragt spontant under transfektionsproceduren.
Følgende eksempler belyser konstruktionen af deletionsmutanterne ifølge opfindelsen samt deres biologiske egen-30 skaber. De hidtil ukendte mutantstammer 2.4N3A og 2.8N3A er deponeret i Phabagen Collection ved Rijksuniversiteit i Utrecht, Vakgroep Moleculaire Celbiologie, Transitorium 3, Padnalaan 8, 3584 CH Utrecht, Holland. Deponeringsnumrene er henholdsvis PCPV2 og PCPV3. Yderligere er disse 35 stammer deponeret i Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (C.N.C.M.), Institut Pasteur, Paris, DK 172285 B1 7
Frankrig. I denne samling er deponeringsnummeret for stamme 2.4N3A I 351 og deponeringsnummeret for stamme 2.8N3A I 352.
5 EKSEMPEL
Konstruktion af mutanter
Konstruktionen af de forskellige deletionsmutanter af i 10 Pseudorabies-virus (PRV) stamme NIA-3 er skitseret i fig.
3. NIA-3 virion-DNA blev nedbrudt fuldstændigt med re-striktionsendonucleaserne BamHI og Hindlll. Produkterne af nedbrydningerne blev fraktioneret på præparative aga-rosegeler, og fragmenterne blev isoleret ved elektroelue-15 ring. Hindlll B og BamHI 7 fragmenterne blev indsat i plasmidvektoren pBR322 og klonet ifølge etablerede procedurer. Plasmidet pN3B7 (11,1 kbp), der bar BamHI fragmentet, blev anvendt til at indføre deletioner i NIA-3 geno-met. For at udføre dette blev pN3B7 lineariseret ved del-20 vis Ball-nedbrydning (45 min, 37 °C, 0,3 enheder Ball pr. μg DNA). Fuld-længde DNA-molekyler blev isoleret ved aga-rosegelelektrophorese og elektroeluering. Disse molekyler blev nedbrudt med exonucleasen Bal31. Optimale betingelser for nedbrydning (0,18 kbp DNA/min) var 57 nM DNA og 25 20 enheder pr. ml Bal31 exonuclease ved 37 °C. Aliquoter blev udtaget 7, 12,5 og 18,5 minutter efter tilsætning af exonucleasen, og nedbrydningsprodukterne adskiltes efter størrelse på et lavt smeltende agarosegel. DNA-fragmenter af den ønskede længde (8,3 til 9,0 kbp) udvalgtes. DNA-30 molekylerne blev behandlet med T4 polymerase, religeret med T4 DNA ligase og indført i Escherichia coli stamme HB101 ved hjælp af standardmetoder. Fra de Amp-resisten-te/Tet-følsomme kolonier isoleredes plasmid-DNA. Størrelsen og positionen af deletionerne bestemtes ved nedbryd-35 ning med restriktionsendonucleaserne Mlul, Bglll, Sphl og Pvul. Tre rekombinante plasmider med forskellige deletio- DK 172285 B1 8 ner (2,1, 2,4 og 2,8 kbp) udvalgtes til yderligere manipulation. De havde bibeholdt Mlul-stedet ved kortposition 0,886 og Bglll-stedet ved position 0,856, men havde tabt Mlul-stedet ved position 0,876 (fig. 3). MluI-BgIII frag-5 menterne (stiplede linier) af pN3B7-derivaterne med deletioner på 2,1, 2,4 og 2,8 kbp blev isoleret og ligeret til 30 kbp MluI-BgIII fragmentet af plasmid pN3HB. De resulterende plasmider pHB 2.1, pHB 2.4 og pHB 2.8 blev karakteriseret ved restriktionsendonuclease-analyse.
10
Til transfektion blev Hindlll A fragmentet af NIA-3 viri-on-DNA og de virale insertioner af plasmiderne pHB 2.1, pHB 2.4 og pHB 2.8, spaltet med Hindlll, renset ved to på hinanden følgende 5-40% glycerolgradienter (20 mM Tris- 15 hydrochlorid pH 8,0, 1 M NaCl, 10 mM EDTA) . Renheden af
Hindlll A fragmentet og af de virale insertioner blev verificeret ved restriktionsendonuclease-spaltning og Southern-aftryksanalyse. Herefter blev et firefolds molært overskud af hver af de virale plasmidinsertioner 20 blandet med Hindlll A fragmentet fra NIA-3 virion-DNA. DNA-blandingerne (500 ng) blev transficeret ind i sekundære svinenyreceller (PK-2) ved hjælp af calciumphosphat-copræcipitationsteknikken (Virology 52 (1973), 456-467).
