CN112245454A - 一种细胞疤痕修复方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种细胞疤痕修复方法,包括如下步骤:S1:采用FUE技术提取一个毛囊单位;S2:在电子显微镜下将所述毛囊单位分离出完整的单株毛囊;S3:将提取分离的单株毛囊放入特制培养液培养备用,进行培育达到增强毛囊干细胞活性,促进其分化增殖;S4:从自体分离脂肪组织并从中脂肪间充质干细胞;S5:将获得的脂肪间充质干细胞置于第一培养皿中进行纯化和扩增同时在第一培养基内加入混合基;S6:待S5中脂肪间充质干细胞扩增至70‑90%后去除上清物,往第一培养皿中加入无酚红培养基,培养48‑96小时,收取培养液,将培养液离心后,取上清液得间充质干细胞培养液;S7:将S6中获取的间充质干细胞培养液置于第二培养皿内。

Description

一种细胞疤痕修复方法
技术领域
本发明涉及细胞疤痕修复技术领域,具体为一种细胞疤痕修复方法。
背景技术
由于烫伤、擦伤、皮肤溃烂和烧伤等原因,可能会导致皮肤的大范围伤害;皮肤的损伤容易造成细菌感染,体液流失并引起各种临床并发症;皮肤损伤修复之后可能会存在疤痕影响皮肤美观,目前市售存在多种伤口修复产品,但大多不同程度地存在着化学成分过多、见效慢、产品价格昂贵等诸多不足。
发明内容
本发明的目的在于提供一种细胞疤痕修复方法,以解决上述背景技术中提出的问题。
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:
一种细胞疤痕修复方法,包括如下步骤:
S1:采用FUE技术从自体上提取一个毛囊单位;
S2:在电子显微镜下将所述毛囊单位分离出完整的单株毛囊;
S3:将提取分离的单株毛囊放入特制培养液培养备用,进行培育达到增强毛囊干细胞活性,促进其分化增殖;
S4:从自体上分离脂肪组织并从脂肪组织中提取脂肪间充质干细胞同时从自体上获取表皮因子;
S5:将获得的脂肪间充质干细胞置于第一培养皿中进行纯化和扩增,同时在第一培养基内加入混合基;
S6:待S5中脂肪间充质干细胞扩增至70-90%后去除上清物,往第一培养皿中加入无酚红培养基,培养48-96小时,收取培养液,将培养液离心后,取上清液得间充质干细胞培养液;
S7:将S6中获取的间充质干细胞培养液置于第二培养皿内,待S5中的脂肪间充质干细胞浓度达到106-108mg/ml时,将脂肪间充质干细胞以及S3中的毛囊干细胞转移至第二培养皿内,同时向第二培养皿内加入细胞载体、表皮因子、维生素C和维生素E,混合形成干细胞注射物。
作为本发明一种优选的技术方案,所述步骤S2中,提取毛囊单位放在在电子显微镜下分离出单株毛囊,在放大2-10倍的状态下进行分离,并尽可能的保留了提取全部皮肤、皮肤附属器和毛囊干细胞的完备性。
作为本发明一种优选的技术方案,所述步骤S3中特制培养液的温度为0-4℃,培养时间60分钟以上,培养液的主要成分为10%的葡萄糖注射液、复方甘草酸苷注射液和***磷酸钠注射液。
作为本发明一种优选的技术方案,所述步骤S5中的混合培养基包括DMEM/F12培养基和胎牛血清。
作为本发明一种优选的技术方案,所述维生素C的质量浓度为5-50mg/ml;维生素E的质量浓度为5-50mg/ml。
作为本发明一种优选的技术方案,所述步骤S7中的细胞载体为自体血清、0.9%生理盐水或5%葡萄糖注射液。
作为本发明一种优选的技术方案,表皮细胞生长因子(EGF)的质量浓度为10~50ng/mL,优选为15~45ng/mL,更优选为20~40ng/mL。
作为本发明一种优选的技术方案,步骤S6中培养液的离心力优选为200~400g,更优选为250~350g,最优选为300~320g;所述培养液的离心时间优选为5~10min,更优选为6~9min,最优选为7~8min;离心后取得的培养液上清,优选过0.22um的滤膜。
与现有技术相比,本发明的有益效果是:本发明提供的细胞疤痕修复方法,通过毛囊体外培养技术,放入特殊培养液培养,进行培育提高毛囊干细胞存活率,毛囊干细胞具有多向分化潜能,它可以分化成表皮、毛囊、皮脂腺,参与皮肤创伤愈合的过程,进而达到改善疤痕血供和软化疤痕的作用。
本发明采用脂肪间充质干细胞培养液,获取简单,且免疫原性低,对人体无害,并且脂肪间充质干细胞在培养过程中会分泌活性物质到培养液中,配合维生素C、维生素E和表皮细胞生长因子,能够有效抑制疤痕处色素的沉积,滋养肌肤,促进细胞的新陈代谢,从而达到淡化疤痕,修复皮肤创面的功效。
具体实施方式
下面对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
具体的:本发明提供一种技术方案:一种细胞疤痕修复方法,包括如下步骤:
S1:采用FUE技术从自体上提取一个毛囊单位;
S2:在电子显微镜下将所述毛囊单位分离出完整的单株毛囊;
S3:将提取分离的单株毛囊放入特制培养液培养备用,进行培育达到增强毛囊干细胞活性,促进其分化增殖;
S4:从自体上分离脂肪组织并从脂肪组织中提取脂肪间充质干细胞同时从自体上获取表皮因子;
S5:将获得的脂肪间充质干细胞置于第一培养皿中进行纯化和扩增,同时在第一培养基内加入混合基;
S6:待S5中脂肪间充质干细胞扩增至70-90%后去除上清物,往第一培养皿中加入无酚红培养基,培养48-96小时,收取培养液,将培养液离心后,取上清液得间充质干细胞培养液;
S7:将S6中获取的间充质干细胞培养液置于第二培养皿内,待S5中的脂肪间充质干细胞浓度达到106-108mg/ml时,将脂肪间充质干细胞以及S3中的毛囊干细胞转移至第二培养皿内,同时向第二培养皿内加入细胞载体、表皮因子、维生素C和维生素E,混合形成干细胞注射物。
进一步的,所述步骤S2中,提取毛囊单位放在在电子显微镜下分离出单株毛囊,在放大2-10倍的状态下进行分离,并尽可能的保留了提取全部皮肤、皮肤附属器和毛囊干细胞的完备性。
进一步的,所述步骤S3中特制培养液的温度为0-4℃,培养时间60分钟以上,培养液的主要成分为10%的葡萄糖注射液、复方甘草酸苷注射液和***磷酸钠注射液。
进一步的,所述步骤S5中的混合培养基包括DMEM/F12培养基和胎牛血清。
进一步的,维生素C的质量浓度为5-50mg/ml;维生素E的质量浓度为5-50mg/ml;维生素C和维生素E可以抑制减少疤痕处色素的沉淀、滋养皮肤、促进细胞增殖代谢。
进一步的,所述步骤S7中的细胞载体为自体血清、0.9%生理盐水或5%葡萄糖注射液。
进一步的,所述维生素C和维生素E的质量浓度均为5~50mg/mL,优选为10~45mg/mL,更优选为15~40mg/mL,具体的,在本发明的实施例中,可以是5mg/mL,20mg/mL,或50mg/mL。
进一步的,表皮细胞生长因子(EGF)的质量浓度为10~50ng/mL,优选为15~45ng/mL,更优选为20~40ng/mL。
进一步的,步骤S6中培养液的离心力优选为200~400g,更优选为250~350g,最优选为300~320g;所述培养液的离心时间优选为5~10min,更优选为6~9min,最优选为7~8min;离心后取得的培养液上清,优选过0.22um的滤膜。
进一步的,招募存在痘疤的志愿者120人,随机分为6组,每组20人;对照组设有一组,实验组设有五组;对照组以生理盐水代替注射物,每天注射两针;实验组一以干细胞注射物(该注射物中脂肪间充质质量浓度为106mg/ml,干细胞培养了48小时)作为注射物,每天注射两针,连续注射一个月,对照组志愿者的痘疤并无改善,实验组存在6人痘疤完全消失即完全治愈,9人存在痘疤位置平整肤色自然即有明显效果,3人存在痘疤肉眼可辨的减轻即有效,2人与使用前无任何区别即无效;由上述实验数据可知,有效率为90%,治愈率为30%。
实验组二,以干细胞注射物(该注射物中脂肪间充质质量浓度为107mg/ml,干细胞培养了48小时)作为注射物,对照组以生理盐水代替注射物,同样每天注射两针,连续注射一个月,可以发现实验组存在8人痘疤完全消失即完全治愈,7人存在痘疤位置平整肤色自然即有明显效果,5人存在痘疤肉眼可辨的减轻即有效,0人与使用前无任何区别即无效;由上述实验数据可知,有效率为100%,治愈率为40%。
实验组三,以干细胞注射物(该注射物中脂肪间充质质量浓度为108mg/ml,干细胞培养了48小时)作为注射物,对照组以生理盐水代替注射物,同样每天注射两针,连续注射一个月,可以发现实验组存在9人痘疤完全消失即完全治愈,9人存在痘疤位置平整肤色自然即有明显效果,2人存在痘疤肉眼可辨的减轻即有效,0人与使用前无任何区别即无效;由上述实验数据可知,有效率为100%,治愈率为45%。
综上所述,由实验组1-3可知,在干细胞培养时间不变的情况下,干细胞浓度越高,该干细胞注射物的疤痕治愈率越高,即干细胞浓度最优选为108mg/ml。
实验组四,以干细胞注射物(该注射物中脂肪间充质质量浓度为106mg/ml,干细胞培养了72小时)作为注射物,对照组以生理盐水代替注射物,同样每天注射两针,连续注射一个月,可以发现实验组存在12人痘疤完全消失即完全治愈,8人存在痘疤位置平整肤色自然即有明显效果,0人存在痘疤肉眼可辨的减轻即有效,0人与使用前无任何区别即无效;由上述实验数据可知,有效率为100%,治愈率为60%。
实验组五,以干细胞注射物(该注射物中脂肪间充质质量浓度为106mg/ml,干细胞培养了96小时)作为注射物,对照组以生理盐水代替注射物,同样每天注射两针,连续注射一个月,可以发现实验组存在8人痘疤完全消失即完全治愈,6人存在痘疤位置平整肤色自然即有明显效果,4人存在痘疤肉眼可辨的减轻即有效,2人与使用前无任何区别即无效;由上述实验数据可知,有效率为90%,治愈率为40%。
综上所述,由实验组一、四和五可知,在干细胞浓度不变的情况下,脂肪间充质干细胞在无酚红培养基中的培养时间最优选为60~72小时,其余时间段为次优选。
在本发明中,本发明提供的细胞疤痕修复方法中,步骤简单明了易于操作,通过毛囊体外培养技术,放入特殊培养液培养,进行培育提高毛囊干细胞存活率,毛囊干细胞体外培养具有慢周期性、自我更新能力强、高增殖能力、多分化潜能等特性;根据所处环境不同,毛囊干细胞可分化为毛囊细胞、皮脂腺细胞、毛囊间表皮细胞等,这些细胞对于皮肤的重构和再生具有重要意义,因此可成功应用于疤痕的修复,治疗各种疤痕;毛囊干细胞具有多向分化潜能,它可以分化成表皮、毛囊、皮脂腺,参与皮肤创伤愈合的过程,进而达到改善疤痕血供和软化疤痕的作用。
本发明采用脂肪间充质干细胞培养液,获取简单,且免疫原性低,对人体无害,并且脂肪间充质干细胞在培养过程中会分泌活性物质到培养液中,配合维生素C、维生素E和表皮细胞生长因子,能够有效抑制疤痕处色素的沉积,滋养肌肤,促进细胞的新陈代谢,从而达到淡化疤痕,修复皮肤创面的功效。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

Claims (8)

1.一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:包括如下步骤:
S1:采用FUE技术从自体上提取一个毛囊单位;
S2:在电子显微镜下将所述毛囊单位分离出完整的单株毛囊;
S3:将提取分离的单株毛囊放入特制培养液培养备用,进行培育达到增强毛囊干细胞活性,促进其分化增殖;
S4:从自体上分离脂肪组织并从脂肪组织中提取脂肪间充质干细胞同时从自体上获取表皮因子;
S5:将获得的脂肪间充质干细胞置于第一培养皿中进行纯化和扩增,同时在第一培养基内加入混合基;
S6:待S5中脂肪间充质干细胞扩增至70-90%后去除上清物,往第一培养皿中加入无酚红培养基,培养48-96小时,收取培养液,将培养液离心后,取上清液得间充质干细胞培养液;
S7:将S6中获取的间充质干细胞培养液置于第二培养皿内,待S5中的脂肪间充质干细胞浓度达到106-108mg/ml时,将脂肪间充质干细胞以及S3中的毛囊干细胞转移至第二培养皿内,同时向第二培养皿内加入细胞载体、表皮因子、维生素C和维生素E,混合形成干细胞注射物。
2.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:所述步骤S2中,提取毛囊单位放在在电子显微镜下分离出单株毛囊,在放大2-10倍的状态下进行分离,并尽可能的保留了提取全部皮肤、皮肤附属器和毛囊干细胞的完备性。
3.根据权利要求2所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:所述步骤S3中特制培养液的温度为0-4℃,培养时间60分钟以上,培养液的主要成分为10%的葡萄糖注射液、复方甘草酸苷注射液和***磷酸钠注射液。
4.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:所述步骤S5中的混合培养基包括DMEM/F12培养基和胎牛血清。
5.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:所述维生素C的质量浓度为5-50mg/ml;维生素E的质量浓度为5-50mg/ml。
6.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:所述步骤S7中的细胞载体为自体血清、0.9%生理盐水或5%葡萄糖注射液。
7.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:表皮细胞生长因子的质量浓度为10~50ng/mL,优选为15~45ng/mL,更优选为20~40ng/mL。
8.根据权利要求1所述的一种细胞疤痕修复方法,其特征在于:步骤S6中培养液的离心力优选为200~400g,更优选为250~350g,最优选为300~320g;所述培养液的离心时间优选为5~10min,更优选为6~9min,最优选为7~8min;离心后取得的培养液上清,优选过0.22um的滤膜。
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