CN1713861A - 血管化增强的移植构造物 - Google Patents

血管化增强的移植构造物 Download PDF

Info

Publication number
CN1713861A
CN1713861A CNA038155796A CN03815579A CN1713861A CN 1713861 A CN1713861 A CN 1713861A CN A038155796 A CNA038155796 A CN A038155796A CN 03815579 A CN03815579 A CN 03815579A CN 1713861 A CN1713861 A CN 1713861A
Authority
CN
China
Prior art keywords
intestinal submucosa
submucosa tissue
endotheliocyte
tissue
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CNA038155796A
Other languages
English (en)
Inventor
S·F·巴戴拉克
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Purdue Research Foundation
Original Assignee
Purdue Research Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Purdue Research Foundation filed Critical Purdue Research Foundation
Publication of CN1713861A publication Critical patent/CN1713861A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0697Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/069Vascular Endothelial cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/135Platelet-derived growth factor [PDGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/15Transforming growth factor beta (TGF-β)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/165Vascular endothelial growth factor [VEGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/13Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
    • C12N2502/1347Smooth muscle cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/23Gastro-intestinal tract cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/28Vascular endothelial cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

提供一种用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物。所述移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及可增强血管样结构在移植物中形成开始的至少一种附加的预选的外源性细胞群。预选的细胞群可以是未-角化或角化的上皮细胞群或选自成纤维细胞、平滑肌细胞、骨骼肌细胞、心肌细胞、多-潜能祖细胞、周细胞、成骨细胞、和任何其它适宜细胞类型的中胚层来源的细胞群,优选以所修复组织为基础选择的细胞群。还提供了用于增强这些肠粘膜下层组织移植构造物的体内血管化和用于制备这些移植构造物的方法。

Description

血管化增强的移植构造物
发明领域
本发明涉及血管化增强的粘膜下层组织衍生的移植物以及它们修复患病或受损组织的用途。更具体而言,本发明涉及已经用内皮细胞和至少一种附加的预选的外源性细胞群接种的血管化增强的肠粘膜下层组织移植物,从而提高肠粘膜下层组织移植构造物的修复能力。
发明背景和概述
本发明涉及一种用于修复受损或患病组织的组织移植构造物,它包括用内皮细胞和至少一种附加的预选的外源性细胞群接种的脊椎动物粘膜下层-衍生的基质。本发明所用的肠粘膜下层-衍生的基质优选包括高度保守的胶原、糖蛋白、蛋白聚糖、和糖胺聚糖。本发明所用的肠粘膜下层基质来源于温血脊椎动物的肠粘膜下层组织。
按照本发明制备的肠粘膜下层组织移植构造物基本上是无细胞的基质,提供类似体内基质环境的良好细胞生长基质。肠粘膜下层组织的天然组成和构型提供了一种独特的细胞生长基质,它可促进体外细胞附着和增殖,并在体内植入移植构造物时诱导组织重塑。
作为组织移植材料,肠粘膜下层组织可诱导内源性组织在植入到宿主中后生长(即,肠粘膜下层组织诱导重塑)。肠粘膜下层组织已经成功用于血管移植物、膀胱和疝的修复、腱和韧带的替换、和皮肤移植物中。作为组织移植物组分的肠粘膜下层的制备和使用在美国专利US 4,902,508中描述。当用于这类应用中时,肠粘膜下层组织移植构造物似乎不仅作为被移植构造物替换的组织的生长或再生长的基质起作用,而且可促进或诱导内源性组织的这种生长或再生长。肠粘膜下层组织以可植入片的形式或可注射的流体或凝胶形式使用,从而诱导内源性组织的再生长。
本发明涉及肠粘膜下层组织移植构造物,它包括加入的内皮细胞和至少一种附加的预选的外源性细胞群,且本发明还涉及使用这些移植构造物增强肠粘膜下层组织移植构造物体内血管化的方法。血管化增强的肠粘膜下层组织移植构造物是在将肠粘膜下层组织移植构造物植入或注射到宿主中前,通过用内皮细胞或内皮细胞前体(例如,祖细胞或干细胞)和至少一种附加的预选或预定的细胞类型体外接种肠粘膜下层组织而制备的。
其中一个实施方案提供一种用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物。所述组织移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,和至少一种附加的预选的外源性细胞群。
在另一实施方案中,提供血管化的肠粘膜下层组织移植构造物用于修复患病或受损组织。所述组织移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,和至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中所述内皮细胞已经在肠粘膜下层组织上培养过一段时间,这段时间足够体外形成血管或血管样结构。
在另一实施方案中,提供一种用于增强肠粘膜下层组织移植构造物体内血管化的方法。该方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,从而形成移植构造物,然后将移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位的步骤。
在另一实施方案中,提供一种用于增强肠粘膜下层组织移植构造物体内血管化的方法。该方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,体外培养内皮细胞一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构或成分的形成,然后将移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位的步骤。
在这些方法实施方案的任何一个中,可用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织,也可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织前,用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织,或用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。
可将内皮细胞在肠粘膜下层组织上体外培养一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成,或将内皮细胞在肠粘膜下层组织上培养一段时间,这段时间足够在没有体外形成血管或血管样结构的情况下,使内皮细胞扩增(即,使内皮细胞***至少一次)。可选择性地,可在内皮细胞没有扩增的情况下植入移植构造物。在这些实施方案的任何一个中,在植入移植构造物前,附加的预选的细胞群可以扩增或没有扩增(即,允许发展经过至少一个细胞***周期)。
在另一实施方案中,提供一种制备用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物的方法。该方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,从而形成移植构造物的步骤。该方法还可进一步包括在肠粘膜下层组织上体外培养内皮细胞一段时间的步骤,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成。
在这些实施方案的任何一个中,至少一种附加的细胞群包括未角化或角化的上皮细胞群或选自成纤维细胞、平滑肌细胞、骨骼肌细胞、心肌细胞、多-潜能祖细胞(例如,干细胞)、周细胞和成骨细胞的中胚层来源的细胞群。在各种实施方案中,可用内皮细胞和一种或多种这些附加的细胞类型接种肠粘膜下层组织(即,可用内皮细胞和这些附加的细胞类型的一种、两种、三种等接种肠粘膜下层组织)。
附图简述
图1提供描述本发明移植构造物的可选的制备方法的流程图。
发明详述
本发明涉及一种粘膜下层组织移植构造物,它包括脊椎动物的肠粘膜下层组织或其它粘膜下层组织,加入的内皮细胞和至少一种附加的预选的外源性细胞群。所述无细胞的肠粘膜下层组织是用内皮细胞和预选的外源性细胞群接种的,并用于修复患病或受损组织。按照本发明,“受损组织”是指受到损害的、撕裂的、切断的组织,或已经手术除去或以其它方式从需要修复的部位失去的组织(例如,先天缺乏或畸形)。
用于本发明的内皮细胞可来源于任何类型的内皮细胞群,包括大血管、微血管、动脉、和静脉内皮细胞。不论是成熟的内皮细胞(例如,从器官或血管采集的)还是内皮细胞前体(例如,祖细胞或干细胞)都可用于本发明。此外,内皮细胞可从幼年或老年动物中采集,但优选从幼年动物采集的内皮细胞。
在其中一个实施方案中,附加的预选的外源性细胞群可包括未-角化或角化的上皮细胞群或选自成纤维细胞、平滑肌细胞、骨骼肌细胞、心肌细胞、多-潜能祖细胞、周细胞、成骨细胞、和任何其它适宜细胞类型的中胚层来源的细胞群。
与肠粘膜下层组织和内皮细胞组合的附加的预选的外源性细胞群可以所要修复组织的细胞类型为基础选择。例如,如果要修复皮肤,预选的外源性细胞群可以是未角化的上皮细胞或如果要修复心脏组织,则预选的外源性细胞群可以是心肌细胞。在另一实施方案中,使用从待治疗患者中分离的自体细胞接种肠粘膜下层组织。
在其中一个实施方案中,与肠粘膜下层组织和内皮细胞组合的至少一种附加的预选的细胞群包括能够分化成平滑肌细胞的平滑肌细胞和/或祖细胞。有利地,平滑肌细胞和/或平滑肌祖细胞可促进(连同内皮细胞)血管或血管样结构在移植构造物中的形成。在另一实施方案中,附加的细胞类型可连同内皮细胞、平滑肌细胞、和/或平滑肌祖细胞一起加入。
在另一实施方案中,至少一种附加的预选的外源性细胞群包括多-潜能祖细胞群。肠粘膜下层组织可诱导这些多-潜能祖细胞分化成帮助受损组织修复的细胞。有利地,可将用内皮细胞群和多-潜能祖细胞群接种的肠粘膜下层组织植入到体内多个不同的部位,且祖细胞将分化成对特殊环境较为适宜的细胞类型。例如包括内皮细胞和多-潜能祖细胞的组分在腱或韧带部位的植入可导致移植构造物重塑成腱或韧带。
和使用单独的肠粘膜下层组织,或与除内皮细胞外的细胞类型组合的肠粘膜下层组织作为治疗剂相比,肠粘膜下层组织、内皮细胞、和附加的预选的外源性细胞群的组合所提供的组织移植构造物在体外和/或体内显示出令人吃惊的增强的血管化,从而产生提高的伤口愈合能力和更好的组织功能恢复。
在各实施方案中,可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织,也可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织前,用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织,或可用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织(见图1的各种举例性实施方案)。
