CN1969955A - 食用菌保健胶囊及生产方法和用途 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种食用菌保健胶囊及生产方法,产品以灵芝、蝙蝠蛾被毛孢菌粉、猴头菇、五味子为原料制成。本发明产品具有良好的提高免疫力效果,对化学性肝损伤有辅助保护作用,且原料易得。
Description
技术领域:
本发明涉及一种保健品。
背景技术:
现有的保健用品种类众多,但能起到提高免疫力的产品实属不多,且往往效果不佳。
发明内容:
本发明的目的在于提供一种能有效提高免疫力效果的食用菌保健胶囊及生产方法。
本发明的技术解决方案是:
一种食用菌保健胶囊,其特征是:由下列重量成分的原料制成:
灵芝 30~50%
蝙蝠蛾被毛孢菌粉 10~30%
猴头菇 10~30%
五味子 5~15%,上述原料重量之和为100%。
所述的食用菌保健胶囊,由下列重量成分的原料制成:
灵芝 40%
蝙蝠蛾被毛孢菌粉 20%
猴头菇 20%
五味子 10%。
一种食用菌保健胶囊的生产方法,其特征是:包括下列步骤:
(1)将灵芝30~50wt%、猴头菇10~30wt%、五味子5~15wt%清洗,干燥、粉碎后过10目筛,得粗粒备用;
(2)将上述灵芝、猴头菇、五味子加水煎煮、浓缩至比重为1.40的浸膏;
(3)将步骤(2)得到的浸膏减压干燥成干浸膏,粉碎过80~100目筛,得干浸膏粉;
(4)将干浸膏粉与蝙蝠蛾被毛孢菌粉10~30wt%搅拌,得混合粉;再加入85%乙醇,加入量控制在混合粉重量的10~30%,制得软材;再经制粒、灭菌、干燥、填充胶囊,得产品。
食用菌保健胶囊在制备增强免疫力制品中的应用。
食用菌保健胶囊在制备急性化学性肝损伤制品中的应用。
本发明产品具有良好的提高免疫力效果,对化学性肝损伤有辅助保护作用,且原料易得。
下面结合实施例对本发明作进一步说明。
具体实施方式:
一种食用菌保健胶囊的生产方法,其特征是:包括下列步骤:
(1)将灵芝30~50wt%(例30%、40%、50%)、猴头菇10~30wt%(例10%、20%、30%)、五味子5~15wt%(例5%、10%、15%)清洗,80℃干燥、粉碎后过10目筛,得粗粒备用;
(2)将上述灵芝、猴头菇、五味子加水煎煮2次,第一次加10倍水煎煮,第2次加8倍量水煎煮,每次2小时,沉淀,过滤,合并滤液,浓缩至比重为1.40的浸膏;
(3)将步骤(2)得到的浸膏在0.08Mpa、80℃条件下减压干燥成干浸膏,粉碎过80~100目筛(例80、90、100目),得干浸膏粉;
(4)将干浸膏粉与蝙蝠蛾被毛孢菌粉10~30wt%(例10%、20%、30%)用槽形混合机充分搅拌、混匀,得混合粉;再加入食品级85%乙醇,加入量控制在混合粉重量的10~30%(例10%、20%、30%),制得软材;再过16目不锈钢筛,制粒、灭菌(105℃,30分钟)、干燥(70℃,240分钟),填充胶囊,得产品。上述原料灵芝、猴头菇、五味子、蝙蝠蛾被毛孢菌粉重量之和为100%。产品应用在制备增强免疫力制品中和制备急性化学性肝损伤制品中。
(一)本发明产品(又称:百菌健食用菌胶囊)对CCL4引起的小鼠急性化学性肝损伤的保护作用
1材料和方法
1.1样品:百菌健食用胶囊,内容物为棕褐色粉末,由江苏安惠生物科技有限公司提供。样品为0.5g/粒,密封、置阴凉干燥处,保存期为24个月,人体推荐摄入量为4.5g/人/d,本试验中按75mg/kg b.wt./d计。
1.2实验动物:选用上海西普尔-必凯实验动物有限公司提供的18~22g健康雄性ICR小鼠(2级,动物证号:SCXK(沪)2003-0002号)50只,按体重随机分为5组,每组10只。环境证号:SYXK(苏)2002-0004;动物饲料来源及证号:江浦振兴实验动物饲料厂,苏动(饲)字95001号。
1.3剂量设计:成人(按60kg体重计)每日推荐报入量为4.5g,即75mg/kgb.wt/d,实验设:375、750、2250mg/kg b.wt../d(分别相当于成人每日每千克体重推荐摄入量的5倍、10倍和30倍)三个样品剂量组和阴性对照组、模型对照组(双蒸水)。予小鼠每日经口灌胃,连续灌胃30d后采血分离血清测ALT、AST,取肝做病理组织学检查,小鼠灌胃容积为20ml/kg b.wt.对照组灌双蒸水。
