CN113072528B - 一种可逆检测亚硫酸氢根/甲醛的近红外比率荧光探针、制备方法与应用 - Google Patents

一种可逆检测亚硫酸氢根/甲醛的近红外比率荧光探针、制备方法与应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种高选择高灵敏的近红外亚硫酸氢根和甲醛可逆比率荧光探针。具体地,本发明的探针为一种香豆素类化合物,其可作为可逆比率的荧光探针用于亚硫酸氢根和甲醛的检测,可排除外部环境与仪器所带来的干扰。这类探针可实现如下的技术效果中的至少一个:高选择性地识别亚硫酸氢根和甲醛;可以快速对甲醛实现响应;可以实现对过亚硫酸氢根和过甲醛的高灵敏分析;可以实现对亚硫酸氢根和甲醛的定量分析;并且对于了解亚硫酸氢根和甲醛在生物体中的病理生理学方面的过程提供有力的工具。

Description

一种可逆检测亚硫酸氢根/甲醛的近红外比率荧光探针、制备 方法与应用
技术领域
本发明属于荧光探针领域,具体涉及一种基于香豆素类化合物的可逆检测亚硫酸氢根/甲醛的近红外比率荧光探针及其在测量、检测或筛选亚硫酸氢根/甲醛及活细胞荧光成像方法中的应用;本发明还提供了制备所述荧光探针的方法。
背景技术
在生命***中,甲醛作为最简单的活性羰基类物质中的一种,在维持碳循环代谢的过程中发挥着极其重要的作用。甲醛的内源性产生是酶***介导的正常生理过程,例如半氨基脲敏感性胺氧化酶,赖氨酸特异性去甲基酶、氨基敏感胺氧化酶等。生物体内甲醛的浓度水平与空间记忆和认知能力相关,然而,甲醛的异常积累可能会引起蛋白质和DNA损伤,进而引发多种疾病,低剂量的甲醛可引起慢性呼吸道疾病、妊娠综合症,引起新生儿体质降低、染色体异常,甚至引起鼻咽癌。高浓度的甲醛对神经***、免疫***、肝脏等都有毒害。除此之外,甲醛还有致畸、致癌作用。据报道,甲醛也自然地存在于人类细胞和不同的生物体中,在正常生理条件下,甲醛在细胞内以相对高的浓度存在,某些特定的细胞器内甲醛浓度最高可达0.5mM,而人体血液中甲醛的正常水平约为0.06-0.08mM。因此,鉴于甲醛的危害性和在生物***中的重要性,探寻一种能够灵敏检测甲醛的方法,以实现对生命体内甲醛的原位检测具有重要的意义。
另一方面,在生物体内,亚硫酸氢根和甲醛间存在微妙的平衡关系,用于维持内稳态。然而,由于缺乏实时监测亚硫酸氢根和甲醛潜在的相互作用的方法,无法得知两者之间动态变化的具体情况,导致复杂生物***中的亚硫酸氢根和甲醛的相互影响仍然是未知的。因此,开发强有力的化学工具来研究亚硫酸氢根和甲醛之间可能的动态变化是非常迫切的。在生命***中,这些分子工具对于亚硫酸氢根和甲醛在生物体中的作用和关系的病理生理学研究是极其重要的。
荧光探针由于其高灵敏度,高选择性,显著的时空分辨率和能够实时监测等优势,其作为一种非侵入性工具,被广泛应用于生物成像中分析物的测定。到目前为止,用于检测生物体中亚硫酸氢根和甲醛的可逆比率荧光探针相对缺乏,开发一种能够快速检测环境和活细胞中亚硫酸氢根和甲醛的新型高效荧光探针是有必要的。此外,能够可逆检测亚硫酸氢根/甲醛,并且选择性好、灵敏度高的比率荧光探针还相对较少。因此,在环境和生物***中开发一种高选择性、高灵敏、快速可逆检测亚硫酸氢根/甲醛的工具仍是至关重要的。
发明内容
鉴于此,本发明的目的是在于提供一类制备简单的快速高灵敏高选择性的可逆的比率的近红外亚硫酸氢根/甲醛荧光探针,以及它们的制备方法和用途,具有合成简单、选择性好、灵敏度高、响应迅速的特点,并且能够在生理水平条件下对亚硫酸氢根/甲醛进行有效测量、检测或筛选,尤其是其能够比色比率的对亚硫酸氢根/甲醛进行定性和定量分析。
具体而言,本发明提供了一种化合物,具有式(Ⅰ)所示的结构:
Figure BDA0003021066390000031
式(I)中,R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9,R10,R11和R12为独立地选自由氢原子、直链或支链烷基、直链或支链烷氧基、磺酸基、酯基和羧基组成的组;且其中的R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9,R10,R11和R12可以相同或不同。
在本发明的一些具体实施方案中,本发明的化合物是R1,R2,R3,R4,R5, R6,R7,R8和R9均为氢原子的式(I)化合物,其结构式如下:
Figure BDA0003021066390000032
本发明还提供了式(Ⅰ)化合物的制备方法,包括如下步骤:使式(III)化合物与(Ⅳ)化合物反应制备得式(I)化合物,其反应式如下:
Figure BDA0003021066390000033
式(Ⅰ)、(Ⅳ)和(Ⅲ)中:R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9, R10,R11和R12为独立地选自由氢原子、直链或支链烷基、直链或支链烷氧基、磺酸基、酯基和羧基组成的组;且其中的R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8, R9,R10,R11和R12可以相同或不同。
具体而言,将式(Ⅲ)化合物和式(Ⅳ)化合物溶解于乙酸中,然后加热回流,反应完成后,减压旋蒸去除溶剂得到粗产物。粗产品进一步通过色谱柱进行分离,可得到纯净的式(I)化合物。
在本发明的一些具体实施方案中,所述式(III)化合物与式(Ⅳ)化合物的摩尔比为1:1-5:1。
在本发明的一些具体实施方案中,所述反应时间为1-12小时。
本发明还提供了用于测量、检测或筛选亚硫酸氢根/甲醛的荧光探针组合物,其包含本发明的所述式(I)化合物。
在本发明的一些具体实施方案中,所述式(I)化合物具有以下结构:
Figure BDA0003021066390000041
在本发明的一些具体实施方案中,所述荧光探针组合物进一步包含溶剂、酸、碱、缓冲溶液或其组合。
本发明还提供了用于检测样品中亚硫酸氢根/甲醛的存在或测定样品中的亚硫酸氢根/甲醛含量的方法,其包括:
a)使所述式(I)或式(Ⅱ)化合物与样品接触以形成荧光变化的化合物;
b)测定所述荧光变化的化合物的荧光性质。
在本发明的一些具体实施方案中,所述样品是化学样品或生物样品。
在本发明的一些具体实施方案中,所述样品是包括水、血液、微生物或者动物细胞或组织在内的生物样品。
本发明还提供了检测样品中亚硫酸氢根/甲醛的存在或测定样品中的亚硫酸氢根/甲醛含量的试剂盒,其包含所述式(I)或式(II)化合物。
本发明还提供了所述式(I)或式(II)化合物在细胞荧光成像中的应用。
本发明相对于现有技术具有如下的显著优点及效果:
(1)可逆比率检测亚硫酸氢根/甲醛
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针能够同时有效的检测亚硫酸氢根/甲醛的含量,并且克服了传统荧光探针只能一次性检测使用的弊端,可用于亚硫酸氢根/甲醛的实时可逆检测;同时可以比率检测亚硫酸氢根/甲醛,有效减少背景干扰。
(2)比色检测亚硫酸氢根/甲醛荧光探针
本发明亚硫酸氢根/甲醛荧光探针能够比色检测亚硫酸氢根/甲醛,便于裸眼检测二氧化硫/甲醛,方便定性分析。
(3)选择性高,抗干扰能力强
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针可选择性的与亚硫酸氢根/甲醛发生特异性反应,生成荧光变化的产物,相较于常见的其他金属离子及生命体内的其他物质,本发明荧光探针显示出了较高的选择性,并且抗干扰能力强。
(4)灵敏度高,响应快速
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针与亚硫酸氢根/甲醛反应非常灵敏,并且响应快速,从而有利于对亚硫酸氢根/甲醛的检测。
(5)可生理水平条件下应用
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针可在生理水平条件下应用,并且,生物体内常见的金属离子和其他物质对其干扰较小,可以应用于活细胞荧光成像;除此之外,本发明的探针属于近红外荧光探针,应用于生物样品的分析中具有明显的优越性。
(6)稳定性好
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针的稳定性好,进而能够长期保存使用。
(7)合成简单
本发明的亚硫酸氢根/甲醛荧光探针合成简单,有利于商业化的推广应用。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1a是探针(5μM)加入亚硫酸氢根(50μM)后在515nm处的响应时间。
图1b是探针(5μM)加入亚硫酸氢根(50μM)后在788nm处的响应时间。
图2a是探针(5μM)加入亚硫酸氢根(50μM)反应后的溶液中加入甲醛(100 μM)后在515nm处的响应时间。
图2b是探针(5μM)加入亚硫酸氢根(50μM)反应后的溶液中加入甲醛(100 μM)后在788nm处的响应时间。
图3是荧光探针(5μM)交替加入亚硫酸氢根(10μM),甲醛(200μM),亚硫酸氢根(50μM),甲醛(300μM)后对应的紫外吸收光谱图。
图4是在荧光探针(5μM)溶液中循环(间隔时间为2分钟)加入亚硫酸氢根(10μM)和甲醛(200μM)后的溶液颜色变化图。
图5是在荧光探针(5μM)溶液中循环(间隔时间为2分钟)加入亚硫酸氢根(10μM)和甲醛(200μM)的过程中吸光度比值的变化图。
图6是荧光探针(5μM)和亚硫酸氢根(0-10μM)对应的荧光光谱变化图。
图7是荧光探针(5μM)加入不同浓度亚硫酸氢根(0-10μM)所测荧光强度比值(F515/F788 nm)与亚硫酸氢根浓度的线性关系图。
图8是荧光探针(5μM)与亚硫酸氢根反应后再加入甲醛(0-30μM)后对应的荧光光谱变化图。
图9是荧光探针(5μM)与亚硫酸氢根反应后再加入不同浓度甲醛(0-30μ M)后所测荧光强度比值(F788/F515 nm)与甲醛浓度的线性关系图。
图10是荧光探针(5μM)对不同分析物(除标记外,浓度均为100μM)的荧光响应;分析物分别为空白、K+、Ca2+、Na+、Mg2+、Zn2+、Fe3+、Fe2+、Cu2+、 NO3-、NO2-、F-、CO3 2-、Br-、Cys(500μM)、GSH(1mM)、H2S、1O2、·O2 -、·OtBu、·OH、TBHP、H2O2、NO、ONOO-、HOCl、HSO3 -(20μM)。柱状图代表的是不同分析物存在下探针在F515/F788 nm的荧光强度比值。
图11是荧光探针(5μM)和亚硫酸氢根(10μM)反应后的溶液对不同分析物(除标记外,浓度均为100μM)的荧光响应;分析物分别为空白、K+、Ca2+、 Na+、Mg2+、Zn2+、Cu2+、NO3 -、NO2 -、Cl-、F-、CO3 2-、Br-、Cys(500μM)、Hcy(500 μM)、GSH(1mM)、H2S、·O2 -、·OtBu、·OH、TBHP、H2O2、NO、ONOO-、Acetaldehyde (200μM)、FA(200μM)。柱状图代表的是不同分析物存在下探针在F788/F515 nm 的荧光强度比值。
图12是HeLa细胞中亚硫酸氢根和甲醛的荧光显微成像。
图13是HeLa细胞中内源性亚硫酸氢根和甲醛的荧光显微成像。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行、清楚完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,不应该用来限制本发明的保护范围。基于本发明中的实施例,本领域的普通技术人员在没有做出创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明的保护范围。
实施例1:式(II)化合物的合成
合成设计路线如下:
Figure BDA0003021066390000081
实施方案1:将式(Ⅲ)化合物(355mg,1mmol)和式(Ⅳ)化合物(245mg, 1mmol)溶解于乙酸(30ml)中,110℃条件下回流3h,反应完成后,减压蒸发去除溶剂得到粗产物;干燥后用柱色谱法纯化(CH2Cl2:CH3OH=60:1),得到深紫色固体326mg,产率为56%。
实施方案2:将式(Ⅲ)化合物(710mg,2mmol)和(Ⅳ)化合物(245mg, 1mmol)溶解于乙酸(30ml)中,110℃条件下回流3h,反应完成后,减压蒸发去除溶剂得到粗产物;干燥后用柱色谱法纯化(CH2Cl2:CH3OH=60:1),得到深紫色固体372mg,产率为64%。
实施方案3:将式(Ⅲ)化合物(1065mg,3mmol)和(Ⅳ)化合物(245mg, 1mmol)溶解于乙酸(30ml)中,110℃条件下回流3h,反应完成后,减压蒸发去除溶剂得到粗产物;干燥后用柱色谱法纯化(CH2Cl2:CH3OH=60:1),得到深紫色固体396mg,产率为68%。
实施方案4:将式(Ⅲ)化合物(1420mg,4mmol)和(Ⅳ)化合物(245mg, 1mmol)溶解于乙酸(30ml)中,110℃条件下回流3h,反应完成后,减压蒸发去除溶剂得到粗产物;干燥后用柱色谱法纯化(CH2Cl2:CH3OH=60:1),得到深紫色固体442mg,产率为76%。
实施方案5:将式(Ⅲ)化合物(1420mg,4mmol)和(Ⅳ)化合物(245mg, 1mmol)溶解于乙酸(30ml)中,110℃条件下回流1.5h,反应完成后,减压蒸发去除溶剂得到粗产物;干燥后用柱色谱法纯化(CH2Cl2:CH3OH=60:1),得到深紫色固体303mg,产率为52%。
实施例2:测试荧光探针对于亚硫酸钠的时间动力学
配制4mL的5μM荧光探针浓度测试体系,然后将50μM的亚硫酸氢根加入到测试体系中,摇匀后立即用荧光光谱仪测试其荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的。
测试结果分别如图1a和1b所示,30s左右,515nm处和788nm处的荧光强度值分别达到最大值和最小值并保持不变,这说明该探针与亚硫酸氢根反应迅速,能够为亚硫酸氢根的测定提供快速的分析方法。
实施例3:测试荧光探针与亚硫酸氢根反应后的溶液对于甲醛的时间动力学
荧光探针(5μM)和亚硫酸氢根(50μM)反应后的溶液中加入100μM的甲醛,摇晃均匀后立即用荧光光谱仪测试其荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的。
测试结果分别如图2a和2b所示,2min左右,515nm处和788nm处的荧光强度值分别达到最小值和最大值并保持不变,这说明探针对亚硫酸氢根和甲醛展现出可逆的快速响应。
实施例4:测试荧光探针与亚硫酸氢根/甲醛交替反应后紫外吸收光谱变化
配制两个4mL的测试体系(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH),标号为A和B,测试体系B作为对照组,不进行任何操作,在测试体系A中加入探针(5μM) 后,用紫外吸收光谱仪进行测定,然后先后加入亚硫酸氢根(10μM),甲醛(200 μM),亚硫酸氢根(50μM),甲醛(300μM),每次加入分析物都用紫外吸收光谱仪进行测定,测定结果如图3所示。
实施例5:测试荧光探针与亚硫酸氢根/甲醛交替过程中吸光度比值和颜色变化
配制一个4mL的探针(5μM)溶液加入到紫外比色皿中,每间隔2分钟循环加入亚硫酸氢根(10μM)和甲醛(200μM),进行5次可逆实验,溶液颜色均发生明显的变化,加入亚硫酸氢根之后变为黄色,加入甲醛之后又恢复为蓝色,颜色变化如图4所示,这表明可以通过该探针裸眼检测亚硫酸氢根和甲醛。
同时,在整个循环过程中,每当颜色变化时,用紫外吸收光谱仪测定吸光度比值的变化,上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的,测试结果图图5所示。
由图4和图5可以清楚地看到,当先后加入亚硫酸氢根和甲醛之后,探针溶液的吸光度发生明显的可逆变化,且探针溶液的颜色也发生可逆的变化,这说明该探针有潜力实时监测细胞样品中的亚硫酸氢根和甲醛。
实施例5:测试荧光探针对于亚硫酸氢根的浓度梯度
配置多个探针浓度为5μM的平行样品于10mL比色管中,然后将不同浓度的亚硫酸氢根加入到配置的测试体系中,摇晃均匀后静止1分钟。用荧光光谱仪测试其荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4, 10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的,测试结果如图6所示和图7所示。
从图6可以清晰的看出,探针与亚硫酸氢根反应后,在515nm处的荧光强度逐渐增强,而在788nm处的荧光强度逐渐减弱;并且,由图7可以看出,探针的荧光强度在515和788nm(F515/F788)的比值作与亚硫酸氢根浓度相关的函数,在亚硫酸氢根浓度范围为0-10μM时,荧光强度在515和788nm(F515/F788) 的比值呈良好的线性关系方程y=4.9008x-2.5472,R2=0.9912,其中y为反应溶液的荧光强度比值,x为亚硫酸氢根的浓度,结果表明探针对亚硫酸氢根的检测具有较好的灵敏性,能为检测生命体中亚硫酸氢根提供一种有效的工具。
实施例6:测试荧光探针和亚硫酸氢根反应后的溶液加入甲醛的浓度梯度
在探针与亚硫酸氢根反应后的比色管中加入不同浓度的甲醛,摇晃均匀后静置3分钟,用荧光光谱仪测试其荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液 (20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的,测试结果如图8和图9所示。
从图8可以清晰的看出,在与亚硫酸氢根反应后的探针溶液中加入甲醛之后,515nm处的荧光强度逐渐减弱,而788nm处的荧光强度逐渐增强;并且,由图9可以看出,探针的荧光强度在788和515nm(F788/F515)的比值作与甲醛浓度相关的函数,在甲醛浓度范围为0-10μM时,荧光强度在515和788nm (F515/F788)的比值呈良好的线性关系方程y=0.0004x+0.0036,R2=0.9979,其中y为反应溶液的荧光强度比值,x为甲醛的浓度,结果表明探针对亚硫酸氢根和甲醛的检测具有较好的灵敏性和可逆性,能为检测生命体中亚硫酸氢根和甲醛的实时监测提供一种有效的工具。
实施例7:测试荧光探针对亚硫酸氢根识别的选择性
配置多个探针浓度为5μM的平行样品于10mL比色管中,然后分别加入各种的分析物,摇匀,待1分钟后用荧光光谱仪测试各比色管中的荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的。
测试结果如图10所示,由图可以看出,只有亚硫酸氢根引起探针荧光强度的比值(F515/F788)发生显著的改变,而其他分析物对探针的影响几乎可以忽略不计。以上结果表明,该探针对亚硫酸氢根具有较高的选择性,即使是其他的高浓度分析物也不能引起该探针的荧光强度发生改变。探针的高选择性有利于其在细胞检测中的应用。
实施例8:测试荧光探针和亚硫酸氢根反应后的溶液对甲醛识别的选择性
配置多个探针浓度为5μM的平行样品于10mL比色管中,然后分别加入各种的分析物,摇匀,待5分钟后用荧光光谱仪测试各比色管中的荧光强度变化。上述测定是在PBS缓冲溶液(20mM PBS,pH 7.4,10%EtOH)中进行的,所使用的探针是实施例1中所制备的探针,且所有光谱测试都是在25℃下测得的。
测试结果如图11所示,由图11可以看出,只有甲醛可以使探针荧光强度的比值(F788/F515)发生显著的改变。以上结果表明,该探针对甲醛具有较高的选择性,可以将探针应用于甲醛可逆检测。
实施例9:荧光探针对Hela细胞中亚硫酸氢根和甲醛检测的荧光成像
a1-a2:细胞经探针(10μM)孵育30min;b1-b2:向a组细胞中添加亚硫酸氢根-(100μM)孵育30min;c1-c2:然后再向b组细胞中添加甲醛(200 μM)孵育30min;d:图像a-c所对应的绿色通道和红色通道荧光强度比值 (Fred/Fgreen)。
由于探针的低毒性的特点,可以将其长时间应用于探针的实时检测。首先,评估了探针在活细胞中成像外源性亚硫酸氢根和甲醛的能力。对于仅用探针孵育的对照细胞,在绿色通道中荧光信号较弱,红色通道荧光信号较强(图12 a1-a3 )。然后,用亚硫酸氢根继续处理上述的细胞,对其进行成像,发现在绿色通道中荧光信号增强,红色通道荧光信号降低(图12 b1-b3 ),说明其可以在细胞内比率成像细胞内的亚硫酸氢根。最后,再向其中加入甲醛,观察探针是否可以在细胞内可逆比率检测甲醛,发现其绿色通道中荧光信号减弱,红色通道荧光信号增强(图12 c1-c3 )。将激发光434nm对应的绿色通道的荧光强度值除以607nm对应红色通道处的荧光强度值(Fred/Fgreen)得到细胞的的比率图像(图12d)。比值成像结果表明探针可以在细胞内可逆比率检测亚硫酸氢根和甲醛,因此探针具有潜在的生物应用价值。
实施例10:荧光探针对Hela细胞中内源性亚硫酸氢根和甲醛检测的荧光成像
a1-a2:细胞经探针(10μM)孵育30min;b1-b2:向a组细胞中添加Cys (细胞内SO2产生的关键因子)(400μM)孵育30min;c1-c2:然后再向b 组细胞中添加Tet(甲醛的一种内源性来源)(400μM)孵育30min;d:图像a-c所对应的绿色通道和红色通道荧光强度比值(Fred/Fgreen)。
评估了探针在活细胞中成像内源性亚硫酸氢根和甲醛的能力。对于仅用探针孵育的对照细胞,在绿色通道中荧光信号较弱,红色通道荧光信号较强(图 13 a1-a3 )。然后,用Cys继续处理上述的细胞,然后对其进行成像,发现在绿色通道中荧光信号增强,红色通道荧光信号降低(图13 b1-b3 ),说明其可以在细胞内比率成像细胞内的内源性亚硫酸氢根。最后,再向其中加入Tet,发现其绿色通道中荧光信号减弱,红色通道荧光信号增强(图13 c1-c3 ),说明探针可以在细胞内可逆比率检测内源性甲醛。Fred/Fgreen得到细胞的内源性亚硫酸氢根和甲醛的比率图像(图13d),结果表明探针可以在细胞内可逆比率检测内源性亚硫酸氢根和甲醛。

Claims (3)

1.一种用于检测样品中亚硫酸氢根/甲醛的存在或测定样品中的亚硫酸氢根/甲醛含量的方法,其包括:
a)使式(Ⅰ)化合物与样品接触以形成荧光变化的化合物;
Figure FDA0003758381670000011
其中:R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9,R10,R11和R12为独立地选自由氢原子、直链或支链烷基、直链或支链烷氧基、磺酸基、酯基和羧基组成的组;且其中的R1,R2,R3,R4,R5,R6,R7,R8,R9,R10,R11和R12可以相同或不同;
b)测定所述荧光变化的化合物的荧光性质。
2.如权利要求1所述方法,所述样品是化学样品或生物样品。
3.权利要求1所述式(Ⅰ)化合物在用于检测、测量或筛选亚硫酸氢根/甲醛的细胞荧光成像中的应用。
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