在其中一个这样的实施方案中,可用内皮细胞接种肠粘膜下层组织,并在将所述构造物植入到受影响的区域之前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成。可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后以及在将移植构造物体内植入前的任何时间,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织。因此,根据植入移植构造物前在肠粘膜下层组织上培养预选细胞群的时间的不同,在将移植构造物植入到受影响的区域前,附加的预选的细胞群可以扩增或没有扩增(即,允许发展经过至少一个细胞***周期)。
可选择性地,可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,且可在植入移植物前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞,使内皮细胞扩增,而不会诱导血管或血管样结构或成分的形成。在该实施方案中,根据植入移植构造物前在肠粘膜下层组织上培养预选细胞群时间的不同,在将移植构造物植入到受影响的区域前,附加的预选的细胞群可以扩增或没有扩增。
在另一实施方案中,可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,且在内皮细胞或附加的预选的外源性细胞群没有扩增的情况下,稍后即植入移植物。
在选择性实施方案中,可用附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,并在植入移植构造物前,在肠粘膜下层组织上培养预选的细胞群,从而使预选的细胞群扩增(即,使细胞***至少一次)。在该实施方案中,可在用预选细胞群接种肠粘膜下层组织后以及体内植入移植物前的任何时间,用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。因此,根据植入移植物前在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞时间的不同,在将移植构造物植入到受影响的区域前,内皮细胞可扩增或没有扩增。如果内皮细胞扩增,内皮细胞的扩增可包括或不包括血管或血管样结构的形成。
在另一实施方案中,可在用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织前,用内皮细胞接种肠粘膜下层组织,且在内皮细胞或附加的预选的外源性细胞群没有扩增的情况下,稍后即植入移植物。
在另一实施方案中,可用内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。在该实施方案中,可在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群,从而使两个细胞群扩增,或在两个细胞群没有扩增的情况下植入移植物。如果内皮细胞扩增,则内皮细胞的扩增可包括或不包括血管或血管样结构的形成。
肠粘膜下层组织可有利地提供一种生理环境,支持在肠粘膜下层组织上体外培养的细胞的增殖和分化。因此,可将细胞接种在肠粘膜下层组织上,并按照下面所述使用本领域那些普通技术人员已知的标准细胞培养技术培养,从而生产用于植入到需要它的宿主中的组织移植物。
肠粘膜下层组织提供支持细胞生长的基质的能力可在植入到宿主中前,提供使内皮细胞群和/或附加的预选的外源性细胞群扩增的机会。如果内皮细胞扩增,则这种扩增可在植入前导致血管或血管-样结构的形成(即,移植构造物的体外潜在的血管化),从而在植入移植构造物后,立即提高移植物的伤口愈合能力。植入移植构造物前的血管或血管样结构的形成或,可选择性地,植入移植构造物前的内皮细胞扩增可提高植入后的移植物的伤口愈合能力,如通过促进在肠粘膜下层组织片近腔(abluminal)侧上生长的细胞的分化和迁移,并通过促进这些细胞在粘膜下层组织自身内的增殖而实现。
植入前,在肠粘膜下层组织上培养加入的内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群的实施方案中,细胞是在有利于细胞生长的条件下,在肠粘膜下层组织上培养的。所培养的细胞可与肠粘膜下层组织直接或间接接触(例如,流体连通)。有利于细胞生长的条件是环境条件,如无菌技术、温度(例如,约37℃)和营养供给,这些对于在目前组织和细胞培养所接受的过程下进行的细胞生长而言,被认为是最佳的。虽然最佳培养条件取决于特定的细胞类型,但细胞生长条件通常是本领域熟知的。
本发明的肠粘膜下层组织可以各种形式被用作移植材料,并在植入移植物前,用于体外培养内皮细胞和其它细胞类型。这些形式包括片样构型、凝胶形式、流化组分(例如,通过粉碎或消化组织)、和提取物,用于加入本领域-认可的细胞/组织培养基。肠粘膜下层组织或其成分可提供用于细胞粘附的表面和/或可诱导分化和/或增殖。在组织/细胞培养应用中使用之前,优选将肠粘膜下层组织灭菌,然而,如果细胞培养基中包含抗生素的话,也可使用未灭菌的肠粘膜下层组织。
按照本发明的其中一个实施方案,肠粘膜下层的组织移植构造物(其中肠粘膜下层是从肌层和至少肠粘膜下层组织的粘膜层的腔部分剥离的)被用作移植材料,并在植入移植构造物前,用于体外培养内皮细胞和其它细胞类型。以这种方式剥离的肠粘膜下层组织可按照本发明以片的形式、凝胶的形式或作为流化组分,如消化物或提取物的形式使用。
在其中一个实施方案中,植入移植构造物前,在有利于细胞增殖以用于细胞培养的条件下,在脊椎动物的肠粘膜下层组织片上直接接种细胞。肠粘膜下层组织的多孔性使细胞营养物在基质中扩散。因此,细胞可被接种在肠粘膜下层组织片的腔和/或近腔面上并培养。腔面是面向器官腔的表面,且在体内通常与内粘膜层相邻,而近腔面是远离器官腔的肠粘膜下层表面,且通常与体内的平滑肌组织接触。
在脊椎动物的肠粘膜下层组织的固体片上培养的细胞显示出不同的生长模式,并根据细胞在肠粘膜下层片的哪一侧生长,与肠粘膜下层生长基质的相互作用也不同。在本发明肠粘膜下层组织片上培养的内皮细胞的组织学检查揭示了接种在近腔面上的内皮细胞不仅沿着肠粘膜下层组织的表面生长/增殖,而且它们还更容易迁移到肠粘膜下层组织自身内并增殖。肠粘膜下层组织的腔面包括较之近腔侧更致密的基质,并因此,细胞不太可能穿透腔面。接种在肠粘膜下层组织腔面上的细胞与基质粘附,但通常不会穿透基质表面。
在植入移植构造物前接种在肠粘膜下层组织上的内皮细胞和/或附加的预选的外源性细胞群可在有营养物,包括矿物质、氨基酸、糖、肽、蛋白、或糖蛋白、如层连蛋白和纤连蛋白、和/或生长因子如表皮生长因子、血管内皮细胞-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子样分子、转化生长因子β、成纤维细胞生长因子、或其它血清生长因子存在的条件下生长。在其中一个实施方案中,流化或粉末形式的肠粘膜下层组织可用于补充标准细胞培养基,从而提高支持并诱导细胞体外增殖的能力,并诱导体内重塑。在有可商业得到的细胞培养液体培养基(含血清或不含血清)存在的条件下,使细胞在肠粘膜下层组织上生长。
在其中一个实施方案中,与肠粘膜下层组织和内皮细胞组合的至少一种附加的预选的细胞群可以是平滑肌细胞和/或能够分化成平滑肌细胞的祖细胞,从而促进(连同内皮细胞)血管或血管样结构在移植构造物中形成。已知用肝素酶处理平滑肌细胞可诱导增殖细胞的表型改变性质。因此,在用内皮细胞和至少一种预选的外源性细胞群,包括平滑肌细胞群和/或平滑肌细胞祖细胞群接种肠粘膜下层组织的实施方案中,肝素酶可包括在细胞培养基中。例如,来源于肝素鞘氨醇杆菌的4个单位/ml的肝素酶可短时间(例如,6小时)包含在培养基中或可持续存在于培养基中。
还已知作为细胞的亚汇合单层被接种在基质上的平滑肌细胞经历与***能力相关的表型改变。如果将平滑肌细胞与内皮细胞的汇合单层共同培养,则表型改变被抑制。因此,在用内皮细胞和至少一种预选的外源性细胞群,包括平滑肌细胞群和/或平滑肌细胞祖细胞群接种肠粘膜下层组织的实施方案中,可将加入的内皮细胞接种在肠粘膜下层组织上,从而使细胞与肠粘膜下层组织粘附作为细胞的亚汇合单层。在另一实施方案中,可将内皮细胞、平滑肌细胞、和/或平滑肌祖细胞接种在肠粘膜下层组织上,这样细胞就可与肠粘膜下层组织粘附作为细胞的亚汇合单层。
已经很好地证明了肠粘膜下层能够在植入后,立即在很多体内微环境(例如,腱、韧带、骨、关节软骨、动脉、和静脉)中诱导宿主组织增殖、重塑和适宜组织结构的再生。用于诱导内源性组织形成的、片形式和流化形式的这种肠粘膜下层组织的使用在美国专利U.S.Nos.5,281,422,和5,275,826中描述并要求保护,其内容引入此处作为参考。因此,本发明的肠粘膜下层组织移植物被体内植入,从而诱导需要修复的受损组织重塑。
在其中一个实施方案中,所要求保护的包括肠粘膜下层组织、加入的内皮细胞、和附加的预选的外源性细胞群的组合物可被包封在生物适合性基质中,用于植入到宿主中。包封的基质可被构造成使营养物扩散至包封的细胞,同时使包封细胞的产物从包封的细胞扩散至宿主细胞。用于包封活细胞的适宜的生物相容性聚合物是本领域那些技术人员已知的。例如,聚赖氨酸/藻酸盐包封过程先前已经由F.Lim和A.Sun(Science,Vol.210,pp.908-910)描述。事实上,按照本发明,脊椎动物的肠粘膜下层本身可被有利地用于包封肠粘膜下层基质上的细胞,作为人工器官植入。
在其中一个实施方案中,提供一种用于增强肠粘膜下层组织移植构造物体内血管化的方法。该方法包括下列步骤:用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,并将移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位。在该方法的其中一个实施方案中,可用内皮细胞接种肠粘膜下层组织,并在将所述构造物植入到受影响区域中前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成。在用内皮细胞接种移植物后且在体内植入移植物前的任何时间,可用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织。因此,根据植入移植构造物前在肠粘膜下层上培养预选细胞群的时间的不同,在将移植构造物植入到受影响区域中前,附加的预选的细胞群可以扩增或没有扩增。
可选择性地,可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,并在植入移植物前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞,从而使内皮细胞扩增而不会诱导血管或血管样结构的形成。在该实施方案中,根据植入移植构造物前在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞的时间的不同,在将移植构造物植入到受影响区域中前,附加的预选的细胞群可扩增或没有扩增。
在另一实施方案中,可在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,且随后即植入移植物,而内皮细胞或附加的预选的外源性细胞群没有扩增。
在本方法的选择性实施方案中,可用附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,并在植入移植构造物前,在肠粘膜下层组织上培养预选的细胞群,从而使预选的细胞群扩增。在该实施方案中,可在用预选细胞群接种肠粘膜下层组织后且体内植入移植物前的任何时间,用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。因此,根据植入移植物前通过在肠粘膜下层组织上培养细胞而使内皮细胞扩增的时间的不同,在将移植构造物植入到受影响区域之前,内皮细胞可能扩增或没有扩增。如果内皮细胞扩增,则内皮细胞的扩增可能包括或不包括血管或血管样结构的形成。
在另一实施方案中,可在用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织后,用内皮细胞接种肠粘膜下层组织,且可随后即植入移植物,而内皮细胞或附加的预选的外源性细胞群没有扩增。
在另一实施方案中,可用内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。在该实施方案中,可在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群,从而使两种细胞群扩增,或可在两种细胞群没有扩增的情况下植入移植物。如果内皮细胞扩增,则内皮细胞的扩增可包括或不包括血管或血管样结构的形成。
本发明还提供一种用于修复患病或受损组织的血管化肠粘膜下层组织移植构造物。血管化移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,和至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中已经在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够体外形成血管或血管样结构。
在另一实施方案中,提供一种增强肠粘膜下层组织移植构造物体内血管化的方法。该方法包括下列步骤:用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,在肠粘膜下层组织上体外培养内皮细胞和附加的细胞群一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成,并将移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位。
肠粘膜下层组织移植物可用最初较小的细胞群接种,它们可在植入前体外扩增。有利地,用内皮细胞接种可在肠粘膜下层组织上体外培养内皮细胞后,立即诱导移植物的血管化。此外,还可用平滑肌细胞或平滑肌细胞祖细胞或其它细胞类型,如成纤维细胞接种肠粘膜下层组织,从而促进血管化。
在该实施方案中,用内皮细胞接种肠粘膜下层组织,并在将所述构造物植入到患病区域中前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成。在用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后且体内植入移植物前的任何时间,用至少一种附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织。因此,根据植入移植物前,在肠粘膜下层组织上培养预选细胞群时间的不同,在将移植构造物植入到受影响区域中前,附加的预选的细胞群可扩增或没有扩增。
在选择性实施方案中,可用附加的预选的外源性细胞群接种肠粘膜下层组织,并在植入移植构造物前,在肠粘膜下层组织上培养预选细胞群,从而使预选细胞群扩增。在该实施方案中,用预选细胞群接种肠粘膜下层组织后,再用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。在该实施方案中,在将移植构造物植入到受影响区域中前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够使内皮细胞扩增形成血管或血管样结构。
在另一实施方案中,可用内皮细胞和附加的预选的外源性细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。在该实施方案中,在植入移植物前,在肠粘膜下层组织上培养附加的预选的外源性细胞群和内皮细胞,从而使两种细胞群扩增。
还提供了一种制备用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物的方法。该方法包括下列步骤:用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种肠粘膜下层组织,从而形成移植构造物。该方法还可包括在将移植构造物植入到受影响区域中前,在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间的步骤,这段时间足够诱导血管或血管样结构形成。
例如,用于本发明的肠粘膜下层的制备方法在美国专利US.Nos.4,902,508中描述。总之,肠粘膜下层组织是从脊椎动物的肠制备的,优选从猪、羊或牛采集,但不排除其它物种。在这点上,肠粘膜下层组织通常是异种的(即,来源于不同物种),但也可以是同种异体的(即,来源于同一物种的不同的成员)或自体的(即来源于同一动物或个体)。
在制备用于本发明中的肠粘膜下层组织的其中一个方法中,使用纵向擦拭动作摩擦组织,从而除去外层,包括平滑肌组织,和最内层,即至少粘膜的腔部分。因此,肠粘膜下层组织是从肌层和至少粘膜的腔部分剥离的。用盐水冲洗肠粘膜下层并任选灭菌;它可以水化或脱水状态贮藏。可将冻干或风干的肠粘膜下层再水化,并用于本发明中而不会损失生物学活性。作为起始材料的天然肠粘膜下层是相对无细胞的胶原基质,且本发明优选的肠粘膜下层组分是无完整细胞的胶原基质(即,肠粘膜下层组分是无细胞的)。
为形成用于本发明组织移植物中的肠粘膜下层的多层片,多层肠粘膜下层可相互重叠。可使用本领域那些技术人员已知的标准技术将各层彼此固定,包括使用缝线和生物相容性粘合剂如胶原粘合糊剂。可选择性地,可在脱水条件下,通过压紧重叠区而将各层融合在一起,任选加热,如美国专利US No.5,711,969所述,其内容引入此处作为参考。
用于组织移植物中的肠粘膜下层可使用常规灭菌技术灭菌,包括戊二醛鞣制、酸性pH下的甲醛鞣制、环氧乙烷处理、环氧丙烷处理、等离子气体灭菌、γ射线照射、电子束和过乙酸灭菌。优选的灭菌技术包括使肠粘膜下层组织暴露于过乙酸、1-4Mrads γ射线照射(更优选1-2.5Mrads γ射线照射)或等离子气体灭菌;过乙酸灭菌是最优选的灭菌方法。通常,肠粘膜下层组织经过两个或更多灭菌过程。将肠粘膜下层组织灭菌后,例如通过化学处理,可将所述组织包装并使用电子束或γ射线照射灭菌技术再次灭菌。通常,在将移植物灭菌后,将细胞加入到移植组织中。还可使用在美国专利US No.6,206,931中描述的灭菌技术,其引入此处作为参考。
还已知肠粘膜下层可通过粉碎和/或酶消化而被流化,且不会损失它的生物学活性,用于,例如,本发明的组织移植物中。见美国专利US No.6,264,992 B1,其内容引入此处作为参考。更具体而言,可用酶处理天然或流化的肠粘膜下层组分一段时间,这段时间足够溶解肠粘膜下层成分的全部或大部分。优选,用可水解肠粘膜下层结构成分的酶消化肠粘膜下层,从而产生肠粘膜下层成分的混悬液或均匀溶液。肠粘膜下层可用蛋白酶(例如,胶原酶或胰蛋白酶或胃蛋白酶)、糖胺聚糖酶或蛋白酶与糖胺聚糖酶的组合进行酶处理。任选地,可单独使用其它适宜的酶,或与蛋白酶和糖胺聚糖酶联合使用。可任选过滤组织消化物,从而提供部分溶解的肠粘膜下层的均匀溶液。
用于本发明组织移植物中的流化肠粘膜下层的粘度可通过控制肠粘膜下层成分的浓度及水化程度而操纵。可将粘度调节至25℃下的约2-约300,000cps。更高粘度的制品,例如,凝胶,可通过透析消化的物质,然后调节这种溶液的pH至约5.0-约9.0而由肠粘膜下层消化液制备。
肠粘膜下层组织提取物的制备在PCT申请No.PCT/US97/22721的实施例3中描述,其在1998年6月18日作为WO 98/25964公开,其内容引入此处作为参考。流化形式或凝胶形式的肠粘膜下层组分,和肠粘膜下层的提取物可保留生物活性剂,如生长因子,包括转化生长因子(TGF)β、TGFβ-相关蛋白以及成纤维细胞生长因子。
本发明还考虑了粉末形式肠粘膜下层的使用。在其中一个实施方案中,粉末形式的肠粘膜下层是通过在液氮下粉碎肠粘膜下层,从而产生0.1-1mm2大小的颗粒而制备的。然后将颗粒状组分冷冻干燥过夜并灭菌,形成固体、基本无水的颗粒状复合物。可选择性地,可通过将粉碎肠粘膜下层的混悬液或溶液干燥而从流化的肠粘膜下层而形成粉末形式的肠粘膜下层。粉末形式的肠粘膜下层组织还可与,例如,组织移植物的其它成分,如细胞和生长因子结合用于本发明中。
                        实施例1
                 流化的肠粘膜下层的制备
按照美国专利US 4,902,508和4,956,178先前所述以及上面所述内容自刚安乐死的猪(Delphi Indiana)采集并制备小肠粘膜下层。在液氮下粉碎肠粘膜下层并于使用前在-80℃贮藏。所述材料的部分消化是通过将5g粉末状组织加入到100ml含有溶于0.5M醋酸中的0.1%胃蛋白酶的溶液中,并在4℃下消化72小时而进行的。部分消化后,4℃下12,000rpm离心混悬液20分钟,弃去不溶性颗粒。4℃下,多次更换0.01M醋酸而透析上清液(MWCO 3500)。通过向肠粘膜下层组织的水解产物中加入氯仿(5ml氯仿加入900ml 0.01M醋酸)而将溶液灭菌。额外更换两次无菌的0.01M醋酸而继续透析肠粘膜下层组织,从而除去氯仿。然后将透析包的内含物无菌转移到无菌容器中。4℃下贮藏所得的流化组分。所述流化的肠粘膜下层组分是通过将流化组分与其它组分如细胞和生长因子混合而用于本发明的移植构造物中的。
                      实施例2
              肠粘膜下层凝胶组分的制备
为了制备凝胶形式的肠粘膜下层,将8ml流化的肠粘膜下层与1.2ml 10xPBS缓冲液(含5mg/L酚红的10x磷酸盐缓冲生理盐水)混合;加入0.04N HCl(约1.6ml)调节pH至6.6-7.4,然后加入0.05NNaOH(约1.2ml),改变pH至>8。用水将终体积调节至12ml。将所得混合物与移植构造物的其它组分如细胞和生长因子混合,用于植入到脊椎动物宿主中。
                       实施例3
               肠粘膜下层提取物的制备
用于这些研究的提取缓冲液包括4M胍和2M尿素,每个都是在50mMTris-HCl,pH 7.4中制备的。4℃下,将粉末形式的肠粘膜下层混悬在适当的提取缓冲液(25%w/v)中,所述提取缓冲液包含均为1mM的苯甲基磺基氟化物、N-乙基马来酰亚胺、和苄脒(蛋白酶抑制剂),用力搅拌24小时。然后在4℃下,12,000×g离心提取混合物30分钟,并收集上清液。在提取缓冲液中简单洗涤不溶性物质,离心,并将洗涤液与原始上清液混合。在Spectrapor管(MWCO 3500,SpectrumMedical Industries,Los Angeles,CA)中,用30个体积的去离子水充分透析上清液(72小时更换9次)。12,000×g离心透析液除去所有不溶性物质,所述上清液立即用于和移植构造物的其它组分混合或冻干贮藏。
                      实施例4
                肠粘膜下层组织的灭菌
因为细胞培养技术必须在严格的无菌条件下进行,因此如果培养***中不包括抗生素,那么在植入移植构造物前,必须以无菌方式制备肠粘膜下层组织以用作细胞培养基质。已经对若干灭菌方法进行研究以评价灭菌对肠粘膜下层组织生物向亲嗜性的影响。优选不会明显减弱组织机械强度和生物亲嗜性的灭菌技术。已经评价过下列用于肠粘膜下层的灭菌方法:过乙酸灭菌、1.0(或低于1.0)-2.5Mrad γ射线照射、1.0Mrad γ射线照射、Exspor(Alcide,Norfolk,CT)灭菌、e-束、甲醛和这些灭菌方法的各种组合。γ射线照射是用60钴-γ室在水化的肠粘膜下层组织上进行的。Exspor灭菌是按照制造商的说明,使用10∶1比例的灭菌剂体积(ml):肠粘膜下层(g)进行的。
将各种细胞类型(例如,IMR-90、FR、HT-29、RPEC)接种在灭菌的肠粘膜下层上,并在第1、3、7和14天分析它们的生长特性。对于所有细胞类型获得的结果表明通过γ射线照射或过乙酸处理灭菌的肠粘膜下层衍生的生长基质可支持细胞某种程度的粘附和生长。然而,接种在过乙酸灭菌的肠粘膜下层衍生的基质上的细胞表现出粘附增加、存活增加、和增殖及分化速率提高。优选的灭菌方法包括过乙酸处理,接着用γ射线照射或e-束进行最终的灭菌。
                      实施例5
            用过乙酸将肠粘膜下层组织灭菌
室温下,将肠粘膜下层组织浸泡在10∶1(ml过乙酸溶液∶g肠粘膜下层组织)或更大比例的过乙酸/乙醇溶液中2小时。所述过乙酸/乙醇溶液包含4%乙醇、0.1%(体积∶体积)过乙酸和剩余的水。0.1%过乙酸组分是可商业得到的35%过乙酸母液的稀释液,正如表1中所定义的。优选,振摇转子上的浸泡在过乙酸溶液中的肠粘膜下层组织。2小时后,倒出过乙酸溶液并用等量的乳酸盐林格氏溶液或磷酸盐缓冲的盐水(PBS)更换,并浸泡(同时振摇)15分钟。使肠粘膜下层组织经过4次或更多次的用乳酸盐林格氏溶液或PBS洗涤、然后用无菌水再冲洗15分钟的循环。
表1:35%过乙酸溶液的化学组成
组分重量%
过乙酸                    35.5
过氧化氢                  6.8
乙酸                      39.3
硫酸                      1.0
水                        17.4
乙酰基过氧化物            0.0
稳定剂                    500PPM
典型的活性氧分析,重量%
过乙酸的活性氧            7.47
H2O2的活性氧           2.40
总的活性氧                10.67
                     实施例6
                 内皮细胞的生长
小肠粘膜下层是按照美国专利US 4,902,508中所述从刚处死的猪采集并制备的。经由各种技术(γ射线照射、过乙酸等)灭菌后,将小肠粘膜下层组织夹在聚丙烯框架内,产生平坦的表面区域(50mm2)用于细胞生长。将框架浸没在组织培养基中,使培养基营养物进入肠粘膜下层组织的表面。将内皮细胞(3×104个细胞/肠粘膜下层组织切片)接种在肠粘膜下层组织上,然后放在37℃的5%CO2、95%空气的培养箱中。各个时间周期后,将接种的肠粘膜下层组织固定在10%中性缓冲***中,包埋在石蜡中,并切片(6μm)。进行各种组织学和免疫组织化学染色过程,从而确定细胞生长特性。利用这些过程观察血管或血管样结构。

