CN110330549B - 环肽emericellamide G及其制备方法和在制备酶抑制剂中的应用 - Google Patents
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Abstract
Description
技术领域
本发明属于海洋生物领域,具体涉及环肽emericellamide G及其制备方法和在制备蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP抑制剂和SHP1抑制剂中的应用。
背景技术
目前,恶性肿瘤的诊疗仍是医学界最大的挑战之一,而传统的恶性肿瘤治疗手段如化疗和放疗等,虽经不断发展,却仍存在一定的局限和弊端,如不良反应大及易诱导耐药等。蛋白酪氨酸磷酸酶(Protein Tyrosine Phosphataese,PTPs)在生物体中广泛存在,与蛋白磷酸酶相关的疾病有糖尿病、癌症、肥胖症和老年痴呆症等,近年来引起科学家们的极大关注。一些PTPs,比如SHP1,SHP2,PTP1B,TCPTP等已成为抗肿瘤药物等新药开发的新靶标。找到有效且选择性高的PTPs抑制剂是未来临床治疗的重要方向。
发明内容
本发明的第一个目的是提供对蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP和SHP1有抑制作用的新环肽emericellamide G。
本发明的新环肽emericellamide G,其结构式如式(Ⅰ)所示,
本发明的第二个目的是提供化合物emericellamide G的制备方法,它是从真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021的发酵液和/或菌丝体中分离得到的。
优选,具体步骤如下:
(a)制备真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021的发酵液和菌丝体;
(b)将步骤(a)得到的发酵液用大孔树脂吸附,接着用水冲洗大孔树脂去掉培养基成分,再用甲醇或乙醇冲洗大孔树脂,冲洗液浓缩后分别得到甲醇或乙醇提取物;或将步骤(a)得到的发酵液用乙酸乙酯、二氯甲烷或氯仿溶剂萃取,萃取液浓缩得到乙酸乙酯提取物、二氯甲烷提取物或氯仿提取物;菌丝体破碎后用丙酮或甲醇浸泡,浸泡液减压浓缩除去丙酮或甲醇,剩余水相用乙酸乙酯萃取,浓缩得菌体的乙酸乙酯提取物;
(c)将步骤(b)所述甲醇提取物、乙醇提取物、发酵液的乙酸乙酯提取物、菌体的乙酸乙酯提取物、二氯甲烷提取物或氯仿提取物经过正相硅胶柱层析,依次用二氯甲烷:甲醇体积比为100:0,98:2,95:5,92:8,90:10,80:20,70:30的溶剂***梯度洗脱,收集二氯甲烷:甲醇体积比90:10冲洗下来的样品得到组分Fr.6;Fr.6再次经过正相硅胶柱层析,依次用二氯甲烷:丙酮体积比为100:0,95:5,90:10,80:20,70:30,50:50的溶剂***梯度洗脱,收集二氯甲烷:丙酮体积比50:50冲洗下来的样品,经过重结晶得到化合物emericellamideG。
进一步优选,步骤(a)中所述的发酵液是通过以下方法制备:将真菌Asprergilluspuniceus SCSIO z021在真菌适用的平板培养基中生长,待真菌长出孢子后,将真菌接种到发酵培养基中,于室温静置培养25天,得到发酵液和菌丝体,所述的发酵培养基每升是通过以下方法配制的:用500mL的纯水煮200g的马铃薯,煮沸20min,过滤得马铃薯汁,再加入葡萄糖20g、海盐30g,用水补足至1000mL。
进一步优选,步骤(b)所述的浓缩是采用减压浓缩。
本发明的第三个目的是提供化合物emericellamide G或其药用盐在制备蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP抑制剂和/或SHP1抑制剂中的应用。
本发明的第四个目的是提供一种蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP抑制剂或SHP1抑制剂,所述的TCPTP抑制剂和SHP1抑制剂含有化合物emericellamide G或其药用盐作为活性成分。
本发明的第五个目的是提供真菌Asprergilluspuniceus SCSIO z021在制备化合物emericellamide G中的应用。
本发明从一株海洋真菌A.puniceus SCSIO z021的发酵液中分离得到新的具有抑制蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP和SHP1活性的环肽emericellamide G,它可用于TCPTP抑制剂和SHP1抑制剂先导化合物的研究。
本发明的真菌AsprergilluspuniceusSCSIO z021,于2019年3月20日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(GDMCC),地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,其保藏编号为GDMCC No:60611。
附图说明
图1是化合物1(化合物emericellamide G)的关键HMBC,COSY相关。
具体实施方式
以下实施例是对本发明的进一步说明,而不是对本发明的限制。
实施例1
(1)发酵培养基每升是通过以下方法配制的:用500mL的纯水煮200g的马铃薯,煮沸20min,过滤得马铃薯汁,再加入葡萄糖20g、海盐30g,用水补足至1000mL,在115℃高压蒸汽灭菌25分钟制得。按照此方式配置发酵培养基65L。将65L发酵培养基装入约200个1000mL的三角烧瓶中,每瓶约300mL。
