CN111187764A - 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用 - Google Patents

一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN111187764A
CN111187764A CN202010100245.7A CN202010100245A CN111187764A CN 111187764 A CN111187764 A CN 111187764A CN 202010100245 A CN202010100245 A CN 202010100245A CN 111187764 A CN111187764 A CN 111187764A
Authority
CN
China
Prior art keywords
csn5
chitosanase
ala
gene
arg
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202010100245.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN111187764B (zh
Inventor
孙慧慧
杨国淞
刘淇
毛相朝
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Qingdao Haishidai Bioengineering Co ltd
Original Assignee
Yellow Sea Fisheries Research Institute Chinese Academy of Fishery Sciences
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yellow Sea Fisheries Research Institute Chinese Academy of Fishery Sciences filed Critical Yellow Sea Fisheries Research Institute Chinese Academy of Fishery Sciences
Priority to CN202010100245.7A priority Critical patent/CN111187764B/zh
Publication of CN111187764A publication Critical patent/CN111187764A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN111187764B publication Critical patent/CN111187764B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/14Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及一种壳聚糖酶CSN5及其编码基因和应用,属于生物工程技术领域,本发明提供了壳聚糖酶CSN5氨基酸序列和编码所述酶的核苷酸序列及其应用、含有所述基因的重组质粒CSN5/pET‑28a、含有该重组质粒的基因工程菌株以及该基因工程菌株的应用。本发明的壳聚糖酶CSN5具有优良的酶学特性:最适温度为30℃,在20‑40℃具有较高活性;最适pH为7,在pH 6‑7的条件下酶活较高,可以保持60%以上的活性。其反应条件温和,在酶法制备壳寡糖中具有很好的工业应用前景。

Description

一种深海来源的壳聚糖酶CSN5及其编码基因和应用
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种深海淤泥来源的壳聚糖酶CSN5及其编码基因和应用。
背景技术
壳聚糖是由自然界中广泛存在的甲壳素脱乙酰化后的产物,大量的研究表明壳聚糖在化工、医药、食品和农业等领域都有广泛的应用。相较于壳聚糖,其降解产物壳寡糖分子量小,可溶于水,具有优越的生物活性,非常容易被人体吸收,也是目前发现的自然界中唯一带正电荷的碱性寡糖,极具开发价值。
目前,降解壳聚糖制备壳寡糖的方法主要有酶降解法、物理和化学降解法。酶降解法因反应过程更易控制。反应条件温和、专一性强、产物相对均一安全性高、环境污染少等优势而广受关注。壳聚糖酶可以催化水解壳聚糖的β-1,4-糖苷键,是专一性水解壳聚糖的酶,广泛分布于细菌、真菌、病毒以及植物等生物群中,在降解壳聚糖多聚物、制备壳寡糖中发挥着重要作用。因此需要不断尝试新的方法来获取具有优异性质的新型壳聚糖酶以满足日益增长的需求。
各种环境中的微生物是新酶和生物活性分子的重要来源,但在微生物多样化的地球中,采用可培养技术能获得的微生物不足1%,这已成为微生物资源开发利用的一个限制性因素。与之相反,占大多数的不可培养微生物(>99%),代表着生物技术开发应用的巨大基因库。宏基因组学,作为一种不依赖于培养的技术,通过提取特定环境中的所有微生物基因组DNA、构建基因组文库,从文库中筛选和发现新的功能基因。宏基因组学的方法已被成功用于多种工业酶类的开发,它避开了微生物分离培养的过程,因此,利用宏基因组学的方法开发挖掘新型壳聚糖酶资源具有广阔的发展前景。
发明内容
本发明要解决的技术问题在于提供一种壳聚糖酶CSN5及其编码基因和应用,所述壳聚糖酶基因csn5来源于深海淤泥宏基因组。
本发明是通过如下技术方案来实现的:
一种壳聚糖酶CSN5,其氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。
本发明还提供编码所述壳聚糖酶CSN5的基因csn5,其核苷酸序列如SEQ ID No:2所示。
本发明的另一个目的在于提供一种重组质粒csn5/pET-28a,所述重组质粒csn5/pET-28a含有上述壳聚糖酶CSN5的基因csn5。
本发明还提供含有所述重组质粒csn5/pET-28a的基因工程菌株。
进一步,所述的重组质粒csn5/pET-28a表达载体优选为pET28a。
进一步,所述的基因工程菌株由所述的重组质粒csn5/pET-28a转化大肠杆菌E.coli BL21(DE3)获得。
本发明还提供上述壳聚糖酶CSN5用于催化壳聚糖生产壳寡糖的应用。
本发明还提供上述基因工程菌株用于催化壳聚糖生产壳寡糖的应用。
本发明与现有技术相比的有益效果:
本发明从深海淤泥中提取了壳聚糖酶基因csn5,其编码的壳聚糖酶CSN5的氨基酸序列与GenBank中Geobacteraceae bacterium来源的肽聚糖结合蛋白具有最高的相似性,为60%。本发明同时构建了该壳聚糖酶CSN5的基因csn5的重组质粒csn5/pET-28a及基因工程菌株,所产生的壳聚糖酶CSN5具有优良的酶学特性:最适温度为30℃,在20-40℃具有较高活性;最适pH为7,在pH 6-7的条件下酶活较高,可以保持60%以上的活性。其反应条件温和,在酶法制备壳寡糖中具有很好的工业应用前景。
附图说明
图1:壳聚糖酶CSN5纯酶SDS-PAGE电泳图,M为Marker。
图2:温度对纯化的壳聚糖酶CSN5酶活力的影响。
图3:pH对纯化的壳聚糖酶CSN5酶活力的影响。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步说明。应理解,以下实施例仅用于说明本发明而非用于限制本发明的范围。基于本发明中的实施例,本领域的技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的其他实施例,也属于本发明的保护范围。
本发明提供了一种壳聚糖酶CSN5,编码该壳聚糖酶CSN5的基因CSN5及其应用、含有该基因的重组质粒CSN5/pET-28a、含有该重组质粒的基因工程菌株以及该基因工程菌株的应用。
实施例1、来源于深海淤泥壳聚糖酶CSN5编码基因的获取
本发明的壳聚糖酶CSN5编码基因的获取方法包括如下步骤:
(1)、构建深海淤泥宏基因组文库
构建宏基因组文库的样品来自深海淤泥,按照Meta-G-NomeTM DNA Isolation Kit(Epicentre)说明书提取并纯化宏基因组样品DNA。
取适量纯化的DNA,载体采用CopyControlTM Fosmid Library Production Kitwith pCC1FOSTM Vector(Epicentre),与其连接后将连接液转入EPI300TM-T1R E.coli宿主菌中。然后涂布在平板上(含12.5mg/L氯霉素),37℃过夜培养后用无菌LB洗下平板上的菌落,加甘油(20%,v/v)保存于-80℃。
(2)筛选壳聚糖酶的阳性克隆
将保存的菌液按照适当的稀释倍数涂布在含壳聚糖(0.1%)的培养基上(含12.5mg/L氯霉素),37℃恒温培养24-48h后,观察菌落周围培养基变化,挑取能形成清晰透明圈的菌株,并重复划线进行活性确认,将获得的阳性菌株命名为1-CSN5。
(3)构建亚克隆文库及筛选阳性亚克隆
