DE2446099C3 - Methode zur quantitativen Bestimmung von Harnsäure - Google Patents
Methode zur quantitativen Bestimmung von HarnsäureInfo
- Publication number
- DE2446099C3 DE2446099C3 DE19742446099 DE2446099A DE2446099C3 DE 2446099 C3 DE2446099 C3 DE 2446099C3 DE 19742446099 DE19742446099 DE 19742446099 DE 2446099 A DE2446099 A DE 2446099A DE 2446099 C3 DE2446099 C3 DE 2446099C3
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- uric acid
- solution
- mixed
- mixture
- flow
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Description
Es besteht seit langer Zeit das Bedürfnis für eine spezifische quantitative Methode ?ur Bestimmung von
Harnsäure in biologischen Flüssigkeiten, wie z. B. Urin, Blut bzw. Serum oder Plasma, die spezifisch ist, nur eine
kleine Menge an Untersuchungsmaterial benötigt, billig genug ist, um Massenuntersuchungen zu ermöglichen,
keine besondere technische Ausbildung verlangt, und somit für die klinische Verwendung gut geeignet ist.
Zusätzlich wird als besonders wünschenswert betrachtet, daß eine derartige Methode sich für ein automatisches
System, das mit kontinuierlicher Probenstromung arbeitet, eignet, so daß eine große Anzahl Proben
hesteht ein Bedürfnis für ein automatisches ; welches mit kontinuierlicher Probenstromung
arbeitet und bei der diagnostischen Untersuchung von ene größen Anzahl Menschen auf die Anwesenheit
,,hnlnmschen Mengen an Harnsaure m ihrem Blut
SSS8SSn^ fietot- Die "arnsir si11
beim Menschen das Endprodukt des Punnabbaus dar
und wird deshalb physiologischerweise im Blut aufgefunden
Bei zahlreichen Erkrankungen kommt es zu 2er Erhöhung bzw. Erniedrigung der Harnsaure-Kon-Tentrat
on, so daß das Feststellen einer Abweichung vom physiologischen Harnsäuresp.egel im Blut ein
IS äußerst wichtiger diagnostischer Hinweis fur den Arzt
1StSo werden z.B. bei folgenden Erkrankungen Erhöhungen
der Harnsäure-Konzentration gefunden: Gicht, sSere Pneumonien mit ausgedehnten Gewebszersto-
rungen, Leukämie, Perniciosa; eine Erniedrigung wird
ζ B bei der toxischen Schädigung der Nierentubuh bei
der Wilson-Erkrankung gefunden.
Die bekannten Methoden zur Bestimmung von Harnsäure können im weiteren Sinn in enzymatisch*
,« Methoden, Methoden, worin ein Alkalimetallsalz von
Phosphorwolframsäure verwendet wird und verschiedene
chemische kolorimetrische Methoden eingeteilt werden. Die enzymatischen Methoden worin das
Enzvm Uricase verwendet wird, haben den Nachteil,
» daß die Messung im U.V.-Gebiet durchgeführt wird, wodurch mit teuren Quarzküvetten und mit einem
Spektralphotometer gearbeitet werden muß. In der
Methode, worin ein Alkalimetallsalz der Phosphorwolframsäure Verwendung findet wird zwar im sichtbaren
Bereich gemessen, jedoch hat diese Methode den Nachteil daß andere reduzierend wirkende Komponenten
mite'rfeßt werden, vas zu hohe und damit falsche
Meßwerte ergibt.
Vor kurzem wurde von G. F. Domagk und
Vor kurzem wurde von G. F. Domagk und
H H Schlicke in Analytical Biochemistry 22, 219- 224 (1968), eine besonders interessante Methode
zur enzymatischen Bestimmung von Harnsäure beschrieben welche den Vorteil der spezifischen enzymatischen
Bestimmung mit dem Vorteil der Meßmöglich-
4< keil im sichtbaren Bereich kombiniert. Gemäß dieser
Methode wird in einem ersten Schritt Harnsäure mit Uricase in Allantoin und Wasserstoffperoxid umgewandelt.
