DK145347B - Fremgangsmaade til rensning af hepatitis b antigen - Google Patents

Fremgangsmaade til rensning af hepatitis b antigen Download PDF

Info

Publication number
DK145347B
DK145347B DK190776AA DK190776A DK145347B DK 145347 B DK145347 B DK 145347B DK 190776A A DK190776A A DK 190776AA DK 190776 A DK190776 A DK 190776A DK 145347 B DK145347 B DK 145347B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
antigen
hepatitis
rotor
pepsin
protein
Prior art date
Application number
DK190776AA
Other languages
English (en)
Other versions
DK190776A (da
DK145347C (da
Inventor
A U Bertland
A A Tytell
G P Lampson
E B Buynak
Original Assignee
Merck & Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Merck & Co Inc filed Critical Merck & Co Inc
Publication of DK190776A publication Critical patent/DK190776A/da
Publication of DK145347B publication Critical patent/DK145347B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK145347C publication Critical patent/DK145347C/da

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2730/00Reverse transcribing DNA viruses
    • C12N2730/00011Details
    • C12N2730/10011Hepadnaviridae
    • C12N2730/10111Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
    • C12N2730/10122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(19) DANMARK fen
da FREMLÆGGELSESSKRIFT od 1 i+5347 B
DIREKTORATET FOR PATENT- OG VAREMÆRKEVÆSENET
(21) Ansøgning nr. 19°T/76 (51) |nt.CI.3 C 07 G 7/00 (22) Indleveringsdag 28. apr. 1976 A 61 K 39/29 (24) Løbedag 28. apr. 1976 (41) Aim. tilgængelig 15· nov. 1976 (44) Fremlagt 1 · nov. 1982 (86) International ansøgning nr.
(86) International indleveringsdag (85) Videreførelsesdag - (62) Stamansøgning nr. -
(30) Prioritet 14. maj 1975, 57748}, US
(71) Ansøger MERCK & CO. INC., Rahway, US.
(72) Opfinder Alexander Urszu Bert land, US: Alfred A. Tytell, US:
George Peter Lampson, US: Eugene Bernard Buynak, US.
(74) Fuldmægtig Ingeniørfirmaet Hofman-Bang & Boutard.
(54) Fremgangsmåde til rensning af hepatitis B antigen.
Den foreliggende opfindelse angår en fremgangsmåde til rensning af hepatitis B antigen fra et delvist renset koncentrat, som er opnået ud fra et klaret plasma indeholdende hepatitis B antigen.
Hepatitis B er en af to typer viral hepatitis, som resulterer i en systemisk infektion, hvorved forekommer væsentlige patologiske £ forandringer i leveren. Denne sygdom angriber hovedsageligt voksne > og opnås hovedsageligt ved overføring af infektion fra latente ^ bærere af dette virus. Den sædvanlige måde, hvorpå smitte fin- D der sted, er ved blodtransfusion, forurenede nåle og sprøjter, 4· gennem huden, som er gennembrudt af revner eller skrammer, ved ikke-steriliserede dentale instrumenter samt ved spyt, venerisk Sj kontakt eller påvirkning af aerosoliseret inficeret blod.
145347
Inkubationsperioden på type B hepatitis er forholdsvis lang, idet der kan gå fra 6 uger til 6 måneder mellem infektion og udbrud af kliniske symptomer. Sygdommen begynder sædvanligvis med træthed og anorexia undertiden ledsaget af myalgia og abdominalt ubehag. Senere fremkommer gulsot, mørk urin, lys afføring og øm hepato-megalia. I nogle tilfælde kan udbruddet være hurtigt, idet der opstår tidlig gulsot i forbindelse med feber, kuldegysninger og leukocytosis. I andre tilfælde kan gulsot aldrig påvises, og patienten føler kun en influenzalignende sygdom. Man skønner, at hovedparten af hepatitis infektioner resulterer i en mild anicterisk sygdom.
Selv om sygdommen kvalitativt ligner viral hepatitis A, kan den let diagnostiseres ved forekomsten af australske antigen partikler, som er betegnet HB_Ag ( overflade antigen), i blodet eller andre kliniske prøver (spyt, urin, galde, afføring). I blodet på inficerede patienter findes en forholdsvis stor population (10^-10^ /ml) af sfæriske partikler. Partiklerne har en diameter på 18-22 nm og har samme antigene determinant som overfladen af den 42 nm Dane partikel, som kan være virus fra hepatitis B, nu betegnet HBV, se f.eks. Dane et al., The lancet, 1969, II, 983.
US patentskrift nr. 3 735 004 viser, at kogt infektiøst serum er blevet anvendt til vaccination af børn med resulterende dannelse af antistof for HBcAg (anti-HB ), og at sådant serum giver be-
b S
skyttelse over for angreb. Den anvendte dosis kogt serum svarede 12 til ca. 1 x 10 HBs~partikler. Patienter, som fik dette serum, udviklede ikke klinisk eller biokemisk sygdom. Dette serum er dog ikke velegnet som en vaccine, fordi det er urent, på grund af manglende reproducibilitet og mangel på kendskab til hepatitis B overflade antigen titeren.
Det er fra Chemical Abstracts, bind 79 (1973), 64320t kendt at isolere australsk antigen ved en procedure med fire trin: pepsin-hydrolyse, ultracentrifugering, gelfiltrering og immunoadsorption.
Det eneste, denne metode har til fælles med fremgangsmåden ifølge opfindelsen, er pepsinbehandlingen. Desuden går man ved den kendte fremgangsmåde ud fra ubehandlet plasma, mens man ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen går ud fra klaret plasma. Tilstedeværelsen 3 145347 af lipoproteiner i uklaret serum bevirker en mindre effektiv pep-sinhydrolyse, mens det klarede serum er frit for lipoproteiner. Fremgangsmåden ifølge opfindelsen giver et renere produkt, der kan anvendes i humane vacciner.
Fremgangsmåden ifølge opfindelsen er ejendommelig ved det i den kendetegnende del af krav 1 anførte. Ved denne fremgangsmåde underkastes delvis rensede koncentrater af klarede plasma indeholdende hepatitis B antigen følgende operationer: 1) Koncentratet behandles med pepsin ved en pH-værdi, hvor pepsinet er aktivt, 2) koncentratet behandles med urinstof, og 3) koncentratet behandles eventuelt med formaldehyd.
Det dannede produkt, som er højt renset, reproducerbart, karakteristisk hepatitis B antigen, befriet for fremmede uønskede proteiner og/eller antigener, er velegnet til anvendelse i en vaccine..
Det er ved fremgangsmåden særlig hensigtsmæssigt at indstille koncentratets pH på ca. 2 med saltsyre.
Ved anvendelse af pepsin i en mængde på 1 microgram/ml for hver 40-500 microgram protein opnås en nedbrydning af al protein.
Urinstof, ved pH-værdien ca. 7, i en koncentration på 4 M - 8 M dissocierer effektivt proteinet.
Uvedkommende virus inaktiveres ved tilsætning af formaldehyd, idet en koncentration heraf på 50-200 microgram/ml er hensigtsmæssig.
Det er ved fremgangsmåden særlig effektivt at fjerne pepsin, pep-sinnedbrydningsprodukter og urinstof ved filtrering og chromato-grafi.
Fremgangsmåden ifølge opfindelsen skal i det efterfølgende forklares nærmere under henvisning til tegningen, som er et ultraviolet 4 U5347 spektrum af det ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen rensede antigeri.
Råmaterialet er plasma fra bloddonorer, f~.eks. opnået ved plas-maphorese. Mængden af antigen kan måles på i og for sig kendt måde ved radioimmunprøve, passiv hemagglutination eller komplementfiksering. Plasma afkøles, og cryopræcipitatet, som dannes, fjernes ved let centrifugering. Det resterende klarede plasme indeholdende HBsAg koncentreres på ønsket måde, f.eks. ved isopyk-nisk opdeling, zoneopdeling eller udfældning, f.eks. ved hjælp af polyethylenglycol, ammoniumsulfat eller natriumsulfat. Dette delvist rensede koncentrat er udgangsmaterialet ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen.
Ved isopyknisk opdeling behandles det delvist rensede koncentrat med et flydende medium med en densitetgradient, der inkluderer tætheden af det krævede specifikke antigen. Det flydende medium underkastes ultracentrifugering til opnåelse af en ligevægtsfordeling af serumkomponenterne gennem densitetsgradienten, i overensstemmelse med deres individuelle densiteter. På hinanden følgende fraktioner af mediet udtages derefter, og sådanne fraktioner indeholdende det ønskede antigen isoleres. Anvendelsen af denne teknik til rensning af australsk antigen er beskrevet i tysk patentskrift nr. 2.049.515 og USA patenskrift nr. 3.636.191.
Ved zoneopdeling underkastes det delvis rensede koncentrat en ul-tracentrifugering i berøring med et flydende medium med en densitetsgradient, men denne gang anvendes en rate-zoneteknik, det vil sige med en rate eller hastighed i et tidsrum, således at ligevægt ikke opnås, idet HBgAg og andre resterende serumkomponenter fordeles gennem mediet i overensstemmelse med deres sedimentationskoefficienter i mediet.
Det flydende medium, som anvendes ved processen, kan have en vilkårlig densitetsgradient i det pågældende område. Egnede opløselige stoffer til sådanne opløsninger omfatter f.eks. saccharose, kaliumbromid, caesiumchlorid, natriumbromid, kaliumtartrat og lignende. Det isopykniske adskillelsestrin udføres hensigtsmæssigt 145347 5 i en centrifuge, f.eks. af typen Electronucleonics-K, ved at fylde den stationære rotor med saltopløsning og derefter i rækkefølge at fortrænge saltopløsningen opad med tilsvarende mængder af flydende mediumopløsning med stigende vægtfylde, indtil der er dannet en tringradient.
Plasmaet indføres foroven i rotoren, hvorved en del af opløsningen med højest vægtfylde fortrænges fra bunden. Centrifugen indstilles på en hastighed ved hjælp af et programmeret hastighedskontrolsystem, som forhindrer blanding af den oprindelige reorien-terede fase. Når ligevægt er opnået, og når produktet findes i den rigtige densitetsposition, sænkes hastigheden af rotoren ved hjælp af samme system for at forhindre blanding ved reorientation til den oprindelige konfiguration. Det gradierede materiale udtømmes derefter fra neden, og den pågældende densitetsfraktion opsamles. En tilsvarende metode anvendes ved rate-zoneadskillelse.
Den søgte densitetsfraktion fra denne adskillelse er det partielt rensede koncentrat af hepatitis B antigen.
Proteinkoncentrationen af det delvis rensede koncentrat indstilles derefter på ca. 40 til ca. 200 microgram pr. ml ved tilsætning af steril pyrogen-fri phosphatpufret saltopløsning (PBS). Opløsningen gøres derefter sur til en pH-værdi på 2 til 4, fortrinsvis med saltsyre ved ca. 25° C.
En opløsning af renset pepsin i vand, fortrinsvis fremstillet af krystallinsk pepsin, tilsættes, således at opløsningen indeholder ca. 1 microgram pepsin pr. 40 til 500 microgram protein. Opløsningen inkuberes, indtil omsætningen af fremmed protein ved hjælp af pepsinet er afsluttet, typisk fra 8 til 24 timer ved en temperatur på ca. 50° C til 58° 0, Opløsningen indstilles derefter til pH 7 ved tilsætning af en base, f.eks. natriumhydroxid. Det med pepsin omsatte materiale koncentreres ved ultrafiltrering ved ca. 5° C, og urinstof tilsættes (fortrinsvis højt renset krystallinsk urinstof), indtil slutkoncentrationen er effektiv til at dissociere proteinstoffet, typisk fra 4 M til 8 M. Blandingen inkuberes derefter ved forhøjet temperatur, typisk fra 30° C til 6 1A 5 3 A 7 38° C og i 16 til 24 timer til opnåelse af yderligere rensning.
Den inkuberede blanding klares derefter ved filtrering og chro- matograferes på en kolonne til fjernelse af urinstof, pepsin og rester fra pepsin-nedbrydningen. Kolonnen elueres med steril, pyrogenfri physiologisk acceptabel puffer, som er forligelig med kolonnen, f.eks. PBS, en blanding af natriumdihydrogenphosphat og dinatriumhydrogenphosphat eller 2-amino-2-hydroxymethyl-l,3-propanol. Fraktioner bestemt til at indeholde HB_Ag ved kendte metoder, f.eks. radioimmun-prøve, komplementfiksering og ultraviolet spektrophotometri, opsamles og fortyndes til en koncentration på 20 mierogram HB Ag pr. ml med steril pyrogenfri physiologisk acceptabel puffer, hvorpå der er givet eksempler i det efterfølgende. De fortyndede opsamlede fraktioner filtreres sterilt. Til den filtrerede fraktion sættes eventuelt formaldehyd ved en koncentration som vides at inaktivere virus, f.eks. fra 50 til 200 microgram pr. ml. Blandingen inkuberes derefter ved temperaturer fra 30° C til 38° C og fra 50 til 100 timer. En steril opløsning af et fysiologisk acceptabelt neutraliseringsmiddel, f.eks. natriumhydrogensulfit, tilsættes for i det væsentlige at neutralisere formaldehydet. Materialet overføres aseptisk til glasampuller og opbevares til fremtidig anvendelse.
Det rensede hepatitis B overflade antigen, der fremkommer ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen, er et højt renset reproducerbart produkt og er karakteriseret ved at have en partikeldiameter på 1¾ 18 til 22 nm, et E278nm’ ^er ligger mellem 52 og 54, og et ultraviolet spektrum, som er vist på tegningen.
Tegningen viser som nævnt et ultraviolet spektrum af det ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen rensede hepatitis B antigen.
Efterfølgende eksempler illustrerer opfindelsen.
EKSEMPEL 1
Rotoren i en centrifuge af typen Electronucleonics K fyldes med 8400 ml af phosphatpuffer. Efter at rotoren er kørt op til 10000 omdr./min. for at afgasse blandingen, indpumpes følgende tringradient i bunden af den stationære rotor: 7 145347 1. 2.400 ml 10% Mr, P = 1,08 2. 1.000 ml 20# Mr, P = 1,17 3. 1.500 ml 30# Mr, P = 1,28 4. 3.500 ml 40# Mr, P = 1,41 P er densiteten.
Plasma indeholdende australsk antigen, 1750 ml, pumpes ind i toppen af den stationære rotor, hvorved fortrænges 1750 ml 40% natriumbromid-opløsning fra rotorens bund. Rotoren accelereres til 30 000 o/min og løber ved denne hastighed i 4 timer. Rotoren stoppes derefter, og 1750 ml 40% natriumbromidopløsning pumpes ind i bunden af rotoren, hvorved plasma presses ud fra toppen. Yderligere 1750 ml frisk plasma indeholdende australsk antigen pumpes ind i toppen af rotoren til fortrængning af samme rumfang 40 % natriumbromidopløsning fra bunden af rotoren. Rotoren løber derefter ved 30 000 omdrejninger i 18 timer. Efter at rotoren er afbrudt, opsamles HBgAg-rigt materiale i densitetsområdet 1,21 - 1,24, idet der opsamles 1000 ml, som dialyseres over for phosphatpuffer.
Rotoren fyldes derefter med phosphatpuffer, der er afgasset som ovenfor angivet, og følgende tringradient pumpes ind i bunden af den stationære rotor; 1. 2.400 ml 5% saccharose, P = 1,02 2. 1.750 ml 15% saccharose, P = 1,06 3. 1.750 ml 25% saccharose, P = 1,10 4. 2.500 ml 50% saccharose, P = 1,23 HB Ag-rigt materiale fra natriumbromid-isopyknisk adskillelsestrin, 1000 ml, pumpes ind i rotorens top til fortrængning af 1000 ml saccharose fra rotorens bund. Rotoren bringes derefter til at løbe med en hastighed på 28 000 omdrejninger pr. minut i 18 timer. Efter afbrydning af rotoren opsamles det HBsAg-rige materiale i 1,135 - 1,165 densitetsområde, idet der opsamles 1000 ml.
8 1453A7
Dette produkt fortyndes derefter til 40 microgram protein pr. ml til opnåelse af 56 1 materiale. Fortyndingsmidlet er phosphat-pufret saltopløsning. En 56 1 portion af zonecentrifuge-delvis renset hepatitis B antigen (HBgAG) ved 40 ^ug/ml gøres sur til pH 2 ved stuetemperatur under tilsætning af en normal saltsyre under omrøring. 56 ml af 1 mg/ml opløsning af krystallinsk pepsin i destilleret vand tilsættes. Slutkoncentrationen af pepsin var 1 ^ug/ml HBgAg-portionen inkuberes i 16 timer ved 37° C og neutraliseres til pH=7 ved tilsætning af 1 N natriumhydroxid.
Den pepsin-nedbrudte portion koncentreres 295 gange ved ultrafiltrering under anvendelse af et Amicon-apparat, udstyret med en XM100A membran. Pepsin-nedbrudt ikke-antigen-protein føres gennem membranen ind i ultrafiltratet, men HB Ag-partikler til-bageholdes.
Fast urinstof sættes til koncentratet til dannelse af en 4 - 8 molær urinstofopløsning, som derefter inkuberes i yderligere 16 timer ved 37° C. Det urinstofbehandlede HB Ag-koncentrat klares ved filtrering gennem et fiberglasfilter og chromatograferes på "Sephadex^" G-150. Antigenet elueres fra det tomme rumfang, og det er befriet for urinstof, pepsin og andre proteinurenheder. Fraktionen indeholdende HB Ag fortyndes til en praktisk værdi og sterilfiltreres. Formalin tilsættes til en koncentration på 90 -100 yug/ml i 72 timer ved 36° C til yderligere sikring overfor mulig tilstedeværelse af infektiøs virus. Efter afslutning af formalinbehandlingen neutraliseres overskud af formaldehyd med natriumbisulfit. Det rensede produkt har et Egyg ^ på 52,3 sammenlignet med et E^yg ^ på 23,8 for zonecentrifugeringsudgangsmaterialet. Det rensede produkt består af sfæriske partikler med en diameter på 18 - 22 nm og et UV-spektrum som vist på tegningen.
En opsummering af rensning, biologiske og fysiske egenskaber fremgår af efterfølgende tabel.
9 145347
Zonecentrifuge- Slutring sprodukt Produkt 0D 280 nm 0,095 0,115 OD 26q m 0,085 0,082
Volumen (ml) 56.000 23-300
Total OD ojan 5.320 2.680
Lowry-protein (^ug/ml) 40,0 22,0
Total protein (mg) 2.240 513 % Proteinfjernelse - 77 CF enheder pr. ml 64 128
Total CF enheder 3.584.000, 2.982.000 % udbytte i CF 83 CF enheder pr. ^ug/ml protein 1,6 5»8 RIA enheder/ml 2.000 8.000 TOTAL, RIA enheder 112.000.000 180.000.000 % udbytte i RIA - 160 RIA enheder pr. yug protein 50 364 EKSEMPEL 2
Ved subcutan injektion af en enkelt dosis (1,0 ml) indeholdende 20 microgram hepatitis B overflade antigen fremstillet ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen, udvikler fire ud af seks chimpanser antistoffer. Efter to tilsvarende yderligere doser med fire ugers mellemrum udvikler fem ud af seks chimpanser antistoffer.
EKSEMPEL 3
Seksten chimpanser blev opdelt i tre grupper. Gruppe A (seks chimpanser) fik indsprøjtet intravenøst 1,0 ml hepatitis B virus; gruppe B (fire chimpanser) fik intravenøs indsprøjtet 1,0 ml af hepatitis B overflade antigen fremstillet ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen; gruppe C (seks chimpanser) var kontrolgruppen og blev ikke podet. Alle chimpanserne fra gruppe A havde tegn på klinisk hepatitis B infektion (enten antignemia, enzym-forøgelse og/eller antistof-reaktion) i løbet af 40 uger.
Ingen af chimpanserne fra gruppe B eller C udviste tegn på klinisk hepatitis B infektion i løbet af samme periode på 40 uger.
10 145347 EKSEMPEL 4
Tre grupper marekatte (seks aber i hver gruppe) fik indgivet 3 subcutane injektioner med 4 ugers mellemrum på 1,0 ml doser indeholdende forskellige mængder af det ved fremgangsmåden ifølge- opfindelsen rensede antigen. Efterfølgende tabel viser den indgivne dosis i hver gruppe og i hver injektion og antallet af dyr ud af det totale antal i den pågældende gruppe, som udviser antistofdannelse forud for næste injektion eller inden for fire uger efter sidste injektion.
Vaccine-dosis Antal dyr, som udviser ffl’U-PP6 _(jPg/ml) antistof-respons_
Uge 0 Uge 4 Uge 8 Å 20 2/6 2/6 5/6 B 2 0/6 1/6 4/6 c 0,5 0/6 1/6 2/6
Det ses, at mere end 50% af dyrene udviste et antistof-respons efter tre doser af vaccinen ved en dosisstørrelse på 2 microgram.
EKSEMPEL 5
Tre grupper marsvin (14 i hver gruppe) fik subcutan indsprøjtning med intervaller på 0, 14 og 56 dage med 1,0 ml doser indeholdende forskellige mængder af det ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen rensede antigen. Efterfølgende tabel viser dosis-størrelsen, som indgives på hver gruppe, idet hver injektion og antal dyr ud af det totale antal i gruppen viser antistofdannelsen, som blev påvist efter 0, 28, 56 og 84 dage. Nogle dyr døde før forsøgets afslutning.
Vaccine-dosis Antal dyr med antistof-
Gruppe (^ug/ml) _respons_
Dag 0 Dag 28 Dag 56 Dag 84 A 20 0/14 12/14 10/11 10/10 B 2 0/14 7/14 4/11 10/10 C 0,5 0/14 2/14 3/14 10/12
Det ses, at over 80% af marsvinene udviste antistofdannelse efter tre doser vaccine med dosisstørrelser på 0,5 microgram
DK190776A 1975-05-14 1976-04-28 Fremgangsmaade til rensning af hepatitis b antigen DK145347C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US57748375 1975-05-14
US05/577,483 US4017360A (en) 1975-05-14 1975-05-14 Method for purifying hepatitis B antigen

Publications (3)

Publication Number Publication Date
DK190776A DK190776A (da) 1976-11-15
DK145347B true DK145347B (da) 1982-11-01
DK145347C DK145347C (da) 1983-05-02

Family

ID=24308922

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK190776A DK145347C (da) 1975-05-14 1976-04-28 Fremgangsmaade til rensning af hepatitis b antigen

Country Status (15)

Country Link
US (1) US4017360A (da)
JP (2) JPS51139619A (da)
AU (1) AU504454B2 (da)
BE (1) BE841811A (da)
CA (1) CA1066191A (da)
CH (1) CH629668A5 (da)
CY (1) CY1034A (da)
DE (1) DE2621276A1 (da)
DK (1) DK145347C (da)
ES (1) ES447858A1 (da)
FR (1) FR2315947A1 (da)
GB (1) GB1488774A (da)
HK (1) HK86779A (da)
NL (1) NL188621C (da)
SE (1) SE431161B (da)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE437329B (sv) * 1975-03-14 1985-02-25 Community Blood Council Sett att ur blodserum framstella vaccin mot virushepatit
US4129646A (en) * 1976-11-02 1978-12-12 Merck & Co., Inc. Isolating hepatitis B Dane particles
GB1554811A (en) * 1977-02-23 1979-10-31 Merck & Co Inc Purifying hepatitis b surface antigen
EP0005408B1 (en) * 1978-05-08 1982-12-01 Merck & Co. Inc. A process for the direct extraction of small size particles of up to 50 nm from a protein aceous liquid
US4217418A (en) * 1978-05-08 1980-08-12 Merck & Co., Inc. Recovery of small particles by flow centrifugation
ZA792485B (en) * 1978-06-07 1980-06-25 New York Blood Center Inc Vaccine for active immunization containing hepatitis b surface and/or e-antigens
US4181713A (en) * 1978-10-30 1980-01-01 Merck & Co., Inc. Isolation of HBs Ag
US4395395A (en) * 1979-05-21 1983-07-26 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Detection of non-A, non-B hepatitis associated antigen
DE2935634C2 (de) * 1979-09-04 1981-12-10 Battelle-Institut E.V., 6000 Frankfurt Tiermodell zur Prüfung der Inaktivierung von Impfstoffen gegen Virushepatitis Typ B und zur Prüfung von Chemotherapeutika gegen Virushepatitis Typ A
FR2470795A1 (fr) * 1979-12-07 1981-06-12 Pasteur Institut Procede de purification de particules d'origine biologique, notamment de l'antigene de surface du virus de l'hepatite b (aghbs) et les produits obtenus
US4349539A (en) * 1980-08-15 1982-09-14 Merck & Co., Inc. Separation of hepatitis B surface antigen
PL133476B1 (en) * 1981-06-10 1985-06-29 Akad Medyczna Method of obtaining pure antigen hba from human serum
AU8746582A (en) * 1981-09-02 1983-03-10 Biogen N.V. Hepatitis b virus e type antigen
GB8321789D0 (en) * 1983-08-12 1983-09-14 Biogen Nv Vaccines and compositions against hepatitis
US4639371A (en) * 1984-10-02 1987-01-27 New York Blood Center, Inc. Hepatitis B antigenic compositions and vaccines against hepatitis B derived therefrom
JPS61158798A (ja) * 1984-12-28 1986-07-18 Japan Found Cancer Res B型肝炎ウイルス表面抗原の製造法
US5026828A (en) * 1987-02-27 1991-06-25 Merck & Co., Inc. Method of purifying recombinant pres-1/S-2/S/S hepatitis B antigen from yeast
JPS63246335A (ja) * 1987-09-17 1988-10-13 メルク エンド カムパニー インコーポレーテツド 肝炎b抗原
US5030720A (en) * 1988-09-01 1991-07-09 Merck & Co., Inc. Pres2+S hepatitis B vaccine derived from plasma