依据碱裂解法提取筛选到的阳性克隆1-CSN5的质粒,并用限制性内切酶Sau3AI将其片段化,采用琼脂糖电泳分离,并将大小为2-5kb的DNA片段切胶回收。然后与用限制性内切酶BamHI酶切后的质粒pBluescript II SK(+)片段连接并转入大肠杆菌DH5α中,构建亚克隆文库,筛选方法与如上所述一致,观察菌落周围的透明圈进行挑选,并经划线重复确认,将获得等阳性亚克隆菌株命名为2-CSN5。
(4)基因测序及壳聚糖酶CSN5的基因序列分析
将筛选得到的阳性亚克隆菌株CSN5进行测序,并将测序结果利用NCBI/ORFFinder进行在线分析,得到一个全长为1116bp的完整开放阅读框,将其命名为csn5,其详细序列如SEQ ID NO:2所示。编码蛋白长度为371个氨基酸残基,其氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。将该氨基酸序列在GenBank中进行同源搜索,与之相似性最高为62%的是一个来源于Blastocatellia bacterium的假设蛋白。
(5)壳聚糖酶CSN5基因的克隆及重组表达
根据序列分析结果,设计带有酶切位点的引物扩增壳聚糖酶CSN5全基因,引物序列如下:
CSN5BF:5'cgcggatccatggggtttagctca 3'(下划线部分为BamHI酶切位点);
CSN5SR:5'cgagctctcatatcgtctccttta 3'(下划线部分为SacI酶切位点)。
利用上述引物,将壳聚糖酶CSN5的基因进行PCR扩增,然后将产物用限制性内切酶BamHI和SacI进行双酶切,酶切产物经纯化后与经相同双酶切过的原核表达载体pET-28a(+)连接,获得含有基因csn5的重组表达质粒CSN5/pET-28a,然后将该质粒转入大肠杆菌DH5α中,挑取转化子进行测序验证。
测序结果显示重组质粒***的片段序列与SEQ ID NO:2所述核酸序列完全一致,获得重组大肠杆菌菌株CSN5/BL21(DE3)。
实施例2、重组壳聚糖酶CSN5的表达及纯化
按常规方法将实施例1中的重组质粒CSN5/pET-28a转化至大肠杆菌E.coli BL21(DE3),获得生产壳聚糖酶CSN5的基因工程菌株。
将上述基因工程菌株CSN5/BL21(DE3)接入LB培养基中,37℃恒温培养至OD600达到0.6-0.8时,加入IPTG进行诱导(终浓度为0.1mmol/L),然后在20℃条件下继续培养20h。离心收集菌体(6000*g,10min),并用生理盐水将菌体洗涤两次后再加入NPI-0缓冲液(50mMNa2HPO4,0.3M NaCl,pH8.0),制成悬浮液。利用超声破碎,在冰水浴中进行菌体破碎(功率200~400W,工作3s,间隙5s,超声15min)。超声结束后离心收集上清(10000*g,25min),此即为壳聚糖酶CSN5的粗酶液。
采用Ni亲和层析柱法纯化重组壳聚糖酶CSN5,将所得的壳聚糖酶CSN5粗酶液用0.25μm膜过滤后以1mL/min的流速上样至预先用NPI-0平衡过的Ni-NTA柱(1mL,Qiagen)上。然后依次用NPI-10(50mM Na2HPO4,0.3M NaCl,10mM咪唑,pH8)和NPI-200(50mM Na2HPO4,0.3M NaCl,200mM咪唑,pH8)洗脱杂蛋白和目的蛋白,并将所获得的含有目的蛋白的洗脱液通过超滤法进行脱盐浓缩,得到纯化的壳聚糖酶CSN5,上述所有步骤均在4℃下进行。经SDS-PAGE电泳检测蛋白纯度,结果如图1所示,得到电泳纯的壳聚糖酶CSN5,分子量约为40kDa。
实施例3、重组壳聚糖酶CSN5的酶学性质检测
(1)纯化的壳聚糖酶CSN5的活性分析
活性测定的方法采用DNS法测量还原糖产物的量来进行,具体操作如下:将含有磷酸钠缓冲液(50mM,pH 7),胶体壳聚糖(1%,w/v;85%DDA)和适量的壳聚糖酶的反应混合物在30℃下孵育20min,然后将反应液在沸水中淬灭10min。以GlcN为标准物,通过测量OD520确定上清液中还原糖的量。一个单位(U)的壳聚糖酶活性定义为在上述测定条件下每分钟释放1μmol还原糖的酶的量。所有实验均一式三份进行,并将其平均值和标准偏差值用于分析。测得的壳聚糖酶CSN5的活性为1.8U/mg。
(2)温度对纯化的壳聚糖酶CSN5酶活力的影响
将所得的壳聚糖酶CSN5用磷酸钠缓冲液稀释(100mM,pH3.5),然后分别在20-60℃下进行酶促反应。以酶活力的最高值作为100%,结果如图2所示。结果显示纯化的壳聚糖酶CSN5的最适温度为30℃,在20-40℃具有较高活性。
(3)pH对纯化的壳聚糖酶CSN5酶活力的影响
将所得的壳聚糖酶CSN5纯酶分别用100mM,pH为4-8的缓冲液稀释(柠檬酸盐缓冲液,pH 4-6;磷酸盐缓冲液,pH 6-8),然后在30℃条件下进行酶促反应。以酶活力的最高值作为100%,结果如图3所示。结果表明重组壳聚糖酶CSN5的最适pH为7,在pH 6-7的条件下酶活较高,可以保持60%以上的活性。
SEQ ID NO:1
MGFSSSEIAAAAAIVRVFETGTPAGNYSEVAVLNDGAGISYGISQFTHRSGSL AEVVSRYLASGGVAGRDVFASRLPMLRDRSATAIAKLTADRDFRRALAAAGHAREMREVQEAVAFERYMLPAIRACEGSGFRLPLSLAVIYDSMTHGSYNKIRDRVRVSPAGKGDFEKSWITAYVRERDAWLGSIPRLRSTRYRTRFFKSRIAAGRWGLELPINVHGALITNEILGISPDASGKSGTAAGPNHPPQTMQNEAPQTPTTQPAENPQARPPVSANEVLGRVERGFERAAESFDRVERIGLGAANRTDRAKSLWATVAGTVWQTLWAAVGLLAGLPREVWLVVAVIAAVFTLAYLYRQITLGRLRELKETI
SEQ ID NO:2
atggggtttagctcatcggagatcgccgcggcggccgcgatcgtccgcgtgtttgagacgggcacgccggcgggcaactacagcgaggtcgcggtgctgaacgacggagccggaatttcatacggcatttcgcagttcacccatcgctcgggttcgctggctgaggtcgtttcgcgttacctcgcgagcggcggcgtcgcgggccgagatgtgttcgcatcgcggctgccgatgcttcgggatcgctcggcaacggccatcgcaaagctcacggcggatcgcgactttcgccgagcacttgccgctgcgggccacgcccgcgagatgcgcgaggtgcaggaggcggtcgcctttgagcggtatatgctcccggcgatccgtgcgtgcgagggctcgggctttcggctgccgctctcgctggccgtcatttacgactcgatgacacacggttcttacaacaagatccgcgaccgcgtgcgggtctcgcctgcaggcaagggcgactttgaaaagagctggatcacggcatacgtccgcgagcgggacgcctggctcggttcgatcccgcggctgcgttcgacgcgatatcggacgcgctttttcaagagccgcatcgcggccgggcgttggggcctcgagcttccgatcaacgttcacggcgctctcattacaaacgaaattcttggcatctcgccggacgcatccggcaagagcggaacggcggccgggccgaaccacccgccacaaacaatgcagaacgaagcacctcaaacacccaccacacaacccgccgaaaaccctcaggcccggccgcctgtttcggcaaatgaggtgctcggccgcgttgagcggggctttgaacgtgcggcggaaagctttgaccgcgtggagcgcatcgggctcggggcggcgaaccgcaccgaccgggcgaagtcgctatgggcaacggtcgcgggcacggtttggcaaacgctttgggcggcggtcggccttctcgccggattgccgcgagaggtctggctggtcgtggcggtcatcgccgccgtcttcacactcgcctatctttaccgccagatcacgctcgggcggctgcgggaactaaaggagacgatatga。
序列表
<110> 中国水产科学研究院黄海水产研究所
<120> 一种深海来源的壳聚糖酶CSN5及其编码基因和应用
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 371
<212> PRT
<213> 壳聚糖酶CSN5(1-CSN5)
<400> 1
Met Gly Phe Ser Ser Ser Glu Ile Ala Ala Ala Ala Ala Ile Val Arg
1 5 10 15
Val Phe Glu Thr Gly Thr Pro Ala Gly Asn Tyr Ser Glu Val Ala Val
20 25 30
Leu Asn Asp Gly Ala Gly Ile Ser Tyr Gly Ile Ser Gln Phe Thr His
35 40 45
Arg Ser Gly Ser Leu Ala Glu Val Val Ser Arg Tyr Leu Ala Ser Gly
50 55 60
Gly Val Ala Gly Arg Asp Val Phe Ala Ser Arg Leu Pro Met Leu Arg
65 70 75 80
Asp Arg Ser Ala Thr Ala Ile Ala Lys Leu Thr Ala Asp Arg Asp Phe
85 90 95
Arg Arg Ala Leu Ala Ala Ala Gly His Ala Arg Glu Met Arg Glu Val
100 105 110
Gln Glu Ala Val Ala Phe Glu Arg Tyr Met Leu Pro Ala Ile Arg Ala
115 120 125
Cys Glu Gly Ser Gly Phe Arg Leu Pro Leu Ser Leu Ala Val Ile Tyr
130 135 140
Asp Ser Met Thr His Gly Ser Tyr Asn Lys Ile Arg Asp Arg Val Arg
145 150 155 160
Val Ser Pro Ala Gly Lys Gly Asp Phe Glu Lys Ser Trp Ile Thr Ala
165 170 175
Tyr Val Arg Glu Arg Asp Ala Trp Leu Gly Ser Ile Pro Arg Leu Arg
180 185 190
Ser Thr Arg Tyr Arg Thr Arg Phe Phe Lys Ser Arg Ile Ala Ala Gly