(2)发酵液和菌丝体的制备:将真菌A.puniceus SCSIO z021在真菌适用的平板培养基中生长,待真菌长出孢子后,用竹签将孢子从平板上移至盛有无菌水的三角瓶中,得到孢子悬浮液,用移液枪将真菌的孢子悬浮液接种到发酵培养基中(1L三角瓶中盛有300mL发酵培养基),于室温(26℃)静置培养25天后,收取发酵液和菌丝体。
(3)化合物分离纯化:将经上述发酵培养基培养得到的发酵液和菌丝体用纱布过滤分离,其中65L发酵液用大孔树脂吸附,接着用水冲洗大孔树脂去掉培养基成分,再用乙醇(也可用甲醇)冲洗大孔树脂得到乙醇提取物,(发酵液也可用乙酸乙酯、二氯甲烷或氯仿萃取),减压浓缩得到乙醇粗提物;菌丝体破碎后用丙酮浸泡,重复提取三次,合并提取液,减压浓缩除去丙酮,剩余水相用乙酸乙酯萃取,浓缩得菌体的乙酸乙酯提取物;合并乙醇粗提物和乙酸乙酯提取物,用正相硅胶(100-200目)干法拌样后,装入玻璃层析柱(H细硅胶),常温加压柱层析,依次用二氯甲烷:甲醇体积比分别为100:0,98:2,95:5,92:8,90:10,80:20,70:30的二氯甲烷-甲醇***梯度洗脱,最后洗脱液通过TLC和HPLC检测合并得到9个组分(Fr.1~Fr.9),收集二氯甲烷:甲醇体积比90:10冲洗下来的样品得到组分Fr.6;Fr.6再次经过正相硅胶柱层析,依次用二氯甲烷:丙酮体积比为100:0,95:5,90:10,80:20,70:30,50:50的溶剂***梯度洗脱,收集二氯甲烷:丙酮体积比50:50冲洗下来的样品,经过重结晶(二氯甲烷-甲醇的体积比为1:1)得到化合物emericellamide G。
结构推定:
化合物1,无色针状晶体,高分辨质谱(HRESIMS)在m/z 660.4310给出[M+Na]+离子峰,结合NMR数据(表1)推测分子式为C33H59N5O7,不饱和度为7。1H和13C NMR数据具有明显的肽类化合物的特征,1HNMR谱图中存在五个酰胺NH质子信号(δH 8.14,8.03,7.90,7.54,7.36),六个α-氨基质子(δH 4.15,4.11,4.08,4.07,3.95,3.76),以及一个连氧次甲基质子(δH 5.06);在13C NMR谱中,观察到六个酰胺羰基或酯羰基信号(δC 171.7,171.3,171.2,170.7,169.4,168.9),一个连氧的sp3杂化的碳(δC 74.1)和五个α-氨基碳(δC 60.1,51.5,48.3,47.4,42.4)。IR吸收光谱中,在1634和1755cm-1波长处存在吸收峰也证实结构中存在酰胺和酯两种官能团。六个羰基贡献了6个不饱和度,为满足7个不饱和度,化合物1应该是一个环肽。
解析2D NMR数据(表1)可知结构中存在两个丙氨酸(Ala),一个缬氨酸(Val),一个亮氨酸(Leu)和一个包含十三个碳的脂肪酸片段。化合物1的波谱数据与已知化合物emericellamide B十分相似(文献:Oh D C,Kauffman C A,et al.Journal of NaturalProducts,2007,70,515-520.),它们具有相同的氨基酸片段,主要的区别是化合物1缺少了一个烷基长链上的甲基信号,多了一个亚甲基碳C-21(δC 38.0),1H-1H COSY中显示出H-21-H-24之间的连续相关,推测化合物1缺少了C-21上连接的甲基,通过与emericellamide B的脂肪酸片段对比核磁数据,并结合HMBC相关信号,确定结构中存在一个3-羟基-4,6-二甲基十二碳酸(HDMD)的结构片段。
HMBC谱中(图1),2-NH(δH 7.36)分别与两个Ala片段中的羰基碳相关,H-2与C-4相关;8-NH/5-NH/H-5与C-7相关,H-14与C-18/C-13相关,14-NH与C-18相关,H-19/19-NH与C-20相关,推测氨基酸的连接次序为Ala1-Ala2-Leu-Val-Gly-HDMD,C-22上的羟基与Ala-1片段的羧基通过脱水形成内酯,确定了化合物1的平面结构。通过Marfey反应,确定结构中的氨基酸分别为L-Ala、L-Leu和L-Val。通过X-ray单晶衍射实验确定了所有手性中心的相对构型,由于氨基酸片段的绝对构型已知,从而确定3-羟基-4,6-二甲基十二碳酸片段的C-3/C-4/C-6均为S构型。化合物1的鉴定结果如式I所示,命名为emericellamide G
表1化合物1的1H和13C-NMR数据(500,125MHz,DMSO-d6,δppm)
实施例2化合物emericellamide G的蛋白酪氨酸磷酸酶活性测试
将人蛋白酪氨酸磷酸酶PTP1B,SHP1,SHP2,MEG2or TCPTP克隆到大肠杆菌(Escherichia coli)并纯化。酶抑制活性的测定是在96孔板中使用对硝基苯磷酸(pNPP)作为底物,每孔板含100μL的反应混合物。将人类重组PTP1B,SHP1,SHP2,MEG2或TCPTP(0.05μg)添加到50μL含有50mM HEPES,100mM NaCl,1mM EDTA及1mM dithiothreitol(DTT)的反应缓冲液中(pH 6.5),再在每个96孔板中分别添加待测的化合物样品(化合物emericellamide G)。Na3VO4作为阳性对照,DMSO作为阴性对照,用于评价此高通量筛选***。在室温下预孵育15分钟后,添加50μL含有50mM pNPP的缓冲液,并继续在37℃下培养60分钟。磷酸酶活性是通过测定所产生的对硝基苯酚在405nm处的吸光度来测定的。IC50值是使用Gen5软件计算(Synergy2Multi-Mode Microplate Reader,BioTek Instruments,Inc.,headquartered in Winooski,VT,USA)。每个实验重复3次。
测试结果显示:化合物emericellamide G选择性抑制蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP和SHP1,IC50值分别为1.40和6.57μg/mL,但对SHP2、MEG2和PTP1B没活性。阳性对照Na3VO4抑制TCPTP、SHP1、SHP2、MEG2和PTP1B的IC50值分别为2.4,4.4,6.2,3.2,1.6μM;阴性对照DMSO没活性。
以上仅是本发明的优选实施方式,应当指出的是,上述优选实施方式不应视为对本发明的限制,本发明的保护范围应当以权利要求所限定的范围为准。对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明的精神和范围内,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (8)
2.一种权利要求1所述的化合物emericellamide G的制备方法,其特征在于,是从真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021 GDMCC No:60611的发酵液和/或菌丝体中分离得到的。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(a)制备真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021 GDMCC No:60611的发酵液和菌丝体;
(b)将步骤(a)得到的发酵液用大孔树脂吸附,接着用水冲洗大孔树脂去掉培养基成分,再用甲醇或乙醇冲洗大孔树脂,冲洗液浓缩后分别得到甲醇或乙醇提取物;或将步骤(a)得到的发酵液用乙酸乙酯、二氯甲烷或氯仿溶剂萃取,萃取液浓缩得到乙酸乙酯提取物、二氯甲烷提取物或氯仿提取物;菌丝体破碎后用丙酮或甲醇浸泡,提取液减压浓缩除去丙酮或甲醇,剩余水相用乙酸乙酯萃取,浓缩得菌体的乙酸乙酯提取物;
(c)将步骤(b)所述发酵液的甲醇提取物、乙醇提取物、乙酸乙酯提取物、二氯甲烷提取物、氯仿提取物或菌体的乙酸乙酯提取物经过正相硅胶柱层析,依次用二氯甲烷:甲醇体积比为100:0,98:2,95:5,92:8,90:10,80:20,70:30的溶剂***梯度洗脱,收集二氯甲烷:甲醇体积比90:10冲洗下来的样品得到组分Fr.6;Fr.6再次经过正相硅胶柱层析,依次用二氯甲烷:丙酮体积比为100:0,95:5,90:10,80:20,70:30,50:50的溶剂***梯度洗脱,收集二氯甲烷:丙酮体积比50:50冲洗下来的样品,经过重结晶得到化合物emericellamide G。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,步骤(a)中所述的发酵液和菌丝体是通过以下方法制备:将真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021 GDMCC No:60611在真菌适用的平板培养基中生长,待真菌长出孢子后,将真菌接种到发酵培养基中,于室温静置培养25天,得到发酵液和菌丝体,所述的发酵培养基每升是通过以下方法配制的:用500mL的纯水煮200g的马铃薯,煮沸20min,过滤得马铃薯汁,再加入葡萄糖20g、海盐30g,用水补足至1000mL。
5.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,步骤(b)中所述的浓缩是采用减压浓缩。
6.权利要求1所述的化合物emericellamide G或其药用盐在制备蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP抑制剂和/或SHP1抑制剂中的应用。
7.一种蛋白酪氨酸磷酸酶TCPTP抑制剂或SHP1抑制剂,其特征在于,其含有权利要求1所述的化合物emericellamide G或其药用盐作为活性成分。
8.真菌Asprergillus puniceus SCSIO z021 GDMCC No:60611在制备权利要求1中式(I)中所示的化合物emericellamide G中的应用。
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
CB02 | Change of applicant information |
Address after: No.1119 Haibin Road, Nansha District, Guangzhou City, Guangdong Province Applicant after: SOUTH CHINA SEA INSTITUTE OF OCEANOLOGY, CHINESE ACADEMY OF SCIENCES Address before: 510301 No. 164 West Xingang Road, Guangzhou, Guangdong, Haizhuqu District Applicant before: SOUTH CHINA SEA INSTITUTE OF OCEANOLOGY, CHINESE ACADEMY OF SCIENCES |
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CB02 | Change of applicant information | ||
GR01 | Patent grant | ||
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