H-N
Uricase t H2N
+ 2H2O f- O2
\=O + CO2 -f H2O2
Harnsäure
Anschließend wird eine Indikatorreaktion angekop- 6o Leucoform vorliegendes Chromogen /um Farbstoff
pelt, wobei das entstandene Wasserstoffperoxid unter oxidiert. Als Chromogen wird o-Dianisidin erwähnt,
katalytischer Einwirkung von Peroxidase ein in der
OCH1
OCH, OCH,
H, O2 + H2N
2H,O
Einer der Nachteile dieser Methode ist jedoch der zeitraubende Enteiweißungsschritt vor der eigentlichen
Durchführung der Bestimmung. Diese Methode ist für manuelles Vorgehen beschrieben und eignet sich gemäß
den Ausführungen von D. S u s i c und P. Scheibe in
Z. Anal. Chem.257, 130-132 (1971), nicht für eine Automatisierung.
In dieser Publikation von S u s i c et al, in welcher die Verwendung von ABTS [Ammoniumsalz von 2,2'Azino-di-(3-ät(iyl-benzthiazolinsulphonsäure-6)]
als Chromogen in einer automatisierten Harnsäurebestimmung
beschrieben ist, wird hervorgehoben, daß o-Dianisidin sich für den gleichen Zweck wie ABTS nicht eignet, da
dessen Empfindlichkeit zu gering ist.
Es wurde nun gefunden, daß ein unsubstituiertes oder kernsubstituiertes Benzidin oder Diphenylin, wie beispielsweise
o-Dianisidin, trotzdem mit Erfolg als Chromogen in einer automatisierten Methode zur
Bestimmung der Harnsäure verwendet werden kann und diese Methode mit genügender Empfindlichkeit,
sehr hoher Genauigkeit und großem Linearitätsbereich arbeitet.
Weiter wurde festgestellt, daß eine automatisierte Methode zur Harnsäurebestimmung, worin o-Dianisidin
als Chromogen eingesetzt wird, im Gegensatz zu einer entsprechenden Methode, worin ABTS als Chromogen
verwendet wird, eine geringe Störanfälligkeit aufweist und sich für Routineuntersuchungen eignet.
Demnach betrifft die vorliegende Erfindung eine Me'hode zur quantitativen Bestimmung von Harnsäure
in biologischen Flüssigkeiten, worin man in kontinuierlicher Strömung die folgenden Schritte nacheinander
durchführt,
a) in kontinuierlicher Strömung wird eine bestimmte Menge an Probe mit einer Verdünnungslösung
gemischt,
b) diese Mischung wird durch einen Dialysator geleitet, dabei wird eine klare wässerige Lösung
von dieser Mischung abgetrennt,
c) diese klare wäßrige Lösung wird mit einer gepufferten Uricaselösung mit einem pH-Wert
zwischen 8,5 und 10 gemischt,
d) die gemäß Schritt c) erhaltene wässerige Lösung wird inkubiert,
e) das Reaktionsgemisch wird bei einem pH-Wert zwischen 5,5 und 8,5 mit einem Chromogen und
Peroxidase gemischt und dadurch eine gefärbte Lösung erzeugt,
f) diese gefärbte Lösung wird durch eine Durchflußküvette geleitet und der in der Probe vorhandene
Harnsäuregehalt wird während des Fließens der gefärbten Lösung durch die Durchflußküvette,
photometrisch bestimmt.
Erfindungsgemäß verwendet man nun als Chromogen in einer solchen Methode ein unsubstituiertes oder
kernsubstituiertes Benzidin oder Diphenylin.