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3636191A (en) * 1969-10-08 1972-01-18 Cancer Res Inst Vaccine against viral hepatitis and process
JPS5523254B2 (da) * 1974-01-28 1980-06-21

Also Published As

Publication number Publication date
BE841811A (fr) 1976-11-16
DK190776A (da) 1976-11-15
NL188621C (nl) 1992-08-17
NL7604429A (nl) 1976-11-16
JPS51139619A (en) 1976-12-02
US4017360A (en) 1977-04-12
GB1488774A (en) 1977-10-12
FR2315947B1 (da) 1979-03-30
DK145347C (da) 1983-05-02
DE2621276C2 (da) 1988-05-11
SE7604818L (sv) 1976-11-15
JPS6112894B2 (da) 1986-04-10
CA1066191A (en) 1979-11-13
CY1034A (en) 1980-08-01
JPS58180432A (ja) 1983-10-21
AU1361976A (en) 1977-11-10
CH629668A5 (de) 1982-05-14
DE2621276A1 (de) 1976-11-25
SE431161B (sv) 1984-01-23
FR2315947A1 (fr) 1977-01-28
NL188621B (nl) 1992-03-16
HK86779A (en) 1979-12-28
JPS6345645B2 (da) 1988-09-12
AU504454B2 (en) 1979-10-18
ES447858A1 (es) 1977-07-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DK145347B (da) Fremgangsmaade til rensning af hepatitis b antigen
Tabor The epidemiology of virus transmission by plasma derivatives: clinical studies verifying the lack of
US4542016A (en) Non-a non-b hepatitis surface antigen useful for the preparation of vaccines and methods of use
US5151023A (en) Hepatitis a,b-combined adjuvanted vaccine
JP3297433B2 (ja) ウイルスで汚染された薬理組成物中のウイルスの不活性化方法
Yap The viral safety of intravenous immune globulin
US4174388A (en) Method for preparing hepatitis B immune globulin
Kedda et al. An outbreak of hepatitis A among South African patients with hemophilia: evidence implicating contaminated factor VIII concentrate as the source
RU2447898C2 (ru) Вакцина ipv-dpt
US4164565A (en) Vaccine for active immunization containing hepatitis B surface antigen and associated antigen
US4695454A (en) Process for preparing hepatitis B surface antigen containing particles in novel forms which are highly immunogenic
US4639371A (en) Hepatitis B antigenic compositions and vaccines against hepatitis B derived therefrom
US4118478A (en) Vaccine manufacture for active immunization containing hepatitis B surface antigen and associated antigen
JP4523164B2 (ja) ワクチン
WO1981000050A1 (en) Process for producing hepatitis b vaccine
EP0005864B1 (en) Antigenic composition useful as a vaccine or vaccine intermediate, and process for preparing same
Schlumberger et al. Antigenic and immunogenic properties of components contained in rabies virus-infected tissue culture fluids
BG100212A (bg) Метод за пречистване на повърхностен антиген на вируса на хепатит в, съдържащ пептида pres2
US4118477A (en) Hepatitis B antigen
SU728720A3 (ru) Способ получени вакцины против гепатита в
RU2144379C1 (ru) Противовирусный препарат и способ получения иммуноглобулина для профилактики и лечения вирусных заболеваний
JPS584729A (ja) 人の血漿からの純粋肝炎b表面抗原の製造法
RU2033182C1 (ru) Способ получения живой гриппозной вакцины
Stephan et al. Sterilized hepatitis B (surface) antigen for production of specific antisera
Lee et al. Vaccines for prevention of viral hepatitis

Legal Events

Date Code Title Description
PBP Patent lapsed