DD250456B1 - Verfahren zur bekaempfung von phytopathogenen bodenpilzen im gartenbau - Google Patents
Verfahren zur bekaempfung von phytopathogenen bodenpilzen im gartenbauInfo
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- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01C—PLANTING; SOWING; FERTILISING
- A01C1/00—Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Soil Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
neben den üblichen anbautechnischen Maßnahmen, gegenwärtig durch den Einsatz synthetisch oder mikrobiell hergestellter
mittels biologischer Bekämpfungsmaßnahmen.
jeweils notwendige Karenzzeiten den Einsatz dieser Syntheseprodukte ein. Fungizide mikrowellen Ursprungs (DD-WP 218388)haben nach ihrer Applikation nur eine begrenzte Wirkungsdauer. Diese Nachteile sind beim direkten Einsatz fungistatischwirksamer Mikroorganismen nicht gegeben, da die Bereitstellung der Mikroorganismen, sei es in Form von Kulturlösungen oder
in keiner Weise negativ beeinflußt wird und die applizierten Mikroorganismen im Boden oder den Erdsubstraten (aus denen sieisoliert wurden) ein natürliches Areal finden.
geographischen Besonderheiten beinhalten. Als antagonistisch wirksam werden bakterielle Mikroorganismen folgender Taxagenannt: Streptornyceten, Bacillen, Pseudomonaden, Arthrobacter sp., Corynebacterium sp. und nicht näher beschriebenechitinolytische Bakterien. Die taxonomische Species-Zugehörigkeit o.g. Taxa wurde bis auf wenige Ausnahmen nichtangegeben.
oder Mycelsuspensionen im Labormaßstab hergestellt und eingesetzt. Mitteilungen über die Herstellung und Verwendung von
Ziel der Erfindung ist es, Applikationsformen eines antagonistisch wirksamen Mikroorganismus zu entwickeln und für den Einsatz, insbesondere in der gärtnerischen Produktion, bereitzustellen.
wirkungsvolle Bekämpfung boden bürtiger phytopathogener Schadpilze durchzuführen.
der mit Pilzmycel versetzten Bacilluskulturen von drei Tagen wird die An* oder Abwesenheit von Pilzmycel mikroskopisch unddurch Ausstreichen der Kulturlösung auf Czapek-Dox-Agar (nach 48 Stunden Bebrütung) erfaßt.
in der zentralen Stammsammlung der DDR im Zentralinstitut für Mikrobiologie und experimentelle Therapie in Jena unter der
— Blutplatte: graubeige, glänzend, Rand glatt
— Nähragar: hellbeige, matt, stark gefaltet, Rand gelappt
keine Säurebildung aus: d-Galactose, Lactose, Dulcit, Rhamnose, Raffinose, Sorbit, O-Ribose
starkes Wachstum auf: Glucose-Nitratagar und Glucose-Asparaginagar
kein Wachstum in: 10%NaCI-Bouülon
— a-Hämolyse
— keine Säurebildung aus: Raffinose, d-Sorbit, D-Ribose
— Säurebildung aus: Xylose und Aesculin
— keine Zitratverwertung
— B. subtilis ATCC 6051 besitzt gegenüber dem .erfindungsgemäßen Stamm T 99 nur eine geringe Hemmwirkung gegen Fusarium oxysporum dianthi. Die Hemmzonenbreite in Strichtest, s. u. liegt bei Stamm T 99 bei 18-20 mm und bei dem Typusstamm B. subtilis ATCC 6051 bei 5-6 mm.
erfolgt mit einer Vorkultur.
von Oberflächenkulturen mit Bacillus subtilis T 99 gewonnen werden. Die Oberflächenkulturen werden angelegt auf Schrägagarin speziell gefertigten Eprouvetten mit einem Volumen von 110ml (Ausmaße: 30mm Durchmesser, 190mm Länge). Diese
vitro- und z.T. in vivo-Versuchen getestet.
(Snyder et Hanson) xxx
(Snyder et Hanson) xxx
(Gordon) xxx
cucumormum Owen . xxx
Bewertung: xxx starke Hemmwirkung (Hemmzonenbreite: 18-20 mm) xx weniger stark gehemmt (Hemmzonenbreite: 10-12 mm) - keine Hemmwirkung
Hemmzonenbreite ermittelt im Strichtest, s. Filippi et al., Plant and Soil 80,119 (1984) Für die in vivo-Versuche wurden Jungpflanzen der Edelnelke — Dianthus caryophyllus L — und der Gerbera — Gerbera jamesonii H. Bolus ex Hooker—verwendet. Es gelangten Kulturlösungen oder Sporensuspensionen des erfindungsgemäßen Stammes zwecks Prüfung des Bekämpfungseffektes gegen die Welkeerreger Fusarium oxysporum Schlecht, f. sp. dianthi (Prill et al.) Snyder et Hanson und Fusarium oxysporum Schlecht, f. sp. gerberae Gordon zum Einsatz, siehe Beispiele 4 und 5.
Zur Herstellung einer Applikationslösung mit Baccilus subtilis T 99 wurde ein 12-l-Rührfermenter mit 71 Füllung verwendet.
Der Stamm wurde als Schrägagarkultur auf Waksman-Agar, nachdem er 48 Stunden bei 300C gewachsen war, bei +40C aufbewahrt.
Zusammensetzung des Waksman-Agars: Bacto-Peptone (Difco) 5g, Glucose 10g, Fleischextrakt 3g, NaCI 5g, Agar 20g je Liter Leitungswasser, pH 6,8. Sterilisation 30min bei 121 °C.
Mit einer Platinöse wurden die Bakterien auf eine Vorkultur überimpft, die bei 3O0C 24 Stunden (in 500-ml-Rundkolben mit 100ml Füllung) geschüttelt wurde. Die Vorkultur diente zur Beimpfung des Produktionsmediums des Fermenters. Vorkultur· und Produktionsmedium bestanden aus Glucosenährbouillon folgender Zusammensetzung: Pankreatisches Pepton 22,5g, Glucose 1,0g, K2HPO4 2,0g, NaCI 3,0g je Liter Leitungswasser, pH 7,2 ± 0,2. Sterilisation des Mediums bei 121"C 30 min.
Das Produktionsmedium des Fermenters wurde mit einer Impfdichte von 107 Keimen/ml beimpft.
Fermentationsparameter: Belüftung 0,1 vvm, Umdrehung des Rührers 200/min, Temperatur 30°C, Schaumbekämpfung mit Polypropylenglycol. Nach einer Kulturdauer von 28 Stunden befanden sich die Zellen in der stationären Phase, sie waren etwa zu einem Viertel versport. Die Zellzahl lag bei etwa 10l0/ml.
Zur Herstellung größerer Mengen von Kulturlösung mit B. subtilis T 99 wurde ein 350-l-Fermenter verwendet.
Die Zusammensetzung des Produktionsmediums (220I) war die gleiche wie in Beispiel 1. Das Medium wurde bei 121 "C 30 min sterilisiert und danach mit einer 20h alten Vorkultur aus einem gerührten Laborfermenter mit etwa 109 Keimen beimpft. Die Impfdichte in dem Produktionstank lag bei etwa 107 Keimen/ml.
Die Nährbodenzusammensetzung der Vorkultur entsprach der von der Produktionskultur, siehe Beispiel 1.
Fermentationsparameter: Belüftung O.ivvm, Umdrehung des Rührers 200/min, Temperatur 30°C, Schaumbekämpfung mit Polypropylenglycol.
Nach einer Kulturdauer von 28Stunden befanden sich die Zellen in der stationären Phase, Die Zellzahl lag bei 3 · 10'/ml. Die Kulturlösung wurde unter aseptischen Bedingungen aus dem Fermenter in keimfreie Behältnisse gefüllt. Sie stand dann für die Anwender zur Verfugung.
Zur Herstellung einer Sporen-Zell-Suspension von B. subtilis T 99 wurden Schrägagarkulturen in Eprouvetten angelegt. Die Beimpfung der Agaroberflache erfolgte, von Aufbewahrungskulturen ausgehend, mit der Öse, so daß ein einheitlicher Mycelrasen entstand.
Als Schrägagar diente Fleischpeptonagar folgender Zusammensetzung: Bacto-Pepton (Difco) 10g, Hefeextrakt 10g, NaCI 5g, Agar 20g in einem Liter dest. Wasser, pH 7,0 ± 0,2. Sterilisation 15 min bei 1200C.
Die Bebrütung der Kulturen dauerte 8 Tage bei 300C. Danach wurde der Oberflächenrasen mit 100ml Leitungswasser abgeschwemmt. In der erhaltenen Suspension waren etwa 10'° Keime/ml vorhanden.
Zur Bekämpfung der gefäßparasitären Welke der Edelnelke, verursacht durch Fusarium oxysporum f. sp. dianthi, wurden Kulturlösungen von Bacillus subtilis T 99 mit 3 · 109 Keimen/ml verwendet. Die Applikation der 1; 100 verdünnten Kulturlösungen erfolgte durch Wurzeltauchung der Nelkenjungpflanzen und durch Inoculation des Erdsubstrates (20 ml Kulturlösung je 1 kg gebrauchsfertiges Substrat). Vor der Bepflanzung'wurden die torfhaltigen Kultursubstrate mit einer Konidiensuspension des phytopathogenen Pilzes Fusarium oxysporum dianthi inokuliert. Sie waren die Ausgangssubstrate sowohl für die unbehandelten Kontrollstecklinge (ohne Kontakt mit dem Antagonisten) als auch für die Bekämpfungsversuche mit dem Antagonisten, siehe Tabelle.
Applikation Anzahl gesunder Pflanzen (in %) Krankheitsindex Ki (in %)
8Wochen nach Pflanzung 1... 100 (Totalbefall)
Kontrolle | 16,6 | 80,0 |
Wurzeltauchung mit Bac. subtilisT99 | 56,5 | 34,6 |
Bodenapplikation und Wurzeltauchung | ||
mit Bac. subtilis T 99 | 66,7 | 18,3 |
unter praxisüblichen Versuchsbedingungen mittechnisch hergestellten Kulturlösungen von Bacillus subtilis T 99durchgeführt.
— Wurzeltauchung der Jungpflanzen (Dauer 15 Minuten)
— Gießen des Substrats vor der Pflanzung mit 21 Kulturlösung/m2 und
— Spritzen des Substrates mit 0,51 Kulturlösung/m2 vor der Pflanzung.
In einem weiteren Versuch wurden 1000 Jungpflanzen von Gerbera jamesonii eingesetzt. Die Applikation erfolgte durch Gießen des Bestandes (21 Kulturlösung/m2) unmittelbar nach der Pflanzung mit Kulturlösungen von Bacillus subtilis T 99 (~ 107 Keime/ ml), siehe Tabelle.
Kontrolle
(ehem. Bekämpfungsmaßnahmen) 5,0 2,4
—Gießen— 2,5 0,9
— Spritzen— 3,4 - 1,0
Claims (2)
1. Verfahren zur Bekämpfung phytopathogener Bodenpilze im Gartenbau mit Bacillen in verschiedenen Applikationsformen, dadurch gekennzeichnet, daß Bacillus subtilis T 99, ZIMET 11 095, verwendet wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß submers erzeugte Kulturlösungen oder Sporenzellsuspensionen von Emerskulturen eingesetzt werden.
Anwendungsgebiet der Erfindung
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bekämpfung von phytopathogenen Bodenpilzen in dergärtnerischen Pflanzenproduktion mit Bacillen in verschiedenen Applikationsformen.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD28076185A DD250456B1 (de) | 1985-09-18 | 1985-09-18 | Verfahren zur bekaempfung von phytopathogenen bodenpilzen im gartenbau |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DD28076185A DD250456B1 (de) | 1985-09-18 | 1985-09-18 | Verfahren zur bekaempfung von phytopathogenen bodenpilzen im gartenbau |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DD250456A1 DD250456A1 (de) | 1987-10-14 |
DD250456B1 true DD250456B1 (de) | 1989-04-19 |
Family
ID=5571387
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DD28076185A DD250456B1 (de) | 1985-09-18 | 1985-09-18 | Verfahren zur bekaempfung von phytopathogenen bodenpilzen im gartenbau |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DD (1) | DD250456B1 (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992020229A1 (en) * | 1991-05-23 | 1992-11-26 | Korea Research Institute Of Chemical Technology | Improved process for preparing coated microbial pesticides and pesticides produced therefrom |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0513081B1 (de) * | 1990-01-31 | 1994-10-19 | PFITZNER, Christian (als Gesellschafter der Gesellschaft für Umweltschutzberatung und -technik GbR) | Verfahren zur bekämpfung von samen- und/oder bodenbürtigen schaderregern durch saatgutbehandlung |
-
1985
- 1985-09-18 DD DD28076185A patent/DD250456B1/de not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992020229A1 (en) * | 1991-05-23 | 1992-11-26 | Korea Research Institute Of Chemical Technology | Improved process for preparing coated microbial pesticides and pesticides produced therefrom |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DD250456A1 (de) | 1987-10-14 |
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