1.4主要仪器与试剂:电子天平、全自动生化分析仪。主要试剂:四氯化碳(CCL4,AR,上海长江化工厂),ALT和AST测定试剂盒(中生北控生物科技股份有限公司)。
1.5试验方法:称取样品1875、3750、11250mg,分别加双蒸水至100ml配制成各组受试液(每两天配制一次),经口灌胃给予小鼠,对照组与CCL4模型组给予双蒸水,灌胃容积均为20ml/kg b.wt..,至第30天,将各组动物隔夜禁食16h,各样品剂量组及CCL4模型组以5ml/kg.b.wt.的量灌以用色拉油配制0.8%(v/v)CCL4溶液,建立急性肝损伤模型,阴性对照组以5ml/kg.b.wt.的量灌色拉油。各组动物均于CCL4/色拉油灌胃后24h采血,取肝脏,分离血清后测定ALT、AST活性,肝组织作常规病理学检查,观察肝细胞变性、坏死的程度。
1.6实验数据统计:本实验所得小鼠体重数据为计量资料,原始数据采用SPSS统计软件进行正态性检验和方差齐性检验,满足“方差齐”的要求。再用SPSS统计软件单因素方差分析法进行统计。血清ALT和AST活性经对数转换后满足“方差齐”要求,然后用单因素方差分析法(ANOVA)进行统计,对P<0.05的数据用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计处理。肝组织变性、坏死结果分别用秩和检验进行统计学处理。
2.实验结果
2.1样品对实验前后动物体重的影响
由表1可见,实验前后各受试物剂量组小鼠体重与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。
表1实验前后各组小鼠体重(
)
组别 | 动物数(只) | 初始体重(g) | 终末体重(g) |
阴性对照组CCl4模型组样品375mg/kg+CCl4组样品750mg/kg+CCl4组样品2250mg/kg+CCl4组 | 1010101010 | 20.4±1.320.7±1.220.5±1.320.7±1.120.7±1.2 | 29.8±2.830.1±2.129.9±2.830.3±2.428.5±1.8 |
2.2样品对急性CCL4肝损伤小鼠血清ALT、AST活性影响
由表2可见,阴性对照组与CCL4模型组相比血清ALT、AST活性均具有极显著性差异,表明建模成功;中、高剂量组ALT活性、中剂量组AST活性与CCL4对照组的相应值比较,差异有显著性(P<0.05,P<0.01)。
组别 | 动物数(只) | ALT | AST | ||
IU/L | P值 | IU/L | P值 | ||
阴性对照组CCl4模型组样品375mg/kg+CCl4组样品750mg/kg+CCl4组样品2250mg/kg+CCl4组 | 1010101010 | 47±12634±117584±111509±103510±45 | 0.000-0.3490.0150.025 | 177±35705±107707±119429±177579±90 | 0.000-0.9990.0000.060 |
2.3样品对急性CCL4肝损伤小鼠肝病理改变的影响
由表3、表4可见,各组病理改变以肝细胞脂肪变性和凝固性坏死为主,分别用秩和检验进行统计学处理。阴性对照组的肝细胞脂肪变性和凝固性坏死与四氯化碳模型组相比,有显著差异,表现建模成功。各剂量组脂肪变性均较模型减轻但无统计学意义。中、高剂量组肝组织凝固性坏死与四氯化碳模型组相比明显减轻(P<0.05)
表3百菌健食用菌胶囊对急性CCL4肝损伤小鼠肝病理改变评分的影响(单位:只)
组别 | 阴性对照 | CCl4模型 | 样品高剂量 | 样品中剂量 | 样品低剂量 | |||||||||||||||||||||
分级 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | |
变性 | 水样变性气球样变脂肪变性嗜酸性变 | 10101010 | 0000 | 0000 | 0000 | 0000 | 101049 | 0051 | 0010 | 0000 | 0000 | 1010810 | 0020 | 0000 | 0000 | 0000 | 1010610 | 0030 | 0010 | 0000 | 0000 | 1010810 | 0020 | 0000 | 0000 | 0000 |
