CN115287200B - 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法 - Google Patents

一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法 Download PDF

Info

Publication number
CN115287200B
CN115287200B CN202210999487.3A CN202210999487A CN115287200B CN 115287200 B CN115287200 B CN 115287200B CN 202210999487 A CN202210999487 A CN 202210999487A CN 115287200 B CN115287200 B CN 115287200B
Authority
CN
China
Prior art keywords
culture medium
screening
boletus
strain
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202210999487.3A
Other languages
English (en)
Other versions
CN115287200A (zh
Inventor
曹旸
刘霄
纪开萍
纪光燕
罗顺珍
刀明晶
纪光玉
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jinghong Hongzhen Agricultural Science And Technology Co ltd
Original Assignee
Jinghong Hongzhen Agricultural Science And Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jinghong Hongzhen Agricultural Science And Technology Co ltd filed Critical Jinghong Hongzhen Agricultural Science And Technology Co ltd
Priority to CN202210999487.3A priority Critical patent/CN115287200B/zh
Publication of CN115287200A publication Critical patent/CN115287200A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN115287200B publication Critical patent/CN115287200B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/36Adaptation or attenuation of cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明提供一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,该方法包括以下步骤:(1)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝接种至初筛培养基,所述初筛培养基为以木屑为唯一碳源的琼脂培养基;(2)将经所述初筛培养基培养后的菌丝转接于复筛培养基,所述复筛培养基为以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基;(3)筛选所需菌株。采用本方法能够快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株,提高诱变菌株筛选的效率。