25 De rekonstituerede vira opnået ud fra positive transfek-tioner blev renset ved tre omganges plak-udtagning, og deres genomer blev karakteriseret ved Southern-aftryks-analyse.
30 Biologisk karakterisering af deletionsmutanter
Udgangsstammen NIA-3, den avirulente stamme NIA-4 og deletionsmutanterne 2.4N3A og 2.8N3A blev undersøgt med hensyn til deres biologiske egenskaber hos mus og svin.
35 DK 172285 B1 9
Gennemsnitstiden til dødsfald (MID) hos mus efter inocu-lering med stammer af PRV anvendtes som en parameter til at gruppere stammer efter virulens (Archives of Virology 63 (1080), 107-114). Sædvanligvis dræber virulent PRV mus 5 hurtigere end svækkede stammer af PRV, skønt man har set undtagelser. Som det fremgår af tabel 1 varierede MID-værdierne for de forskellige stammer betydeligt. Deletionsmutanterne 2.4N3A og 2.8N3A udviste signifikant (Wilcoxon rank test, p<0,05) længere MTD-værdier end NIA-10 3-stammen, hvilket angav, at en markør for virulens hos mus forefindes i Us- og/eller gentagelsesregionen. Også forskellen i MTD mellem mutanterne 2.4N3A og 2.8N3A er signifikant (p<0,05), hvilket tyder på at virulensen for mus er påvirket af positionen og/eller størrelsen af de-15 letionen i Us-området.
Svin af den hollandske landrace "minimal-sygdoms"- besætning fra Central Veterinary Institute, der er frie for Pseudorabies, blev anvendt til at bestemme virulensen 20 af deletionsmutanterne i den naturlige vært. Som vist i tabel 1 havde deletionsmutanterne afledt fra NIA3-stammen en udpræget reduceret virulens for svin. Udgangs-NIA-3-stammen dræbte 2 ud af 5 svin. Hos de overlevende dyr observeredes kraftig depression, anorexi og feber (>40 °C), 25 der begyndte på postinoculationsdag (PID) 2. Fra PID 5 til 7 udviste de fleste svin udflåd fra næsen og åndenød. Yderligere udviklede de milde til kraftige neurologiske tegn. Rekonstitueret NIA-3 uden en deletion i Us-området, men med en lille deletion i gentagelsesenheden ved posi-30 tionen af Hindlll stedet, opførte sig på samme måde som NIA-3, hvilket angav, at deletionen i gentagelsen ikke er af betydning for virulensen hos svin. I modsætning hertil blev svin, som var inoculeret med mutant 2.4N3A, kun svagt nedtrykt og havde en noget reduceret appetit mellem 35 PID 2 og 5. Gennemsnitskropstemperaturerne forblev under 40 °C. Det eneste tegn på sygdom hos svin, der var inocu- DK 172285 B1 10 leret med mutant 2.8N3A, var en stigning i kropstemperaturen: gennemsnittemperaturerne på PID 3, 4 og 5 var henholdsvis 40,3, 40,4 og 40,1. Disse resultater viser klart, at forekomsten af deletioner i Us-regionen af PRV 5 er forbundet med en reduceret virulens hos både mus og svin. Svin inoculeret med NIA-4 stammen viste også en noget reduceret appetit på PID 4. Denne stammes virulens for svin forandrede sig ikke, når dens Hindlll B fragment blev erstattet med det deleterede Hindlll B fragment (Δ 10 2,4) af den virulente NIA-3 stamme. Dette viser, at dele tionen, der findes i Us-regionen af NIA-4, er den afgørende faktor, der bestemmer den reducerede virulens af NIA-4 stammen. Gruppens gennemsnitlige vækststandsningsperiode er en vigtig parameter med hensyn til sygdommens 15 sværhedsgrad. Tabel 1 viser, at der hos svin inoculeret med NIA-3-virus sås en gennemsnitlig vækststandsningsperiode på 9 dage, medens der hos svin inoculeret med en vilkårlig af de andre mutanter ikke blev bemærket nogen vækststandsning.
20
TABEL 1 Biologiske egenskaber af deletionsmutanter af PRV
25
Virus Mus Svin MTD Døds- Vækst- Feber Virus- Antistoffald stands- udskillelse titer 30 ning pos gennem- _% snit_ NIA-3 50 ± 4 2 9 4 90 3,64 2,85 NIA-4 170 ± 29,0 0 0 0 ND ND 1,13 2.4N3A 73 ± 7,0 0 0 0 80 2,65 1,65 35 2.8N3A 60 i 8,5_0_0_3_50 2,20 1,62 DK 172285 B1 11
