CN115406979B - 残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法 - Google Patents

残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种残留1‑乙基[3‑(二甲氨基)‑丙基]‑碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,将样品的浸提液通过C18反相色谱柱,使用高效液相色谱法配合紫外检测器,采用反向液相色谱外标百分比法定量分析,实现了重组类胶原蛋白海绵交联剂EDC残留量的定量检测,该方法操作简便,灵敏度高,峰形以及分离度满足药典要求,且检测限相较于其他方法检测限更敏感,是一种高效、快速、准确的检测方法。

Description

残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液 相色谱分析方法
技术领域
本发明属于医疗器械检测分析技术领域,具体涉及一种交联剂1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐(EDC)的高效液相色谱分析方法。
背景技术
碳二亚胺是一类含有官能团-N=C=N-的化合物,其分子呈线性结构,能与胶原蛋白中的羧基及氨基发生交联反应,改善胶原蛋白材料的性能,在此交联剂下制备 得到的胶原蛋白海绵具有疏松的多孔网络结构,良好的吸水率和耐降解性能。碳二 亚胺交联可克服胶原材料机械强度低、易被酶降解等缺陷,具有作为支架材料应用 于创伤修复的巨大潜能。目前有很多工艺中采用EDC与其物质进行反应,如多糖、 胶原、多肽、高分子等,应用前景巨大。尤其是在胶原蛋白应用飞速发展的条件下, 采用EDC对胶原蛋白进行改性,衍生其他产品,如:胶原海绵、人工皮肤、硬脑 膜等,但样品制备过程中EDC可能过量,医疗器械中的残留需进行控制,所以定 量的测定化学改性中交联剂EDC残留的是有必要的。
目前有文献建立了一种多糖蛋白疫苗中残余碳二亚胺的检测方法,该方法使用的是液相色谱及质谱联用技术(LC-MC)对碳二亚胺尿素衍生物进行定量分析。但 液质联用成本较高,并不是所有的企业及研究者可以普遍使用,在应用上受到了极大的限制。申请号为201510239250.5的发明专利中公开了一种采用HPLC-ELSD检 测EDC残留的方法,检测对象为EDC,采用的是高效液相色谱仪及蒸发光散射检测器,但该专利中提到的方法不适用于在水溶液中处理的样本,因为在水溶液中 EDC会转化为EDU,且为不可逆反应。
发明内容
本发明的目的是提供了一种残留交联剂1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐(EDC)的高效液相色谱分析方法,该方法可通过高效液相色谱仪紫外检测 器(HPLC-UV)进行检测重组类胶原蛋白海绵中的交联剂EDC残留,从而保证重 组类胶原蛋白海绵的质量。
本发明所述残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,包括如下步骤:
(1)样品溶液的制备:取待测物加入超纯水中,于40~60℃浸提,使残留的 1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐水解成1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基 脲,然后用0.22μm水膜过滤,得到样品溶液;水解反应过程如下:
其中R1代表-CH2-CH3(乙基),R2代表-(CH2)3-N-(CH3)2(二甲氨基丙基);
(2)配制1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液;
(3)采用高效液相色谱法配合紫外检测器检测1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液,记录同一保留时间下的峰面积;色谱条件为:色谱柱采用C18反相 柱,流动相为流动相A和流动相B体积比99:1~80:20的混合溶液,所述流动 相A为含0.1mM 1-庚烷磺酸钠、体积浓度0.04%三乙胺的水溶液并用磷酸调pH至3,流动相B为乙腈,洗脱方式为等度洗脱;以1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲的 浓度为纵坐标,峰面积为横坐标,根据标准品溶液的检测结果绘制标准曲线,得到标准曲线方程;
(4)按照步骤(3)的条件检测步骤(1)中样品溶液,代入步骤(3)得到的 标准曲线方程中计算出样品溶液中1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲的浓度,根据公 式:EDC残留量=EDU浓度×样品溶液总体积/173×191/待测物质量×100%,计算待 测物中EDC残留量,所述EDC为1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐, EDU为1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲。