Description

一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法
技术领域
本发明涉及食用菌菌种育种领域,具体而言,尤其涉及一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法。
背景技术
黑牛肝菌(Phlebopus portentosus)学名暗褐脉柄牛肝菌,又名暗褐网柄牛肝菌,隶属于牛肝菌目(Boletales),小牛肝菌科(Boletinellaceae),脉柄牛肝菌属(Phlebopus)。黑牛肝菌的人工驯化,从初期的实验室探索阶段,到工厂化栽培的发展阶段,取得了长足的进步。
目前由于黑牛肝菌人工驯化历史较短,真正能在生产中使用的菌株较少,且亲缘关系较近,这直接导致了在黑牛肝菌的菌种选育工作中所能使用的优良亲本较少,阻碍了优良菌株选育工作的开展。在过去的一系列研究中,人们已经发现黑牛肝菌具有利用木质纤维素中的木聚糖的能力,只是此能力较弱,则可以引入诱变育种方法,通过诱变手段提高菌株利用此能力,故而如何快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株成为亟需解决的难题。
发明内容
本发明鉴于解决上述技术问题,提供了一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,能够快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株,提高诱变菌株筛选的效率。
为达到上述目的,本发明主要提供如下技术方案:
一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,包括以下步骤:
(1)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝接种至初筛培养基,所述初筛培养基为以木屑为唯一碳源的琼脂培养基;
(2)将经所述初筛培养基培养后的菌丝转接于复筛培养基,所述复筛培养基为以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基;
(3)筛选所需菌株。
具体地,步骤(1)中,包括:
(a)制备以木屑为唯一碳源的琼脂培养基,作为初筛培养基;
(b)将上述培养基切块,并将每一小块翻转后置于无菌培养皿中,使其含木屑较多的一面朝上;
(c)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝块分别接种于步骤(b)中的培养基小块表面,28-30℃下避光培养。
具体地,步骤(2)中,包括:
(d)制备以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基,作为复筛培养基;
(e)经步骤(1)培养后,由初筛培养基上筛选出长势好、菌丝壮的菌落,挑取菌丝块转接于所述复筛培养基,28-30℃下避光培养。
具体地,步骤(2)中,还包括:测定由所述复筛培养基培养的菌落生长速度。
具体地,步骤(3)中,包括:
(f)经步骤(2)培养后,筛选出长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株,保存备用。
具体地,步骤(b)中,初筛培养基切块大小为(5-10)mm×(5-10)mm;
和/或,
步骤(c)中,挑取的菌丝块大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
具体地,步骤(e)中,挑取的菌丝块远离原接种点,大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
具体地,步骤(1)中,所述初筛培养基组分包括:木屑粉末20-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO4 1-2g,KH2PO4 1-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。
具体地,步骤(1)中,所述初筛培养基经115-121℃灭菌20-30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,所述初筛培养基厚度为5mm-10mm。
具体地,步骤(2)中,所述复筛培养基组分包括:木聚糖10-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO4 1-2g,KH2PO4 1-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。
具体地,步骤(1)中,所述黑牛肝菌诱变菌株是通过黑牛肝菌原生质体经诱变处理后,于再生培养基上进行再生培养得到的。
本发明实施例提供一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,黑牛肝菌诱变菌株的菌丝依次通过以木屑为唯一碳源的琼脂培养基、以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基进行培养,然后可以筛选出所需要的长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株。该黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法能够实现快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株,提高诱变菌株筛选的效率,节省人力物力,利用诱变育种方法,有效解决黑牛肝菌在生产中出现的木质纤维素利用率低、生物转化率低、抗污染能力弱、菌株退化等一系列问题。
具体实施方式
下面结合具体实施例来进一步描述本发明,本发明的优点和特点将会随着描述而更为清楚。但这些实施例仅是范例性的,并不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术人员应该理解的是,在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式进行修改或替换,但这些修改和替换均落入本发明的保护范围内。
所用试剂或仪器等,如无特殊说明,均为可以通过市购获得的常规产品。
实施例1
本发明实施例提供一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,包括以下步骤:
(1)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝接种至初筛培养基,所述初筛培养基为以木屑为唯一碳源的琼脂培养基;
(2)将经所述初筛培养基培养后的菌丝转接于复筛培养基,所述复筛培养基为以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基;
(3)筛选所需菌株。
其中,黑牛肝菌诱变菌株可以采用不同的诱变处理,如紫外诱变处理或者化学诱变处理等。
本发明实施例中,黑牛肝菌诱变菌株的菌丝依次通过以木屑为唯一碳源的琼脂培养基、以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基进行培养,然后可以筛选出所需要的长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株。该黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法能够实现快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株,提高诱变菌株筛选的效率,节省人力物力,利用诱变育种方法,有效解决黑牛肝菌在生产中出现的木质纤维素利用率低、生物转化率低、抗污染能力弱、菌株退化等一系列问题。
实施例2
本实施例示出了实施本发明的较优方法,但不限定其所有可能变型。
本发明实施例提供一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,包括以下步骤:
(a)制备以木屑为唯一碳源的琼脂培养基,作为初筛培养基。
较优的,初筛培养基组分包括:木屑粉末20-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO41-2g,KH2PO41-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。初筛培养基经115-121℃灭菌20-30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,初筛培养基厚度为5mm-10mm。
具体地,初筛培养基的制作方法为:发酵三个月的橡胶木木屑粉末30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO41g,KH2PO41g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(b)将上述培养基切块,并将每一小块翻转后置于无菌培养皿中,使其含木屑较多的一面朝上。
其中,培养基小块置于的无菌培养皿选用新的无菌培养皿。
较优的,初筛培养基切块大小为(5-10)mm×(5-10)mm。
具体地,初筛培养基切块大小可以为5×5mm。
(c)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝块分别接种于步骤(b)中的培养基小块表面,28-30℃下避光培养。
较优的,挑取的菌丝块大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
具体地,挑取的菌丝块大小可以为2×2mm。
(d)制备以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基,作为复筛培养基。
较优的,复筛培养基组分包括:木聚糖10-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO41-2g,KH2PO41-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。
具体地,复筛培养基组的制作方法为:木聚糖30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO41g,KH2PO41g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(e)经步骤(c)培养后,由初筛培养基上筛选出长势好、菌丝壮的菌落,挑取菌丝块转接于复筛培养基,28-30℃下避光培养,并测定其菌落生长速度。
较优的,挑取的菌丝块远离原接种点,大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
具体地,挑取的菌丝块远离原接种点,大小可以为2×2mm。
(f)经步骤(e)培养后,筛选出长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株,保存备用。
其中,黑牛肝菌诱变菌株可以是通过黑牛肝菌原生质体经诱变处理后,于再生培养基上进行再生培养得到的。
实施例3
本实施例示出了实施本发明的较优方法,但不限定其所有可能变型。
本发明实施例提供一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,包括以下步骤:
1、原生质体制备
将黑牛肝菌菌株YL1701-2接种于铺有玻璃纸的马铃薯琼脂固体培养基,30℃下避光培养10天,将菌丝体收集于试管中。以0.5mol/L蔗糖溶液配制1.5%(W:V)溶壁酶溶液,加入上述试管中对菌丝体进行酶解,29℃,酶解60min,收集上述酶解液,离心、洗涤2-3次后获得原生质体。
2、紫外诱变处理
将原生质体置于离紫外灯15cm处进行紫外诱变,照射时间60s。
3、再生
吸取100μl诱变后的原生质体悬液于再生培养基上,用涂布棒轻轻涂布均匀后于29℃恒温培养箱遮光培养。再生培养基配方为:土豆200g、蔗糖171.15g、酵母膏2g、酒石酸铵1g,MgSO4 1g,KH2PO4 1g、琼脂20g、水1L、PH自然,121℃灭菌30min。
4、筛选
筛选的步骤可采用实施例2中的具体实施方式:
(a)制备以木屑为唯一碳源的琼脂培养基,作为初筛培养基,初筛培养基的制作方法为:发酵三个月的橡胶木木屑粉末30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO41g,KH2PO41g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(b)将上述培养基切块,并将每一小块翻转后置于新的无菌培养皿中,使其含木屑较多的一面朝上,其中,初筛培养基切块大小为5×5mm。
(c)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝块分别接种于步骤(b)中的培养基小块表面,28-30℃下避光培养,其中,挑取的菌丝块大小为2×2mm。
(d)制备以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基,作为复筛培养基,复筛培养基组的制作方法为:木聚糖30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO41g,KH2PO41g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(e)经步骤(c)培养后,由初筛培养基上筛选出长势好、菌丝壮的菌落,挑取菌丝块转接于复筛培养基,28-30℃下避光培养,并测定其菌落生长速度。挑取的菌丝块远离原接种点,大小为2×2mm。
(f)经步骤(e)培养后,筛选出长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株,保存备用。
本实施例所获优良菌株性状如表1所示,对照组为未经诱变的菌株。
表1木聚糖培养基上优良菌株性状
编号 生长速度d/cm 菌丝长势 菌落颜色 菌落边缘
HZMJ01 0.251±0.012 黄色 整齐
HZMJ02 0.232±0.007 黄色 整齐
HZMJ03 0.196±0.006 黄色 整齐
对照组 0.157±0.017 褐色 不齐
实施例4
1、原生质体制备
将黑牛肝菌菌株YL1701-2接种于铺有玻璃纸的马铃薯琼脂固体培养基,30℃下避光培养10天,将菌丝体收集于试管中。以0.5mol/L蔗糖溶液配制1.5%(W:V)溶壁酶溶液,加入上述试管中对菌丝体进行酶解,29℃,酶解60min,收集上述酶解液,离心、洗涤2-3次后获得原生质体。
2、化学诱变处理
诱变剂:EMS原液、0.5%、1%、2%、3%EMS(用0.5mol/LPBS溶液稀释);
终止剂:5%硫代硫酸钠+0.5mol/L蔗糖溶液(细菌过滤器过滤灭菌);
取0.5ml纯化的原生质体悬液于1.5ml离心管,再加入100μl 1%的EMS诱变剂,震荡摇匀置于29℃恒温箱诱变30min。诱变结束后,向离心管内加入0.5ml 5%硫代硫酸钠+0.5mol/L蔗糖溶液的混合溶液作为终止剂,于离心机4℃、5400r/min离心10分钟,弃上清液,沉淀用0.5mol/L蔗糖溶液润洗2-3次即得到诱变后的原生质体。
3、再生
吸取100μl诱变后的原生质体悬液于再生培养基上,用涂布棒轻轻涂布均匀后于29℃恒温培养箱遮光培养。再生培养基配方为:土豆200g、蔗糖171.15g、酵母膏2g、酒石酸铵1g,MgSO4 1g,KH2PO4 1g、琼脂20g、水1L、PH自然,121℃灭菌30min。
4、筛选
筛选的步骤可采用实施例2中的具体实施方式:
(a)制备以木屑为唯一碳源的琼脂培养基,作为初筛培养基,初筛培养基的制作方法为:发酵三个月的橡胶木木屑粉末30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO41g,KH2PO4 1g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(b)将上述培养基切块,并将每一小块翻转后置于新的无菌培养皿中,使其含木屑较多的一面朝上,其中,初筛培养基切块大小为5×5mm。
(c)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝块分别接种于步骤(b)中的培养基小块表面,28-30℃下避光培养,其中,挑取的菌丝块大小为2×2mm。
(d)制备以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基,作为复筛培养基,复筛培养基组的制作方法为:木聚糖30g,酵母膏1g,酒石酸铵1g,MgSO4 1g,KH2PO4 1g,琼脂粉20g,加水定容至1L,经121℃灭菌30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,厚度5mm。
(e)经步骤(c)培养后,由初筛培养基上筛选出长势好、菌丝壮的菌落,挑取菌丝块转接于复筛培养基,28-30℃下避光培养,并测定其菌落生长速度。挑取的菌丝块远离原接种点,大小为2×2mm。
(f)经步骤(e)培养后,筛选出长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株,保存备用。
本实施例所获优良菌株性状如表2所示,对照组为未经诱变的菌株。
表2木聚糖培养基上优良菌株性状
编号 生长速度d/cm 菌丝长势 菌落颜色 菌落边缘
HZMJ04 0.235±0.008 黄色 整齐
HZMJ05 0.222±0.0011 黄色 整齐
HZMJ06 0.219±0.015 黄色 整齐
对照组 0.157±0.017 褐色 不齐
通过以上实施方式可以筛选出所需要的长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株。本发明实施例的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法能够实现快速地从黑牛肝菌诱变菌株中筛选到对栽培基质中木质纤维素利用率提升的菌株,提高诱变菌株筛选的效率,节省人力物力,利用诱变育种方法,有效解决黑牛肝菌在生产中出现的木质纤维素利用率低、生物转化率低、抗污染能力弱、菌株退化等一系列问题。
以上所述,仅为本发明的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,可轻易想到变化或替换,都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此,本发明的保护范围应以所述权利要求的保护范围为准。

Claims (10)

1.一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝接种至初筛培养基,所述初筛培养基为以木屑为唯一碳源的琼脂培养基;
(2)将经所述初筛培养基培养后的菌丝转接于复筛培养基,所述复筛培养基为以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基;
(3)经以上步骤用于筛选出长势好、菌丝壮、生长速度佳的菌株。
2.根据权利要求1所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(1)中,包括:
(a)制备以木屑为唯一碳源的琼脂培养基,作为初筛培养基;
(b)将上述培养基切块,并将每一小块翻转后置于无菌培养皿中,使其含木屑较多的一面朝上;
(c)将由黑牛肝菌诱变菌株的菌丝块分别接种于步骤(b)中的培养基小块表面,28-30℃下避光培养。
3.根据权利要求1所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(2)中,包括:
(d)制备以木聚糖为唯一碳源的琼脂培养基,作为复筛培养基;
(e)经步骤(1)培养后,由初筛培养基上筛选出长势好、菌丝壮的菌落,挑取菌丝块转接于所述复筛培养基,28-30℃下避光培养。
4.根据权利要求1所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(2)中,还包括:测定由所述复筛培养基培养的菌落生长速度。
5.根据权利要求2所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,
步骤(b)中,初筛培养基切块大小为(5-10)mm×(5-10)mm;
和/或,
步骤(c)中,挑取的菌丝块大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
6.根据权利要求3所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(e)中,挑取的菌丝块远离原接种点,大小为(2-3)mm×(2-3)mm。
7.根据权利要求1至6中任一项所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(1)中,所述初筛培养基组分包括:木屑粉末20-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO4 1-2g,KH2PO4 1-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。
8.根据权利要求1至6中任一项所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(1)中,所述初筛培养基经115-121℃灭菌20-30min后,未凝固前倒入无菌培养皿,所述初筛培养基厚度为5mm-10mm。
9.根据权利要求1至6中任一项所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(2)中,所述复筛培养基组分包括:木聚糖10-30g,酵母膏1-2g,酒石酸铵1-2g,MgSO4 1-2g,KH2PO4 1-2g,琼脂粉15-20g,加水定容至1L。
10.根据权利要求1至6中任一项所述的黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法,其特征在于,步骤(1)中,所述黑牛肝菌诱变菌株是通过黑牛肝菌原生质体经诱变处理后,于再生培养基上进行再生培养得到的。
CN202210999487.3A 2022-08-19 2022-08-19 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法 Active CN115287200B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210999487.3A CN115287200B (zh) 2022-08-19 2022-08-19 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210999487.3A CN115287200B (zh) 2022-08-19 2022-08-19 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN115287200A CN115287200A (zh) 2022-11-04
CN115287200B true CN115287200B (zh) 2023-05-12

Family

ID=83830148

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202210999487.3A Active CN115287200B (zh) 2022-08-19 2022-08-19 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN115287200B (zh)

Family Cites Families (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101491195B (zh) * 2009-03-05 2010-11-03 云南省热带作物科学研究所 暗褐网柄牛肝菌菌种的培养方法
ES2332031B2 (es) * 2009-06-02 2010-05-31 Universidad Politecnica De Madrid Procedimiento para la obtencion a gran escala de inoculo miceliar de basidiomicetos.
CN102511302A (zh) * 2011-11-10 2012-06-27 云南省热带作物科学研究所 一种暗褐网柄牛肝菌栽培菌棒
EP2844731B1 (en) * 2012-08-06 2018-01-31 Danisco US Inc. Fungal cells that produce decreased amounts of peptaibols
CN103864502A (zh) * 2012-12-10 2014-06-18 范喜才 一种牛肝菌培养基及培养方法
CN103283484B (zh) * 2013-05-09 2015-04-22 河北大学 利用柿木屑栽培猴头菌的方法
CN103210791B (zh) * 2013-05-09 2015-04-22 河北大学 利用柿木屑栽培金顶侧耳的方法
CN104126416B (zh) * 2014-08-21 2016-03-30 石泉 一种黑牛肝菌优良性状驯化方法
CN104472887A (zh) * 2014-12-29 2015-04-01 邳州市小河科技发展有限公司 一种益生菌饲料添加剂
CN107162753B (zh) * 2017-06-14 2020-08-11 东莞东阳光保健品研发有限公司 暗褐网柄牛肝菌的栽培培养基和方法
CN107337544A (zh) * 2017-08-23 2017-11-10 佛山推启农业研究院(普通合伙) 一种人工栽培华美牛肝菌的方法
CN109042063A (zh) * 2018-08-20 2018-12-21 周茂 一种栽培培养基、配制方法以及一种暗褐网柄牛肝菌工厂化菌袋栽培方法
CN110423694B (zh) * 2019-06-29 2021-12-07 景洪宏臻农业科技有限公司 一株人工驯化的黑牛肝菌菌株hz18006及其ssr标记指纹图谱
CN111304095B (zh) * 2020-03-10 2022-03-22 秦小波 牛肝菌菌丝可育培养基及其制备方法和应用纯化方法
CN113736666B (zh) * 2021-06-03 2022-08-23 景洪宏臻农业科技有限公司 一种黑牛肝菌菌株与应用
CN113348963B (zh) * 2021-06-07 2022-06-17 云南省热带作物科学研究所 一种中华腐生牛肝菌人工栽培方法
CN113564050A (zh) * 2021-06-08 2021-10-29 景洪宏臻农业科技有限公司 一种黑牛肝菌母种保藏方法与保藏培养基及其制备方法
CN114891642A (zh) * 2022-04-13 2022-08-12 宁德市农业科学研究所 一种黑牛肝菌菌种保存方法和保存培养基

Also Published As

Publication number Publication date
CN115287200A (zh) 2022-11-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN112021067B (zh) 一种通过金耳无性芽孢与毛韧革菌组合选育金耳新品种的方法
CN110468057B (zh) 一株植物内生盘双端毛孢属真菌m7sb 41及其应用
CN115710560B (zh) 一种有效防控苹果腐烂病的菌株组合及其应用
CN111876333B (zh) 一株高产多糖香菇菌株xg-3及其应用
CN116716211A (zh) 一种生防微白黄链霉菌及其应用
CN113444651B (zh) 一种西红花内生真菌及其在防治球茎腐烂病中的应用
CN110684763A (zh) 草菇孢子的诱变方法
CN115287200B (zh) 一种黑牛肝菌诱变菌株的快速筛选方法
CN111778174B (zh) 一种对柑橘砂皮病有抑制作用的枯草芽孢杆菌及其筛选方法
CN103468579B (zh) 一种对柑橘木虱具致病力的蜡蚧菌属真菌新种
CN111909877A (zh) 暹罗芽孢杆菌b11在预防和/或治疗板栗枝枯病中的应用
CN115029249B (zh) 一种拮抗马铃薯疮痂病病菌的真菌及其应用
Poonawala et al. Factors influencing bud break and rooting and mass-scale micropropagation of three Phragmites species: P. karka, P. communis and P. australis
CN106967612A (zh) 产五种稻曲病菌毒素的稻绿核菌及其获取方法
CN113046249B (zh) 一株蜡蚧轮枝菌ll-01及其生防应用
CN114214214B (zh) 一株灵芝菌株及其杂交育种方法
CN116083297A (zh) 一种防治草莓根腐病的微生物菌剂及其制备方法
CN111172093A (zh) 一种提高Esteya vermicola生长速度及抗逆性的培养基及其制备方法
JP3881935B2 (ja) エリンギ新菌株およびエリンギ新菌株の育種法
CN114958624B (zh) 一种黄孢原毛平革菌jx1及其筛选方法、应用
CN109699495A (zh) 一种提高金毛狗脊孢子萌发率的方法
CN114525223B (zh) 一种恶臭假单胞菌及其在降解马铃薯淀粉废水中应用
LU504644B1 (en) Fungal Treatment and Method for Improving Drought Resistance of Wheat at Seedling Stage
CN118086063A (zh) 一种灵芝高产β-葡聚糖的优良菌株培育方法及灵芝菌株和应用
CN112625917B (zh) 一株灰葡萄孢及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant