CN116987699A - 用于制备通用型car-t细胞的基因片段、其工具***及应用 - Google Patents

用于制备通用型car-t细胞的基因片段、其工具***及应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及用于制备通用型CAR‑T细胞的基因片段、其工具***及应用。该基因片段的序列为SEQ ID No.1至SEQ ID No.11之一。将上述基因片段对应的crRNA与I‑B型CRISPR‑Cascade‑Cas3基因编辑***相结合后即形成工具***,能通过有效敲除TRAC基因从而获得通用型CAR‑T细胞。

Description

用于制备通用型CAR-T细胞的基因片段、其工具***及应用
技术领域
本发明涉及用于制备通用型CAR-T细胞的基因片段、其工具***及应用,属于生物技术、生物医药技术领域。
背景技术
CAR-T疗法已经有多款药物先后上市,不管是在疗效还是商业化上,都取得了巨大的成功。但是,使用基因工程构造CAR细胞的成本高昂。如此昂贵的售价显然会为很多患者家庭带来沉重的负担。此外,目前自体CAR-T细胞疗法为定制化生产(以患者自体血液中T细胞为材料),从收集患者T细胞到CAR-T细胞到成功制备大概要经历2-3周,对于一些患者来说,这个时间可能会超过他们的最佳治疗时期。因此,研究者开始考虑同种异体CAR-T细胞,即通用型CAR-T(UCAR-T)。UCAR-T最大的优势就是可以提前制备,当患者有需要时可以及时使用,极大地降低了生产成本和时间成本。移植物抗宿主病(GvHD)是同种异体CAR-T细胞治疗中需要克服的主要障碍,尤其是当患者的CAR-T细胞是由人类白细胞抗原(HLA)不匹配的健康供体产生时,UCAR-T的移植会引起严重的血液学毒性。因此制备UCAR-T细胞的主要设计原则是从同种异体健康供体中生成肿瘤抗原特异性T细胞,然后通过基因编辑的方法破坏同种异体T细胞的TCR基因和/或HLA I类基因来有效消除移植物抗宿主病。通过靶向TCR内源性α或β亚基恒定区的基因组序列或破坏MHC基因复合物的HLA-A基因座,使得TCR或HLAI类抗原的表达被消除,由此产生的T细胞不能识别同种异体抗原,从而消除GvHD。构建TCR缺陷型和HLA I类缺陷型最常用的基因编辑方法有锌指核酸酶(ZFN)、转录激活因子样效应核酸酶(TALEN)和CRISPR-Cas9等。目前使用最普遍的是利用CRISPR-Cas9敲除TRAC及HLA,CRISPR-Cas9基因编辑通过切割DNA相关编码区域造成碱基的***或缺失(InDel)来沉默基因表达,但该方法并不能实现DNA长片段的清除,对于完全的基因敲除效率很低,因而可能导致UCAR-T产品无法完全消除GvHD。
本发明的发明人课题组于2022年9月19日申请的发明专利《一种I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***及应用》中,公开了I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***,能够使单个CRISPR靶向位点形成不同程度的长片段缺失,从而弥补CRISPR-Cas9产生长片段缺失的能力相对有限的空白。目前经进一步研究得出了该I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***用于制备通用型CAR-T细胞的应用成果,为细胞基因敲除提供更完善更彻底的解决方案,并以此来申报本发明专利。
发明内容
本发明的主要目的是:克服现有技术存在的问题,提供一种用于制备通用型CAR-T细胞的基因片段,将其对应的crRNA与I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***相结合后,能够通过有效敲除TRAC基因从而获得通用型CAR-T细胞。同时还提供含有该基因片段的工具***,以及相关应用。
本发明解决其技术问题的技术方案如下:
用于制备通用型CAR-T细胞的基因片段,其特征是,所述基因片段与crRNA相对应;所述基因片段的基本结构为5'-tgagcac-子片段-gtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt-3';所述基因片段的序列为SEQ ID No.1至SEQ ID No.11之一。
优选地,所述基因片段的序列为SEQ ID No.2或SEQ ID No.7。
根据上述基因片段可合成出相应的crRNA,用于制备通用型CAR-T细胞。
本发明还提供:
与前文所述基因片段对应的crRNA。
上述crRNA与I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***相结合后,能通过有效敲除TRAC基因从而获得通用型CAR-T细胞。
本发明还提供:
一种工具***,其特征是,所述工具***含有前文所述的crRNA;所述工具***为I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***。