In Schritt a) der erfindungsgemäßen Methode kann als Verdünnungsmittel eine wässerige Lösung von
Alkali- oder Erdalkalisalzen, wie /.. B. Natriumchlorid, Natriunitetraborat, Kaliumchlorid oder Calciumchlorid
verwendet werden. Besonders bevorzugt wird Natriumchlorid. Die Konzentration an Alkali- odor Erdalkalisalzen
hangt vom jeweiligen Salz ab. Im Falle von Natriumchlorid wird eine Konzentration /wischen
ungefähr !.2 bis 2.0 Prozent bevorzugt, wobei eine Konzentra'ion von ungefähr 1,3 Prozent ganz besonders
bevorzugt isi.
In Schritt b) der erfindungsgemäßen Methode wird die Mischung zum Zweck der Enteiweißung durch einen
Dialysator geleitet, wobei eine klare wässerige Lösung von dieser Mischung abgetrennt wird. Die Art des
Dialysators ist nicht kritisch. Es wird jedoch bevorzugt, einen Dialysator mit einem Dialysierweg von 30 bis
100 cm zu verwenden.
in Schritt c) wird in den Dialysator die entproteinisierte Lösung mit einer gepufferten Uricaselösung
ίο vereinigt. Als Uricase werden aus tierischen Organen
isolierte Präparate verwendet, wie z. B. Schweinsleberuricase. Diese Uricase wird vor der Reaktion in einen
wäßrigen Puffer von pH-Wert 8,5 bis 10 aufgelöst. In der Regel kann jede übliche Puffermischung, welche sich zur
Aufrechterhaltung eines derartigen pH-Bereiches eignet, verwendet werden. Vorzugsweise wird jedoch ein
Borat-Puffer, insbesondere ein Natriumtetraborat-Puffer, verwendet. Die Konzentration des Puffers in der
Puffer-Uricase-Lösung hängt von dem jeweiligen Puffer ab. Im Falle von Natriumtetraborat liegt diese
Konzentration zweckmäßig zwischen 5 und 15mMol/ Liter. Besonders bevorzugt wird eine Konzentration
von lOmMol/Liter. Die erforderliche Aktivität an
Uricase hängt von dem jeweiligen Puffer ab. Im Falle
*5 von Natriumtetraborat liegt diese Aktivität vorzugsweise
bei mindestens 2 Einheiten, wobei 10 Einheiten pro Liter besonders bevorzugt sind.
Zur Vervollständigung der in Schritt c) erfolgten Umwandlung von Harnsäure in Allantoin und Wasserstoffperoxid
wird in Schritt d) das Reaktionsgemisch inkubiert. Die Temperatur der Inkubation ist nicht
kritisch, liegt jedoch mit Vorteil bei ungefähr 370C. Die
Dauer der Inkubation hängt von mehreren Parametern ab, wie z. B. von der Temperatur, dem Dialysierweg, und
der Uricaseaktivität. Als Inkubationszeit wird bevorzugt 4 Minuten gewählt.
Nach der Inkubation wird in Schritt e) das entstandene Wasserstoffperoxid unter katalytischer
Einwirkung von Peroxidase mit einem kernsubstituierten oder unsubstituierten Benzidin (4,4'-Diaminobiphenyl)
oder Diphenylin (2,4'-Diaminobiphenyl) zur Reaktion gebracht. Als substituiertes Benzidin eignen sich
z. B. o-Dianisidin und o-Tolidin. Diese Leucofarbstoffe werden in wässeriger Lösung zugegeben. Die Konzentration
dieser Leucofarbstoffe ist nicht kritisch und beträgt im Falle von o-Dianisidin mit Vorteil 1,3 mg/ml.
Die Peroxidase wird in Form einer wässerigen, . vorzugsweise gepufferten Lösung zugegeben. Als
Peroxidase wird eine solche, welche aus Merrettich isoliert wurde, bevorzugt.
Die Aktivität der Peroxidase in der Lösung hängt von dem jeweiligen Puffer ab, beträgt jedoch mit Vorteil
mindestens 0,04 Einheiten/ml, wobei 0,4 Einheiten/ml besonders bevorzugt werden. Die Peroxidase-Lösung
wird zweckmäßigerweise auf einen pH-Wert zwischen 5,5 und 8,5 gepuffert. Hs kann jede übliche Puffermischung,
welche sich zur Aufrechterhaltung eines derartigen pH-Bereiches eignet, verwendet werden.