Claims (49)

1.一种用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物,所述组织移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及至少一种附加的预选的外源性细胞群。
2.根据权利要求1所述的移植构造物,其中所述至少一种附加的细胞群包括选自角化上皮细胞、未角化上皮细胞、和中胚层来源细胞的细胞群。
3.根据权利要求1所述的移植构造物,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞群。
4.根据权利要求1所述的移植构造物,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞祖细胞群。
5.根据权利要求1所述的移植构造物,其中所述肠粘膜下层组织是从肌层和至少所述肠组织的粘膜层的腔部分剥离的。
6.根据权利要求1所述的移植构造物,它还包括肝素酶。
7.根据权利要求1所述的移植构造物,它还包括选自血管内皮细胞-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子样分子、转化生长因子β、和血清生长因子的生长因子。
8.根据权利要求1所述的移植构造物,其中用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织。
9.根据权利要求1所述的移植构造物,其中用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织后,再用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。
10.根据权利要求1所述的移植构造物,其中用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。
11.一种用于增强肠粘膜下层组织移植构造物的体内血管化的方法,所述方法包括下列步骤:
用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种所述肠粘膜下层组织;并
将所述移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位。
12.根据权利要求11所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括选自角化上皮细胞、未角化上皮细胞、和中胚层-来源细胞的细胞群。
13.根据权利要求11所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞群。
14.根据权利要求11所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞祖细胞群。
15.根据权利要求11所述的方法,其中所述肠粘膜下层组织是从肌层和至少所述肠组织的粘膜层的腔部分剥离的。
16.根据权利要求11所述的方法,其中所述移植构造物还包括肝素酶。
17.根据权利要求11所述的方法,其中所述移植构造物还包括选自血管内皮细胞-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子、血小板-衍生的生长因子样分子、转化生长因子β、和血清生长因子的生长因子。
18.根据权利要求11所述的方法,进一步包括在所述肠粘膜下层组织上培养所述内皮细胞一段时间的步骤,这段时间足够在将所述移植构造物植入到脊椎动物中之前体外形成血管或血管样结构。
19.根据权利要求11所述的方法,其中用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织。
20.根据权利要求11所述的方法,其中用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织后,再用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。
21.根据权利要求11所述的方法,其中用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时或近乎同时接种肠粘膜下层组织。
22.根据权利要求18所述的方法,其中用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织。
23.根据权利要求18所述的方法,其中用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织后,再用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。
24.根据权利要求18所述的方法,其中用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时接种肠粘膜下层组织。
25.根据权利要求19、20或21任何一项所述的方法,其中在植入移植构造物前,内皮细胞或附加的预选的细胞群均没有扩增。
26.根据权利要求19、20或21任何一项所述的方法,进一步包括以下步骤:在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间,这段时间足够使内皮细胞在没有体外形成血管或血管样结构的情况下扩增,并在肠粘膜下层组织上培养附加的预选的细胞群一段时间,这段时间足够在将移植构造物植入到脊椎动物中前,使附加的预选的细胞群扩增。
27.根据权利要求19、20或21任何一项所述的方法,进一步包括在肠粘膜下层组织上培养内皮细胞一段时间的步骤,这段时间足够使内皮细胞在没有体外形成血管或血管样结构的情况下扩增。
28.根据权利要求27所述的方法,其中所述附加的预选的细胞群在植入移植构造物前没有扩增。
29.根据权利要求19、20或21任何一项所述的方法,进一步包括在肠粘膜下层组织上培养附加的预选的细胞群一段时间的步骤,这段时间足够在植入移植构造物前,使预选的细胞群扩增。
30.根据权利要求29所述的方法,其中所述内皮细胞在植入移植构造物前没有扩增。
31.根据权利要求22、23或24任何一项所述的方法,其中所述附加的预选的细胞群在植入移植构造物前扩增。
32.根据权利要求22、23或24任何一项所述的方法,其中所述附加的预选的细胞群在植入移植构造物前没有扩增。
33.一种制备用于修复患病或受损组织的肠粘膜下层组织移植构造物的方法,所述方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种所述肠粘膜下层组织的步骤。
34.根据权利要求33所述的方法,进一步包括在将所述移植构造物植入到脊椎动物中之前,在所述肠粘膜下层组织上培养所述内皮细胞一段时间的步骤,这段时间足够体外形成血管或血管样结构。
35.一种用于增强肠粘膜下层组织移植构造物的体内血管化的方法,所述方法包括下列步骤:
用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源性细胞群体外接种所述肠粘膜下层组织。
在所述肠粘膜下层组织上体外培养所述内皮细胞一段时间,这段时间足够诱导血管或血管样结构的形成。并
将所述移植构造物植入到脊椎动物中需要修复的部位。
36.根据权利要求35所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括选自角化上皮细胞、未角化上皮细胞、和中胚层-衍生细胞的细胞群。
37.根据权利要求35所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞群。
38.根据权利要求35所述的方法,其中所述至少一种附加的细胞群包括平滑肌细胞祖细胞群。
39.根据权利要求35所述的方法,其中用内皮细胞接种肠粘膜下层组织后,再用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织。
40.根据权利要求35所述的方法,其中用附加的预选的细胞群接种肠粘膜下层组织后,再用内皮细胞接种肠粘膜下层组织。
41.根据权利要求35所述的方法,其中用内皮细胞和附加的预选的细胞群同时接种肠粘膜下层组织。
42.一种用于修复患病或受损组织的血管化肠粘膜下层组织移植构造物,所述组织移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中所述内皮细胞已经在所述肠粘膜下层组织上培养过一段时间,这段时间足够体外形成血管或血管样结构。
43.一种用于修复患病或受损组织的具有血管样结构的肠粘膜下层组织移植构造物,所述组织移植构造物包括脊椎动物的肠粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中所述附加的细胞群可增强所述血管样结构在所述移植构造物中形成的开始。
44.一种制备用于修复患病或受损组织的具有血管样结构的肠粘膜下层组织移植构造物的方法,所述方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源细胞群体外接种所述肠粘膜下层组织的步骤,其中所述附加的细胞群可增强所述血管样结构在所述移植构造物中形成的开始。
45.一种用于修复患病或受损组织的组织移植构造物,所述组织移植构造物包括粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中所述粘膜下层组织是从肌层和至少所述组织的粘膜层的腔部分剥离的。
46.一种制备用于修复患病或受损组织的组织移植构造物的方法,所述方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源细胞群体外接种粘膜下层组织的步骤,其中所述粘膜下层组织是从肌层和至少所述组织的粘膜层的腔部分剥离的。
47.一种用于修复患病或受损组织的具有血管样结构的组织移植构造物,所述组织移植构造物包括粘膜下层组织,加入的内皮细胞,以及至少一种附加的预选的外源性细胞群,其中所述附加的细胞群可增强所述血管样结构在所述移植构造物中形成的开始。
48.一种制备用于修复患病或受损组织的具有血管样结构的组织移植构造物的方法,所述方法包括用内皮细胞群和至少一种附加的预选的外源细胞群体外接种粘膜下层组织的步骤,其中所述附加的细胞群可增强所述血管样结构在所述移植构造物中形成的开始。
49.一种治疗患者中患病或受损组织的方法,包括使用权利要求1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、42、43、45、或47任何一项所述的组织移植构造物修复患病或受损组织。
CNA038155796A 2002-05-02 2003-05-01 血管化增强的移植构造物 Pending CN1713861A (zh)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US37756602P 2002-05-02 2002-05-02
US60/377,566 2002-05-02

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN1713861A true CN1713861A (zh) 2005-12-28

Family

ID=29401532

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CNA038155796A Pending CN1713861A (zh) 2002-05-02 2003-05-01 血管化增强的移植构造物

Country Status (8)

Country Link
US (1) US7815686B2 (zh)
EP (2) EP2103684A1 (zh)
JP (1) JP2005524699A (zh)
CN (1) CN1713861A (zh)
AU (1) AU2003234317B2 (zh)
CA (1) CA2483908C (zh)
NZ (1) NZ536611A (zh)
WO (1) WO2003092474A2 (zh)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6485723B1 (en) * 1995-02-10 2002-11-26 Purdue Research Foundation Enhanced submucosal tissue graft constructs
US6696270B2 (en) 1996-12-10 2004-02-24 Purdue Research Foundation Gastric submucosal tissue as a novel diagnostic tool
US20070122388A1 (en) 2000-12-08 2007-05-31 Kropp Bradley P Tissue graft compositions and methods for producing same
US7122200B2 (en) * 2000-12-08 2006-10-17 The Board Of Regents Of The University Of Oklahoma Vitro engineered, regenerated urinary tract tissue compositions and methods for producing same
WO2003053217A2 (en) * 2001-12-07 2003-07-03 Kropp Bradley P Tissue graft compositions and methods for producing same
JP2005524426A (ja) * 2002-05-02 2005-08-18 パーデュー・リサーチ・ファウンデーション 血管新生が促進された移植片構成物
EP2103684A1 (en) 2002-05-02 2009-09-23 Purdue Research Foundation Vascularisation enhanced graft constructs
AU2003243184C1 (en) * 2002-05-02 2009-04-09 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs
WO2004010852A2 (en) * 2002-07-31 2004-02-05 Kropp Bradley P Tissue compositions and methods for producing same
US8940292B2 (en) * 2003-01-28 2015-01-27 Wake Forest University Health Sciences Enhancement of angiogenesis to grafts using cells engineered to produce growth factors
CA2536923C (en) * 2003-09-04 2012-10-09 Cook Biotech Incorporated Extracellular matrix composite materials, and manufacture and use thereof
US7840263B2 (en) 2004-02-27 2010-11-23 Cardiac Pacemakers, Inc. Method and apparatus for device controlled gene expression
US7764995B2 (en) 2004-06-07 2010-07-27 Cardiac Pacemakers, Inc. Method and apparatus to modulate cellular regeneration post myocardial infarct
EP1838431A4 (en) * 2004-12-03 2012-08-22 California Inst Of Techn MICROFLUIDIC DEVICES WITH CIRCUITRY OF CHEMICAL REACTIONS
US8060219B2 (en) 2004-12-20 2011-11-15 Cardiac Pacemakers, Inc. Epicardial patch including isolated extracellular matrix with pacing electrodes
US7981065B2 (en) 2004-12-20 2011-07-19 Cardiac Pacemakers, Inc. Lead electrode incorporating extracellular matrix
US8874204B2 (en) 2004-12-20 2014-10-28 Cardiac Pacemakers, Inc. Implantable medical devices comprising isolated extracellular matrix
WO2006099016A2 (en) * 2005-03-09 2006-09-21 Providence Health System A composite multi-layered vascular graft prosthesis
EP1863545B1 (en) 2005-03-19 2015-11-18 Cook Biotech, Inc. Prosthetic implants including ECM composite material
KR20080105792A (ko) * 2007-06-01 2008-12-04 연세대학교 산학협력단 점막내강 재건용 이식물
US8257434B2 (en) 2007-12-18 2012-09-04 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Prosthetic tissue valve
US8679176B2 (en) 2007-12-18 2014-03-25 Cormatrix Cardiovascular, Inc Prosthetic tissue valve
CA2752899A1 (en) 2009-02-18 2010-08-26 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Compositions and methods for preventing cardiac arrhythmia
US9051550B2 (en) 2009-04-09 2015-06-09 Arizona Board Of Regents, On Behalf Of The University Of Arizona Cellular seeding and co-culture of a three dimensional fibroblast construct
US9352003B1 (en) 2010-05-14 2016-05-31 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissuegenic implants, and methods of fabricating and using same
US8883210B1 (en) 2010-05-14 2014-11-11 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissuegenic implants, and methods of fabricating and using same
US10130736B1 (en) 2010-05-14 2018-11-20 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissuegenic implants, and methods of fabricating and using same
US8834928B1 (en) 2011-05-16 2014-09-16 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissugenic implants, and methods of fabricating and using same
CA2835862A1 (en) 2011-05-27 2012-12-06 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Extracellular matrix material valve conduit and methods of making thereof
US20150037436A1 (en) 2013-07-30 2015-02-05 Musculoskeletal Transplant Foundation Acellular soft tissue-derived matrices and methods for preparing same
US9878071B2 (en) 2013-10-16 2018-01-30 Purdue Research Foundation Collagen compositions and methods of use
EP3102031B1 (en) 2014-02-05 2022-01-19 Muffin Incorporated Compartmented cryopreservation container and uses thereof
CA2943182A1 (en) 2014-03-21 2015-09-24 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods for preparation of a terminally sterilized hydrogel derived from extracellular matrix
CN104490489B (zh) * 2014-12-02 2017-02-01 淮安皓运生物科技有限公司 基于3d生物打印技术制备组织工程血管的方法
WO2016172365A1 (en) 2015-04-21 2016-10-27 Purdue Research Foundation Office Of Technology Commercialization Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same
WO2016187413A1 (en) 2015-05-21 2016-11-24 Musculoskeletal Transplant Foundation Modified demineralized cortical bone fibers
US10912864B2 (en) 2015-07-24 2021-02-09 Musculoskeletal Transplant Foundation Acellular soft tissue-derived matrices and methods for preparing same
US11052175B2 (en) 2015-08-19 2021-07-06 Musculoskeletal Transplant Foundation Cartilage-derived implants and methods of making and using same
AU2018226867B2 (en) 2017-03-02 2023-11-02 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education ECM hydrogel for treating esophageal inflammation
CA3049990A1 (en) 2017-03-02 2018-09-07 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Extracellular matrix (ecm) hydrogel and soluble fraction thereof for the treatment of cancer
WO2018200750A1 (en) 2017-04-25 2018-11-01 Purdue Research Foundation 3-dimensional (3d) tissue-engineered muscle for tissue restoration
CA3060956A1 (en) 2017-05-05 2018-11-08 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Ocular applications of matrix bound vesicles (mbvs)

Family Cites Families (41)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4829000A (en) * 1985-08-30 1989-05-09 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Reconstituted basement membrane complex with biological activity
US5863531A (en) 1986-04-18 1999-01-26 Advanced Tissue Sciences, Inc. In vitro preparation of tubular tissue structures by stromal cell culture on a three-dimensional framework
US4902508A (en) 1988-07-11 1990-02-20 Purdue Research Foundation Tissue graft composition
US4956178A (en) 1988-07-11 1990-09-11 Purdue Research Foundation Tissue graft composition
US5281422A (en) * 1991-09-24 1994-01-25 Purdue Research Foundation Graft for promoting autogenous tissue growth
US5275826A (en) 1992-11-13 1994-01-04 Purdue Research Foundation Fluidized intestinal submucosa and its use as an injectable tissue graft
US5352463A (en) 1992-11-13 1994-10-04 Badylak Steven F Tissue graft for surgical reconstruction of a collagenous meniscus and method therefor
US5641518A (en) * 1992-11-13 1997-06-24 Purdue Research Foundation Method of repairing bone tissue
CA2119064A1 (en) * 1993-03-17 1994-09-18 Richard A. Berg Dermal-epidermal in vitro test system
US6475232B1 (en) 1996-12-10 2002-11-05 Purdue Research Foundation Stent with reduced thrombogenicity
US6485723B1 (en) * 1995-02-10 2002-11-26 Purdue Research Foundation Enhanced submucosal tissue graft constructs
US5554389A (en) 1995-04-07 1996-09-10 Purdue Research Foundation Urinary bladder submucosa derived tissue graft
US5711969A (en) 1995-04-07 1998-01-27 Purdue Research Foundation Large area submucosal tissue graft constructs
US6419920B1 (en) * 1995-10-25 2002-07-16 Trans Karyotic Therapies, Inc. Hybrid matrix implants and explants
EP0927052B1 (en) 1996-08-16 2003-04-16 The Children's Medical Center Corporation Bladder submucosa seeded with cells for tissue reconstruction
US6171344B1 (en) * 1996-08-16 2001-01-09 Children's Medical Center Corporation Bladder submucosa seeded with cells for tissue reconstruction
AU742457B2 (en) 1996-08-23 2002-01-03 Cook Biotech, Incorporated Graft prosthesis, materials and methods
AU731768B2 (en) * 1996-09-16 2001-04-05 Purdue Research Foundation Composition and method for repairing neurological tissue
CA2274902C (en) * 1996-12-10 2011-02-01 Purdue Research Foundation Submucosa extracts
DK0954254T3 (da) 1996-12-10 2005-01-31 Cook Biotech Inc Rörformede transplantater af renset submucosa
CA2274033C (en) 1996-12-10 2010-05-11 Purdue Research Foundation Biomaterial derived from vertebrate liver tissue
DE69734218T2 (de) * 1996-12-10 2006-07-06 Purdue Research Foundation, West Lafayette Gewebetransplantat aus der Magensubmukosa
AU7594398A (en) 1997-05-23 1998-12-11 Biosense, Inc. Catheter with oblique lumen
US6444229B2 (en) 1998-02-27 2002-09-03 Purdue Research Foundation Submucosa gel compositions
WO2000015765A1 (en) * 1998-09-11 2000-03-23 Purdue Research Foundation Enhanced submucosal tissue graft constructs
US6918396B1 (en) * 1998-12-01 2005-07-19 Purdue Research Foundation Method for vocal cord reconstruction
WO2000062833A1 (en) 1999-04-15 2000-10-26 The Research Foundation Of State University Of New York Cellular matrix system and use thereof
ATE424162T1 (de) 1999-08-06 2009-03-15 Cook Biotech Inc Rohrförmige transplantatkonstruktion
ES2749801T3 (es) 1999-12-22 2020-03-23 Acell Inc Composición para regeneración de tejidos
US6479064B1 (en) * 1999-12-29 2002-11-12 Children's Medical Center Corporation Culturing different cell populations on a decellularized natural biostructure for organ reconstruction
JP5684963B2 (ja) 2000-04-14 2015-03-18 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 筋肉由来前駆細胞、その組成物、および治療法を使用した軟部組織および骨の増大および肥厚
HUP0300810A2 (hu) 2000-07-20 2003-08-28 M.G.V.S. Ltd. Mesterséges értranszplantátum, valamint ennek létrehozása és alkalmazása
EP1315796B1 (en) * 2000-08-16 2006-07-12 Duke University Decellularized tissue engineered constructs and tissues
CA2418077A1 (en) 2000-09-06 2002-03-14 Universite Laval In vitro human angiogenesis model
CA2452033C (en) * 2001-06-28 2011-11-08 Cook Biotech Incorporated Graft prosthesis devices containing renal capsule collagen
US20030113302A1 (en) 2001-08-31 2003-06-19 Elena Revazova Use of recipient endothelial cells for enhanced vascularization of tissue and tissue-engineered construct transplants
EP2103684A1 (en) 2002-05-02 2009-09-23 Purdue Research Foundation Vascularisation enhanced graft constructs
JP2005524426A (ja) 2002-05-02 2005-08-18 パーデュー・リサーチ・ファウンデーション 血管新生が促進された移植片構成物
AU2003243184C1 (en) * 2002-05-02 2009-04-09 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs
US20050202058A1 (en) 2002-05-02 2005-09-15 Hiles Michael C. Cell-seeded extracellular matrix grafts
US8728463B2 (en) * 2005-03-11 2014-05-20 Wake Forest University Health Science Production of tissue engineered digits and limbs

Also Published As

Publication number Publication date
AU2003234317B2 (en) 2009-04-09
NZ536611A (en) 2006-04-28
WO2003092474A3 (en) 2004-02-12
US7815686B2 (en) 2010-10-19
AU2003234317A1 (en) 2003-11-17
WO2003092474A2 (en) 2003-11-13
CA2483908C (en) 2012-02-21
JP2005524699A (ja) 2005-08-18
EP1503652A2 (en) 2005-02-09
US20030216811A1 (en) 2003-11-20
EP2103684A1 (en) 2009-09-23
CA2483908A1 (en) 2003-11-13
EP1503652A4 (en) 2006-02-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1713861A (zh) 血管化增强的移植构造物
CN1684589A (zh) 血管化增强的移植构造物
CN1665527A (zh) 血管化增强的移植构造物
RU2104039C1 (ru) Заменитель живой кожи, способ его получения и способ обработки повреждений живой кожи
CN103534346A (zh) 细胞合成颗粒
CN101195044A (zh) 一种组织工程化微粒组织及其制备方法
JP4898068B2 (ja) レシピエント特異的組織移植片または組織インプラントの作製方法
AU668959C (en) Biotherapeutic cell-coated microspheres

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication