DE2023987C3 - Verfahren zur Spaltung von Viren - Google Patents
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Description
den die Eier aufgebrochen und die Flüssigkeiten durch eine Zentrifuge hoher Geschwindigkeit zentrifugiert
Die Viren werden aus der Flüssigkeit neben beträchtlichen Mengen von Eiprotein und dergleichen ausgeschleudert Der sich ergebende Niederschlag wird in
Kochsalzlösung erneut suspendiert und kann dann ungefähr 12 bis 15 Stunden in einer Kugelmühle
bearbeitet werden, wodurch man dann eine wäßrige Virussuspension erhält, die dann in einer langsam
laufenden Zentrifuge unter Bildung eines Viruskonzentrats geklärt wird. Wie oben erwähnt, kann überraschenderweise das vorliegende Verfahren entweder die
gesammelte allantoische Flüssigkeit oder das Viruskonzentrat als Ausgangsmaterial verwenden.
Das besondere, in dem vorliegenden Verfahren erforderliche Lösungsmittel ist ein Trialkylphosphat,
das im wesentlichen in Wasser unlöslich ist, d. h, daß es
eine Löslichkeit hat, die im wesentlichen nicht größer ist
als 1% bei 25° C Damit ist eine besondere Klasse von organischen Lösungsmitteln vorgesehen, die auf wäßrige Suspensionen von Viren einwirken können, wodurch
die gewünschte Spaltung in einer unerwartet wirksamen Weise gebildet und gleichzeitig die Toxizität gesenkt
wird. Diese Ester sind im wesentlichen in dem Sinne wasserunlöslich, daß die Klasse dispergierfähige Materialien beinhaltet, die sich in einem Ausmaß von nicht
mehr als ungefähr 1 g in 100 g Wasser bei 25° C lösen. Besonders brauchbare Phosphatester stammen von
aliphatischen gerade- und verzweigtkettigen Alkoholen mit von 4 bis 10 Kohlenstoffatomen, wozu beispielsweise Tri-(n-butyl)-phosphat, Tri-(t-butyl)-phosphat, Tri-{nhexyl)-phosphat Tri-(2-äthyIhexyl)-phosphat Tri-(n-decyl)-phosphat und dergleichen gehören. Ein besonders
bevorzugter Phosphatester ist Tri-(n-butyl)-phosphat Es ist bei dem Verfahren kritisch, dem Medium
nichtionische Netzmittel einzuverleiben, da diese sich für diesen Zweck als besonders geeignet erwiesen
haben. Bevorzugte Netzmittel sind polyoxyäthylensorbitanhöhere Fettsäure-Partialester, wobei beispielsweise zu diesen Polyoxyäthylensorbitanmonolaurat und
mono-Oleat gehören, die beide kommerziell verfügbar sind. Wie es nachfolgend noch erläutert wird, ist eine
besonders bedeutende praktische Ausfuhrungsform dieser Erfindung die Spaltung von Influenzaviren
sowohl der Typen A als auch B.
Bei der Durchführung des vorliegenden Verfahrens, das, wie oben angegeben, allgemein auf virusenthaltende Medien anwendbar ist aber zum Zwecke der
Erläuterung nachfolgend nur unter besonderem Hinweis auf Influenza-Virus enthaltende Medien beschrieben wird, kann die Spaltung dadurch bewirkt werden,
daß man die unverdünnte oder konzentrierte Viruslösung der Phosphatesterextraktion unterwirft In diesem
Verfahren wird die Viruslösung mit Phosphatester gemischt, vorzugsweise ungefähr 1 bis 30 Teile Lösung
pro Vol.-Teil Ester, und um beste Ergebnisse zu erhalten,
hält man die Temperatur zwischen ungefähr 4° C und ungefähr 25°C so lange, bis im wesentlichen das
vollständige Zusammenbrechen der Viruspartikel ermöglicht ist Die Phosphatesterbehandlung spaltet bzw.
zerlegt das intakte Influenzavinis in kleinere lipoidfreie Partikel, die alle die Oberflächenantigene der intakten
Viren tragen. Die bevorzugte Mischzeit ist ungefähr eine Stunde bei Influenzaviren, obgleich Zeiten wie 3
Minuten und 1 Stunde verwendet werden können. Nach dem Mischen läßt man die wäßrigen und Phosphatesterphasen, vorzugsweise in der Kälte, sich trennen und die
wäßrige Phase, die das gewünschte Untereinheits-Virus
antigen enthält, wird gewonnen. In jedem Falle wird,
wenn eine allantoische Flüssigkeit verwendet wurde, die Phasenabtrennung durch Zugabe von Paraffinöl, ungefähr 1 VoL-%, zu der Viruslösung, nach der Phosphatesterbehandlung erleichtert Die Extraktion der wäßrigen Phase mit Phosphatester muß mit einem nichtionischen Netzmittel, das der wäßrigen Phase einverleibt
wird, durchgeführt werden, da sonst die gewünschten
Ergebnisse nicht erzielt werden. Bevorzugte Netzmittel sind die polyoxyäthylensorbitan-höhere Fettsäure-Partialester, wie Polyoxyäthylensorbitan-mono-laurat und
-mono-oleat Die verwendete Menge ist nicht besonders
kritisch, und es können beispielsweise von ungefähr 0,01 bis ungefähr 1% verwendet werden, jedoch ist es
zweckmäßig, ungefähr 0,1% Netzmittel, bezogen auf das Gewicht der wäßrigen Flüssigkeit, zu verwenden.
Die sich ergebenden Extrakte, die nicht infektiös sind,
können zur Herstellung von Vakzinen oder diagnostischen Mitteln oder sie können Tieren zur Herstellung
von spezifischen Antiseren und dergleichen injiziert werden. Im Falle der Vakzinherstellung wird beispielsweise ein geeignetes Influenzavirusvakzin, entweder
durch bakteriologisch steriles Filtrieren (ein Vorteil im Vergleich zu dem Stand der Technik) oder durch
herkömmliche Mittel, wie durch Zugabe eines Konservierungsmittels wie Thiomersal (1 :10 000) und eines
Stabilisierungsmittels wie Formalin, erhalten. Die optimale Konzentration zur Stabilisierung ist ungefähr
0,1%.
Die nach dieser Erfindung hergestellten Extrakte sind besonders als Ausgangsmaterialien für chromatographische Reinigungsverfahren des Influenzavinis geeignet
Nur zum Zwecke der Erläuterung soll darauf hingewiesen werden, daß gegenüber allen herkömmlichen
Verfahren verbesserte Reinigung dadurch erhalten werden kann, wenn man mit Calciumdihydrogenorthophosphatmonohydrat mit Wasser, dann mit Alkali so
wäscht daß der pH-Wert auf ungefähr 6,5 eingestellt
wird, dann mit Wasser wäscht, bis der pH-Wert auf ungefähr 7,2 bis 7,4 angestiegen ist, dann mit einer
Alkalimetalltrimetaphosphat-(TMP)-lösung auf einen pH-Wert von ungefähr 8,0 wäscht und das zur
Reinigung vorgesehene Material in eine chromatographische Kolonne einbringt und mit TMP auf pH 8 bis 8,1
wäscht Dann wird ein virusenthaltender Extrakt, der nach dieser Erfindung hergestellt wurde, wenn gewünscht, verdünnt wobei der Virus mit einem
Alkalimetalltrimetaphosphat bei einem pH-Wert von ungefähr 8,0 behandelt wurde, in die Kolonne gegossen.
Die Kolonne wird mit 0,01 TMP-Puffer, pH 8,0, gewaschen und dann mit einem Puffer, d.h. einem
1,0-M-Phosphatpuffer, mit einem pH-Wert von ungefähr 5,0 bis 9,0 eluiert. Es wird vorgezogen, den
Influenzatyp A bei pH 6,0 und den Influenzatyp B bei pH 8,0 zu eluieren. Die Eluate können dann nach völlig
herkömmlichen Verfahren, wie sie oben beschrieben wurden, in außergewöhnlich brauchbare Vakzine
formuliert werden. Untersuchungen der Fieberbildung bei Laboratoriumstieren sind ein Standardmaßstab für
den Grad der Toxizität bei Virussuspensionen. Ein weitgehend verwendetes Verfahren besteht darin,
gering'; Mengen der Testflüssigkeit Kaninchen zu injizieren und die Körpertemperatur in 15-Minuten-Abständen zu messen. Die Untersuchung wird über 8
Stunden durchgeführt und Virussuspensionen, die unerwünscht toxische Materialien enthalten, veranlassen einen Temperaturanstieg bei dem Tier. Bei
unbehandeiten Lösungen von Viren ist es üblich, daß
man Erhöhungen von 2" C oder mehr feststellt. Es ist
anerkannt üblich, Viruslösungen mit Formaldehyd zu behandeln, der die Temperaturerhöhung etwas, aber
nicht vollständig auf normal senkt. Weiterhin hat die Extraktion von Viruslösungen mit Äther ebenso die
Neigung, die Temperaturerhöhung zu senken. Aber bei der vorliegenden Erfindung ist die Wirkung der
Verringerung der Fieberbildung der Virussuspension besonders bemerkenswert im Vergleich zu den Verfahren
nach dem Stand der Technik. Diese Wirkung wird durch die Zeichnung erläutert, worin
F i g. 1 das Temperaturansprechen von Kaninchen zeigt, denen Dosen von wäßrigem Influenzavirus Typ
A-2/Taiwan, 4000 Hämaggkitinierungseinheiten
(HA)/ml — unbehandelt formalinbehandelt, ätherbehandelt
und behandelt mit Tri-(n-butyl)-phosphat nach dieser Erfindung injiziert wurde;
Fig.2 das Temperaturansprechen von Kaninchen
zeigt, denen wäßriger Infiuenzavirus Typ B/Mass. — unbehandelt formalinbehandelt, ätherbehandelt und
behandelt mit Tri-(n-butyl)-phosphat nach der Erfindung gespritzt wurde;
Fig.3 das Temperaturansprechen von Kaninchen
zeigt, denen wäßriger Infiuenzavirus Typ A2/Japan/170
— unbehandelt, formalinbehandelt, ätherbehandelt und 2s
behandelt mit Tri-(n-butyl)-phosphat nach der Erfindung gespritzt wurde.
Ein Vergleich der in diesen Figuren durch die verschiedenen Linien aufgezeigten Temperaturhöhen
zeigt, daß die Behandlung mit Tri-(n-butyl)-phosphat weit wirksamer ist zur Senkung der fieberbildenden
Stoffe in den Virus enthaltenden Flüssigkeiten als die Behandlung mit Äther, und in der Zeit nach ungefähr 3
Stunden ist sie auch viel wirksamer als die Behandlung mit Formalin.
Die vorliegende Erfindung schafft, wie durch die nachfolgenden Beispiele erläutert wird, ein Verfahren,
um Viren zu spalten unter gleichzeitiger Senkung der Pyrogenität und ohne wesentliche Senkung des
Neuraminidasespiegels oder Abnahme der Immunisierung im Vergleich zu intakten Viren. Die Erfindung
schafft weiterhin eine Möglichkeit, Viren zu spalten, wozu im kommerziellen Umfang Produktionsvorrichtungen
ohne Explosions- oder Feuergefahr verwendet werden können.
Die Erfindung schafft weiterhin gespaltene Viren, die zur Herstellung von Vakzinen für diagnostische oder
immunisierende Zwecke brauchbar sind, und solche Vakzine fallen in den Bereich der vorliegenden
Erfindung.
Ein zentrifiigiertes Ausgangsmaterial wird wie folgt
hergestellt: 11 Tage alte befruchtete Hühnereier wurden mit Infiuenzavirus des Typs A geimpft und 48
Stunden bei 35° C bebrütet Nach dem Brüten wurde die Allantois-FIüssigkeit gesammelt zentrifugiert und die
sich ergebenden Sedimente erneut in Kochsalzlösung suspendiert und 12 bis 15 Stunden in der Kugelmühle
bearbeitet Die sich ergebende wäßrige Virussuspension fco wird dann in einer langsam laufenden Zentrifuge
geklärt
Polyoxyäthylensorbitan-mono-oleat wird jedem Viruskonzentrat
in einer Konzentration von 1 mg/ml (0,1%) zugegeben. 100 Vol.-Teile des sich ergebenden f>5
Gemische werden mit 33 VoL-Teilen Tri-(n-butyl)-phosphat
zusammengegeben und das sich ergebende wäßrige Tri-in-butyOphosphatgemisch bei 23° C ungefähr
1 Stunde so schnell gerührt, daß keine Schaumbildung erfolgt und noch keine Abtrennung der zwei
Phasen stattfindet. Dann läßt man die wäßrige und Tri-(n-butyl)-phosphatphase sich während ungefähr 16
Stunden trennen, entfernt die Tri-(n-butyl)-phosphatschicht
und sammelt die wäßrige Phase. Die sich ergebenden wäßrigen Antigenprodukte sind nicht
infektiös und können für immunisierende, prophylaktische oder diagnostische Zwecke verwendet werden.
Beispielsweise können Vakzine mit geringer Fieberbildung aus den wäßrigen Produkten hergestellt werden,
wozu man die gewünschte immunisierende Wirkung mit entionisiertem Wasser einstellt und danach unter
sterilen Bedingungen filtriert
Das Verfahren von Beispiel 1 wird wiederholt, wobei man anstelle des Zentrifugats die unreinen, zusammengegossenen
allantoischen Flüssigkeiten, die das Virus des Typs A2/Taiwan, Typs A2/Japan/170 oder Typ
B/Mass. enthalten, verwendet Nach Beendigung der Extraktion wird in diesem Falle 1 Vol.-% Paraffinöl
zugegeben, um die Phasentrennung zu erleichtern. Die Phasentrennung erfolgt in diesem Falle durch Zentrifugieren.
Die wäßrige Phase kann zu hochwertigen Vakzinen nach dem Verfahren von Beispiel 1 aufgearbeitet
werden. Jedoch werden besonders hochwirksame Vakzine dann erreicht, wenn die nachfolgenden Stufen
eingehalten werden:
100 g Calciumphosphat-monobasisches Monohydrat
[Ca(H2PO4J2 · H2O]
und 400 ml entionisiertes Wasser werden 15 Minuten bei pH 23 gerührt Unter fortdauerndem Mischen wird
eine kalte (4°C) 3 N-Natriumhydroxidlösung tropfenweise
während einer halben Stunde zugegeben, bis ein pH-Wert von 6,5 erreicht ist Der Inhalt des
Reaktionsgemischs wird dann durch ein äußeres Eisbad bei 20 bis 23° C gehalten. Nach halbstündigem Rühren
läßt man das Adsorbens absitzen, und die überstehende Flüssigkeit wird dekantiert Das Adsorbens wird
ansatzweise mit '/21 Portionen entionisiertem Wasser
gewaschen, bis der pH-Wert der überstehenden Flüssigkeit 7,2 bis 7,4 ist Das Adsorbens wird dann
ansatzweise mit einer gepufferten 0,01-M Natriumtrimetaphosphat-(pH
9,0)-!ösung gewaschen, bis ein pH-Wert von 8,0 erreicht ist (vier, 500-mI-Portionen).
100 g Ca(H2PO4J2 · H2O, behandelt wie beschrieben,
werden in eine Glaskolonne eingeführt, die eine gesinterte Glasscheibe enthält um das Bett zu tragen
und mit TMP-Puffer gewaschen, bis der Abfluß einen pH-Wert von 8,0 hat Der Kolonne werden dann 750 ml
infizierte allantoische Flüssigkeit die das esterextrahierte Virus enthält verdünnt mit einem gleichen Volumen
sterilem destilliertem Wasser, zugeführt Die verdünnte Flüssigkeit wird auf pH 8,0 mit 0,01-M Natriumtrimetaphosphat
eingestellt und fließt durch die Kolonnen während einer Zeitdauer von zwei Stunden. Die
Kolonne wird dann mit 200 ml 0,01-M Natriumtrimetaphosphat-(pH
8)-lösung gewaschen und das Virus Typ A mit 0,1-M Phosphatpuffer (pH 6,0) und das Virus Typ B
mit 0,1-M Phosphatpuffer (pH 8,0) eluiert
Nach dem oben beschriebenen Verfahren erhält man den Virusstamm in hoher Ausbeute und mit einem guten
Reinigungsfaktor. Dieser kann dann in überlegene Vakzine nach dem Verfahren von Beispiel 1 formuliert
werden. Auf diese Weise werden Vakzine mit
Influenzariven Typ A2/Taiwan Typ B/Mass. und Typ
A2/Japan/170 erhalten.
Das Verfahren von Beispiel 1 wird wiederholt, wobei man das Influenzavirus durch die nachfolgenden
Stämme ersetzt: A/PR-8, A/Jap 305, A/Ann Arbor, B/Great Lakes und B/Maryland. Es werden im
wesentlichen die gleichen Ergebnisse erhalten.
Das Verfahren von Beispiel 1 wird wiederholt, wobei man anstelle von Tri-(n-butyl)-phosphat gleiche Volumen
Tri-(t-butyl)-phosphat, Tri-(n-hcxyl)-phosphat, Tri-(2-äthylhexyl)-phosphat
und Tri-(n-decyl)-phosphat verwendet. Mit allen diesen Estern konnien in den chromatographischen Stufen von Beispiel 2 Esterspuren
aus der wäßrigen Phase wünschenswerterweise entfernt
werden. Es werden im wesentlichen die gleichen Ergebnisse erhalten.
Das Verfahren von Beispiel 1 wird wiederholt, wobei man anstelle von Polyoxyäthylensorbitan-mono-oleat
ein gleiches Volumen Polyoxyäthylensorbitanmonolaurat verwendet. Es werden im wesentlichen die gleichen
Ergebnisse erhalten.
Das Verfahren von Beispiel 1 wird wiederholt, wobei man anstelle des Zentrifugats der influenzainfizierten
allantoischen Flüssigkeit eine wäßrige Suspension von Gewebekulturflüssigkeit verwendet, die mit Tollwutvirus
infiziert war. Es wird ein gereinigtes, antigenes Produkt aus Untereinheiten erhalten.
Hierzu 2 Blatt Zeichnungen
Claims (2)
1. Verfahren zur Spaltung von Viren, dadurch
gekennzeichnet, daß man das intakte Virus in einem wäßrigen Medium mit einem nichtionischen
Netzmittel und einem Trialkylphosphat mit einer Löslichkeit in Wasser, die im wesentlichen nicht
größer ist als 1 % bei 250C, in Kontakt bringt und das
wäßrige Medium und das gespaltene Virus von dem Trialkylphosphat abtrennt
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet daß das verwendete Trialkylphosphat
Alkylgruppen aufweist die 4 bis 10 Kohlenstoffatome enthalten.
Diese Erfindung betrifft die Behandlung von Viren, die zur Herstellung von Vakzinen für diagnostische und
immunisierende Zwecke geeignet sind. Im besonderen betrifft die Erfindung die Spaltung von Viren in
Untereinheiten, die besonders wertvoll sind, um kräftige
immunisierende Mittel herzustellen.
Es besteht seit langem ein Bedürfnis nach zufriedenstellenden Verfahren zur Spaltung von Viren, besonders
von lipoidenthaltenden Viren, beispielsweise den Viren von Influenza, Newcastle-disease, Tollwut und dergleichen. Nach dem Stand der Technik verfügbare
Verfahren zur Herstellung von Virusantigenen beinhalten das Isolieren des Virus aus natürlichen Vorkommen
und die nachfolgende Züchtung des Virus in den Zellflüssigkeiten von Hühnerembryonen, Gewebekulturflüssigkeiten und ähnlichen wäßrigen Medien.
Die in diesen Medien gebildeten Viren bestehen aus getrennten Partikeln, die beispielsweise gebundene
Lipoide enthalten. Neuerding? wurden verbesserte Vakzine in der Weise hergestellt daß man intakte Viren
in Untereinheiten spaltet, die noch antigen sind.
Es wurden verschiedene Verfahren nach dem Stand der Technik im kommerziellen Umfang verwendet, um
die gewünschte Spaltung der Viren in Untereinheiten zu erreichen. Dies geschieht im allgemeinen einerseits
durch die Verwendung von Detergentien oder andererseits durch die Verwendung vor. Äther, einer flüchtigen,
sehr leicht entzündbaren Substanz. Ein detergensgespaltenes, aus Untereinheiten bestehendes Vakzin, das
durch Natriumdesoxycholatbehandlung von Influenzaviren hergestellt ist, ist kommerziell verfügbar, leidet
jedoch im Vergleich zu intakten Viren an beträchtlich verringerter Immunisierungswirkung, wie bei Untersuchungen der Wirksamkeit an Mäusen festgestellt wurde.
(Rubin u.a.. Arch. Virus-forsch. 20: 268 [1967]; Webster, J. Immunol, 96: 598 [1966]). Ein weiterer
wesentlicher Vorschlag bestand darin, Äther als Spaltungsmittel zu verwenden. Jedoch entfernt im
Gegensatz zu einigen Behauptungen in der Literatur und wie dies noch in der Zeichnung gezeigt wird, Äther
die Pyrogenität nicht vollständig, wie dies durch Standard-Fieberuntersuchungen an Kaninchen festgestellt wurde. Weiterhin verursacht Äther einen wesentlichen Verlust an dem Enzym Neuraminidase. Dies ist
sehr nachteilig, weil bis heute angenommen wird, daß die besten Vakzine einen hohen Gehalt dieses Enzyms
haben müssen. Es wäre daher wünschenswert, Mittel zur Spaltung von Viren, besonders von Influenzaviren zu
schaffen, wobei diese Mittel wirksamer ais Äther sein
sollen, um pyrogene Stoffe zu entfernen, ohne
gleichzeitig wesentliche Verluste sui Neuraminidase zu
bewirken, und sie sollten weiterhin nicht die Wirksamkeit des Produktes als Immunisierungsmittel verringern,
wie dies Detergentien wie Natriumdesoxycholat tun. Es wäre weiterhin wünschenswert Mittel zu schaffen, die
sowohl konzentrierte Viren als auch unreine Viren in Allantois-Flüssigkeit spalten.
Es wurde nunmehr ein neues und verbessertes Verfahren zur Zerlegung der Viren geschaffen.
Das neue Verfahren der vorliegenden Erfindung beruht im wesentlichen auf der Spaltung der Viren,
wozu man das intakte Virus in einem wäßrigen Medium mit einem nichtionogenen Netzmittel und einem
Trialkylphosphat in Kontakt bringt das eine Löslichkeit in Wasser aufweist die nicht wesentlich größer als 1 %
bei 25° C und danach das wäßrige Medium und das gespaltene Virus von dem Trialkylphosphat abtrennt
Gemäß der Erfindung kann ein Influenza- oder Tollwutvirus gespalten werden. Beispielsweise kann das
Ifluenzavirus ein solches des Typs A2/Taiwan, Typ
B/Massachusetts oder Typ A2/Japan 170 sein.
Das Netzmittel ist zum Beispiel ein Polyoxyäthylensorbitan-höhere-Fettsäure-Partialester.
Das wäßrige Medium kann eine Allantois-Flüssigkeit sein. Das Verfahren zur Spaltung eines Influenzavirus
besteht dann, daß man das intakte Virus in einer allantoischen Flüssigkeit mit dem Trialkylphosphat
besonders Tri-n-butylphosphat mit einem nichtionisehen Netzmittel, besonders Polyoxyäthylensorbitan-
mono-oleat, in Kontakt bringt und dann die Flüssigkeit
und das zerlegte Virus von dem Trialkylphosphat abtrennt
Die Bezeichnung »Virus«, wie sie hier und in den Ansprüchen verwendet wird, bezieht sich auf infektiöse
lipoidenthaltende Viren, wie Influenzavirus und ebenso Tollwutvirus, Newcastle-disease-Virus, Mumpsvirus,
Pheumonievirus bei Mäusen, »eastern equine«-Encephalomyelitis-Virus, Saint-Louis-Encephalitis-Virus, Japanischer Encephalitis-Virus, Gelbfiebervirus, Der.guefieber-Virus, West-Nil-Virus. Theileria GD VH-Virus,
Encephalomyocarditis-Virus, lymphocytischer Chorimeningitidis-Virus, vesiculärer Stomatitis-Virus und
dergleichen. Das wäßrige, den intakten Virus enthaltende Medium kann jede Art von Flüssigkeit sein, die dem
Fachmann dafür bekannt sind, daß man aus ihnen Viren isolieren und in ihnen züchten kann, wie beispielsweise
allantoische Flüssigkeit Gewebekulturflüssigkeit ein wäßriger Extrakt oder eine Suspension von Zentralnervensystemgewebe, Blutzelleneluat, ein wäßriger Extrakt
oder eine Suspension von Hühnerembryo und dergleichen. Die antigene Wirksamkeit der als Ausgangsmaterial verwendeten Viruslösung ist nichtkritisch und kann
nach Wunsch geändert werden. Für das Influenzavirus würde beispielsweise ein geeignetes intaktes Virusmedium, das zur Verwendung bei der Durchführung der
vorliegenden Erfindung geeignet ist die allantoische Flüssigkeit sein, die man dadurch erhält daß man 11
Tage alte befruchtete geprüfte Eier verwendet, die man mit dem Influenzavirus (zum Beispiel des Typs A, A-I,
A-2 oder B, zum Beispiel der Pr-8-, Ann-Arbor-, Asien-,
Taiwan-, Japan/170-, B/Mass.- oder Great-Lakes-Stämme) impft und 48 Stunden bei ungefähr 35°C bebrütet.
Bei der Herstellung von Vakzinen des Influenzatyps ist
es im allgemeinen üblich, die Eier in Ansätzen von ungefähr 20 000 Stück zu impfen. Die Viren werden in
den allantoischen Flüssigkeiten der infizierten Eier entwickelt. Nach der geeigneten Inkubationszeit wer-
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FR2051533B1 (de) | 1974-04-12 |
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