Vorzugsweise wird ein Phosphaipuft'er vom pH-Wert
7,5 eingesetzt. Die Reihenfolge der Zusetzung des i.eucofarbstoffes, des Puffers und der Peroxidase spielt
keine Rolle, es wird jedoch vorzugsweise· zuerst die l.eucofarbstofflösung and anschließend die: gepufferte
Peroxidase-Lösung zugesetzt.
Schließlich wird in Schritt f) die Extinktion der erhaltenen gefärbten Lösung in einem Photometer
gemesser.. Im Falle von o-Dianisidin erfolgt diese Messung /wischen 420 und 4bO nni. Die Ergebnisse der
20
photometrischen Messung werden mit einem geeigneten Registriergerät festgehalten.
Ein Ausführungsbeispiel der erfindungsgemäßen
automatisierten Methode wird anhand der Figur näher erläutert.
Die Figur illustriert ein automatisches System mit
kontinuierlicher Strömung, worin die zu analysierenden Proben der Reihe nach aus getrennten Probebehältern
vom Probenschlauch 2 gesaugt wird (Durchfluß 0,42cc/min). Der Probeteller 1 dreht mit einer
konstanten Geschwindigkeit und Hefen dem System 60 Proben pro Stunde mit einem Waschverhältnis von
5:1. Eine auf diese Weise angesaugte Probe wird in Strömung mit einer l,3°/oigen Kochsalzlösung (Durchfluß
2,00cc/Min.) gemischt und durch eine übliche
Mischspule 3 mit 5 Windungen aus Glas geleitet.
Nachdem die Mischung die Mischspule durchflossen hat, wird sie durch einen Dialysator 4 (Dialysierweg 60 cm),
welcher mit einer Cellophanmembran od. dgl. versehen ist, gepumpt, wobei die Harnsäure durch Dialyse in die
in den unteren Teil des Dialysators zugeführte (Durchfluß 2,00cc/Min.) gepufferte Uricase-Lösung
(pH = 9,5), übergeht. Nach Durchgang des Dialysators
wird das Reaktionsgemisch bei einer Temperatur von 370C während 4 Minuten in einem Heizbad 5 inkubiert,
wobei die Harnsäure quantitativ zu Allantoin und Wasserstoffperoxid umgesetzt wird. Dem erhaltenen
Reaktionsgemisch wird dann in kontinuierlicher Weise
eine wäßrige Lösung von o-Dianisidin zugesetzt (Durchfluß 0,10cc/Min.). Anschließend wird diese
Mischung durch eine Mischspule 6 mit 20 Windungen aus Glas geleitet. Nach Durchfließen dieser Mischspule
6 wird eine gepufferte wässerige Peroxidase-Lösung Tabelle I
von pH-Wert 7,0 zugesetzt (Durchfluß 0,42 cc/Min.), wodurch die entstandene Mischung einen pH-Wert von
7,5 aufweist. Diese Mischung wird dann durch eine zweite Mischspule 7 mit 20 Windungen geleitet. Bei
Durchströmung dieser Mischspule 7 reagiert das Wasserstoffperoxid unter katalytischem Einfluß der
Peroxidase mit dem o-Dianisidin unter Bildung einer gelborangen Färbung. Anschließend werden in einem
Photometer 8 in einer 15-mm-Durchflußküvette bei
460 nm photometrische Messungen durchgeführt, d. h.
die Extinktion der zu prüfenden Lösung wird bei 460 nm in einem Photometer mit einer Durchflußküvette
gemessen. Die Ergebnisse der photometrischen Messung werden mit einem geeigneten Registriergerät 9
festgehalten.
Das System mit kontinuierlicher Strömung, welches durch die Figur illustriert ist, saugt 60 Proben/Stunde an.
Die Materialien, welche in das System einströmen, werden mittels einem geeigneten Pumporgan 10,
welches eingestellt wurde, um die gewünschte Strömungsgeschwindigkeiten aufrechtzuerhalten, in dieses
System gepumpt. Zur Vermeidung von Kontaminationseinflössen werden die Verdünnungslösung und die
gepufferte Uricase-Lösung durch Luftblasen segmentiert (Durchfluß 0,23CcZMIn.). Zur Erzielung eines
regelmäßigen Blasenmusters wird diesen beiden Lösungen sowie der gepufferten Peroxidase-Lösung ein
Detergenz zugesetzt Als Detergenz eignet sich z. B. Polyoxyäthylcnsorbitanmonolaurylat. Die Konzentration
des zugefügten Detergenz beträgt für die Verdünnungslösung vorzugsweise 0,25 Prozent, für die
beiden anderen Lösungen vorzugsweise 1 Prozent.
Die Menge an Reagenzien, welche in einem bestimmten Reagenzsystem gebraucht wird, kann ohne
Mühe, in Relation zu der zu untersuchenden Probe, mit Bestimmungen.
Hilfe der vorstehend angegebenen molaren Mengen respektive Enzymaktivität berechnet werden. Diese
Berechnungen sind dem Fachmann geläufig. Beispielsweise kann ein Reagenzsystem die folgenden spezifischen
Verbindungen enthalten:
Reagenz A
Reagenz A
10 Einheiten Uricase (Suspension) (oder Lyophilisat)
Reagenz B
Reagenz B
60 mmol Phosphat-Puffer (Granulat) 100 Einheiten Peroxidase (Lyophilisat)
Reagenz C
66 mg o-Dianisidin (Lyophilisat) Reagenz D
18 ml Tween 20 (viskose Flüssigkeit) Reagenz E
10 mmol Natriumtetraborat (kristallines Pulver)
Die Haltbarkeit dieser Reagenzien beträgt mindestens 1 Jahr bei 2-8° C.
Die Erfindung wird an Hand der folgenden Beispiele noch weiter erläutert. Alle Temperaturen sind in Grad
Celsius angegeben.
B e i s ρ i e 1 1
Es wurde eine Verdünnungsreihe wäßriger Harnsäurestandards hergestellt mit den Konzentrationen
2 mg/100 ml, 5 mg/100 ml, 10 mg/100 ml, 20 mg/100 ml, 30 mg/100 ml und 40 mg/100 ml. Diese Standards
werden wie Proben eingesetzt und wie in dem durch die Figur veranschaulichten Ausführungsbeispiel bestimmt.
Harnsäurekonzentration | Ergebnis in |
mg/ml | Skalenteilen |
2 | 4,4 |
5 | 11,1 |
10 | 22,3 |
20 | 44,4 |
30 | 65,0 |
40 | 87,3 |
Die Tabelle 1 beweist, daß mit der erfindungsgemäßen Methode ein gesicherter Linearitätsbereich bis
40 mg/ml gewährleistet ist.
Es wurde der Harnsäuregehalt von 5 verschiedener KontroHseren gemäß dem Ausführungsbeispiel nach
der Figur bestimmt. Das Ergebnis wird in dei nachstehenden Tabelle II wiedergegeben.
Tabelle | H | X | S | VK | N |
Serum | 4,50 | 0,054 | 1,20 | 15 | |
a | 4,17 | 0,049 | 1,18 | 15 | |
b | 9,11 | 0,012 | 0,13 | 10 | |
C | 439 | 0,032 | 0,73 | 10 | |
d | 4,88 | 0,07 | 1,43 | 10 | |
e | Mittelwert mg | Harnsäure/100 ml. | |||
X = | Standardabweichung. | ||||
s = | Variationskocffizient (%). Anzahl der in der Serie dnr< |
||||
VK = N = |
|||||
■■hprfiihricn | |||||
Die Tabelle II zeigt einen durchschnittlichen Variationskoeffizienten
von weniger als 1 Prozent und beweist somit die Präzision der Methode.
