CN113755433A - 一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 - Google Patents
一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN113755433A CN113755433A CN202110907400.0A CN202110907400A CN113755433A CN 113755433 A CN113755433 A CN 113755433A CN 202110907400 A CN202110907400 A CN 202110907400A CN 113755433 A CN113755433 A CN 113755433A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- mesenchymal stem
- synovial
- culture
- suspension
- stem cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 210000002901 mesenchymal stem cell Anatomy 0.000 title claims abstract description 151
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 title claims abstract description 75
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 38
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 106
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 62
- 210000001258 synovial membrane Anatomy 0.000 claims abstract description 48
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 27
- 230000003321 amplification Effects 0.000 claims abstract description 18
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims abstract description 18
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 claims abstract description 18
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 claims abstract description 9
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 claims description 57
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 49
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 48
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 claims description 32
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 claims description 24
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 claims description 24
- 239000012879 subculture medium Substances 0.000 claims description 24
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 23
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 claims description 16
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 claims description 16
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 claims description 16
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 claims description 16
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 claims description 16
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 claims description 16
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 claims description 15
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 claims description 15
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 claims description 15
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims description 12
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 claims description 12
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 11
- 230000029087 digestion Effects 0.000 claims description 9
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 claims description 9
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 9
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 claims description 9
- KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N (2S,3S,4S,5R,6R)-6-[(2S,3R,4R,5S,6R)-3-Acetamido-2-[(2S,3S,4R,5R,6R)-6-[(2R,3R,4R,5S,6R)-3-acetamido-2,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-2-carboxy-4,5-dihydroxyoxan-3-yl]oxy-5-hydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-3,4,5-trihydroxyoxane-2-carboxylic acid Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O3)C(O)=O)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](C(O)=O)O1 KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N 0.000 claims description 8
- 238000012136 culture method Methods 0.000 claims description 8
- 229920002674 hyaluronan Polymers 0.000 claims description 8
- 229960003160 hyaluronic acid Drugs 0.000 claims description 8
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims description 8
- ZOIORXHNWRGPMV-UHFFFAOYSA-N acetic acid;zinc Chemical compound [Zn].CC(O)=O.CC(O)=O ZOIORXHNWRGPMV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 7
- 239000004246 zinc acetate Substances 0.000 claims description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 4
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 abstract description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 11
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 239000012228 culture supernatant Substances 0.000 description 2
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- 206010007710 Cartilage injury Diseases 0.000 description 1
- 108091006905 Human Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 102000008100 Human Serum Albumin Human genes 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 101710151387 Serine protease 1 Proteins 0.000 description 1
- 102100032491 Serine protease 1 Human genes 0.000 description 1
- 101710119665 Trypsin-1 Proteins 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 description 1
- 210000001789 adipocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 230000007910 cell fusion Effects 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000009816 chondrogenic differentiation Effects 0.000 description 1
- 230000001079 digestive effect Effects 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 210000000107 myocyte Anatomy 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000004088 simulation Methods 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0668—Mesenchymal stem cells from other natural sources
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/30—Organic components
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/10—Growth factors
- C12N2501/119—Other fibroblast growth factors, e.g. FGF-4, FGF-8, FGF-10
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/90—Polysaccharides
- C12N2501/905—Hyaluronic acid
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法,属于医学制造技术领域。它包括以下步骤:(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。涉及的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,工艺简单、易于制作,有利于提高滑膜间充质干细胞的悬浮稳定性。
Description
技术领域
本发明属于医学制造技术领域,具体地说,涉及一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法。
背景技术
间质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是指来源于间质组织,具有高度增殖和多向分化潜能的克隆细胞。大量研究证实,MSCs具有向脂肪细胞、成骨细胞、软骨细胞及肌细胞等的定向分化能力,在组织工程和再生医学等领域日益显现出广阔的应用前景。
同时由于其具有优越的成软骨分化潜能,被认为是软骨损伤修复最理想的种子细胞。但间质干细胞的相关研究较少,对其生物学特征及可能存在的作用知之甚少。目前,可利用小鼠的滑膜间充质干细胞进行模拟实验研究。例如中国发明专利,申请号:CN201810155580.X,公开号:CN108456655A,公开了一种间充质干细胞悬浮液及其制备方法与应用,其技术方案如下:“获取间充质干细胞原代细胞;间充质干细胞原代细胞的培养扩增:间充质干细胞原代细胞培养5-10天后换成无血清DMEM营养液,至细胞65~75%融合,移去培养上清液,然后添加第一消化液,消化0.5-2min,细胞收缩后加入所移去的培养上清液中和后进行离心分离,重新加入完全培养基重悬,按照1传1~1.5接种,培养4~5天后,细胞65~75%融合时以1:6~8的比例进行传代培养;及间充质干细胞悬浮液的制备:取间充质干细胞原代细胞的培养扩增中P4代细胞培养扩增48-96小时,且细胞融合不超过80%后,用第三消化液消化细胞并洗涤后用5%人白蛋白混悬,再加入生理盐水即可得到所需的间充质干细胞悬浮液”。但该专利并未对DMEM进行改良,致使保藏期短,细胞活性有限。
发明内容
1、要解决的问题
针对上述现有技术存在的问题,本发明提供一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法,工艺简单、易于制作,有利于提高滑膜间充质干细胞的悬浮稳定性。
2、技术方案
为解决上述问题,本发明采用如下的技术方案。
一种滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng,
乙酸锌 0.2mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
一种滑膜间充质干细胞的悬浮液,利用上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法制备得到。
3、有益效果
相比于现有技术,本发明的有益效果为:
本发明创新性引入改良的DMEM培养基,其中新的添加剂乙酸锌起到关键性作用,此外,透明质酸也起到一定的促进作用,与传统技术相比,改良的培养基可以有效促进滑膜间充质干细胞后续的悬浮稳定,降低死亡率。
附图说明
图1是实施例1中激光共聚焦的结果图;
图2是对比例1中激光共聚焦的结果图;
图3是对比例2中激光共聚焦的结果图;
图4是对比例3中激光共聚焦的结果图;
图5是对比例4中激光共聚焦的结果图;
图6是对比例5中激光共聚焦的结果图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进一步进行描述。
需要提醒的是,本申请研究的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,主要用于探究其干细胞的悬浮稳定性,并结合活-死细胞染色试剂盒等仪器检测干细胞活性。
实施例1
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng,
乙酸锌 0.2mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
对比例1
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng,
乙酸锌 0.2mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
对比例2
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng,
乙酸锌 0.2mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
对比例3
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
乙酸锌 0.2mg。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
对比例4
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
对比例5
本实施例的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱;
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理的温度为10℃。
上述所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法中,步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
实施例6
选择实施例1制备的悬浮液及对比例1-5制备的悬浮液,进行如下的测试:
将上述制备的悬浮液,放置在4℃冷藏一个月后,采用活-死细胞染色试剂盒(采购自武汉艾美捷科技有限公司)并结合激光共聚焦仪器进行观察悬浮液中干细胞的鉴定。
如图1所示,活细胞数量较多,少量死细胞,形态正常,细胞密度正常;
如图2所示,活细胞数量少于图1,死细胞数量多于图1,部分细胞形态出现畸变,整体上死细胞数量多于活细胞,细胞密度少于图1;
如图3所示,活细胞数量少于图2,死细胞数量多于图2,整体上死细胞数量远多于活细胞,部分细胞形态出现畸变,细胞密度少于图1;
如图4所示,活细胞数量最少,死细胞数量多于图3,整体上死细胞数量是活细胞数量5倍,细胞密度最小;
如图5所示,活细胞数量少于图3多于图4,死细胞数量多于图4少于图3,整体上死细胞数量是或细胞数量的2倍,细胞密度多于图4少于图3;
如图6所示,活细胞数量处于图4与图5之间,死细胞数量处于图4与图5之间,整体上死细胞数量与活细胞数量等同,细胞密度处于图4与图5之间。
以上内容是结合具体实施方式对本发明作进一步详细说明,不能认定本发明具体实施只局限于这些说明,对于本发明所属技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明的构思的前提下,还可以做出若干简单的推演或替换,都应当视为属于本发明所提交的权利要求书确定的保护范围。
Claims (10)
1.一种滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
包括以下步骤:
(1)预处理:取滑膜间充质干细胞的商品化包装细胞;
(2)培养:将步骤(1)中滑膜间充质干细胞进行扩增培养,并获取传代培养后的细胞;
(3)悬浮液的制备:将步骤(2)中传代培养后的细胞转移至处理液中处理,即得。
2.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(1)中所述的滑膜间充质干细胞为小鼠滑膜间充质干细胞,其货号为货号:CP-M236,并采购自武汉普诺赛生命科技有限公司。
3.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(2)中扩增培养的方法如下:
将步骤(1)中滑膜间充质干细胞作为原代细胞,进行第一次培养,接着换成改良的DMEM培养基进行第二次培养,随后加入质量分数为0.50%的胰蛋白酶进行消化处理,其中处理温度为37℃,然后4℃下离心处理,取沉淀的细胞,即可。
4.根据权利要求3所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(2)中第一次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、基础培养基、5d培养;
其中基础培养基为HG-DMEM培养基,并在其培养基中添加胎牛血清、青霉素及链霉素,其中胎牛血清的添加量为HG-DMEM培养基体积的10%,其中青霉素的添加量为100U/mL,其中链霉素的添加量为100U/mL。
5.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(2)中第二次培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱、改良的DMEM培养基、7d培养、细胞发生70%的融合现象;
其中改良的DMEM培养基的组分如下:
DMEM培养基 100mL,
重组成纤维生长因子FGF-4 100ng,
重组成纤维生长因子FGF-9 100ng,
乙酸锌 0.2mg。
6.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(2)中传代培养的方法如下:
将扩增培养后的细胞转移至传代培养基中以1:3进行传代培养,每3d更换一次传代培养基;其中传代培养基为DMEM培养基;其中传代培养的条件参数如下:
37℃、体积分数为5%的二氧化碳培养箱。
7.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(3)中处理液的组分如下:
生理盐水 100mL,
胰蛋白酶 1mg,
透明质酸 0.3mL。
8.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(3)中处理的温度为10℃。
9.根据权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法,其特征在于:
步骤(3)中处理后的保藏温度为4℃。
10.一种滑膜间充质干细胞的悬浮液,其特征在于:
利用权利要求1所述的滑膜间充质干细胞的悬浮液的制备方法制备得到。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110907400.0A CN113755433A (zh) | 2021-08-09 | 2021-08-09 | 一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110907400.0A CN113755433A (zh) | 2021-08-09 | 2021-08-09 | 一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN113755433A true CN113755433A (zh) | 2021-12-07 |
Family
ID=78788762
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202110907400.0A Pending CN113755433A (zh) | 2021-08-09 | 2021-08-09 | 一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN113755433A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN115418348A (zh) * | 2022-08-06 | 2022-12-02 | 北京永华燕芸生物科技有限公司 | 一种滑膜积液间充质干细胞的提取与培养方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102978156A (zh) * | 2012-11-13 | 2013-03-20 | 湖州市中心医院 | 一种骨髓间充质干细胞的体外扩增纯化培养方法及培养基 |
US20150086514A1 (en) * | 2012-11-14 | 2015-03-26 | Zaimei JIA | Mesenchymal stem cell injection and preparation method thereof, and application thereof in preparing diabetes drug |
CN105524878A (zh) * | 2016-01-21 | 2016-04-27 | 深圳市第二人民医院 | 一种人脐带间质干细胞分离并诱导为软骨细胞的培养方法 |
CN108456655A (zh) * | 2018-02-23 | 2018-08-28 | 深圳至博生物科技有限公司 | 间充质干细胞悬浮液及其制备方法与应用 |
-
2021
- 2021-08-09 CN CN202110907400.0A patent/CN113755433A/zh active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102978156A (zh) * | 2012-11-13 | 2013-03-20 | 湖州市中心医院 | 一种骨髓间充质干细胞的体外扩增纯化培养方法及培养基 |
US20150086514A1 (en) * | 2012-11-14 | 2015-03-26 | Zaimei JIA | Mesenchymal stem cell injection and preparation method thereof, and application thereof in preparing diabetes drug |
CN105524878A (zh) * | 2016-01-21 | 2016-04-27 | 深圳市第二人民医院 | 一种人脐带间质干细胞分离并诱导为软骨细胞的培养方法 |
CN108456655A (zh) * | 2018-02-23 | 2018-08-28 | 深圳至博生物科技有限公司 | 间充质干细胞悬浮液及其制备方法与应用 |
Non-Patent Citations (9)
Title |
---|
HIDEYA YOSHIMURA等: "《Comparison of rat mesenchymal stem cells derived from bone marrow, synovium, periosteum, adipose tissue, and muscle》", 《CELL TISSUE RES.》 * |
JI HYUN KIM等: "《Enhanced proliferation and chondrogenic differentiation of human synovium-derived stem cells expanded with basic fibroblast growth factor》", 《TISSUE ENG PART A.》 * |
MI-YOUNG MOON等: "《Zinc Promotes Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cell Proliferation and Differentiation towards a Neuronal Fate》", 《STEM CELLS INTERNATIONAL》 * |
SMITHA MATHEWS等: "《Glycosaminoglycans enhance osteoblast differentiation of bone marrow derived human mesenchymal stem cells》", 《JOURNAL OF TISSUE ENGINEERING AND REGENERATIVE MEDICINE》 * |
庞雪芬: "《透明质酸对脂肪干细胞增殖和分化的影响》", 《中山大学硕士学位论文》 * |
张正政等: "《滑膜间充质干细胞分离培养、免疫表型鉴定及在混合淋巴反应体系中的抑制效应》", 《中国组织工程研究》 * |
张正政等: "滑膜间充质干细胞分离培养、免疫表型鉴定及在混合淋巴反应体系中的抑制效应", 《中国组织工程研究》 * |
符培亮等: "滑膜间充质干细胞分离纯化后的生物学特性", 《中国组织工程研究》 * |
龚忠诚等: "滑膜间充质干细胞软骨分化能力的实验研究", 《新疆医科大学学报》 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN115418348A (zh) * | 2022-08-06 | 2022-12-02 | 北京永华燕芸生物科技有限公司 | 一种滑膜积液间充质干细胞的提取与培养方法 |
CN115418348B (zh) * | 2022-08-06 | 2024-05-31 | 北京永华燕芸生物科技有限公司 | 一种滑膜积液间充质干细胞的提取与培养方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN114317443B (zh) | 乳腺癌类器官培养液及其培养试剂组合和培养方法 | |
CN112048470B (zh) | 一种利用人诱导多能干细胞制备临床级别间充质干细胞制剂的方法 | |
US20220325247A1 (en) | METHOD FOR PROMOTING GROWTH OF PARIETAL DECIDUAL BASALIS-MESENCHYMAL STEM CELLS (PDB-MSCs) | |
CN110938590B (zh) | 一种间充质干细胞无血清培养基及其用途 | |
CN110179826B (zh) | 人脐带间充质干细胞来源干细胞因子微囊泡制剂及制备方法 | |
CN113564111B (zh) | 一种低氧培养脐带来源间充质干细胞的方法 | |
CN110564681A (zh) | 一种乳牙牙髓干细胞的分离培养和神经定向分化方法 | |
CN113755433A (zh) | 一种滑膜间充质干细胞的悬浮液及其制备方法 | |
CN111424011A (zh) | 一种能够维持脐带间充质干细胞细胞形态的三维培养方法 | |
CN112725270A (zh) | 一种人源骨髓间充质干细胞诱导培养基及诱导方法 | |
CN102925408A (zh) | 诱导的多潜能干细胞分化为软骨细胞的方法 | |
CN106834223B (zh) | 诱导脐带间充质干细胞向软骨细胞分化的方法 | |
CN112680408A (zh) | 一种诱导人间充质干细胞成软骨分化培养基及其制备方法 | |
CN112941017A (zh) | 一种诱导人间充质干细胞成脂分化培养基及其制备方法 | |
CN107164325B (zh) | MSCs来源的少突胶质细胞的制备方法及试剂盒 | |
CN111534482B (zh) | 脐带间充质干细胞成软骨分化、成软骨分化培养基 | |
CN115067318A (zh) | 一种牙髓间充质干细胞保存液及其应用 | |
CN106957814B (zh) | 一种羊膜间充质干细胞培养基和培养羊膜间充质干细胞的方法 | |
CN105368772A (zh) | 一种培养基质及其应用与培养牙髓干细胞的方法 | |
CN110468097B (zh) | 一种高效促进间充质干细胞成软骨分化的诱导体系及方法 | |
CN116536255B (zh) | 一种高效诱导肌肉干细胞的培养基及方法 | |
CN113717933B (zh) | Fgf7在制备干细胞扩增与表型维持试剂中的应用 | |
CN117187174B (zh) | 一种Muse细胞培养基以及一种脂肪Muse细胞的提取方法 | |
CN115369084A (zh) | 一种脂肪间充质干细胞培养基及其应用 | |
CN117568268A (zh) | 一种可在体外长期维持牙胚间充质细胞成牙命运的培养方法及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20211207 |