凝固性坏死 | 10 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 1 | 7 | 2 | 0 | 0 | 6 | 4 | 0 | 0 | 0 | 7 | 3 | 0 | 0 | 0 | 4 | 5 | 1 |
注:每组10只动物,分级中,0为大致正常,1表示变性或坏死的肝细胞占整个视野的1/4,2表示变性或坏死的肝细胞占整个视野的2/4,3表示变性或坏死的肝细胞占整个视野的3/4,4表示变性或坏死的肝细胞占整个视野。
表4急性CCL4肝损伤小鼠细胞变性、坏死改变累计分表
组别 | 动物数(只) | 脂肪变性 | 嗜酸性变 | 凝固性坏死 | ||||||
评分 | 平均秩次 | p值 | 评分 | 平均秩次 | p值 | 评分 | 平均秩次 | p值 | ||
阴性对照组CCL4模型组样品375mg/kg+CCL4组样品750mg/kg+CCL4组样品2250mg/kg+CCL4组 | 101010l010 | 07252 | 18.533.623.328.823.3 | 0.0230.0660.4500.066 | 01000 | 25.027.525.025.025.0 | 0.3170.3170.3170.317 | 031272324 | 5.5038.3531.7025.0526.90 | 0.0000.1540.0060.014 |
3.小结:经口给予小鼠不同剂量的百菌食用菌胶囊30d,实验前后各受试物所用剂量组小鼠体重与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。急性肝损伤建模后,中、高剂量组血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)和天门冬氨酸基转移酶(AST)活性均低于CCL4模型组值,中、高剂量组ALT活性与CCL4对照组的相应值比较,差异有显著性(P<0.05)、中剂量组AST活性与CCL4对照组的相应值比较,差异有极显著意义(P<0.01)。各剂量组肝脏病理损伤均较CCL4对照组减轻,中、高剂量组肝组织凝固性坏死改变与四氯化碳模型组相比明显减轻(P<0.0,P<0.05)。综上,百菌健食用菌胶囊对四氯化碳引起的小鼠急性化学性肝损伤具有保护作用。
百菌健食用菌胶囊增强免疫力功能动物实验报告
1材料和方法
1.1样品:百菌健食用菌胶囊,内容物为棕色粉末,由江苏安惠生物科技有限公司提供。样品为0.5g/粒,保存条件为密封,置阴凉干燥处,保存期24个月,人体推荐摄入量为4.5g/人·日,本试验中按75mg/kg b.wt./d计。
1.2实验动物:选用上海斯莱克实验动物有限责任公司提供的18~22g健康雌性二级ICR小鼠(动物证号:SCXK(沪)2004-0005号),分别按体重随机各分为4组,每组10只,共分5批分别进行小鼠脾淋巴细胞转化试验和NK细胞活性测定;二硝基氟苯诱导小鼠迟发性***反应(DTH)试验;抗体生成细胞检测和血清溶血素测定;小鼠碳廓清试验;小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验。环境证号:SYXK(苏)2002-0004;动物饲料来源及证号:江浦振兴实验动物饲料厂,苏动(饲)字95001号。
1.3剂量设计:成人(按60kg体重计)每日推荐摄入量为4500mg,相当于75mg/kg b.wt./d,实验设人体推荐量的10倍,即每日750mg/kg b.wt.作为中剂量组,上、下各1个剂量组:2250mg/kg b.wt./d和375mg/kg b.wt./d作为高剂量组和低剂量组(分别相当于人体推荐量的30倍和5倍)。称取样品22500、7500、3750mg,分别加双蒸水至200ml配制成各组受试液(存放于4℃冰箱,每两天配制一次),经口灌胃给予小鼠,灌胃容积为20ml/kg b.wt.,阴性对照组灌双蒸水,连续灌胃30d后测各项免疫指标。
1.4主要仪器与试剂:电子秤、电子天平、显微镜、酶标仪、二氧化碳培养箱、打孔器、723分光光度计、超净工作台、振荡器、恒温水浴箱、计时器、染色槽、可调移液器、试管、微量采血管、200目筛网、24孔培养板、96孔培养板、手术器械等。
RPMI1640细胞培养液、YAC-1细胞、小牛血清、2-巯基乙醇(2-ME)、青霉素、链霉素、刀豆蛋白A(ConA)、盐酸、异丙醇、MTT、Hank′s液、PBS缓冲液(pH7.2-7.4)、2,4-二硝基氟苯(DNCB)、丙酮、麻油、绵羊红细胞(SRBC)、补体(豚鼠血清)、SA缓冲液、都氏试剂、印度墨汁、Na2CO3、乳酸锂、硝基氯化四氮唑(INT)、吩嗪二甲酯硫酸盐(PMS)、NAD、0.2mol/L的Tris-HCl缓冲液(pH8.2)、2.5%Triton等。
1.5实验方法:
1.5.1二硝基氟苯诱导小鼠迟发性***反应(DTH)
连续灌胃25d后,小鼠腹部去毛,1%二硝基氟苯(DNFB)丙酮麻油溶液50ul涂抹致敏。致敏后5d,小鼠右耳均匀涂抹1%DNFB丙酮麻油溶液10ul进行攻击,左耳涂抹丙酮麻油溶液作对照,攻击后24h处死小鼠,剪下左右耳壳,于同一部位取直径8mm的耳片称重,左右耳片重量之差作为肿胀度。同时取小鼠的胸腺及脾脏,以每10g小鼠的脾重(mg)和胸腺重(mg)作为脾脏/体重比值和胸腺/体重比值。
1.5.2ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化实验(MTT法)
连续连续灌胃30d后,无菌取脾,制成单个细胞悬液(细胞浓度为3×106个ml)。将细胞悬液分两孔加入24孔培养板中,每孔1ml,一孔加75ulConA液,另一孔作为对照,置5%CO2,37℃CO2孵箱中培养72h。培养结束前4h加入MTT(5mg/mL)50ul/孔,继续培养。培养结束后,每孔加入1mL酸性异丙醇,吹打混匀,使紫色结晶完全溶解。然后分装到96孔培养板中,每个孔分装3孔(200ul/孔)作为平行样,用酶联免疫检测仪,以570nm波长测定光密度值。用加ConA孔的光密度值减去不加ConA孔的光密度值代表淋巴细胞的增殖能力。
1.5.3抗体生成细胞检测(PFC)
连续灌胃25d后,每鼠腹腔注射2%(v/v)压积SRBC 0.2ml致敏。免疫5d后,将小鼠颈椎脱臼处死,取出脾脏,制成单细胞悬液,进行溶血空斑试验。计数溶血空斑数,用空斑数/106脾细胞来表示抗体生成细胞数。
1.5.4血清溶血素测定:半数溶血值(HC50)测定法
连续灌胃25d后,每鼠腹腔注射2%(v/v)压积SRBC 0.2ml致敏。免疫5d后,小鼠摘眼球采血,取血清测溶血反应,另设不加血清(以SA缓冲液代替)的对照管为比色空白,于540nm分别测定各管光密度值。按下式计算各鼠的样品HC50:
1.5.5小鼠碳廓清试验
连续灌胃30d后小鼠每10g体重尾静脉注射1∶3(v/v)稀释的印度墨汁0.1ml,注入后立即计时,并分别于2、10min从内眦静脉丛取血20μl,加到2ml 0.1%碳酸钠中,测OD600nm。并取肝、脾称重,按公式
求小鼠吞噬指数a值(K=(lgOD1-lgOD2)/(t2-t1))。
1.5.6小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验(滴片法)
连续灌胃26d后,每鼠腹腔注射2%(v/v)压积SRBC 0.2ml,激活小鼠巨噬细胞。4d后,颈椎脱臼法处死小鼠,腹腔注射加小牛血清的Hank’s液4mL/只,吸取腹腔洗液与等量的1%鸡红细胞混匀。吸取0.5mL混合液,加入玻片的琼脂圈内,放置孵箱内37℃孵育20分钟。孵育结束后用生理盐水将未贴壁细胞冲掉,于甲醇液中固定1分钟,Giemsa液染色15分钟。用40×显微镜计数吞噬率和吞噬指数(吞噬率为每100个巨噬细胞中,吞噬鸡红细胞的巨噬细胞所占的百分率;吞噬指数为平均每个巨噬细胞吞噬鸡红细胞的个数)。并据此判定巨噬细胞的吞噬能力。
1.5.7NK细胞活性测定
连续灌胃30d后,无菌取脾,制成单个细胞悬液(细胞浓度为2×107个/mL),作为效应细胞。取靶细胞(YAC-1细胞)和效应细胞各100ul(效靶比50∶1),加入U型96孔培养板中;靶细胞自然释放孔加靶细胞和培养液各100ul,靶细胞最大释放孔加靶细胞和2.5%Triton各100ul;上述各项均设三个重复孔,于37℃、5%CO2培养箱中培养4h,然后将96孔培养板以1500r/min离心5min,每孔吸取上清100ul置平底96孔培养板中,同时加入LDH基质液100ul,反应3min,每孔加入1mol/L的HCl 30ul,在酶标仪490nm处测定光密度值(OD)。
按下式计算NK细胞活性:
1.6实验数据统计:
本实验所得小鼠体重、脏体比、光密度值、肿胀度、溶血空斑数、HC50、吞噬率和吞噬指数、小鼠吞噬指数a、NK细胞活性等数据均为计量资料,原始数据(其中吞噬率经平方根反正弦变换后)采用SPSS统计软件进行正态性检验和方差齐性检验,满足“方差齐”和“正态分布”要求,再用SPSS统计软件单因素方差分析法进行统计,对P<0.05的数据用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计处理。
2实验结果
2.1样品对实验前后动物体重的影响
由表1,表2,表3可见,实验前后各受试物剂量组小鼠增重与对照组相比无显著性差异(P>0.05)。
组别 | 淋转/NK活性组 | 迟发性***反应组 | PFC/HC50组 | |||
体重(g) | P值 | 体重(g) | P值 | 体重(g) | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 20.7±0.820.6±0.920.4±0.920.5±0.7 | --->0.05>0.05>0.05 | 20.6±1.020.4±0.820.5±0.820.5±0.7 | --->0.05>0.05>0.05 | 20.3±0.720.3±0.820.4±0.820.1±0.8 | --->0.05>0.05>0.05 |
表1(续)各组小鼠的初始体重(
)
组别 | 腹腔巨噬细胞吞噬组 | 碳廓清组 | ||
体重(g) | P值 | 体重(g | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 20.0±0.820.2±0.920.1±1.019.8±0.9 | --->0.05>0.05>0.05 | 19.2±0.619.1±0.519.1±0.619.1±0.7 | --->0.05>0.05>0.05 |
组别 | 淋转/NK活性组 | 迟发性***反应组 | PFC/HC50组 | |||
体重(g) | P值 | 体重(g) | P值 | 体重(g) | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 34.4±2.634.6±2.234.0±0.834.4±2.5 | --->0.05>0.05>0.05 | 34.7±3.032.3±2.534.3±2.434.9±2.0 | --->0.05>0.05>0.05 | 34.4±3.033.6±1.734.3±2.734.0±1.7 | --->0.05>0.05>0.05 |
表2(续)试验末各组小鼠的体重(
)
组别 | 腹腔巨噬细胞吞噬组 | 碳廓清组 | ||
体重(g) | P值 | 体重(g) | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 33.1±1.933.0±2.233.4±1.532.0±1.4 | --->0.05>0.05>0.05 | 31.8±1.531.7±2.032.2±2.933.1±1.3 | --->0.05>0.05>0.05 |
组别 | 淋转/NK活性组 | 迟发性***反应组 | PFC/HC50组 | |||
体重增加(g) | P值 | 体重增加(g) | P值 | 体重增加(g) | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 13.7±2.814.0±2.813.6±1.113.9±2.3 | --->0.05>0.05>0.05 | 14.1±3.011.9±2.713.8±2.314.5±1.8 | --->0.05>0.05>0.05 | 14.0±3.213.3±1.813.9±3.013.9±1.5 | --->0.05>0.05>0.05 |
表3(续)样品对小鼠体重增加的影响(
)
组别 | 腹腔巨噬细胞吞噬组 | 碳廓清组 | ||
体重增加(g) | P值 | 体重增加(g) | P值 | |
对照组低剂量组中剂量组高剂量组 | 13.1±2.212.9±2.513.4±1.912.2±2.0 | --->0.05>0.05>0.05 | 12.6±1.612.6±2.013.1±3.114.0±1.4 | --->0.05>0.05>0.05 |
样品对脏器/体重比值的影响
由表4可见,各组小鼠胸腺/体比值、脾体比值与对照组相比无显著性差异(P>0.05)
表4百菌健食用菌胶囊对小鼠脏器(mg)/体重(10g)比值的影响
2.3细胞免疫功能试验:二硝基氟苯(DNFB)诱导的小鼠迟发性***反应(DTH)
由表5可见,各剂量组小鼠的耳廓肿胀度均高于溶剂对照组值,但结果经方差分析及两两比较统计学处理,各剂量组均无统计学显著性差异(P>0.05)。提示百菌健食用菌胶囊不具有可增强DNFB引起的小鼠迟发性***反应作用。
表5百菌健食用菌胶囊对小鼠耳廓迟发性***反应的影响
2.4细胞免疫功能试验:ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化实验(MTT法)
由表6可见,各剂量组光密度差值均高于溶剂对照组值,且随剂量增加而增加,经方差分析及两两比较统计学处理,中、高剂量组均有统计学显著性差异(P<0.01)。提示中、高剂量百菌健食用菌胶囊可增强小鼠淋巴细胞增殖能力。
表6百菌健食用菌胶囊对小鼠脾淋巴细胞转化的影响
组别 | 每日摄入剂量(mg/kg/d) | 动物数(只) | 光密度值 | 光密度差 | P值 | |
-ConA | +ConA | |||||
对照组样品 | 03757502250 | 10101010 | 0.103±0.0050.097±0.0090.105±0.0090.128±0.014 | 0.252±0.0420.256±0.0370.335±0.0640.404±0.059 | 0.149±0.0390.159±0.0350.230±0.0590.276±0.052 | ---0.5660.0020.000 |
2.5体液免疫功能试验:抗体生成细胞检测(Jerne改良玻片法)
由表7可见,各剂量组空斑数均高于溶剂对照组值,且随剂量增加而增加,经方差分析及两两比较统计学处理,中、高剂量组空斑数与对照组值相比有统计学差异(P<0.01)。提示中、高剂量百菌健食用菌胶囊具有增强小鼠产生抗体生成细胞的能力。
表7百菌健食用菌胶囊对小鼠脾抗体生成细胞量的影响
2.6体液免疫功能试验:血清溶血素试验
由表8可见,各剂量组小鼠血清半数溶血值(HC50)与对照组值相比,经方差分析及两两比较统计学处理,中、高剂量组均有统计学显著性差异(P<0.01)。提示中、高剂量百菌健食用菌胶囊可增强小鼠产生血清溶血素的能力。
表8百菌健食用菌胶囊对血清溶血素水平的影响
2.7单核-巨噬细胞功能试验:小鼠碳廓清试验
由表9可见,各剂量组小鼠的吞噬指数a与溶剂对照组值相比,经方差分析及两两比较统计学处理,均无统计学差异(P>0.05)。提示百菌健食用菌胶囊不具有增强小鼠碳廓清能力的作用。
表9百菌健食用菌胶囊对小鼠碳廓清的影响(
)
组别 | 每日摄入剂量(mg/kg/d) | 动物数(只) | K值 | 吞噬指数a | P值 |
对照组样品 | 03757502250 | 10101010 | 0.0441±0.0120.0518±0.0080.0449±0.0120.0429±0.009 | 6.771±1.486.740±0.596.912±0.716.851±0.53 | ---0.9510.7880.873 |
2.8单核-巨噬细胞功能试验:小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞
由表10可见各剂量组小鼠的吞噬率和吞噬指数均高于溶剂对照组,且随剂量增加而升高,经方差分析及两两比较统计学处理,中、高剂量组吞噬率及高剂量组吞噬指数分别有统计学差异(P<0.05,P<0.01)。提示,中、高剂量百菌健食用菌胶囊具有增强小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的作用。
表10百菌健食用菌胶囊对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响(
)
组别 | 每日摄入剂量(mg/kg/d) | 动物数(只) | 吞噬率(%) | P值 | 吞噬指数 | P值 |
对照组样品 | 03757502250 | 10101010 | 9.8±2.912.9±6.113.1±2.914.9±4.6 | 0.8710.0270.007 | 0.138±0.0550.166±0.0850.167±0.0530.216±0.072 | 0.3940.2430.014 |
2.9NK细胞活性测定
由表11可见各剂量组小鼠的NK细胞活性均高于溶剂对照组,且随剂量增加而增加,结果经方差分析及两两比较统计学处理,中、高剂量组均有统计学显著性差异(P<0.01),表明中、高剂量百菌健食用菌胶囊均具有增强小鼠NK细胞活性的作用。
组别 | 每日摄入剂量(mg/kg/d) | 动物数(只) | NK细胞活性(%) | P值 |
对照组样品 | 03757502250 | 10101010 | 83.1±12.292.7±10.2108.1±20.6116.4±25.4 | ---0.0710.0040.001 |
3小结:经口给予小鼠不同剂量的百菌健食用菌胶囊30d,对小鼠体重增长无影响;中、高剂量百菌健食用菌胶囊均具有增加小鼠淋巴细胞增殖能力,增强小鼠产生血清溶血素和小鼠产生抗体生成细胞的能力,增强小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力以及增强小鼠NK细胞活性的作用。根据保健食品增强免疫力功能评价标准,百菌健食用菌胶囊具有增强免疫力的功能。
Claims (5)
1、一种食用菌保健胶囊,其特征是:由下列重量成分的原料制成:
灵芝 30~50%
蝙蝠蛾被毛孢菌粉 10~30%
猴头菇 10~30%
五味子 5~15%,上述原料重量之和为100%。
2、根据权利要求1所述的食用菌保健胶囊,其特征是:由下列重量成分的原料制成:
灵芝 40%
蝙蝠蛾被毛孢菌粉 20%
猴头菇 20%
五味子 10%。
3、一种食用菌保健胶囊的生产方法,其特征是:包括下列步骤:
(1)将灵芝30~50wt%、猴头菇10~30wt%、五味子5~15wt%清洗,干燥、粉碎后过10目筛,得粗粒备用;
(2)将上述灵芝、猴头菇、五味子加水煎煮、浓缩至比重为1.40的浸膏;
(3)将步骤(2)得到的浸膏减压干燥成干浸膏,粉碎过80~100目筛,得干浸膏粉;
(4)将干浸膏粉与蝙蝠蛾被毛孢菌粉10~30wt%搅拌,得混合粉;再加入85%乙醇,加入量控制在混合粉重量的10~30%,制得软材;再经制粒、灭菌、干燥、填充胶囊,得产品。
4、一种权利要求1所述的食用菌保健胶囊在制备增强免疫力制品中的应用。
5、一种权利要求1所述的食用菌保健胶囊在制备急性化学性肝损伤制品中的应用。
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CNA200610098139XA CN1969955A (zh) | 2006-11-29 | 2006-11-29 | 食用菌保健胶囊及生产方法和用途 |
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CN104560549A (zh) * | 2014-11-29 | 2015-04-29 | 陈程 | 一种松茸保健酒及其制作方法 |
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-
2006
- 2006-11-29 CN CNA200610098139XA patent/CN1969955A/zh active Pending
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