For at bestemme virulensen over for mus inoculeredes grupper på otte 6-7 uger gamle BALB/c mus med 106 plakdannende enheder (PFU) af PRV. Musene kontrolleredes med 6 timers mellemrum i 10 dage. Gennemsnitstiden til musene 5 døde (MID) er angivet med standardafvigelse.
For at bestemme virulensen hos svin inoculeredes grupper på fem 10 uger gamle svin intranasalt med en dosis på 105 PFU af PRV ved inddrypning af 0,5 ml i hvert næsebor.
10 Vækststandsningsperioden defineredes som det antal dage, der var nødvendige for at genvinde gruppens gennemsnitsvægt på postinoculationsdag (PID) 3. Svin, der døde, var ikke indbefattet i denne beregning.
15 Dages feber: gennemsnitsantallet af dage, hvor krops-temperaturerne var over 40 °C. Virusudskillelse: Prøver af oropharyngealvæske (OPF) blev opsamlet dagligt 10 dage efter vaccination. Udtagningsmetoden og vi-20 rusprøvningen blev foretaget som be skrevet i Veterinary Quarterly A (1982), 49-56.
Pos,%: procent positive OPF-prøver.
Gennemsnitstiter: Gennemsnitlige virustitere er udtrykt 25 som logio PFU/ml OPF.
Antistoftiter: den neutraliserende antistoftiter på PID 21 er udtrykt som log™ af den reciprokke værdi af den slutserumfortyn-ding, der inhiberede cytopatisk virk-30 ning i 50% af kulturerne.
Niveauerne af virusudskillelse efter inoculation, der giver en indikation på virusets evne til at formere sig i de øvre luftveje og/eller fordøjelseskanalen, blev også 35 kontrolleret. Svin inficeret med virulent PRV udskilte betydelig større mængder virus gennem længere tid end 12 DK 172285 B1
svin, der var inoculeret med svækket PRV. Som vist i tabel 1 indeholdt bogstavelig talt alle prøver af oropha-ryngealvæske (OPF) fra svin indgivet NIA-3 stamme virus. Desuden var den gennemsnitlige virustiter i OPF-prøverne 5 den højeste i disse dyr. Virusudskillelsen hos svin indgivet mutanterne 2.4N3A eller 2.8N3A var væsentligt reduceret. De svin, der overlevede infektionen med den virulente NIA-3 stamme, viste mere end tifold højere gennemsnitlige neutraliserende antistoftitere 3 uger efter ino-10 culation, end de fra NIA-3 afledte deletionsmutanter. NIA-4 stammen inducerede den laveste antistoftiter. Imidlertid var svin inoculeret med deletionsmutanterne udmærket beskyttet over for en udfordring med virulent PRV: Intranasal vaccination med deletionsmutanterne forhindre-15 de forekomsten af kliniske tegn efter udfordring med den virulente NIA-3 stamme (tabel 2) . Der blev ikke observeret nogen vækststandsning, og den gennemsnitlige kropstemperatur hos svin inoculeret med 2.4N3A og 2.8N3A forblev under 40 °C. Selv om de var beskyttet mod klinisk 20 sygdom, udskilte svinene virulent virus via OPF. Sammenlignet med kontrolsvin var procenten af virusholdige prøver opsamlet i 10 dage efter udfordringen reduceret i udpræget grad. Desuden var gennemsnitstiterne af PRV i OPF
3-5 log lavere end hos kontrolsvinene (tabel 2).
25 TABEL 2 Bedømmelse af beskyttelse induceret af deletionsmutanter
Virus Antistof- Døds- Vækst- Feber Virus- 30 titer fald stands- udskillelse ning _ pos gennemsnit % 2.4N3A 2.25 0 0 0 20 0,51 2.8N3A 2,04 0 0 0 52 2,00
Kontroller_-_0_20_8_100 5,27_ 35 DK 172285 B1 13
En gruppe bestående af fem sero-negative svin og to grupper svin vaccineret med PRV-deletionsmutanterne 2.4N3A og 2.8N3A (se tabel 1) blev intranasalt udfordret med 105 PFU virulent NIA-3 virus ved en alder på 16 uger. Anti-5 stoftiterne blev kontrolleret på selve udfordringsdagen, 6 uger efter vaccination.
i