Es wurden respektiv 0,93 mg/100 ml, 1,86 mg/100 ml und 2,79 mg/100 ml an Harnsäure 2 verschiedenen
Kontrollsera zugesetzt und der Harnsäuregehalt gemäß
dem Ausführungsbeispiel nach der Figur bestimmt.
Das Ergebnis wird in der nachstehenden Tabelle 111 wiedergegeben.
Tabelle Hl veranschaulicht die Rückgewinnung (»Rccovery-Mcihode«) von Harnsäure.
Tabelle III | Zugefügte Harnsäure | Gesamtmenge an | Zurückgewonnene | Durchschnitt | Rück |
Harnsäure in der | Harnsäure | Harnsäure | gewinnung | ||
Probe | mg/100 ml | mg/100 ml | mg/100 ml | % | |
mg/100 ml | 0,93 | 5,43 | 5,39 | 99,3 | |
4,50 | 1,86 | 6,36 | 6,35 | 99,8 | |
4,50 | 2,79 | 7,29 | 7,30 | 100,2 | |
4,50 | 0,93 | 9,89 | 10,08 | 102 | |
8,96 | 1,86 | 10,82 | 10,99 | 101,5 | |
8,96 | 2,79 | 11,75 | 11,68 | 99,4 | |
8,96 | 100.36 | ||||
Es wurden respektive 10 mg/100 ml Glutathion, 10 mg/100 n.l Allantoin und 5 mg/100 ml Kreatinin
einem Kontrollserum mit einem ursprünglichen HarnsLure-Gehalt
von 4,6 mg/100 ml zugegeben und danach
der Harnsäuregehalt erneut gemäß dem Ausführungsbeispiel nach der Figur bestimmt.
Das Ergebnis wird in der nachstehenden Tabelle IV wiedergegeben.
Tabelle | IV | Sollwert | Gefundener |
Probe | Zugefügte Fremd | Wert | |
substanz | mg/100 ml | mg/100 mi | |
4,6 | 4,6 | ||
1 | 4,6 | 4,6 | |
2 | Glutathion, | ||
10 mg/100 ml | 4,6 | 4,7 | |
3 | Allantoin, | ||
10 mg/100 ml | 4,6 | 4,7 | |
4 | Kreatinin, | ||
5 mg/100 ml | |||
Tabelle IV veranschaulicht die geringe Störanfälligkeit der erfindungsgemäßen Methode in bezug auf
Glutathion, Allantoin und Kreatinin.
B e i s ρ i e 1 5
Es wurde ein Standard hergestellt mit der Konzentration 30 mg Harnsäure pro 100 ml. Ein aliquoter Teil
dieses Standards wurde mit Ascorbinsäure so versetzt, daß die Gesamtkonzentration an Ascorbinsäure 5 mg/
100 ml betrug. Anschließend wurden die beiden Standards wie Proben in das System eingesetzt und der
Gehalt der Harnsäure gemäß dem Ausführungsbeispiel nach der Figur gemessen.
Ergebnis:
Probe ohne Ascorbinsäure: 30,0 mg Harnsäure/100 ml
Probe mit Ascorbinsäure: 30,2 mg Harnsäure/100 ml
Das vorstehende Ergebnis zeigt die geringe Störanfälligkeit der erfindungsgemäßen Methode in bezug aul
Ascorbinsäure.
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
709 618/33
Claims (2)
1. Methode zur quantitativen Bestimmung von Harnsäure in biologischen Flüssigkeiten, worin man
in kontinuierlicher Strömung die folgenden Schritte nacheinander durchführt,
a) in kontinuierlicher Strömung wird eine bestimmte Menge an Probe mit einer Verdünnungslösung
gemischt,
b) diese Mischung wird durch einen Dialysator geleitet, dabei wird eine klare wässerige Lösung
von dieser Mischung abgetrennt,
c) diese klare wässerige Lösung wird mit einer gepufferten Uricaselösung mit einem pH-Wert
zwischen 8.5 und 10 gemischt
d) die gemäß Schritte) erhaltene wässerige Lösung wird inkubiert,
e) das Reaktionsgemisch wird bei einem pH-Wert zwischen 5,5 und 8,5 mit einem Chromogen und
Peroxidase gemischt und dadurch eine gefärbte Lösung erzeugt
f) diese gefärbte Lösung wird durch eine Durchflußküvette geleitet und der in der Probe
vorhandene Harnsäuregehalt wird während des Fließens der gefärbten Lösung durch die
Durchflußküvette photometrisch bestimmt, dadurch gekennzeichnet, daß man als Chromogen ein unsubstituiertes oder kernsubstituiertes
Benzidin oder Diphenylin verwendet.
2. Methode nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als kernsubstituiertes Benzidin
o-Dianisidin verwendet.
IO
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH1480773A CH584405A5 (de) | 1973-10-19 | 1973-10-19 | |
CH1480773 | 1973-10-19 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2446099A1 DE2446099A1 (de) | 1975-05-07 |
DE2446099B2 DE2446099B2 (de) | 1976-09-16 |
DE2446099C3 true DE2446099C3 (de) | 1977-05-05 |
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE3021259C2 (de) | Mit Amidopyrin verbessertes Trinder-Reagens und Verfahren zur quantitativen Bestimmung von Wasserstoffperoxid bei der enzymatischen Oxidation von Stoffwechselprodukten mit diesem Reagens | |
EP0037056B1 (de) | Verfahren und diagnostische Mittel zum Nachweis von Redox-Reaktionen | |
EP0016947B1 (de) | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten | |
DE3015877C2 (de) | ||
DE69021389T2 (de) | Verfahren und reagenz zur bestimmung eines analyten auf enzymatischem wege mittels eines eisen-iii-zyan /eisen -iii-verbindungssystems. | |
DE1272019B (de) | Pruefmaterial zum Nachweis von Glukose | |
DE2506115A1 (de) | Reagenz fuer kolorimetrische bestimmungen | |
DE1240306B (de) | Mittel zum Nachweis von Harnstoff im Blut | |
DE1598133A1 (de) | Verfahren und diagnostisches Mittel zur Bestimmung von Hydroperoxiden bzw. peroxidatisch wirksamen Substanzen | |
DE2533458C2 (de) | Verfahren und Reagens zur Bestimmung des Gesamtcalciums in Körperflüssigkeiten | |
DE2653537C3 (de) | Verfahren und Mittel zur Bestimmung von Hydroperoxiden | |
DE2530036C3 (de) | Verfahren zur Bestimmung von Harnstoff in Flüssigkeiten | |
DE2262781A1 (de) | Verfahren zur bestimmung von anorganischem phosphat in organischen fluessigkeiten | |
DE2751904C2 (de) | Verfahren und Mittel zur Bestimmung von Kreatinin in biologischen Flüssigkeiten | |
DE1598756A1 (de) | Mittel zur Bestimmung von Harnstoff in Fluessigkeiten | |
DE1773537C3 (de) | Methode zur quantitativen Bestimmung von anorganischem Phosphat | |
DE69026611T2 (de) | Verfahren zur Bestimmung von Fruktosaminen | |
DE2759961C2 (de) | Verfahren zur quantitativen Bestimmung von Harnstoff | |
EP0309882A2 (de) | Verfahren zur spezifischen Bestimmung des Serumfructosamingehalts sowie hierfür geeignetes Reagenzgemisch | |
DE2446099C3 (de) | Methode zur quantitativen Bestimmung von Harnsäure | |
DE1940869B2 (de) | Amylaseaktivitat | |
EP0340511B1 (de) | Trägergebundenes mehrkomponentiges Nachweissystem zur kolorimetrischen Bestimmung esterolytisch oder/und proteolytisch aktiver Inhaltsstoffe von Körperflüssigkeiten | |
DE2504994A1 (de) | Verfahren zur kreatininbestimmung | |
DE2446099B2 (de) | Methode zur quantitativen bestimmung von harnsaeure | |
DE68915838T2 (de) | Kalziumtestreagenz. |