优选地,所述I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***由Cascade复合物以及Cas3蛋白组成;所述crRNA位于Cascade复合物中;所述Cascade复合物由Cmx8蛋白、Cas8蛋白、Cas5蛋白、Cas6蛋白、Cas11蛋白以及crRNA复合而成;所述Cmx8蛋白的氨基酸序列为SEQID NO.12;所述Cas8蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.13;所述Cas5蛋白的氨基酸序列为SEQID NO.14;所述Cas6蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.15;所述Cas11蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.16;所述Cas3蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.17。
上述工具***能对人原代T细胞进行基因编辑,敲除TRAC基因,获得通用型CAR-T细胞。
本发明还提供:
前文所述基因片段、或前文所述crRNA、或前文所述工具***用于制备敲除TRAC基因的药物的应用、或者用于制备通用型CAR-T细胞的应用。
含有前文所述工具***的细胞系或细胞株。
本发明还提供:
一种制备通用型CAR-T细胞的方法,其特征是,所述方法包括:采用前文所述的工具***对T细胞进行TRAC基因敲除,得到通用型CAR-T细胞。
一种通过利用前文所述的基因片段、或前文所述的crRNA、或前文所述的工具***、或前文所述的方法制备获得的通用型CAR-T细胞。
含有前文所述的通用型CAR-T细胞的细胞制剂。
本发明利用I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***,针对性设计出crRNA,通过有效敲除TRAC基因从而获得通用型CAR-T细胞。与传统的利用CRISPR-Cas9编辑相比,本发明利用I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***能造成长片段缺失的特点,能更加彻底地敲除TRAC基因,从而在细胞产品的通用性和特异性上更有优势,尤其适用于对于敲除程度要求高的应用场景,如通用型T细胞产品。
附图说明
图1为本发明实施例1的优选测试实验结果图。
图2为本发明实施例1的TRAC基因敲除位点示意图。
图3为本发明实施例1的流式细胞术检测编辑效率示意图。其中,百分比表示TCR-T细胞比例。
图4为本发明实施例1的编辑效率统计结果图(mean±SEM,n=5)。
图5为本发明实施例1的基因组缺失范围示意图。
具体实施方式
本发明利用I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***,通过反复深入地***性试验研究,获得了通过有效敲除TRAC基因从而获得通用型CAR-T细胞的技术手段,具体为将靶向T细胞TRAC基因的系列基因片段所对应的crRNA与I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***相结合,以实现上述效果。
具体而言,系列基因片段的基本结构为5'-tgagcac-子片段-gtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt-3'。各基因片段的具体序列如下所示(各子片段以大写字母表示):
SEQ ID No.1:
tgagcacGACTTCAAGAGCAACAGTGCTGTGGCCTGGAGCAAgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.2:
tgagcacTCTAGCACAGTTTTGTCTGTGATATACACATCAGAgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.3:
tgagcacAAGAGAAGGTGGCAGGAGAGGGCACGTGGCCCAGCgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.4:
tgagcacAGAAAGGAGAAGAGCAGCAGGCATGAGTTGAATGAgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.5:
tgagcacCACCATTGCACTCCAGCCTGGGCAACAAGAGCAAAgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.6:
tgagcacGTTCTACCTTTGAAACCTGAATGGTGTTGGTTACCgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.7:
tgagcacATGGATCTTCAGTGGGTTCTCTTGGGCTCTAGGTCgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.8:
tgagcacTCCTCTCTCCCCAGTACGGCTCTCTTAGCTCAGTAgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.9:
tgagcacGGAGGATCGCTTGAGCCCTGGAATGTTGAGGCTACgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.10:
tgagcacGCTCTGTTTGGGGCTATGTGGTAGAGTTCTAGGAGgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
SEQ ID No.11:
tgagcacCTGTGTATCTGGGCGTGTTGTATGTCCTGCTGCCGgtgtccaaaccattgatgccgtaaggcgt
其中,优选SEQ ID No.2或SEQ ID No.7。
本发明用于制备通用型CAR-T细胞的工具***由Cascade复合物以及Cas3蛋白组成;Cascade复合物由Cmx8蛋白、Cas8蛋白、Cas5蛋白、Cas6蛋白、Cas11蛋白以及crRNA复合而成;Cmx8蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.12;Cas8蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.13;Cas5蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.14;Cas6蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.15;Cas11蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.16;Cas3蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.17;与crRNA对应的基因片段为SEQ ID No.1至SEQ ID No.11之一,且优选SEQ ID No.2或SEQ ID No.7。
下面参照附图并结合实施例对本发明作进一步详细描述。但是本发明不限于所给出的例子。
实施例1
本实施例通过敲除TRAC位点实现T细胞产品的通用性,以获得通用型CAR-T细胞。操作流程包括:培养T细胞,制备crRNA和mRNA并电转到T细胞,最后通过流式细胞术和长距离PCR来检测敲除效果。
一、具体实验内容
(1)T细胞培养
使用EasySepTM Human T Cell提取试剂盒从外周血单个核细胞(Peripheralblood mononuclear cells,PBMC)中分离CD3+T细胞。得到的CD3+T细胞接种至含有200U/mL人源IL-2的CTSTM AIM-VTM培养基中,用抗人CD3/CD28磁珠(磁珠与细胞浓度比为1:1)刺激2天。
(2)cas mRNAs体外转录
以携带cas3、cmx8、cas8、cas5、cas6、cas11基因的无内毒素线性质粒作为模板,按照mMessage mMachine T7 Ultra试剂盒的操作说明来进行体外转录,其中用N1-甲基假尿苷三磷酸(m1Ψ-5’-triphosphate)替代尿苷三磷酸(Uridine triphosphate),并且补加120nt的poly(A)tail。反应产物经过纤维素法柱层析分离纯化后保存于-20℃。
(3)mRNA电转
CD3+T细胞在加入磁珠刺激48h后,可用于电转,去除磁珠,90g离心10min,弃上清,细胞沉淀加入P3缓冲液重悬(每100万个细胞加入20μL缓冲液)。使用Lonza 4D电穿孔***对每孔T细胞进行电穿孔,脉冲代码为EH115,cas mRNAs以及crRNA加入量如下表所示。电穿孔后,每孔立即加入80μL预热培养基,置于37℃细胞培养箱中静置10min,之后将细胞移至24孔细胞培养板。每隔2-3天,补加新鲜的培养基以及人源IL-2(终浓度为100U/mL)。
(4)流式细胞术分析
电穿孔后约5天,离心收集细胞。用25μL含有2% FBS的PBS缓冲液重悬细胞沉淀,加入TCR特异性抗体IP26对细胞进行染色,在4℃避光孵育20分钟。之后将细胞用FACS缓冲液洗涤2次。使用BD AccuriTM C6 Plus流式细胞仪进行分析,收集到的数据用FlowJov10.7.1进行分析。
(5)PacBio测序分析
按照Puregene Cell试剂盒的操作说明,提取上一步中收集的细胞的基因组DNA。在编辑位点上下游设计引物,序列如下:
Fwd:ttccacctcaaaacattggttccgtc,
Rev:ccctctgacctctgccctaactgg,
利用上述引物,以提取的基因组DNA为模板,按照KOD FX Neo试剂盒的说明进行长片段PCR扩增,PCR产物用0.8%琼脂糖凝胶电泳进行分离。在紫外灯下观察电泳后的凝胶,进行切胶回收,并通过PacBio测序进行分析。
二、TRAC基因敲除结果分析
为了探究I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***在哺乳动物基因组中进行基因编辑的能力以及特征,本实施例针对TRAC基因座设计了11条protospacer并且分别合成了71nt的成熟crRNA,各crRNA对应的基因片段序列如下表所示。
对上述11条crRNA进行优选测试实验,具体为:每条crRNA与cas mRNAs一起通过电穿孔递送至CD3+T细胞,培养72h,通过抗体染色流式细胞术检测敲除效率。检测结果如图1所示。
根据上述结果,结合图2所示的TRAC基因敲除位点,选择SEQ ID No.2的crRNA作为G1,并选择SEQ ID No.7的crRNA作为G2,分别与cas mRNAs一起通过电穿孔递送至CD3+T细胞中。通过TCR特异性抗体IP26对T细胞进行染色(其中TRAC基因被破坏的细胞将不会表达TCR,无法对其进行染色),然后通过流式细胞术来检测敲除效率。
通过流式分析发现,如图3、图4所示,通过递送mRNA以及不同的crRNA(G1、G2),在CD3+T细胞体内分别可以达到约35.56%以及36.62%的敲除效率,最高可以分别达到40.5%和41.2%,且靶向上游或者下游的crRNA在编辑效率上并没有显著的差异;而递送非靶标的crRNA在CD3+T细胞内达到的效率仅为0.48%,可以忽略不计。
为进一步分析基因缺失的情况,本实施例通过流式分选收集TCR表达显著降低的细胞(靶向G1),提取基因组进行长片段PCR,对PCR产物进行PacBio测序。将测序结果与原始序列进行比对,得到了总计73条缺失片段,其中有32个样本的缺失长度超过了1kb(如图5所示);进一步分析发现缺失的起点并不位于假定的R-loop位点,而是位于PAM上游320nt到348nt的一个窗口中(其中有一个例外,其缺失起点位于PAM上游85nt);并且造成的缺失都是从PAM近端到PAM远端,证明本实施例形成的工具***中,Cas3表现出3'-5'单向的切割活性,而缺失的终点最远可以达到PAM远端约4.5kb,利用本实施例形成的工具***可以在CD3+T细胞内对基因组造成单向的大片段敲除。
三、总结与讨论
通用型CAR-T细胞治疗中最大的挑战在于宿主细胞对通用型CAR-T细胞的免疫排斥以及通用型CAR-T细胞攻击宿主组织器官。αβT细胞占T细胞总数95%以上,αβT细胞的T细胞受体(TCR)由α链(TRAC基因编码)、β1链(TRBC1基因编码)和β2链(TRBC2基因编码)构成,同种异基因CAR-T细胞表面TCR可以识别宿主细胞抗原,引发移植物抗宿主病(GVHD)。此外,同种异基因CAR-T细胞表面的MHC,又称为人类白细胞抗原(HLA),诱发宿主TCR识别,引起免疫排斥。HLA可分为HLA Ⅰ类分子和HLA Ⅱ类分子,其中,HLA Ⅰ类分子由具有高度多态性的α链和由B2M基因编码的β链(即β2微球蛋白)构成。
本实施例中,首先通过mRNA递送的方式,在CD3+T细胞内进行靶向敲除TRAC基因的编辑实验;在靶基因的上下游分别设计了敲除位点,递送cas mRNA以及crRNA,通过流式细胞术检测编辑效率;然后通过长片段PCR以及PacBio测序,确定DNA缺失的范围。通过上述实验最终确定,本实施例形成的工具***在T细胞内最高可以达到40%的敲除效率;同时经过测序分析,可以发现利用该工具可以在T细胞内造成长达4.5kb的DNA缺失,这也证明了该工具***在真核细胞中进行基因编辑的能力。
本发明首次利用I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***在T细胞内进行基因编辑,这对于后续开发I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***的临床应用奠定了基础。
除上述实施例外,本发明还可以有其他实施方式。凡采用等同替换或等效变换形成的技术方案,均落在本发明要求的保护范围。

Claims (10)

1.用于制备通用型CAR-T细胞的基因片段,其特征是,所述基因片段与crRNA相对应;所述基因片段的基本结构为5'-tgagcac-子片段-gtgtccaaaccattg atgccgtaaggcgt-3';所述基因片段的序列为SEQ ID No.1至SEQ ID No.11之一。
2.根据权利要求1所述的基因片段,其特征是,所述基因片段的序列为SEQ ID No.2或SEQ ID No.7。
3.与权利要求1或2所述的基因片段对应的crRNA。
4.一种工具***,其特征是,所述工具***含有权利要求3所述的crRNA;所述工具***为I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***。
5.根据权利要求4所述的工具***,其特征是,所述I-B型CRISPR-Cascade-Cas3基因编辑***由Cascade复合物以及Cas3蛋白组成;所述crRNA位于Cascade复合物中;所述Cascade复合物由Cmx8蛋白、Cas8蛋白、Cas5蛋白、Cas6蛋白、Cas11蛋白以及crRNA复合而成;所述Cmx8蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.12;所述Cas8蛋白的氨基酸序列为SEQ IDNO.13;所述Cas5蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.14;所述Cas6蛋白的氨基酸序列为SEQ IDNO.15;所述Cas11蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO.16;所述Cas3蛋白的氨基酸序列为SEQID NO.17。
6.权利要求1或2所述基因片段、或者权利要求3所述crRNA、或者权利要求4或5所述工具***用于敲除TRAC基因的应用、或者用于制备通用型CAR-T细胞的应用。
7.含有权利要求4或5所述工具***的细胞系或细胞株。
8.一种制备通用型CAR-T细胞的方法,其特征是,所述方法包括:采用权利要求4或5所述的工具***对T细胞进行TRAC基因敲除,得到通用型CAR-T细胞。
9.一种通过利用权利要求1或2所述的基因片段、或权利要求3所述的crRNA、或权利要求4或5所述的工具***、或权利要求8所述的方法制备获得的通用型CAR-T细胞。
10.含有权利要求9所述通用型CAR-T细胞的细胞制剂。
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