195 200 205
Arg Trp Gly Leu Glu Leu Pro Ile Asn Val His Gly Ala Leu Ile Thr
210 215 220
Asn Glu Ile Leu Gly Ile Ser Pro Asp Ala Ser Gly Lys Ser Gly Thr
225 230 235 240
Ala Ala Gly Pro Asn His Pro Pro Gln Thr Met Gln Asn Glu Ala Pro
245 250 255
Gln Thr Pro Thr Thr Gln Pro Ala Glu Asn Pro Gln Ala Arg Pro Pro
260 265 270
Val Ser Ala Asn Glu Val Leu Gly Arg Val Glu Arg Gly Phe Glu Arg
275 280 285
Ala Ala Glu Ser Phe Asp Arg Val Glu Arg Ile Gly Leu Gly Ala Ala
290 295 300
Asn Arg Thr Asp Arg Ala Lys Ser Leu Trp Ala Thr Val Ala Gly Thr
305 310 315 320
Val Trp Gln Thr Leu Trp Ala Ala Val Gly Leu Leu Ala Gly Leu Pro
325 330 335
Arg Glu Val Trp Leu Val Val Ala Val Ile Ala Ala Val Phe Thr Leu
340 345 350
Ala Tyr Leu Tyr Arg Gln Ile Thr Leu Gly Arg Leu Arg Glu Leu Lys
355 360 365
Glu Thr Ile
370
<210> 2
<211> 1116
<212> DNA
<213> 壳聚糖酶CSN5基因(1-CSN5)
<400> 2
atggggttta gctcatcgga gatcgccgcg gcggccgcga tcgtccgcgt gtttgagacg 60
ggcacgccgg cgggcaacta cagcgaggtc gcggtgctga acgacggagc cggaatttca 120
tacggcattt cgcagttcac ccatcgctcg ggttcgctgg ctgaggtcgt ttcgcgttac 180
ctcgcgagcg gcggcgtcgc gggccgagat gtgttcgcat cgcggctgcc gatgcttcgg 240
gatcgctcgg caacggccat cgcaaagctc acggcggatc gcgactttcg ccgagcactt 300
gccgctgcgg gccacgcccg cgagatgcgc gaggtgcagg aggcggtcgc ctttgagcgg 360
tatatgctcc cggcgatccg tgcgtgcgag ggctcgggct ttcggctgcc gctctcgctg 420
gccgtcattt acgactcgat gacacacggt tcttacaaca agatccgcga ccgcgtgcgg 480
gtctcgcctg caggcaaggg cgactttgaa aagagctgga tcacggcata cgtccgcgag 540
cgggacgcct ggctcggttc gatcccgcgg ctgcgttcga cgcgatatcg gacgcgcttt 600
ttcaagagcc gcatcgcggc cgggcgttgg ggcctcgagc ttccgatcaa cgttcacggc 660
gctctcatta caaacgaaat tcttggcatc tcgccggacg catccggcaa gagcggaacg 720
gcggccgggc cgaaccaccc gccacaaaca atgcagaacg aagcacctca aacacccacc 780
acacaacccg ccgaaaaccc tcaggcccgg ccgcctgttt cggcaaatga ggtgctcggc 840
cgcgttgagc ggggctttga acgtgcggcg gaaagctttg accgcgtgga gcgcatcggg 900
ctcggggcgg cgaaccgcac cgaccgggcg aagtcgctat gggcaacggt cgcgggcacg 960
gtttggcaaa cgctttgggc ggcggtcggc cttctcgccg gattgccgcg agaggtctgg 1020
ctggtcgtgg cggtcatcgc cgccgtcttc acactcgcct atctttaccg ccagatcacg 1080
ctcgggcggc tgcgggaact aaaggagacg atatga 1116
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
cgcggatcca tggggtttag ctca 24
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cgagctctca tatcgtctcc ttta 24

Claims (7)

1.一种壳聚糖酶CSN5,其特征在于其氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。
2.编码权利要求1所述壳聚糖酶CSN5的基因csn5,其核苷酸序列如SEQ ID No:2所示。
3.一种重组质粒csn5/pET-28a,所述重组质粒csn5/pET-28a含有权利要求2所述壳聚糖酶CSN5的基因csn5。
4.权利要求3所述的一种重组质粒csn5/pET-28a,所述的重组质粒csn5/pET-28a表达载体为pET28a。
5.一种重组质粒csn5/pET-28a的基因工程菌株,所述基因工程菌株由权利要求3所述的重组质粒csn5/pET-28a转化大肠杆菌E.coli BL21(DE3)获得。
6.权利要求1所述壳聚糖酶CSN5在催化壳聚糖生产壳寡糖中的应用。
7.权利要求5所述基因工程菌株在催化壳聚糖生产壳寡糖中的应用。
CN202010100245.7A 2020-02-18 2020-02-18 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用 Active CN111187764B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010100245.7A CN111187764B (zh) 2020-02-18 2020-02-18 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010100245.7A CN111187764B (zh) 2020-02-18 2020-02-18 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN111187764A true CN111187764A (zh) 2020-05-22
CN111187764B CN111187764B (zh) 2021-03-26

Family

ID=70703924

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010100245.7A Active CN111187764B (zh) 2020-02-18 2020-02-18 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111187764B (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111607580A (zh) * 2020-06-03 2020-09-01 青岛农业大学 新型壳聚糖酶chi3、其编码基因及其制备方法
CN111705048A (zh) * 2020-06-03 2020-09-25 青岛农业大学 新壳聚糖酶chi2、其编码基因及其应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101397552A (zh) * 2008-04-28 2009-04-01 浙江丰安生物制药有限公司 高效重组表达的一种壳聚糖酶
KR20160052946A (ko) * 2014-10-29 2016-05-13 주식회사 씨앤지 키토산 분해효소를 생산하는 미생물과 이를 이용한 식물 재배용 조성물과 재배 방법
CN105801675A (zh) * 2016-03-15 2016-07-27 黄河三角洲京博化工研究院有限公司 一种高活性壳聚糖酶控制基因csn及利用该基因生产高活性壳聚糖酶的方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101397552A (zh) * 2008-04-28 2009-04-01 浙江丰安生物制药有限公司 高效重组表达的一种壳聚糖酶
KR20160052946A (ko) * 2014-10-29 2016-05-13 주식회사 씨앤지 키토산 분해효소를 생산하는 미생물과 이를 이용한 식물 재배용 조성물과 재배 방법
CN105801675A (zh) * 2016-03-15 2016-07-27 黄河三角洲京博化工研究院有限公司 一种高活性壳聚糖酶控制基因csn及利用该基因生产高活性壳聚糖酶的方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HUIHUI SUN 等: "Discovery and Characterization of a Novel Chitosanase from Paenibacillus dendritiformis by Phylogeny-based Enzymatic Product Specificity Prediction", 《JOURNAL OF AGRICULTURAL AND FOOD CHEMISTRY》 *
王琦 等: "壳聚糖酶的基因克隆表达及酶学性质研究", 《食品与生物技术学报》 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111607580A (zh) * 2020-06-03 2020-09-01 青岛农业大学 新型壳聚糖酶chi3、其编码基因及其制备方法
CN111705048A (zh) * 2020-06-03 2020-09-25 青岛农业大学 新壳聚糖酶chi2、其编码基因及其应用
CN111705048B (zh) * 2020-06-03 2021-11-30 青岛农业大学 新壳聚糖酶chi2、其编码基因及其应用
CN111607580B (zh) * 2020-06-03 2021-12-03 青岛农业大学 壳聚糖酶chi3、其编码基因及其制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN111187764B (zh) 2021-03-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109295043B (zh) 一种褐藻胶裂解酶、其制备方法及应用
CN110438136B (zh) β-葡萄糖苷酶及其突变体的基因、氨基酸序列和应用
CN110452919B (zh) 一种截短的褐藻胶裂解酶Aly7B-CDII基因及其应用
CN109486794B (zh) 一种酶活提高的甲壳素酶突变体
CN112941089B (zh) 褐藻胶裂解酶突变基因、褐藻胶裂解酶突变体、含该突变体的工程菌及构建方法和应用
CN112725319B (zh) polyG底物特异性的褐藻胶裂解酶FaAly7及其应用
CN111187764B (zh) 一种深海来源的壳聚糖酶csn5及其编码基因和应用
CN110004134A (zh) 一种褐藻胶裂解酶突变体及其应用
CN107603994B (zh) 一种κ-卡拉胶酶及其基因和应用
CN113980937B (zh) λ-卡拉胶酶OUC-G150-L7及其应用
CN114015675B (zh) λ-卡拉胶酶OUC-LuV及其应用
CN110643622A (zh) 一种褐藻胶裂解酶基因及其应用
CN109609485B (zh) 一种甲壳素脱乙酰酶及其应用
CN113046378B (zh) 一种内切褐藻胶裂解酶、其编码基因及应用
CN113481186B (zh) 一种GH18几丁质酶ChiA及其应用
Jeong et al. Isolation of novel exo-type β-agarase from Gilvimarinus chinensis and high-level secretory production in Corynebacterium glutamicum
CN113186215B (zh) 一种来源于拟杆菌的高活性、热稳定性肝素酶i及其应用
JP2004313074A (ja) 新規α−1,2−マンノシダーゼおよびその遺伝子、ならびに該酵素を用いたα−マンノシル糖化合物の製造方法
CN112266905B (zh) 一种多肽修饰氨基酸脱氢酶及其制备和固定化方法
CN111808836B (zh) 耐热的i型普鲁兰酶的突变体酶及其制备方法与应用
CN111849949B (zh) 一种甘露糖醛酸c-5差向异构酶/海藻酸裂解酶编码基因及酶和制备与应用
CN114836406A (zh) 一种催化活力提高的琼胶酶突变体及其应用
CN114214302A (zh) 琼胶酶、编码基因、重组载体和宿主细胞及其应用以及新琼寡糖及其制备方法
CN114196655A (zh) 耐热性昆布多糖降解酶OUC-SaLam66及其应用
CN111607580A (zh) 新型壳聚糖酶chi3、其编码基因及其制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20230919

Address after: 266109 East End of Zhenyuan 1st Road, Zaohu Industrial Park, Chengyang District, Qingdao City, Shandong Province

Patentee after: Qingdao haishidai Bioengineering Co.,Ltd.

Address before: 266071 Shandong Province, Qingdao city Nanjing Road No. 106

Patentee before: YELLOW SEA FISHERIES Research Institute CHINESE ACADEMY OF FISHERY SCIENCES

TR01 Transfer of patent right