上述步骤(2)中,优选称取10mg 1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品,置 于100mL容量瓶中,加超纯水至刻度线,摇晃使其充分溶解,得到100μg/mL的 1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲储备液;将1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲储备液 用超纯水分别稀释为3μg/mL、6μg/mL、12μg/mL、24μg/mL、48μg/mL的1-[3-(二 甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液。
上述步骤(3)中,所述C18反相柱为十八烷基硅烷键合硅胶柱AQ-C18WeLch,其规格为4.6mm×250mm,填料孔径/>粒径5μm。
上述步骤(3)中,优选进样体积为10~20μL,流速为0.8~1.2mL/min,柱温 为25~40℃,检测波长为200~210nm。
上述步骤(3)中,进一步优选所述色谱柱进样前需用流动相平衡柱子120~150min。
上述步骤(3)中,更进一步优选所述流动相为流动相A和流动相B体积比97: 3~95:5的混合溶液。
与现有技术相比,本发明的有益效果如下:
(1)检测时间短,减少了有机相的使用,为企业节省成本和减少对环境的污 染;且在进样时,使用的是混合流动相,减少了基线波动;
(2)EDU由于极性较强在C18柱上无保留而穿柱,且EDU在200~210nm 的紫外吸收较弱,通过1-庚烷磺酸钠、三乙胺、磷酸等试剂延长了EDU在C18柱 上的保留使其主峰达到合理的保留时间,同时加强了EDU在色谱柱上的吸收,减 弱了其他杂质对EDU的影响,检测限更敏感,达到纳克级别;精密度良好(重复 性RSD%<1.97%),线性关系良好,检测限浓度为重组类胶原蛋白海绵交联剂EDC 杂质规定限值的0.44%时,信噪比为3.71,各个浓度的回收率均在94%之上,回收 率良好,准确度高,耐用性良好(RSD%<2%);
(3)本方法相较于液质谱联用(LC-MS)、高效液相色谱仪联合蒸发光散射 检测器(HPLC-ELSD)更便宜、更普遍,从而降低企业成本,且操作简单,通过 调整流动相中的相关试剂,使其检测限达到40ng/mL,且EDC转化为EDU具有不 可逆性,直接检测EDU结果更可靠、准确,稳定性更好,既可以满足企业生产的高通量检测,也适用于实验室以研发为目的的检测。
附图说明
图1是EDU的标准曲线图。
图2是本发明流动相对EDU的检测限色谱图。
图3是普通流动相对EDU的检测限色谱图。
图4是EDU储备液的高效液相色谱图。
图5是现配EDC水溶液的高效液相色谱图。
图6是EDC水溶液放置7天后的高效液相色谱图。
图7是重组类胶原蛋白海绵浸提液的高效液相色谱图。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明进行说明,但本发明的保护范围并不仅限于这些实例。
实施例1
1、样品溶液的制备:称取重组类胶原蛋白海绵100mg,用剪刀剪碎后置于离 心管中,加入2mL超纯水,并用封口膜密封离心管,在50℃水浴锅中浸提72h, 使重组类胶原蛋白海绵中残留的交联剂EDC在超纯水中转换成EDU;然后用 0.22μm的滤膜进行过滤,过滤后得到的重组类胶原蛋白海绵浸提液即为样品溶液。
2、配制EDU标准品溶液:称取10mg EDU标准品,置于100mL容量瓶中, 加超纯水至刻度线,摇晃使其充分溶解,得到100μg/mL的EDU储备液。将EDU 储备液用超纯水分别稀释0、2、4、8、16倍,获得浓度为3μg/mL、6μg/mL、12μg/mL、 24μg/mL、48μg/mL的EDU标准品溶液。
另外,称取10mg EDC,置于100mL容量瓶中,加超纯水至刻度线,混匀放置 7天,备用;检测前再称取10mg EDC,置于100mL容量瓶中,加超纯水至刻度线, 混匀备用。
3、采用Angilent Infinity 1260Ⅱ高效液相色谱仪配合紫外检测器检测EDU标准品溶液,记录同一保留时间下的峰面积;色谱条件为:色谱柱采用十八烷基硅烷 键合硅胶柱(C18反相柱)AQ-C18 WeLch,其规格为4.6mm×250mm, 填料孔径/>粒径5μm,流动相为流动相A和流动相B体积比97:3的混合溶 液,所述流动相A为含0.1mM 1-庚烷磺酸钠、体积浓度0.04%三乙胺的水溶液并用 磷酸调pH至3,流动相B为乙腈(色谱级Fisher Chemical),进样前色谱柱先用 流动相150min,进样体积为20μL,流速为1mL/min,柱温为30℃,检测波长为 201nm,检测器为紫外检测器,洗脱方式为等度洗脱。以EDU的浓度y为纵坐标, 峰面积x为横坐标,根据标准品溶液的检测结果绘制标准曲线,得到标准曲线方程: y=0.039x+0.4939(见图1),R2=0.9995,线性关系良好。说明通过1-庚烷磺酸钠、三乙胺、磷酸等试剂延长了EDU在C18柱上的保留使其主峰达到合理的保留时间, 同时加强了EDU在色谱柱上的吸收,减弱了其他杂质对EDU的影响。检测限浓度 为重组类胶原蛋白海绵交联剂EDC杂质规定限值的0.44%时,信噪比为3.71,检 测限达到40ng/mL,即40ng/mL*20μL=800pg,色谱图见图2。
若将上述流动相换成含体积浓度0.1%的三氟乙酸的超纯水(流动相A)和含体 积浓度0.1%的三氟乙酸的乙腈(流动相B)体积比97:3的混合溶液(普通流动相), 结果显示其检测限值为微克级别,且其他成分对主峰影响较大,色谱图见图3。
取上述EDU储备液、放置7天的EDC水溶液、现配EDC水溶液,分别用超 纯水将其稀释成9.05μg/mL的溶液,按照上述方法进行检测。通过高效液相色谱图 4~6对比,EDU为最终产物。
4、按照步骤3的条件检测步骤1中样品溶液,其色谱图见图7。将峰面积代入 步骤3得到的标准曲线方程中计算出样品溶液中1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]碳 二亚胺盐酸盐的浓度,根据公式:EDC残留量=EDU浓度×样品溶液总体积/173×191/待测物质量×100%。结果显示,重组类胶原蛋白海绵中EDC的残留量小于0.02%, 即EDC的残留量小于9μg/mL。
为了证明本发明的有益效果,对本发明的方法进行重复性、稳定性、加标回收 率以及样品检测实验,具体实验如下:
1、重复性
称取重组类胶原蛋白海绵若干,按照上述实施例1的方法制备成样品溶液,进 样20μl,重复进样6次,按照实施例1的色谱条件进行检测,记录同一保留时间下 的峰面积,结果见表1。
表1重复性结果
名称 主峰保留时间 峰面积 峰高 拖尾因子 理论塔板数
样品溶液-1 7.299 166.147 18.872 1.14 17018.9
样品溶液-2 7.294 171.659 18.988 1.14 16743.1
样品溶液-3 7.285 170.430 19.181 1.14 16901.59
样品溶液-4 7.279 171.238 19.279 1.14 16946.11
样品溶液-5 7.274 175.433 19.549 1.18 16865.19
样品溶液-6 7.27 174.895 19.604 1.16 16865.65
标准偏差SD 0.011 3.37 0.294 -- --
算术平均值Xbar 7.284 171.633 19.246 -- --
相对标准偏差RSD(%) 0.16 1.96 1.53 -- --
以上数据证明所用高效液相色谱仪精密度良好。
2、稳定性
取样品溶液,将其在室温下放置0h、4h、24h、48h、96h,检测杨品液放置0h、 4h、24h、48h、96h的稳定性,精密吸取20μL的样品溶液,注入高效液相色谱仪 中,按照实施例1的色谱条件进行检测,记录同一保留时间下的峰面积,检测结果 见表2。
表2稳定性检测结果
名称 峰面积 峰高 理论塔板数
样品溶液0h 433.006 48.204 16803.10
样品溶液0h 430.951 48.074 16834.84
样品溶液4h 438.734 49.327 16947.52
样品溶液4h 432.476 49.332 16997.93
样品溶液24h 452.562 50.691 16908.13
样品溶液24h 455.001 50.762 16860.88
样品溶液48h 448.592 50.529 16651.98
样品溶液48h 446.718 50.537 16671.07
样品溶液96h 437.212 46.049 15683.01
样品溶液96h 438.526 46.251 15746.76
标准偏差SD 8.70 -- --
算术平均值Xbar 441.378 -- --
相对标准偏差RSD(%) 1.97 -- --
上述数据证明样品溶液在室温放置96h后,样品溶液的性质稳定,放置时间对 样品中EDU杂质在96h内没有影响,证明EDC转化为EDU的不可逆性。
3、加标回收率
称取重组类胶原蛋白海绵若干,按照上述实施例1的方法制备成供试品溶液; 精密称量EDU 0.2mg置于10mL容量瓶中,用超纯水定容至刻度线,混匀,作为对 照品溶液。取上述供试品溶液加入不同体积的对照品溶液,制备成加样回收的样品 溶液,按照实施例1的色谱条件进行检测。按照下述公式计算加样回收率:加样回 收率=回收率%=(C-A)/B*100%,式中A为供试品溶液所含被测成分量;B为加入 对照品的量;C为实测值。结果见表3。
表3加标回收率结果
注:对照品2.4-1中的2.4表示取20μg/mL的对照品溶液2.4mL,加水定容至10mL,混匀, -1代表平行样1。样+对2.4-1-1中的2.4代表取20μg/mL的对照品溶液2.4mL,加入供试品溶液 3mL,再定容至10mL,-1-1代表第1组样品的平行样1,样+对3.6-2-2中的3.6代表取20μg/mL 的对照品溶液3.6mL,加入供试品溶液3mL,再定容至10mL,-2-2代表第2组样品的平行样2. 其余代表的意思与上述相同。
由表3可见,当EDU含量在0.1%~1%之间时,回收率限度为90%~108%之 间,实际检测中高低浓度的回收率为95%,加样回收率良好。
4.样品检测
称取连续三批重组类胶原蛋白海绵样品,按照上述实施例1的方法制备成样品 溶液,并按照实施例1的色谱条件进行检测,记录同一保留时间下的峰面积,检测 结果见表4。
表4样品检测结果
名称 主峰保留时间 峰面积 峰高 拖尾因子 理论塔板数 含量%
15-1 7.114 145.555 16.780 1.18 16664.16 0.014%
15-2 7.113 144.908 16.760 1.19 16698.24 0.013%
15-3 7.111 144.621 16.737 1.18 16695.04 0.013%
29-1 7.108 124.032 14.490 1.15 16977.49 0.012%
29-2 7.106 125.145 14.527 1.16 16786.46 0.012%
29-3 7.103 123.961 14.508 1.15 16993.17 0.012%
05-1 7.099 202.664 23.514 1.20 16644.25 0.018%
05-2 7.096 202.349 23.568 1.18 16741.64 0.018%
05-3 7.093 203.013 23.609 1.20 16726.95 0.018%
注:表中15、29、05为三批样品,其后的-1、-2、-3代表每批样品做三个平行。
上述检测结果含量值均低于限定值,结果合格。
上述实施例仅为对重组类胶原蛋白海绵中交联剂EDC残留量检测方法,但不 限于重组类胶原蛋白海绵,对于其他物质中交联剂EDC的检测,本方法皆适用。

Claims (6)

1.一种残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于所述方法包括下述步骤:
(1)样品溶液的制备:取待测物加入超纯水中,于40~60℃浸提,使残留的1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐水解成1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲,然后用0.22μm水膜过滤,得到样品溶液;
(2)配制1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液;
(3)采用高效液相色谱法配合紫外检测器检测1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液,记录同一保留时间下的峰面积;色谱条件为:色谱柱采用C18反相柱,流动相为流动相A和流动相B体积比99:1~80:20的混合溶液,所述流动相A为含0.1mM 1-庚烷磺酸钠、体积浓度0.04%三乙胺的水溶液并用磷酸调pH至3,流动相B为乙腈,洗脱方式为等度洗脱;以1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲的浓度为纵坐标,峰面积为横坐标,根据标准品溶液的检测结果绘制标准曲线,得到标准曲线方程;
(4)按照步骤(3)的条件检测步骤(1)中样品溶液,代入步骤(3)得到的标准曲线方程中计算出样品溶液中1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲的浓度,根据公式:EDC残留量=EDU浓度×样品溶液总体积/173×191/待测物质量×100%,计算待测物中EDC残留量,所述EDC为1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐,EDU为1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲。
2.根据权利要求1所述的残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于:步骤(2)中,称取10mg 1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品,置于100mL容量瓶中,加超纯水至刻度线,摇晃使其充分溶解,得到100μg/mL的1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲储备液;将1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲储备液用超纯水分别稀释为3μg/mL、6μg/mL、12μg/mL、24μg/mL、48μg/mL的1-[3-(二甲氨基)丙基]-3-乙基脲标准品溶液。
3.根据权利要求1所述的残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于:步骤(3)中,所述C18反相柱为十八烷基硅烷键合硅胶柱AQ-C18 WeLch,其规格为4.6mm×250mm,填料孔径/>粒径5μm。
4.根据权利要求1所述的残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于:步骤(3)中,进样体积为10~20μL,流速为0.8~1.2mL/min,柱温为25~40℃,检测波长为200~210nm。
5.根据权利要求1所述的残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于:步骤(3)中,所述色谱柱进样前需用流动相平衡柱子120~150min。
6.根据权利要求1所述的残留1-乙基[3-(二甲氨基)-丙基]-碳二亚胺盐酸盐的高效液相色谱分析方法,其特征在于:步骤(3)中,所述流动相为流动相A和流动相B体积比97:3~95:5的混合溶液。
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