DE602006000713T2 - Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer einzelnen Basenfehlanpaarung durch die Verwendung von "hurdle" DNAs und Sonden mit artifiziellen Fehlpaarungen - Google Patents

Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer einzelnen Basenfehlanpaarung durch die Verwendung von "hurdle" DNAs und Sonden mit artifiziellen Fehlpaarungen Download PDF

Info

Publication number
DE602006000713T2
DE602006000713T2 DE602006000713T DE602006000713T DE602006000713T2 DE 602006000713 T2 DE602006000713 T2 DE 602006000713T2 DE 602006000713 T DE602006000713 T DE 602006000713T DE 602006000713 T DE602006000713 T DE 602006000713T DE 602006000713 T2 DE602006000713 T2 DE 602006000713T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
probe
dna
base
mismatch
hurdle
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
DE602006000713T
Other languages
English (en)
Other versions
DE602006000713D1 (de
Inventor
Soo-hyung Taean-eub Hwangseong-si Choi
Jang-seok Seongnam-si Ma
Joon-shik Giheung-dong Yongin-si Park
Ji-young Yeongtong-gu Suwon-si Oh
Jong-Suk Suwon-si Chung
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Samsung Electronics Co Ltd
Original Assignee
Samsung Electronics Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Samsung Electronics Co Ltd filed Critical Samsung Electronics Co Ltd
Publication of DE602006000713D1 publication Critical patent/DE602006000713D1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE602006000713T2 publication Critical patent/DE602006000713T2/de
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6827Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6834Enzymatic or biochemical coupling of nucleic acids to a solid phase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2525/00Reactions involving modified oligonucleotides, nucleic acids, or nucleotides
    • C12Q2525/10Modifications characterised by
    • C12Q2525/185Modifications characterised by incorporating bases where the precise position of the bases in the nucleic acid string is important
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2527/00Reactions demanding special reaction conditions
    • C12Q2527/107Temperature of melting, i.e. Tm
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2537/00Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature
    • C12Q2537/10Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature the purpose or use of
    • C12Q2537/113Heteroduplex formation

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

  • HINTERGRUND DER ERFINDUNG
  • 1. Gebiet der Erfindung
  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zum Verbessern der Unterscheidung eines Einzelbasen-Mismatches unter Verwendung einer "Hurdle" (Basis)-DNA und einer Sonde mit künstlichem Mismatch.
  • 2. Beschreibung des Standes der Technik
  • Ein übliches Verfahren zum Nachweis einer Variation in einer Nukleinsäure-Sequenz hängt von dem spezifischen Erkennen eines komplementären Nukleinsäure-Zielstranges durch einen Oligonukleotid-Strang ab. Wenn die Sonde und das Ziel (Target) nicht identisch sind, ist die Affinität der beiden Stränge füreinander reduziert. Die reduzierte Affinität zeigt sich durch eine Abnahme in der Duplex-Thermostabilität, die üblicherweise verfolgt werden kann durch Messung der Duplex-Schmelztemperatur (Tm). Der Unterschied in Duplex-Schmelztemperaturen (ΔTm) zwischen, auf der einen Seite, einer perfekt passenden Sonde mit einem ersten Ziel und, auf der anderen Seite, der gleichen Sonde mit einem zweiten Ziel, das von dem ersten Ziel um ein Nukleotid unterschiedlich ist, hat sich als bedeutsam beim Nachweis verschiedener Variationen in DNA erwiesen. Wallace, B. R. et al., Nucleic Acids Research 9: 879 (1981) unterschieden zwischen kurzen Oligomeren, die sich in einer einzelnen Base unterscheiden. Nachfolgend verwendeten Conner, B. J. et al., Proceedings of the Nation Academy of Sciences USA 80: 278 (1983) den Wallace-Ansatz, um Punktmutationen im β-Globin-Gen zu untersuchen. Als ein Ergebnis konnte die Duplex-Thermostabilität vernünftig und akkurat vorhergesagt werden auf der Basis von Sequenzen zwischen Sonde und Ziel.
  • Obwohl die Hybridisierung eine sinnvolle und leistungsstarke Technik sein kann, ist sie begrenzt, dahingehend, dass der Stabilitätsunterschied zwischen einem perfekt passenden Duplex und einem Mismatch-Duplex, speziell falls der Mismatch nur eine einzelne Base ausmacht, relativ klein sein kann, was mit einem Unterschied in Tm zwischen den beiden von nicht mehr als 0,5°C einhergeht. Siehe Tibanyenda, N. et al., Eur. J. Biochem. 139: 19 (1984) und Ebel, S. et al., Biochem. 31: 12083 (1992). Noch wichtiger ist es, dass verstan den ist, dass mit zunehmender Länge der Oligomersonde der negative Effekt eines Einzelbasen-Mismatches auf die gesamte Duplex-Stabilität abnimmt. Dies ist eine wichtige Beschränkung, da es wünschenswert ist, die Sondenlänge ansteigen zu lassen, um die Hybridisierungsspezifität für einzelne Gene zu erhöhen, während schwach verwandte Gene ausgeschlossen werden sollen. Folglich ist die Fähigkeit, spezifisch eng miteinander verwandte Gene voneinander zu unterscheiden, nicht ausreichend entwickelt mit Blick auf den Wunsch, Hybridierungsuntersuchungen auf zunehmend enge Regionen des Genoms zu fokussieren. Was gebraucht wird, ist ein Verfahren, das die Fähigkeit verbessert, eng miteinander verwandte Gene zu unterscheiden durch Erhöhen des Unterschiedes in den Schmelztemperaturen von Duplizes, die zwischen Sonde und Ziel ausgebildet werden.
  • Das US-Patent Nr. 6,764,693 offenbart ein Nukleinsäure-Hybridiserungsverfahren zum Verbessern der Fähigkeit, Mismatches eines Kontroll-Nukleinsäure-ziels und eines Mutanten-Nukleinsäure-Ziels nachzuweisen, einschließend Sequenzvariation unter Verwendung eines modifizierten Oligonukleotids. Ein künstlicher Mismatch wird induziert unter Verwendung von 1-(2'-Deoxy-β-D-ribofuranosyl)-3-Nitropyrrol als ein Basenanalog, um den Unterschied für ein Einzelbasen-Mismatch zu erhöhen. Jedoch ist die Synthese des Basenanalogs schwierig und es gibt keine Beschreibung mit Blick auf den Blockadeeffekt aufgrund der Hinzufügung einer "Hurdle"-DNA der vorliegenden Erfindung.
  • Die Erfinder der vorliegenden Erfindung haben ein Verfahren untersucht zum Verbessern des Nachweises eines Unterschiedes für einen einzelnen Basen-Mismatch, basierend auf herkömmlichen Technologien, die oben beschrieben werden, und haben herausgefunden, dass unter Verwendung der Zugabe einer "Hurdle"-DNA und der Variation einer Sondenbase, die Diskriminierung für einen einzelnen Basen-Mismatch erhöht wird. Folglich wurde die vorliegende Erfindung realisiert.
  • ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung stellt ein Verfahren zur Verfügung zum Erhöhen der Unterscheidung für einen einzelnen Basen-Mismatch unter Verwendung einer "Hurdle"-DNA und einer künstlichen Mismatch-Sonde.
  • Entsprechend einem Aspekt der vorliegenden Erfindung wird ein Verfahren zur Verfügung gestellt, zur Verbesserung der Unterscheidung von einer Ziel-DNA, die eine polymorphe Stelle hat, wobei das Verfahren folgendes umfasst: Synthetisieren einer ersten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer Sonde, welche vollständig komplementär mit einer Ziel-DNA, die eine polymorphe Stelle aufweist, ist, durch eine natürliche Mismatch-Base und Synthetisieren einer zweiten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer anderen Sonde, die einen Einzelbasen-Mismatch an einer Position aufweist, welche zur polymorphen Stelle der Ziel-DNA korrespondiert, mit einer natürlichen Mismatch-Base; Synthetisieren einer ersten Basis-DNA, die vollständig komplementär zur ersten Sonde ist und kürzer ist als die erste Sonde, sowie einer zweiten Basis-DNA, welche vollständig komplementär zur zweiten Sonde ist, und kürzer als die zweite Sonde ist; Immobilisieren der ersten und zweiten Sonden auf einem Substrat; Hybridisieren der immobilisierten ersten und zweiten Sonden mit den ersten bzw. zweiten Basis-DNAs; und Hybridisieren der Ziel-DNA mit den Hybriden.
  • KURZE BESCHREIBUNG DER ZEICHNUNGEN
  • Die oben genannten weiteren Merkmale sowie Vorteile der Erfindung werden offensichtlicher werden, folgt man der Beschreibung der beispielhaften Ausführungsformen davon im Detail unter Verweis auf die beigefügten Zeichnungen; in diesen:
  • illustriert 1 schematisch ein Verfahren zum Erhöhen der Unterscheidung nach einem Einzelbasen-Mismatch unter Verwendung einer "Hurdle"-DNA und einer künstlich mit Mismatch versehenen Sonde entsprechend einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung;
  • 2 illustriert schematisch die relative Stabilität eines Hybrids einer künstlich mit Mismatch versehenen Sonde und einer "Hurdle"-DNA sowie einem Hybrid, der künstlich mit Mismatch versehenen Sonde und einer Ziel-DNA;
  • 3 illustriert schematisch die relative Stabilität eines Hybrids einer normalen Sonde und einer "Hurdle"-DNA sowie eines Hybrids der normalen Sonde und einer Ziel-DNA;
  • 4 illustriert Tm von Hybriden von künstlich mit Mismatch versehenen Sonden und "Hurdle"-DNAs und Tm von Hybriden, der künstlich mit Mismatch versehenen Sonden und einer Ziel-DNA;
  • 5 illustriert die Fluoreszenz-Intensität von Hybriden einer CY-3 gelabelten Ziel-DNA und einem jeden der vier Sätze von verschiedenen Sonden gemäß Tabelle 1;
  • 6 ist ein Diagramm, das ein Verhältnis von PM (perfekt passenden, perfectly matched)/MM (mit Mismatch versehenen, mismatched) eines jeden Sondensatzes gemäß Tabelle 1 illustriert; und
  • 7 ist ein Graph ist, der ein PM/MM-Verhältnis eines jeden Probensatzes von Tabelle 2 illustriert.
  • DETAILLIERTE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
  • Ein Verfahren zum Erhöhen der Diskriminierung für ein Ziel (Target) mit einer polymorphen Stelle gemäß einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung schließt folgendes ein: Synthetisieren einer ersten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer Sonde, welche vollständig komplementär mit einer Ziel-DNA, die eine polymorphe Stelle aufweist, ist, durch eine natürliche Mismatch-Base und Synthetisieren einer zweiten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer anderen Sonde, die einen Einzelbasen-Mismatch an einer Position aufweist, welche zur polymorphen Stelle der Ziel-DNA korrespondiert, mit einer natürlichen Mismatch-Base; Synthetisieren einer ersten Basis-DNA, die vollständig komplementär zur ersten Sonde ist und kürzer ist als die erste Sonde, sowie einer zweiten Basis-DNA, welche vollständig komplementär zur zweiten Sonde ist, und kürzer als die zweite Sonde ist; Immobilisieren der ersten und zweiten Sonden auf einem Substrat; Hybridisieren der immobilisierten ersten und zweiten Sonden mit den ersten bzw. zweiten Basis-DNAs; und Hybridisieren der Ziel-DNA mit den Hybriden. Hier bindet die Ziel-DNA an die Sonden-DNA im kompetitiven Modus mit den "Hurdle"-DNAs.
  • In dem Verfahren der vorliegenden Erfindung werden eine "Hurdle"-DNA und eine Sonde mit einer modifizierten Base verwendet, um die Unterscheidung für einen Einzelbasen-Mismatch in einem DNA-Chip zu erhöhen. 1 illustriert schematisch ein Verfahren zum Erhöhen der Unterscheidung für einen Einzelbasen-Mismatch unter Verwendung einer "Hudle"-DNA und einer künstlich mit Mismatch versehenen Sonde entsprechend einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung. Es wird Bezug genommen auf 1; eine erste Sonde und eine Ziel-DNA sind zueinander komplementär in allen Abschnitten, abgesehen von der einen mit künstlichen Mismatch versehen Base (T-T, gekennzeichnet durch einen Pfeil) und eine zweite Sonde schließt eine mit Mismatch versehene Base (C-C) auf einer Ziel-DNA ein, sowie eine künstlich mit Mismatch versehene Base (T-T, angegeben durch einen Pfeil). Eine erste "Hurdle"-DNA ist vollständig komplementär zur ersten Sonde und kürzer als die erste Sonde. Eine zweite "Hurdle"-DNA ist vollständig komplementär zu der zweiten Sonde und ist kürzer als die zweite Sonde. Die erste "Hurdle"-DNA hat die gleiche Sequenzlänge, wie die zweite "Hurdle"-DNA.
  • Für die Zwecke der vorliegenden Patentanmeldung kann eine "Target-DNA" (Ziel-DNA) ein Chromosom oder jeglicher Abschnitt davon sein, oder kann ein rekombinantes Nukleinsäuremolekül sein, wie z. B. ein Plasmid, Oligonukleotid oder ein anderes Nukleinsäurefragment und kann natürlich auftretend sein oder synthetisch sein. Wenn das Target eine DNA ist, versteht sich, dass die DNA bereitgestellt wird zum Zwecke der Verwendung in dem Verfahren, oder eine einzelsträngige Form darstellt, die in der Lage ist, mit einer einzelsträngigen Oligonukleotidsonde zu hybridisieren.
  • In einem herkömmlichen Verfahren wird eine künstlich mit Mismatch versehene Base in eine Sonde eingebracht, um einen Einzelbasen-Mismatch zu unterscheiden, ohne dass die erste "Hurdle"-DNA verwendet wird und die zweite "Hurdle"-DNA. Jedoch in dem Verfahren der vorliegenden Erfindung wird die "Hurdle"-DNA hybridisiert mit der Sonde vor der Hybridisierung der Ziel-DNA mit der Sonde. Da die erste "Hurdle"-DNA kürzer ist als die Ziel-DNA, ist der Schmelzpunkt "TN" des Hybrids der ersten "Hurdle"-DNA und ersten Sonde niedriger als derjenige des Hybrids der Ziel-DNA und der ersten Sonde. Folglich tritt unter geeigneten Hybridiserungsbedingungen eine Substitution der ersten "Hurdle"-DNA, die zuvor mit der ersten Sonde hybridisiert wurde, durch die Ziel-DNA auf. Inzwischen ist, obwohl die zweite "Hurdle"-DNA kürzer ist als die Ziel-DNA, der Schmelzpunkt (TM) des Hybrids der zweiten "Hurdle"-DNA und der zweiten Sonde höher als derjenige des Hybrids der Ziel-DNA und der zweiten Sonde (4). Dies liegt daran, dass die zweite Sonde eine mit Mismatch versehene Base einschließt. Folglich tritt unter geeigneten Hybridisierungsbedingungen Substitutionen der zweiten "Hurdle"-DNA, die zuvor mit der zweiten Sonde hybridisiert wurde, durch die Ziel-DNA nicht auf. Folglich verhindert die zweite "Hurdle"-DNA, dass eine nicht komplementäre Ziel-DNA mit der zweiten Sonde hybridisiert.
  • Das heißt, während die erste "Hurdle"-DNA leicht durch die Ziel-DNA substituiert wird, wird die zweite "Hurdle"-DNA nicht leicht durch die Ziel-DNA substituiert. Daher hybridisiert die Ziel-DNA leichter mit der ersten Sonde, als die zweite Sonde. Folglich kann eine Fähigkeit, einen Einzelbasen-Mismatch zu unterscheiden, verbessert werden. Dies kann leichter beobachtet werden, wenn eine mit Fluoreszenz gelabelte Ziel-DNA in dem Experiment verwendet wird und ein Unterschied in der relativen Intensität in der Fluoreszenz, d. h. ein Verhältnis einer Fluoreszenzintensität der Ziel-DNA, hybridisiert mit der ersten Sonde mit Blick auf eine Fluoreszenzintensität der Ziel-DNA, hybridisiert mit der zweiten Sonde, verwendet wird. Wenn ein Unterschied in der Fluoreszenz-Intensität zunimmt, nimmt die Fähigkeit einen Einzelbasen-Mismatch zu unterscheiden, zu.
  • Desweiteren kann die Mismatch-Base lokalisiert werden an einer Position, die mit einer polymorphen Stelle des Ziels korrespondiert. Single nucleotide polymorphism (SNP) bezieht sich auf eine polymorphe Stelle auf dem Target. Single nucleotide polymorphism (SNP) bezieht sich auf eine oder auf einen Bereich von Zehnern von Basen-Variationen unter drei Milliarden Basen-Sequenzen eines Chromosoms in einem Zellkern von unterschiedlichen Individuen. Eine beispielhafte Erkrankung, die von dem SNP herrührt, ist Sichelzell-Anämie, welche verursacht wird durch die Substitution einer einzelnen Base an einer spezifischen Stelle durch eine andere Base. Um einen Mismatch, der an einer spezifischen Stelle eines Gens auftritt zu unterscheiden, ist das Verfahren der vorliegenden Erfindung notwendig.
  • In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung können die erste Sonde und die zweite Sonde des weiteren eine Base mit künstlich eingefügtem Mismatch an derselben Position einschließen. 2 illustriert schematisch die relative Stabilität eines Hybrids einer Sonden-DNA und einer "Hurdle"-DNA und eines Hybrids der Sonden-DNA und einer Ziel-DNA, wobei die Sonden-DNA eine mit künstlichem Mismatch versehene Base zum Erhöhen der Unterscheidung für einen Einzelbasen-Mismatch aufweist. In dem Verfahren der vorliegenden Erfindung ist, wenn nur eine "Hurdle"-DNA eingesetzt wird, um einen Einzelbasen-Mismatch zu unterscheiden, ein Unterschied in der Schmelztemperatur zwischen dem Hybrid der ersten Sonde und der Ziel-DNA sowie dem Hybrid der zweiten Sonde und der Ziel-DNA relativ klein und folglich kann eine effiziente Unterscheidung auf einen Einzelbasen-Mismatch nicht erzielt werden. Folglich wird zur effizienteren Unterscheidung eines Einzelbasen-Mismatch eine Base mit künstlich eingeführtem Mismatch in eine Sonde eingebracht (in 2 und 4 wird A in einer ursprünglichen Sonden-Sequenz substituiert durch T an einer Position, die mit einem Pfeil gekennzeichnet ist). Das heißt, wenn eine mit künstlichem Mismatch versehene Base eingebracht wird in die erste Sonde und die zweite Sonde an der gleichen Position, wird die Fähigkeit zur Unterscheidung eines Einzelbasen-Mismatches verbessert, wie in den folgenden Beispielen demonstriert wird.
  • In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung kann die polymorphe Stelle erzeugt werden durch eine Maßnahme ausgewählt aus der Gruppe bestehend aus Substitution, Ad dition und Deletion eines Nukleotids. Obwohl ein Mismatch, der von einer Substitution einer Nukleinsäure anstelle einer Ziel-DNA herrührt, oben beschrieben wurde, sind Addition und Deletion einer Nukleinsäure auch eingeschlossen.
  • In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung kann der künstliche Mismatch erzeugt werden in zwei Nukleotiden. Selbst wenn eine mit künstlichem Mismatch versehene Base in eine Sonde eingebracht werden kann, können zwei oder mehr mit künstlichem Mismatch versehene Basen auch eingebracht werden, um die Unterscheidung auf einen Einzelbasen-Mismatch zu erhöhen. Dies kann in geeigneter Form entsprechend einer Ziel-DNA angewandt werden. Vorzugsweise wird der künstliche Mismatch in zwei Nukleotide erzeugt.
  • In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung können die künstlichen Mismatches kontinuierlich angeordnet werden, oder durch ein oder mehrere Nukleotide unterschieden werden. Wenn zwei oder mehr künstliche Mismatches erzeugt werden, kann eine mit künstlichen Mismatches versehene Base eingebracht werden in ein Nukleotid und eine weitere mit künstlichen Mitmatches versehene Base kann in ein Nukleotid eingebracht werden, das benachbart ist zu dem mit Mismatch versehenen Nukleotid. Alternativ kann eine mit künstlichen Mismatches versehen Base eingebracht werden in ein Nukleotid und eine weitere mit künstlichen Mismatches versehene Base kann eingebracht werden in ein Nukleotid, abgetrennt von dem mit Mismatch versehenen Nukleotid durch ein oder mehrere Nukleotide. Dies kann entsprechend einer Ziel-DNA in geeigneter Form angewandt werden. Wenn die künstlichen Mismatches durch eine oder mehrere Nukleotide getrennt sind, sind sie vorzugsweise um 8 bis 20 Nukleotide voneinander getrennt.
  • In einer Ausführungsform der vorliegenden Erfindung können die polymorphe Stelle und der künstliche Mismatch getrennt sein, um ein oder mehrere Nukleotide. Ein Mismatch, der in einer Region vorliegt, in der Hybridisierung der "Hurdle"-DNA auftritt, und ein künstlicher Mismatch können durch ein oder mehrere Nukleotide, vorzugsweise durch 3 bis 5 Nukleotide, getrennt werden.
  • Die vorliegende Erfindung wird nun beschrieben werden im größeren Detail unter Verweis auf die folgenden Beispiele. Die folgenden Beispiele dienen für illustrative Zwecke allein und sie sind nicht dazu gedacht, den Umfang der Erfindung zu begrenzen.
  • Beispiel 1: Unterscheidung für eine Einzelbasen-substituierte DNA.
  • Um den Effekt der Unterscheidung einer Einzelbasen-substituierten DNA zu untersuchen, wurden die vier unterschiedlichen folgenden Sonden-Sätze eingesetzt. Tabelle 1
    Figure 00080001
    Figure 00090001
  • Vier unterschiedliche DNA-Sondensätze, wie in Tabelle 1 repräsentiert, wurden auf einem mit Amino-Silan überzogenen Wafer immobilisiert unter Verwendung einer herkömmlichen Immobilisierungstechnik in einer Konzentration von 1 μM. Die Hybridisierung einer "Hurdle"-DNA an eine Sonden-DNA wurde durchgeführt durch Umsetzen von 1 μM "Hurdle"-DNA mit der DNA-Sonde bei 40°C für 1 Stunde.
  • Die erstellten vier unterschiedlichen DNA-Sonden-Sätze wurden hybridisiert mit einem 2 nM CY-3 gelabelten Ziel-Oligomer (5'-TAGGCATACTCATTGTCAT-3') (SEQ ID No: 7, das perfekt mit der ersten Sonde des normalen Sondensatzes, der in Tabelle 1 offenbart wird, zusammenpasste und mit dem zweiten Sondensatz ein Mismatch in einer Base aufwies) bei 40°C für 1 Stunde. Anschließend wurde der Chip gewaschen mit einer 3 × SSC-Lösung für 5 Minuten unter mildem Rühren und anschließend weiter gewaschen mit 1 × SSC-Lösung für 5 Minuten. Nachdem der Chip getrocknet worden war, wurde die Fluoreszenzintensität gemessen unter Verwendung eines Scanner (CY-3) bei 532 nm, um ein Verhältnis eines Signals der Ziel-DNA, gebunden an die erste Sonde zu einem Signal der Ziel-DNA, gebunden an die zweite Sonde [PM (perfekt passend, perfectly matched)/MM (mismatched, Mismatch)]. zu bestimmen. Die Schmelzpunktwerte wurden berechnet unter Verwendung eines Santalucia Parameter (1998).
  • 3 illustriert die relative Stabilität eines Hybrids einer normalen Sonden-DNA und einer "Hurdle"-DNA sowie eines Hybrids einer normalen Sonden-DNA und einer Ziel-DNA. Nun wird auf 3 Bezug genommen; als ein Ergebnis des Berechnens des TMs unter Verwendung des Sondensatzes Nr. 3 war der Tm des Hybrids der ersten Sonde und der Ziel-DNA höher als der Tm des Hybrids der ersten Sonde und der ersten "Hurdle"-DNA und folglich war das Hybrid der ersten Sonden- und der Ziel-DNA stabiler. Folglich konnte die erste "Hurdle"-DNA leicht substituiert werden durch die Ziel-DNA. Desweiteren wies das Hybrid der zweiten Sonde und der Ziel-DNA einen Schmelzpunkt auf, der höher war als derjenige des Hybrids der zweiten Sonde und der zweiten "Hurdle"-DNA und folglich war das Hybrid der zweiten Sonde und der Ziel-DNA stabiler. Folglich konnte die zweite "Hurdle"-DNA leicht substituiert werden durch die Ziel-DNA. Dies ist ein Resultat, das im Gegensatz steht zu der Aufgabe der vorliegenden Erfindung, welche erforderlich macht, dass die erste "Hurdle"-DNA leicht substituiert sein sollte durch die Ziel-DNA und die zweite "Hurdle"-DNA nicht leicht substituiert werden sollte durch die Ziel-DNA. Jedoch wird dieses Resultat erhalten aus einem Beispiel der vorliegenden Erfindung.
  • Folglich wurde eine Basen-Variation in die erste Sonde und die zweite Sonde an der gleichen Position eingebracht, um die Fähigkeit, einen Einzelbasen-Mismatch zu unterscheiden, zu verbessern. 4 illustriert den Schmelzpunkt eines Hybrids einer mit künstlichem Mismatch versehenen Sonde und einer "Hurdle"-DNA sowie den Tm eines Hybrids einer mit künstlichem Mismatch versehenen Sonde und einer Ziel-DNA. Nun wird auf 4 Bezug genommen; eine Basenvariation (A→T) wurde an der Stelle eingebracht, die mit einem Pfeil gekennzeichnet wurde und Tm-Werte wurden berechnet. Als ein Ergebnis wurde der Tm des Hybrids der ersten Sonde und der ersten "Hurdle"-DNA nicht verändert und der Tm des Hybrids der ersten Sonde und der Ziel-DNA reduzierte sich von 63,5°C auf 55,2°C. Jedoch wies das Hybrid der ersten Sonde und der Ziel-DNA immer noch einen Tm auf, der höher war als derjenige des Hybrids der ersten Sonde und der ersten "Hurdle"-DNA und war folglich stabiler. Daher kann die erste "Hurdle-DNA leicht substituiert werden durch die Ziel-DNA. Inzwischen bliebt der Tm des Hybrids der zweiten Sonde und der zweiten Hurdle-DNA unverändert und der Tm des Hybrids der zweiten Sonde und der Ziel-DNA reduzierte sich von 54,7°C auf 44,2°C. Jedoch das Hybrid der zweiten Sonde und der Ziel-DNA wies einen Tm auf, der niedriger war als beim Hybrid der zweiten Sonde und der zweiten "Hurdle"-DNA und war folglich weniger stabil. Daher kann die zweite "Hurdle"-DNA nicht leicht substituiert werden durch die Ziel-DNA. Dies ist das Ergebnis, das mit der Aufgabe der vorliegenden Erfindung zusammenfällt, welche erforderlich macht, dass die erste "Hurdle"-DNA leicht substituiert werden sollte und die zweite "Hurdle"-DNA nicht leicht substituiert werden sollte. Desweiteren passt dieses Ergebnis mit dem PM/MM-Verhältnis, erhalten nach Hybridisieren der Ziel-DNA mit den Sonden (siehe 5) zusammen.
  • 5 illustriert die Fluoreszenz-Intensität, gemessen nach Hybridisieren der CY-3 gelabelten Ziel-DNA mit vier unterschiedlichen Sondensätzen. 6 ist ein Diagramm, der das PM/MM-Verhältnis einer jeden Sonde illustriert (normal = Sondensatz #1, Hurdle = Sondensatz #3, Hurdle + Basen – Variation = Sondensatz #4, Basen-Variation = Sondensatz #2). Nun wird auf die 5 und 6 Bezug genommen; das Einbringen der "Hurdle"-DNA und einer Basen-Variation erhöht signifikant das PM/MM-Verhältnis im Vergleich zum normalen Sondensatz. Auch das Einbringen von nur einer Basen-Variation erhöhte das PM/MM-Verhältnis im Vergleich zum normalen Sondensatz. Jedoch das Einbringen von nur einer "Hurdle"-DNA zeigte, dass das PM/MM-Verhältnis nahezu identisch ist mit dem normalen Sondensatz. Jedoch können die Ergebnisse abhängig sein von der jeweiligen Sequenz und der Länge einer Sonde sowie der Länge einer "Hurdle"-DNA. Das heißt, wenn die Sequenz und die Länge einer Sonde sowie die Länge einer "Hurdle"-DNA geeignet ausgewählt werden, kann der Effekt der vorliegenden Erfindung erhalten werden, selbst bei Einbringen von nur einer "Hurdle"-DNA.
  • Beispiel 2: Unterscheidung auf Einzelbasen-insertierte DNA
  • Um eine Unterscheidung auf eine Einzelbasen-insertierte DNA zu untersuchen, wurden fünf unterschiedliche Sondensätze, wie in Tabelle 2 dargestellt, verwendet. Tabelle 2
    Figure 00110001
    Figure 00120001
  • Die experimentelle Prozedur war die gleiche, wie diejenige, beschrieben in Beispiel 1 und die Ziel-DNA-Sequenz war 5'-tgctgacAGGGGGGAggggg-3' (SEQ ID No: 18).
  • 7 ist eine Diagramm, das das PM/MM-Verhältnis eines jeden Sondensatzes von Tabelle 2 illustriert (normal = Sondensatz #1, 1 MM = Sondensatz #2, 2 MM = Sondensatz #3, 1 MM + H = Sondensatz #4, 2 MM + H = Sondensatz #5). Nun wird auf 7 Bezug genommen; es ist offensichtlich, dass das Einbringen der "Hurdle"-DNA und von zwei Basen-Mismatches signifikant das PM/MM-Verhältnis im Vergleich zum normalen Sondensatz erhöht. Es kann auch gesehen werden, dass das Einbringen der "Hurdle"-DNA und einem Basen-Mismatch das PM/MM-Verhältnis erhöhte im Vergleich zum normalen Sondensatz.
  • Wie oben beschrieben, kann das Hinzufügen einer "Hurdle"-DNA und die Variation einer Sondenbase die Fähigkeit des Unterscheidens eines Einzelbasen-Mismatches erhöhen.
  • Figure 00140001
  • Figure 00150001
  • Figure 00160001
  • Figure 00170001
  • Figure 00180001
  • Figure 00190001
  • Figure 00200001

Claims (8)

  1. Ein Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer Ziel-DNA, die eine polymorphe Stelle hat, wobei das Verfahren folgendes umfasst: Synthetisieren einer ersten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer Sonde, welche vollständig komplementär mit einer Ziel-DNA, die eine polymorphe Stelle aufweist, ist durch eine natürliche Mismatch-Base und Synthetisieren einer zweiten Sonde durch künstliches Substituieren einer Base einer anderen Sonde, die einen Einzelbasen-Mismatch an einer Position aufweist, welche zur polymorphen Stelle der Ziel-DNA korrespondiert, mit einer natürlichen Mismatch-Base; Synthetisieren einer ersten Basis-DNA, die vollständig komplementär zur ersten Sonde ist und kürzer ist als die erste Sonde, sowie einer zweiten Basis-DNA, welche vollständig komplementär zur zweiten Sonde ist, und kürzer als die zweite Sonde ist; Immobilisieren der ersten und zweiten Sonden auf einem Substrat; Hybridisieren der immobilisierten ersten und zweiten Sonden mit den ersten bzw. zweiten Basis-DNAs; und Hybridisieren der Ziel-DNA mit den Hybriden.
  2. Das Verfahren von Anspruch 1, wobei die erste Sonde und die zweite Sonde des weiteren den künstlichen Mismatch an der gleichen Position aufweisen.
  3. Das Verfahren von Anspruch 1, wobei die polymorphe Stelle erzeugt wird durch eine, die ausgewählt ist aus der Gruppe bestehend aus Substitution, Addition und Deletion.
  4. Das Verfahren von Anspruch 2, wobei der künstliche Mismatch erzeugt wird in zwei Nukleotiden.
  5. Das Verfahren von Anspruch 2 oder 4, wobei die künstlichen Mismatches kontinuierlich angeordnet werden, oder getrennt sind durch ein oder mehrere Nukleotide.
  6. Das Verfahren von Anspruch 5, wobei die künstlichen Mismatches durch 8–20 Nukleotide voneinander getrennt sind.
  7. Das Verfahren von Anspruch 1 oder 2, wobei die polymorphe Stelle und der künstliche Mismatch durch ein oder mehrere Nukleotide voneinander getrennt sind.
  8. Das Verfahren von Anspruch 7, wobei die polymorphe Stelle und der künstliche Mismatch durch 3–15 Nukleotide voneinander getrennt sind.
DE602006000713T 2005-01-22 2006-01-12 Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer einzelnen Basenfehlanpaarung durch die Verwendung von "hurdle" DNAs und Sonden mit artifiziellen Fehlpaarungen Active DE602006000713T2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020050006085A KR100682923B1 (ko) 2005-01-22 2005-01-22 허들 dna와 인공적인 미스매치가 도입된 프로브를이용한 단일 염기 미스매치에 대한 구별 향상 방법
KR2005006085 2005-01-22

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE602006000713D1 DE602006000713D1 (de) 2008-04-30
DE602006000713T2 true DE602006000713T2 (de) 2009-04-23

Family

ID=35927710

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE602006000713T Active DE602006000713T2 (de) 2005-01-22 2006-01-12 Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer einzelnen Basenfehlanpaarung durch die Verwendung von "hurdle" DNAs und Sonden mit artifiziellen Fehlpaarungen

Country Status (5)

Country Link
US (1) US7803540B2 (de)
EP (1) EP1683872B1 (de)
JP (1) JP4257335B2 (de)
KR (1) KR100682923B1 (de)
DE (1) DE602006000713T2 (de)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2007293187A1 (en) 2006-06-30 2008-03-13 Rosetta Genomics Ltd A method for detecting nucleic acids
KR100813263B1 (ko) 2006-08-17 2008-03-13 삼성전자주식회사 표적 서열 검출용 프로브 설계 방법 및 상기 프로브를이용한 표적 서열 검출 방법
US7820389B2 (en) * 2007-01-10 2010-10-26 Geneohm Sciences, Inc. Inhibition of mismatch hybridization by a universal competitor DNA
EP3234601B1 (de) * 2014-12-18 2019-10-09 Roche Diagnostics GmbH Verfahren zur interferenzreduzierung
KR102285085B1 (ko) * 2018-04-20 2021-08-06 에피제네론, 인크. 표적 핵산 영역 내의 기준서열에 대한 차이를 검출하는 방법

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6200753B1 (en) * 1993-06-03 2001-03-13 Intelligene Ltd. Detection of nucleic acid sequences
US20030134291A1 (en) * 1993-06-25 2003-07-17 Affymetrix, Inc. Polymorphism detection
US5780233A (en) * 1996-06-06 1998-07-14 Wisconsin Alumni Research Foundation Artificial mismatch hybridization
US6127121A (en) 1998-04-03 2000-10-03 Epoch Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides containing pyrazolo[3,4-D]pyrimidines for hybridization and mismatch discrimination

Also Published As

Publication number Publication date
KR20060085111A (ko) 2006-07-26
US7803540B2 (en) 2010-09-28
JP2006197936A (ja) 2006-08-03
KR100682923B1 (ko) 2007-02-15
EP1683872B1 (de) 2008-03-19
JP4257335B2 (ja) 2009-04-22
DE602006000713D1 (de) 2008-04-30
US20060183142A1 (en) 2006-08-17
EP1683872A1 (de) 2006-07-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69729122T2 (de) KüNSTLICHE FEHLHYBRIDISIERUNG
DE69626111T2 (de) Universale primersequenz zur multiplex dna amplifikation
DE68909266T2 (de) Markierung durch gleichzeitige Ligation und Restriktion.
DE69230873T2 (de) Selektive Restriktionsfragmentenamplifikation: generelles Verfahren für DNS-Fingerprinting
DE69506393T2 (de) Hybridisation-ligitation-verfahren zum nachweis von spezifischen dns sequenzen
EP1204765B1 (de) Verfahren zur relativen quantifizierung der methylierung von cytosin basen in dna-proben
DE69029018T2 (de) Verfahren zum Nachweis von benachbarten und entfernt lokalisierten Allelen als Haplotypen mittels Intronsequenzanalyse
DE69029105T2 (de) Schnellverfahren zum Nachweis und/oder zur Identifizierung einer Einzelbase in einer Nukleinsäuresequenz und seine Verwendungen
DE69230736T2 (de) Verfahren zur Charakterisierung genomischer DNA
DE69233458T2 (de) Nukleinsäuretypisierung durch polymeraseverlängerung von oligonukleotiden unter verwendung von terminator-mischungen
DE69821540T2 (de) Mit einem Adapter versehene kompetitive PCR
DE69220084T2 (de) Diagnostische Anwendungen der Bildung von doppelten D-Loops.
DE60220025T2 (de) Methoden und zusammensetzungen zur vervielfältigung von rna sequenzen
DE69733958T2 (de) Verfahren zur positionierung von klonen mittels molekularen kaemmens
DE69527444T2 (de) Glycosylase verwendende detektion von bestimmten nukleinsäuresequenzen
DE69829402T2 (de) Expressionsprofile in adulten und fötalen organen
DE69421277T2 (de) NUKLEINSäURE-SEQUENZANALYSE DURCH DIE METHODE DER PARALLELEN PRIMEREXTENSION
DE69617274T2 (de) Verfahren und vorrichtung für diagnostischen dns-test
DE69003477T2 (de) Verfahren zum Nachweis von Nucleinsäuren.
DE69004632T2 (de) Verfahren zum Nachweis von Nucleinsäuren.
DE60014067T2 (de) Zusammensetzungen und verfahren zur genetischen analyse
DE602006000713T2 (de) Verfahren zur Verbesserung der Unterscheidung von einer einzelnen Basenfehlanpaarung durch die Verwendung von "hurdle" DNAs und Sonden mit artifiziellen Fehlpaarungen
DE69605803T2 (de) Nachweis von fehlpaarungen durch spaltung mit resolvase auf einem festträger
DE60014350T2 (de) Verfahren zur erkennung und/oder analyse, unter verwendung von primertechniken, von einfachen nukleotidpolymorphismen in restriktionsfragmenten speziell aus amplifizierten restriktionsfragmenten generiert durch aflp
DE69332666T2 (de) Verfahren zur einfachen nukleotid-primer-verlängerung zum nachweis spezifischer allele und dafür geeigneter kit

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition