DE2654331C2 - - Google Patents
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- A01N47/10—Carbamic acid derivatives, i.e. containing the group —O—CO—N<; Thio analogues thereof
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Description
Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf symmetrische N-substituierte
Bis-carbamoylsulfidverbindungen, Verfahren zu ihrer
Herstellung und diese Verbindungen enthaltende pestizide Präparate.
Die erfindungsgemäßen Bis-carbamoylsulfidverbindungen sind durch
die in Anspruch 1 angegebene Formel gekennzeichnet. In dieser
können die Substituenten R und R′ stehen für:
R′:Methyl, Äthyl, Propyl, Isopropyl, n-Butyl, sek.-Butyl;
R₂:Alkythio: SC1-8, wie Methylthio, Äthylthio, Isopropylthio,
Butylthio, sek.-Buthylthio, Hexylthio, Octylthio, Isooctylthio,
Alkoxycarbonyl: analog zu Alkylthio;
R₃:Alkyl, wie Methyl, Äthyl, Propyl, Isopropyl, n-Butyl, Isobutyl,
tert.-Butyl;
Alkylthio, wie bei R₂; R₄, R₅:Alkyl wie bei R₃.
Alkylthio, wie bei R₂; R₄, R₅:Alkyl wie bei R₃.
In den bevorzugten erfindungsgemäßen Verbindungen steht R′ für
Methyl. Die erfindungsgemäßen aktiven Verbindungen zeigen ein sehr
hohes Maß an pestizider Wirksamkeit in Verbindung mit einer wesentlich
verringerten Toxizität gegenüber Säugetieren und verminderter
Phytotoxizität im Vergleich zu anderen bekannten pestiziden Verbindungen
mit einem vergleichbaren Aktivitätsspektrum gegen Insekten-,
Nematoden- und Arachnidenschädlinge. Die Verbindungen der
obigen Formel, in welcher R₂ einen Alkylthioalkylsubstituenten
und R₃ Wasserstoff bedeutet, zeigen zwar, wie festgestellt wurde,
eine gute pestizide Wirksamkeit, ihre Toxizität gegenüber Säugetieren
ist jedoch in bezug auf die Eigenschaften der unter die obige allgemeine
Formel fallenden Verbindungen unannehmbar hoch.
Die symmetrischen Bis-carbamoylsulfide der vorliegenden Erfindung
können nach dem Verfahren gemäß dem folgenden allgemeinen
Reaktionsschema hergestellt werden:
in welchem R und R′ die obige Bedeutung haben.
Zwei Äquivalente des Oximreaktionsteilnehmers (ROH) werden mit dem
Bis-carbamoylfluorid in Anwesenheit von zwei Äquivalenten eines
Säureakzeptors, vorzugsweise in einem inerten Lösungsmittel, umgesetzt.
Der verwendete Säureakzeptor kann ein organische oder
anorganische Base, wie Triäthylamin oder Natrium- oder Kaliumhydroxid,
sein. Weiter wird ein Phasenübertragungsmittel, wie
z. B. ein Kronenäther, verwendet. Es kann jedes
übliche inerte Lösungsmittel, wie Benzol, Toluol, Dioxan, Tetrahydrofuran,
Äthyläther oder Methylenchlorid, verwendet werden.
Diese Reaktion kann auch in einem Zwei-Phasen-System unter Verwendung
einer wäßrigen Lösung einer anorganischen Base als eine
Phase und eines aromatischen Lösungsmittels einschließlich eines
quaternären Ammoniumsalzes als Phasenübertragungsmittel als
zweite Phase durchgeführt werden. Die Reaktionstemperatur ist
nicht entscheidend, wobei die Reaktion bei Zimmertemperatur praktisch
beendet wird. Gegebenenfalls können erhöhte Temperaturen
zur Verminderung der Reaktionszeit angewendet werden.
Ein anderes Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen
symmetrischen Bis-carbamoylsulfidverbindungen erfolgt nach dem
folgenden allgemeinen Reaktionsschema:
Dabei werden zwei Äquivalente einer Carbamatverbindung mit Dischwefel-dichlorid
in Anwesenheit von zwei Äquivalenten eines
Säureakzeptors, wie Pyridin, vorzugsweise in einem inerten Lösungsmittel,
zur Bildung der erfindungsgemäßen symmetrischen Bis-carbamoylsulfide
umgesetzt. Die dabei verwendeten Carbamatverbindungen
sind bekannt und werden gewöhnlich durch Umsetzung der
entsprechenden Oximverbindungen mit einer Alkylisocyanatverbindung
hergestellt.
Die in den obigen Reaktionen verwendeten Oximreaktionsteilnehmer
(ROH) sind bekannt und können nach üblichen Verfahren hergestellt
werden (vgl. z. B. die US-PS 37 52 841, 37 26 908, 38 43 669
und die BE-PS 8 13 206 und 8 15 513).
Die neuen Verbindungen umfassen z. B.:
N,N′-Bis-[äthylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[1-isopropylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sul-fid,
N,N′-Bis-[1-(2-cyanäthylthio)-acetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim-]-sulfid,
N,N′-Bis-[5-methyl-4-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-oxathiolan]--sulfid,
N,N′-Bis-[2-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,4-dithian]-sulfid,
N,N-Bis-[4-[O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiolan]-sulfid,
N,N-Bis-[5,5-dimethyl-4-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiola-n]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,5,5-trimethyl-2-(O-N-methylcarbamoyl)-oximino)-thiazolid-in-4-on]-sulfid,
N,N′-Bis-[2-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiolan]-sulfid,
N,N-Bis-[2-cyan-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-s-ulfid,
N,N′-Bis-[1-methylthio-N″,N″-dimethylcarbamoylformaldehyd-O-(N-methy-lcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,3-dimethyl-1-methylthiobutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-o-xim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3-methylthiobutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3-methylsulfonylbutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulf-id,
N,N′-Bis-[2-methylsulfonyl-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamo-yl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,3-dimethyl-1-methylsulfonylbutanon-2-O-(N-methylcarbamoy-l)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[1-methylthio-1-äthoxycarbonylformaldehyd-O-(N-methylcarbam-oyl)-oxim]-sulfid.
N,N′-Bis-[äthylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[1-isopropylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sul-fid,
N,N′-Bis-[1-(2-cyanäthylthio)-acetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim-]-sulfid,
N,N′-Bis-[5-methyl-4-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-oxathiolan]--sulfid,
N,N′-Bis-[2-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,4-dithian]-sulfid,
N,N-Bis-[4-[O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiolan]-sulfid,
N,N-Bis-[5,5-dimethyl-4-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiola-n]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,5,5-trimethyl-2-(O-N-methylcarbamoyl)-oximino)-thiazolid-in-4-on]-sulfid,
N,N′-Bis-[2-(O-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-1,3-dithiolan]-sulfid,
N,N-Bis-[2-cyan-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-s-ulfid,
N,N′-Bis-[1-methylthio-N″,N″-dimethylcarbamoylformaldehyd-O-(N-methy-lcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,3-dimethyl-1-methylthiobutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-o-xim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3-methylthiobutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3-methylsulfonylbutanon-2-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulf-id,
N,N′-Bis-[2-methylsulfonyl-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamo-yl)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[3,3-dimethyl-1-methylsulfonylbutanon-2-O-(N-methylcarbamoy-l)-oxim]-sulfid,
N,N′-Bis-[1-methylthio-1-äthoxycarbonylformaldehyd-O-(N-methylcarbam-oyl)-oxim]-sulfid.
Ausgewählte Arten der neuen Verbindungen wurden zur Bestimmung
ihrer pestiziden Aktivität gegen Nematoden, Milben und bestimmte
Insekten einschließlich Blattläusen, Raupen, Käfern und Fliegen
getestet.
Es wurden Suspensionen der Testverbindungen hergestellt, indem man
1 g Verbindung in 50 ccm Aceton löste, in welchem 0,1 g (10 Gew.-%
Verbindung) eines oberflächenaktiven Alkylphenoxypolyäthylenoxyäthanols
als Emulgator oder Dispergierungsmittel gelöst worden
war. Die erhaltene Lösung wurde in 150 ccm Wasser eingemischt und
lieferte ungefähr 200 ccm einer Suspension, die die Verbindung in
fein zerteilter Form enthielt. Die so erhaltene Grundsuspension
enthielt 0,5 Gew.-% Verbindung. Die in den folgenden Tests beschriebenen
Konzentrationen in Gew.-Teilen pro Mill. wurden durch
entsprechende Verdünnung der Grundsuspension mit Wasser erhalten.
Die Testverfahren waren wie folgt:
Als Testinsekten wurden Bohnenblattläuse (Aphis fabae Scop.) im
erwachsenen und Nymphenstadium verwendet, die auf Zwergnasturtiumpflanzen
in Töpfen bei 18-21°C und 50-70% relativer Feuchtigkeit
gezüchtet worden waren. Für Testzwecke wurde die Anzahl Blattläuse
pro Topf durch Beschneiden der überschüssige Läuse enthaltenden
Pflanzen auf 100-150 standardisiert.
Die Testverbindungen wurden durch Verdünnen der Grundsuspension
mit Wasser formuliert, so daß die Suspension 500 Teile Testverbindung
pro Mil. Teile Endformulierung enthielt.