Claims (6)

  1. 2. Virus ifølge krav 1, kendetegnet ved, at 30 deletion (a) omfatter ca. 100 nucleotider.
  2. 3. Virus ifølge krav 1, kendetegnet ved, at deletion (c) omfatter ca. 100-500 nucleotider. DK 172285 B1
  3. 4. Levende Pseudorabies-virus-deletionsmutanter ifølge krav 1/ kendetegnet ved, at de er afledt fra NIA-3 stammen af PRV.
  4. 5. Deletionsmutant 2.4N3A ifølge krav 4, som beskrevet i beskrivelsen og deponeret i Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (C.N.C.M.), Institut Pasteur, Paris, Frankrig, under deponeringsnummeret I 351.
  5. 6. Deletionsmutant 2.8N3A ifølge krav 4, som beskrevet i beskrivelsen og deponeret i Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (C.N.C.M.), Institut Pasteur, Paris, Frankrig, under deponeringsnummeret I 352.
  6. 7. Vaccine indeholdende en levende virusmutant ifølge et eller flere af de forudgående krav.
DK486684A 1983-10-12 1984-10-11 Deletionsmutant af et herpesvirus og vaccine indeholdende dette virus DK172285B1 (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NL8303501 1983-10-12
NL8303501A NL8303501A (nl) 1983-10-12 1983-10-12 Deletiemutant van een herpesvirus en vaccin, dat dit virus bevat.

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK486684D0 DK486684D0 (da) 1984-10-11
DK486684A DK486684A (da) 1985-04-13
DK172285B1 true DK172285B1 (da) 1998-02-23

Family

ID=19842541

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK486684A DK172285B1 (da) 1983-10-12 1984-10-11 Deletionsmutant af et herpesvirus og vaccine indeholdende dette virus

Country Status (9)

Country Link
US (2) US4680176A (da)
EP (1) EP0141458B1 (da)
JP (1) JP2519201B2 (da)
AU (1) AU574724B2 (da)
DE (1) DE3483512D1 (da)
DK (1) DK172285B1 (da)
ES (1) ES8505719A1 (da)
NL (1) NL8303501A (da)
PT (1) PT79348B (da)

Families Citing this family (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL8303501A (nl) * 1983-10-12 1985-05-01 Centraal Diergeneeskundig Inst Deletiemutant van een herpesvirus en vaccin, dat dit virus bevat.
US4514497B1 (en) * 1983-12-30 1998-02-24 Novagene Inc Modified live pseudorabies viruses
US4859587A (en) * 1984-06-04 1989-08-22 Institut Merieux Recombinant herpes simplex viruses, vaccines and methods
DE3505148A1 (de) * 1985-02-15 1986-10-30 Boehringer Ingelheim International GmbH, 6507 Ingelheim Polypeptide des rhinovirusstammes hrv2 sowie die hierfuer codierenden dna-molekuele
EP0263207B1 (en) * 1986-10-08 1991-11-27 The Upjohn Company Virus vaccine
DE3677494D1 (de) * 1985-07-29 1991-03-14 Upjohn Co Virus-impfstoff.
US5128128A (en) * 1985-07-29 1992-07-07 The Upjohn Company Virus vaccine
US5275934A (en) * 1985-07-29 1994-01-04 The Upjohn Company Method of detecting viral infection in vaccinated animals
US5068192A (en) * 1986-01-27 1991-11-26 Prutech Research And Development Partnership Attenuated pseudorabies virus which includes foreign DNA encoding an amino acid sequence
US5834305A (en) * 1985-09-06 1998-11-10 Syntro Corporation Attenuated herpesvirus, herpesvirus which include foreign DNA encoding an amino acid sequence and vaccines containing same
US6121043A (en) * 1985-09-06 2000-09-19 Syntro Corporation Recombinant herpesvirus of turkeys comprising a foreign DNA inserted into a non-essential region of the herpesvirus of turkeys genome
US5223424A (en) * 1985-09-06 1993-06-29 Prutech Research And Development Attenuated herpesviruses and herpesviruses which include foreign DNA encoding an amino acid sequence
US5763269A (en) * 1985-09-06 1998-06-09 Syntro Corporation Recombinant infectious bovine rhinotrocheitis virus
US4877737A (en) * 1985-09-06 1989-10-31 Prutech Research And Development Partnership Attenuated pseudorabies virus which has a deletion in at least a portion of a repeat sequence and vaccine containing same
US5352575A (en) * 1985-10-04 1994-10-04 The Upjohn Company Pseudorabies virus protein
US4703011A (en) * 1985-11-12 1987-10-27 Novagene, Inc. Thymidine kinase deletion mutants of bovine herpesvirus-1
WO1987004463A1 (en) * 1986-01-27 1987-07-30 Syntro Corporation Attenuated herpesviruses, herpesviruses which include foreign dna encoding an amino acid sequence and vaccine containing same
US5593873A (en) * 1986-01-27 1997-01-14 Syntro Corporation Recombinant infectious bovine rhinotracheitis virus
US4711850A (en) * 1986-01-28 1987-12-08 Novagene, Inc. Pseudorabies virus mutants, vaccines containing same, methods for the production of same and methods for the use of same
US6172186B1 (en) 1986-03-26 2001-01-09 Pharmacia & Upjohn Company Pseudorabies virus protein
ZA872532B (en) * 1986-04-21 1987-11-25 Akzo Nv Combined vaccine
US4999296A (en) * 1986-04-29 1991-03-12 Novagene, Inc. Thymidine kinase negative insertion mutants of pseudorabies virus and methods for the production of same
FR2601689B1 (fr) * 1986-07-17 1992-10-16 Syntro Corp Herpes virus attenues, herpes virus qui renferment de l'adn etranger codant pour une sequence d'amino-acides, et vaccins les contenant
US5004693A (en) * 1986-07-18 1991-04-02 E. I. Du Pont De Nemours And Company Pseudorabies virus recombinants and their use in the production of proteins
US5037742A (en) * 1986-07-18 1991-08-06 E. I. Du Pont De Nemours And Company Pseudorabies virus recombinants and their use in the production of proteins
WO1989001040A1 (en) * 1987-07-27 1989-02-09 Syntro Corporation Attenuated herpes viruses, herpes viruses which include foreign dna encoding an amino acid sequence and vaccines containing same
US5672344A (en) * 1987-12-30 1997-09-30 The Regents Of The University Of Michigan Viral-mediated gene transfer system
US5151267A (en) * 1988-07-15 1992-09-29 University Of Saskatchewan Bovine herpesvirus type 1 polypeptides and vaccines
US5585264A (en) * 1988-07-15 1996-12-17 University Of Saskatchewan Nucleotide sequences encoding recombinant bovine herpesvirus type-1 GI, GIII and GIV polypeptides
NL8902087A (nl) * 1989-08-17 1991-03-18 Stichting Tech Wetenschapp Niet-natuurlijk voorkomend pseudorabiesvirus en vaccins die dit bevatten.
US5695765A (en) * 1989-08-17 1997-12-09 Stichting Voor De Technische Wetenschappen Mutant pseudorabies virus, and vaccines containing the same
US5240703A (en) * 1991-03-01 1993-08-31 Syntro Corporation Attenuated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof
JP3206767B2 (ja) * 1992-02-20 2001-09-10 北海道 欠失rna遺伝子を用いたbnyvv弱毒ウイルスの作出とその利用
US5352596A (en) * 1992-09-11 1994-10-04 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Pseudorabies virus deletion mutants involving the EPO and LLT genes
US6342501B1 (en) 1994-02-25 2002-01-29 The Regents Of The University Of Michigan Pyrrolo[2,3-d] pyrimidines as antiviral agents
US6455506B1 (en) 1997-07-30 2002-09-24 Smithkline Beecham Corporation Lyxofuranosyl benzimidazoles as antiviral agents

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3122669A1 (de) * 1980-06-12 1982-02-11 Asta-Werke Ag, Chemische Fabrik, 4800 Bielefeld "verfahren zur herstellung von neuen mutanten von herpes simplex-viren typ 1 und typ 2"
EP0074808A3 (en) * 1981-09-16 1984-07-04 University Patents, Inc. Recombinant method and materials
ZA84467B (en) * 1983-02-01 1984-09-26 Upjohn Co Pseudorabies vaccine
NL8303501A (nl) * 1983-10-12 1985-05-01 Centraal Diergeneeskundig Inst Deletiemutant van een herpesvirus en vaccin, dat dit virus bevat.
US4514497B1 (en) * 1983-12-30 1998-02-24 Novagene Inc Modified live pseudorabies viruses

Also Published As

Publication number Publication date
NL8303501A (nl) 1985-05-01
AU3414184A (en) 1985-04-18
ES536681A0 (es) 1985-06-16
EP0141458A1 (en) 1985-05-15
EP0141458B1 (en) 1990-10-31
JP2519201B2 (ja) 1996-07-31
AU574724B2 (en) 1988-07-14
DK486684D0 (da) 1984-10-11
DK486684A (da) 1985-04-13
JPS60221081A (ja) 1985-11-05
US4680176A (en) 1987-07-14
DE3483512D1 (de) 1990-12-06
PT79348A (en) 1984-11-01
ES8505719A1 (es) 1985-06-16
PT79348B (en) 1986-09-08
US5028426A (en) 1991-07-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK172285B1 (da) Deletionsmutant af et herpesvirus og vaccine indeholdende dette virus
CN110093324B (zh) 基因缺失的减毒非洲猪瘟病毒及其作为疫苗的应用
CA2031164C (en) Recombinant herpesvirus of turkeys and live vector vaccines derived thereof
US10240131B2 (en) Type II pseudorabies virus attenuated strain, its preparation method and application
EP0654086B1 (en) Vaccines against aujeszky&#39;s disease and other animal diseases containing pseudorabies virus mutants
JP3159476B2 (ja) 組換えマレック病ウィルス
US7060282B1 (en) Attenuated equine herpesvirus
EP0486562B1 (en) Mutant pseudorabies virus, and vaccines containing the same
CN109022373B (zh) 鸭瘟病毒ul56基因3’端缺失和lorf5基因缺失突变株及其构建方法与应用
EP0606452B1 (en) Vector vaccines of recombinant feline herpesvirus
EP0663403A1 (en) Vector vaccines of bovine herpesvirus I
US5695765A (en) Mutant pseudorabies virus, and vaccines containing the same
USRE33772E (en) Deletion mutant of a herpesvirus and vaccine containing said virus
US5874280A (en) Vector vaccines of bovine herpesvirus I
JP2002512504A (ja) 機能が不全な71遺伝子領域を含む組換えウマヘルペスウィルス1型(ehv−1)、および、そのワクチンとしての使用
WO1994008000A1 (en) Pseudorabies virus vaccine
MXPA01001175A (en) Attenuated equine herpesvirus
MXPA99005452A (en) Recombinant equine herpesvirus type 1 (ehv-1) comprising a dysfunctional gene 71 region and use thereof as a vaccine

Legal Events

Date Code Title Description
PUP Patent expired