Die mit 100-150 Blattläusen infizierten eingetopften Pflanzen (ein
Topf pro Testverbindung) wurden auf Drehscheiben gestellt und mit
einer "De Vilbiss"-Spritzpistole bei einem Luftdruck von 3,8 bar mit
100-110 ccm Testformulierung besprüht. Diese 25 Sekunden dauernde
Anwendung genügt, um die Pflanzen bis zum Ablaufen zu benetzen.
Als Kontrolle wurden 100-110 ccm einer Wasser-Aceton-Emulgator-Lösung
ohne Testverbindung auf infizierte Pflanzen gesprüht. Nach
dem Besprühen wurden die Töpfe auf ihre Seite auf einen Bogen von
weißem Millimeterpapier gelegt, der vorher zum leichteren Zählen
unterteilt worden war. Temperatur und Feuchtigkeit im Testraum
während der 24-stündigen Halteperiode lagen bei 18-21°C bzw.
50-70%. Die auf das Papier fallenden Blattläuse, die nach Aufrichten
nicht stehen bleiben konnten, wurden als tot angesehen.
Die auf den Pflanzen verbleibenden Blattläuse wurden genau auf
Bewegung untersucht; diejenigen, die sich nach Stimulieren durch
Anstoßen entlang der Körperlänge nicht bewegen konnten, wurden als
tot angesehen. Die prozentuale Sterblichkeit wurde bei den verschiedenen
Konzentrationen festgestellt.
Weitere Testinsekten waren Larven des südlichen Armeewurmes
(Spodoptera eridania, Cram.), die auf "Tendergreen"-Bohnenpflanzen
bei einer Temperatur von 27±3°C und einer relativen Feuchtigkeit
von 50±5% gezüchtet worden waren.
Die Testverbindungen wurden durch Verdünnen der Grundsuspension
mit Wasser formuliert und lieferten eine 500 Teile-Testverbindung
pro Mill. Teile Endformulierung enthaltende Suspension. Eingetopfte
"Tendergreen"-Bohnenpflanzen von Standardhöhe und -alter wurden
auf eine Drehscheibe gestellt und mit einer "De Vilbiss"-Spritzpistole
bei 1,7 bar Luftdruck mit 100-110 ccm Testformulierung
besprüht. Diese 25 Sekunden dauernde Anwendung genügte, um die
Pflanzen bis zum Ablaufen zu benetzen. Als Kontrolle wurden infizierte
Pflanzen mit 100-110 ccm einer Wasser-Aceton-Emulgator-Lösung
ohne Testverbindung besprüht. Nach dem Trocknen wurden
paarige Blätter abgetrennt, und jedes wurde in eine mit angefeuchtetem
Filterpapier ausgekleidete Petri-Schale von 9 cm gelegt. In jede
Schale wurden 5 willkürlich ausgewählte Larven eingeführt, dann
wurden die Schalen verschlossen, markiert und 3 Tage bei 29-32°C
gehalten. Obgleich die Larven in 24 Stunden leicht das gesamte
Blatt fressen konnten, wurde keine weitere Nahrung eingeführt.
Die selbst nach Stimulierung durch Anstoßen unfähigen Larven,
sich entlang der Körperlänge zu bewegen, wurden als tot angesehen.
Die prozentuale Sterblichkeit für die verschiedenen Konzentrationen
wurde festgestellt.
Als weitere Testinsekten wurden "fourth-instar"-Larven des mexikanischen
Bohnenkäfers (Epilachna varivestis, Muls.) verwendet, die
bei 29±3°C und 50±5% relativer Feuchtigkeit auf "Tendergreen"-Bohnenpflanzen
gezüchtet worden waren.
Die Testverbindungen wurden durch Verdünnen der Grundsuspension
mit Wasser zu einer Suspension verdünnt, die 500 Teile Testverbindung
pro Mill. Teile Endformulierung enthielt. Eingetopfte Tendergreen-Bohnenpflanzen
von Standardhöhe und -alter wurden auf eine
Drehscheibe gestellt und mit einer "De Vilbiss"-Spitzpistole bei
1,7 bar Luftdruck mit 100-110 cm Testformulierung besprüht. Diese
25 Sekunden dauernde Anwendung genügte, um die Pflanzen bis zum
Ablaufen zu benetzen. Als Kontrolle wurden infizierte Pflanzen
mit 100-110 ccm einer Wasser-Aceton-Emulgator-Lösung ohne Testverbindung
besprüht. Nach dem Trocknen wurden paarige Blätter abgetrennt,
und jedes in eine mit feuchtem Filterpapier ausgekleidete
9-cm-Petri-Schale gelegt. In jede Schale wurden 5 willkürlich
ausgewählte Larven eingeführt und die Schalen verschlossen,
markiert und 3 Tage bei 29±3°C gehalten. Obgleich die Larven
das Blatt in 24-48 Stunden leicht fressen konnten, wurde keine
weitere Nahrung eingeführt. Larven, die sich selbst nach Stimulierung
nicht entlang der Körperlänge bewegen konnten, wurden
als tot angesehen.
4 bis 6 Tage alte erwachsene Hausfliegen (Musca domestica, L.),
die gemäß den Vorschriften der Chemical Specialties Manufacturing
Association [Blue Book, McNair-Dorland Co., New York 1954, Seite
243-244, 261) unter kontrollierten Bedingungen von 29±3°C und
50±5% relativer Feuchtigkeit gezüchtet worden waren, wurden als
Testinsekten verwendet. Die Fliegen wurden durch Anästhetisieren
mit Kohlendioxid unbeweglich gemacht, und 25 immobilisierte
männliche und weibliche Tiere wurden in einen Käfig übergeführt,
der aus einem üblichen Küchensieb von etwa 12,5 cm Durchmesser
bestand, das über einer mit Packpapier bedeckten Oberfläche umgekehrt
worden war. Die Testverbindungen wurden durch Verdünnen der
Grundsuspension mit einer 10 gew.-%igen Zuckerlösung zu einer
Suspension formuliert, die 500 Teile Testverbindung pro Mill.
Teile Endformulierung (Gew.) enthielt. 10 ccm der Testformulierung
wurden in eine Souffl´-Tasse gegeben, die einen absorbierenden
Wattebausch von 2,5 cm×2,5 cm enthielt. Dieser Köderbehälter
wurde eingeführt und vor Einführung der anästhetisierten Fliegen
auf Löschpapier unter das Küchensieb zentriert. Die Fliegen im
Käfig wurden 24 Stunden vom Köder fressen gelassen, wobei die
Temperatur bei 29±3°C und die relative Feuchtigkeit bei 50±5%
lagen. Fliegen, die nach Anstoßen kein Zeichen von Bewegung zeigten,
wurden als tot angesehen.
Erwachsene und nymphale zweifleckige Milben (Tetranychus urticae,
Koch), die bei 80±5% relativer Feuchtigkeit auf "Tendergreen"-Bohnenpflanzen
gezüchtet worden waren, waren die Testorganismen.
Infizierte Blätter aus einer Grundkultur wurden auf die primären
Blätter von 2 Bohnenpflanzen von 15-20 cm Höhe gelegt, die in
einem 7,5 cm-Topf aus Ton wuchsen. Eine zum Testen ausreichende
Anzahl von 150-200 Milben wurden von den abgeschnittenen Blättern
innerhalb von 24 Stunden auf die Frischen Pflanzen übergeführt.
Nach der 24-stündigen Übergangsperiode wurden die abgeschnittenen
Blätter von den infizierten Pflanzen entfernt. Die Testverbindungen
wurden durch Verdünnen der Grundsuspension mit Wasser auf
einen Gehalt von 500 Teilen Testverbindung pro Mill. Teile Endformulierung
formuliert. Die eingetopften Pflanzen (ein Topf pro
Verbindung) wurden auf eine Drehscheibe gestellt und mit einer
"De Vilbiss"-Spritzpistole bei 3,8 bar Luftdruck mit 100-110 ccm
Testformulierung besprüht. Diese 23 Sekunden dauernde Anwendung
genügte, um die Pflanzen bis zum Ablaufen zu benetzen. Als Kontrolle
wurden 100-110 ccm einer Aceton und Emulgator in denselben
Konzentrationen enthaltenden Wasserlösung ohne Testverbindung
auf die infizierten Pflanzen gesprüht. Die besprühten Pflanzen
wurden 6 Tage bei 80±5% relativer Feuchtigkeit gehalten, worauf
eine Sterblichkeit der motilen Formen gemacht wurde. Die
mikroskopische Untersuchung auf motile Formen erfolgte an den
Blättern der Testpflanzen. Jedes nach Anstoßen zur Lokomotion
fähige Individuum wurde als lebend angesehen.
Als weiterer Testorganismus wurden infizierte wandernde Larven
des Wurzelknotennematoden Meloidogyne incognita var. acrita verwendet,
die im Treibhaus auf Wurzeln von Gurkenpflanzen gezüchtet
worden waren. Infizierte Pflanzen wurden aus der Kultur entfernt
und die Wurzeln sehr fein zerkleinert. Eine geringe Menge dieses
Inoculums wurde in einen 1/2-l-Behälter gegeben, der etwa 180 ccm
Erde enthielt. Die Behälter wurden verschlossen und 1 Woche bei
Zimmertemperatur bebrütet. Während dieser Zeit schlüpften die
Nematodeneier, und die Larven wanderten in die Erde.
10 ccm Testformulierung wurden für jede Dosis jedem der 2 Behälter
zugefügt. Nach der Zugabe des Wirkstoffes wurden die Behälter verschlossen
und der Inhalt in einer Kugelmühle 5 Minuten gründlich
gemischt.
Die Testverbindungen wurden durch übliches Lösungsverfahren in
Aceton, Zugabe eines Emulgators und Verdünnen mit Wasser formuliert.
Primäre Siebtests erfolgten bei 3,33 mg Testverbindung
pro Behälter.
Die Behälter wurden 48 Stunden bei Zimmertemperatur verschlossen
stehengelassen, dann wurde der Inhalt in 7,5-cm-Töpfe übergeführt.
Anschließend wurden diese mit Gurken als Indikatorpflanzen
eingesät und in das Treibhaus gestellt, wo sie in üblicher Weise
etwa 3 Wochen gehalten wurden.
Dann wurden die Gurkenpflanzen aus den Töpfen entfernt, die Erde
von den Wurzeln entfernt und die Menge an Gallbildung visuell
bewertet.
Die folgende Tabelle zeigt die Ergebnisse der vorgenannten Tests.
Dabei ist die pestizide Wirkung der Verbindung bei den angegebenen
Dosen gegen Blattläuse, Milben, den südlichen Armeewurm,
den Bohnenkäfer und die Hausfliege wie folgt bewertet:
A=ausgezeichnete Bekämpfung
B=teilweise Bekämpfung
C=keine Bekämpfung
Beim Wirksamkeitstest gegen Nematoden war die Bewertung wie folgt:
1=schwere Gallbildung, wie bei unbehandelten Pflanzen
2=mäßige Gallbildung
3=leichte Gallbildung
4=sehr leichte Gallbildung
5=keine Gallbildung, vollständige Bekämpfung
Striche bedeuten, daß kein Test durchgeführt wurde.
2=mäßige Gallbildung
3=leichte Gallbildung
4=sehr leichte Gallbildung
5=keine Gallbildung, vollständige Bekämpfung
Striche bedeuten, daß kein Test durchgeführt wurde.
Weiter wurden Versuche zur Bestimmung der Phytotoxizität repräsentativer
Verbindungen in bezug auf gesunde frische Pflanzen
durchgeführt. Lösungen der Verbindungen wurden wie oben auf eine
Konzentration von 2500 ppm Testverbindung hergestellt. Die Testpflanzen
wurden gemäß dem obigen Verfahren beim Blattwerksprühtest
gegen Milben in einer Menge von etwa 100 ccm Testlösung auf
die Blätter jeder Testpflanze gesprüht. Gesprühte Pflanzen und
Kontrollen wurden etwa 1 Stunde beiseite gestellt, damit das Blattwerk
trocknen konnte; dann wurden sie in ein Treibhaus übergeführt;
nach 10 Tagen wurden die Pflanzen visuell zur Bestimmung
der Blattwerkschädigung untersucht. Eine Bewertung von 1 bedeutet
keine merkliche Schädigung; 5 bedeutet den Tod der Pflanze, und
Bewertungen von 2, 3 und 4 zeigen ein mittleres Maß an Schädigung
auf der Basis von Zahl und Ausmaß der geschädigten Blätter.
Bestimmte Verbindungen wurden auch zur Bestimmung der peroralen
Toxizität bei Säugetieren nach üblichen Verfahren ausgewertet.
Das repräsentative Versuchstier für diesen Versuch waren Ratten.
Die Ergebnisse sind in mg Präparat pro kg Tiergewicht ausgedrückt,
die für eine Sterblichkeitsrate von 50% (LD₅₀) notwendig waren.
Auch diese Ergebnisse finden sich in nachfolgender Tabelle.
Insbesondere an den in Anspruch 1 namentlich aufgeführten Verbindungen
sowie den Verbindungen der Ansprüche 2 bis 4 wurde also
nachgewiesen, daß eine ausgezeichnete pestizide Wirksamkeit bei
geringer Phytotoxizität vorliegt.
Selbstverständlich sind die in den obigen Tests verwendeten Insektenarten
und andere Schädlinge nur Beispiele für die vielen
verschiedenen Schädlinge, die durch Verwendung der erfindungsgemäßen
neuen Verbindungen bekämpft werden können.
Die erfindungsgemäßen Verbindungen können nach bekannten Verfahren
als Insektizide/Nematozide und Mitizide verwendet werden. Pestizide Präparate
mit den Verbindungen als aktiver Wirkstoff, umfassen gewöhnlich
einen Träger und/oder Verdünnungsmittel in flüsiger oder fester
Form.
Geeignete flüssige Verdünnungsmittel oder Träger umfassen Wasser,
Erdöldestillate und andere flüssige Träger mit oder ohne oberflächenaktive
Mittel. Flüssige Konzentrate können durch Lösen
einer Verbindung mit einem nichtphytotoxischen Lösungsmittel, wie
Aceton, Xylol oder Nitrobenzol, und Dispergieren des Wirkstoffs in
Wasser mittels eines geeigneten oberflächenaktiven Emulgators und
Dispergierungsmittels hergestellt werden.
Die Wahl der Dispergierungs- und Emulgierungsmittel und die verwendeten
Mengen werden von der Natur des Präparates und der Fähigkeit
des Mittels zum leichten Dispergieren des Wirkstoffs bestimmt.
Gewöhnlich wird möglichst wenig Mittel entsprechend der gewünschten
Dispergierung des Wirkstoffs im Sprühmaterial verwendet, so
daß Regen den Wirkstoff nach dessen Aufbringung auf die Pflanze
nicht erneut emulgiert und von dieser abwäscht. Zu diesem Zweck
können nicht-ionische, anionische oder kationische Dispergierungsmittel
und Emulgatoren, wie z. B. die Kondensationsprodukte von
Alkylenoxiden mit Phenol und organischen Säuren, Alkylsulfonate,
komplexe Ätheralkohole oder quaternäre Ammoniumverbindungen,
verwendet werden.
Bei der Herstellung eines benetzbaren Pulvers oder Staubes oder
einer granulierten Formulierung wird der aktive Bestandteil in und
auf einem entsprechend fein zerteilten festen Träger, wie Ton,
Talkun, Bentonit, Diatomeenerde oder Fuller's Erde dispergiert.
Bei der Formulierung benetzbaren Pulvers können die oben genannten
Dispergierungsmittel sowie Lignosulfonate mitverwendet werden.
Die notwendige Menge des erfindungsgemäßen Wirkstoffs kann pro
zu behandelnden ha in etwa 9,5-1900 l flüssigen Träger und/oder
Verdünnungsmittel (oder mehr) oder etwa in 5,5-500 kg inertem festem Träger
und/oder Verdünnungsmittel aufgebracht werden. Die Konzentration
im flüssigen Konzentrat variiert gewöhnlich von etwa 10-95 Gew.-%
und in festen Formulierungen von etwa 0,5-90 Gew.-%. Zufriedenstellende
Sprühmaterialien, Staube oder Körner zur allgemeinen
Verwendung enthalten etwa 0,3-16,5 kg aktiven Bestandteil pro ha.
Die erfindungsgemäßen Pestizide verhindern einen Angriff von
Pflanzen oder anderen Materialien durch Insekten, Milben und Nematoden, wenn die Pestizide
auf erstere angewendet werden. Bezüglich Pflanzen haben sie
eine hohe Sicherheitsspanne, indem sie bei Verwendung in einer
zum Töten oder Abstoßen von Insekten ausreichenden Menge die
Pflanze nicht verbrennen oder schädigen; sie sind beständig gegen
Witterungseinflüsse, wie Abwaschen durch Regen, Zersetzung durch
UV-Licht, Oxidation oder Hydrolyse in Anwesenheit von Feuchtigkeit,
oder mindestens gegen eine solche Zersetzung, Oxidation und Hydrolyse,
die die wünschenswerten pestiziden Eigenschaften des Toxikanten
wesentlich beeinträchtigen würden oder unerwünschte Eigenschaften,
wie Phytotoxizität, verleihen könnten. Die Wirkstoffe
sind mit den anderen Bestandteilen des Sprühgutes verträglich
und können auf den Boden, auf Samen oder die Wurzeln von Pflanzen
ohne deren Schädigung angewendet werden. Gegebenenfalls können
Mischungen der aktiven Verbindungen sowie Kombinationen der
erfindungsgemäßen aktiven Verbindungen mit anderen biologisch
aktiven Verbindungen verwendet werden.
Die folgenden Beispiele veranschaulichen Verfahren zur Herstellung
der erfindungsgemäßen Verbindungen.
In einen Polypropylenreaktor, der 80 g (4,0 Mol) Fluorwasserstoff
in 1800 ccm Toluol enthielt und auf -40°C abgekühlt war, wurden
unter Rühren innerhalb von 20 Minuten 228 g (4,0 Mol) Methylisocyanat
eingetropft. Die Reaktionsmischung wurde sich auf 0°C
erwärmen gelassen und 1 Stunde auf dieser Temperatur gehalten.
Dann wurden 60 g (2 Mol) frisch destilliertes Dischwefeldichlorid
zugefügt und anschließend langsam 346 g (4,4 Mol) Pyridin bei
-20°C bis 0°C zugefügt. Nach 2-stündigem Rühren bei -10°C
und 16-stündigem Rühren bei Zimmertemperatur wurde die Reaktionsmischung
mit 500 ccm Wasser verdünnt. Die Toluolschicht wurde
3 mal mit je 500 ccm Wasser gewaschen, getrocknet und destilliert
und lieferte 244 g (66%) Produkt mit einem Kp.0,25 mm55-57°C
und einem F. von 40-41°C.
Analyse für C₄H₆F₂N₂O₂S:
ber.:C 26,09 H 3,28 N 15,21 gef.:C 26,19 H 3,20 N 14,79
ber.:C 26,09 H 3,28 N 15,21 gef.:C 26,19 H 3,20 N 14,79
Zu einer Lösung aus 0,50 g Bis-(N-methyl-N-fluorcarbonylamino)-sulfid
und 0,526 g 1-Methylthioacetaldoxim in 15 ccm Dioxan wurden
0,505 g Triäthylamin zugefügt. Nach 20-stündigem Rühren bei Zimmertemperatur
wurde die Reaktionsmischung mit Wasser verdünnt.
Das feste N,N′-Bis-[1-methylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid-
wurde abfiltriert und in Methylenchlorid
aufgenommen. Das organische Extrakt wurde mit Wasser gewaschen,
getrocknet und konzentriert. Man erhielt 0,60 g Produkt
mit einem Fp. von 173-174°C.
Analyse für C₁₀H₁₈N₄O₄S₃:
ber.:C 33,88 H 5,12 N 15,81 gef.:C 33,72 H 5,15 N 15,49
ber.:C 33,88 H 5,12 N 15,81 gef.:C 33,72 H 5,15 N 15,49
Zu einer Lösung aus 36,9 g Bis-(N-methyl-N-fluorcarbonylamino)-sulfid
und 42,0 g 1-Methylthioacetaldoxim in 500 ccm Toluol
wurden 40,47 g Triäthylamin zugefügt. Die spontane exotherme
Reaktion erhöhte die Temperatur auf 32°C. Nach 16-stündigem Rühren
bei Zimmertemperatur wurden weitere 100 ccm Toluol zugefügt
und die Reaktionsmischung 2 Stunden auf etwa 45°C erhitzt. Nach
Abkühlen auf 10°C und Filtrieren wurde der Feststoff mit Wasser
gewaschen und mit Isopropanol gespült und luftgetrocknet. So erhielt
man 54,46 g weißes festes N,N′-Bis-[1-methylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid-
mit einem Fp. von 170-173°C.
Nach Umkristallisation aus Methylenchlorid lag der F. bei
173-174°C.
Zu einer Lösung aus 1,62 g 1-Methylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim
und 0,67 g Dischwefel-dichlorid in 25 ccm Toluol
wurden 0,79 g Pyridin zugefügt. Nach 16-stündigem Rühren wurde
der Feststoff abfiltriert, mit Wasser gewaschen und getrocknet.
So erhielt man 0,7 g N,N′-Bis-[1-methylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim]-sulfid-
mit einem Fp. von 174-178°C
(laut Dünnschicht-Chromatografie und NMR mit dem Produkt von Beispiel 2 und 3 identisch).
Zu einer Suspension aus 14,4 g 1-(2-Cyanäthylthio)-acetaldoxim
und 8,63 g Bis-(N-methyl-N-fluorcarbonylamino)-sulfid in 70 ccm
Toluol wurden 10,1 g Triäthylamin, mit 100 ccm Toluol verdünnt,
eingetropft. Die Reaktionstemperatur wurde unter 30°C gehalten.
Nach 20-stündigem Rühren bei Zimmertemperatur wurde die feste
Suspension filtriert und mit 10% Isopropanol in Wasser gewaschen.
Das Filtrat wurde verworfen und das feste N,N′-Bis-[1-(2-cyanäthylthio)-acetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)-oxim-]-sulfid
(10,0 g) aus Acetonitril-Methylenchlorid umkristallisiert;
Fp. 189-190°C.
Analyse für C₁₄H₂₀N₆O₄S₃:
ber.:C 38,87 H 4,66 N 19,43 gef.:C 38,50 H 4,61 N 19,11
ber.:C 38,87 H 4,66 N 19,43 gef.:C 38,50 H 4,61 N 19,11
Zu einer Lösung aus 4,0 g 2-Methylsulfonyl-2-methylpropionaldoxim
und 2,1 g Bis-(N-methyl-N-fluorcarbonylamino)-sulfid in 50 ccm
Toluol wurden 2,45 g Triäthylamin, mit 25 ccm Toluol verdünnt,
zugefügt. Die Reaktionsmischung wurde 62 Stunden bei Zimmertemperatur
stehengelassen. Der ausgefallene Feststoff wurde abfiltriert,
in Methylenchlorid gelöst, mit Wasser gewaschen und über Magnesiumsulfat
getrocknet. Nach Konzentration und Umkristallisation
aus Äthylacetat erhielt man 2,9 g N,N′-Bis-[2-methylsulfonyl-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamo-yl)-oxim]sulfid
als weißen Feststoff mit einem Fp. von 124-125°C.
Analyse für C₁₄H₂₆N₄O₈S₃:
ber.:C 35,43 H 5,52 N 11,81 gef.:C 35,38 H 5,56 N 11,57
ber.:C 35,43 H 5,52 N 11,81 gef.:C 35,38 H 5,56 N 11,57
Claims (10)
1. Symmetrische N-substituierte Bis-carbamoylsulfidverbindungen
der allgemeinen Formel
worin R für
steht,
wobei R₂ Alkylthio mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen, Cyanoalkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen in der Alkylgruppe, Alkoxycarbonyl mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen in der Alkoxygruppe oder Alkylsulfonylalkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen in jeder Alkylgruppe bedeutet,
oder R₂ für R₄R₅-NCO- steht,
worin R₄ und R₅ jeweils Alkylgruppen mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen bedeuten, und
R₃ Wasserstoff, Alkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen oder Alkylthio mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeutet,
A für eine 4- oder 5-gliedrige, zu einem Ring geschlossene, aliphatische Kette steht, die ein oder zwei zweiwertige Sauerstoff- oder Schwefelatome enthält, mit der Maßgabe, daß die Gesamtzahl der C-Atome in R nicht größer als 8 und R₃ keine Methylgruppe ist, wenn R₂ Alkylthio mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen bedeutet, und
R′ eine Alkylgruppe mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen darstellt.
wobei R₂ Alkylthio mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen, Cyanoalkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen in der Alkylgruppe, Alkoxycarbonyl mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen in der Alkoxygruppe oder Alkylsulfonylalkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen in jeder Alkylgruppe bedeutet,
oder R₂ für R₄R₅-NCO- steht,
worin R₄ und R₅ jeweils Alkylgruppen mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen bedeuten, und
R₃ Wasserstoff, Alkyl mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen oder Alkylthio mit 1 bis 8 Kohlenstoffatomen bedeutet,
A für eine 4- oder 5-gliedrige, zu einem Ring geschlossene, aliphatische Kette steht, die ein oder zwei zweiwertige Sauerstoff- oder Schwefelatome enthält, mit der Maßgabe, daß die Gesamtzahl der C-Atome in R nicht größer als 8 und R₃ keine Methylgruppe ist, wenn R₂ Alkylthio mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen bedeutet, und
R′ eine Alkylgruppe mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen darstellt.
2. N,N′-Bis-[3,5,5-trimethyl-2-(0-(N-methylcarbamoyl)-oximino)-thiazoli-din-4-on]-sulfid.
3. N,N′-Bis-[1-(2-cyanäthylthio)-acetaldehyd-0-(N-methylcarbamoyl)-oxim-o]-sulfid.
4. N,N′-Bis-[1,4-dithian-2-O-(N-methylcarbamoyl)-oximino]-sulfid.
5. N,N′-Bis-[5-methyl-4-(O-(N-methyl-carbamoyl)-oximino)-1,3-oxathiolan-]-sulfid.
6. N,N-Bis-[2-methylsulfonyl-2-methylpropionaldehyd-O-(N-methylcarbamoy-l)oxim]-sulfid.
7. N,N-Bis-[1-äthylthioacetaldehyd-O-(N-methylcarbamoyl)oxim]-sulfid.
8. N,N′-Bis-[2-(O-(N-methylcarbamoyl)oximino)-1,3-dithiolan]-sulfid.
9. Verfahren zur Herstellung der Verbindungen nach Anspruch 1-8,
dadurch gekennzeichnet, daß man jeweils in an sich bekannter
Weise
entweder eine Verbindung der Formel ROH,
worin R die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung hat, mit einer Verbindung der allgemeinen Formel in der R′ die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung besitzt, oder
Dischwefel-dichlorid mit einer Verbindung der allgemeinen Formel worin R und R′ die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung haben,
umsetzt.
entweder eine Verbindung der Formel ROH,
worin R die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung hat, mit einer Verbindung der allgemeinen Formel in der R′ die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung besitzt, oder
Dischwefel-dichlorid mit einer Verbindung der allgemeinen Formel worin R und R′ die in Anspruch 1 angegebene Bedeutung haben,
umsetzt.
10. Pestizide Präparate, enthaltend eine Verbindung gemäß
Anspruch 1 und übliche Träger und/oder Verdünnungsmittel
in flüssiger oder fester Form.
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: UNION CARBIDE CORP., 06817 DANBURY, CONN., US |
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D2 | Grant after examination | ||
8364 | No opposition during term of opposition | ||
8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |