CN109793741A - 一种常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用,属于兽用药物技术领域。本发明所述应用能够为进一步控制***的传播,提供一类高效、安全且质量可控的抗***病毒药物。

Description

一种常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用
技术领域
本发明涉及兽用药物技术领域,具体涉及一种常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用。
背景技术
***病毒是一类小RNA病毒科的一种无包膜单股正链RNA病毒。现已发现该病毒包括A型、O型、C型、亚洲I型和南非Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型等7种血清型,同时各血清型又分为多个亚型。由该病毒导致的***,主要感染猪、牛等偶蹄类动物,常在口、鼻、蹄等部位形成水泡并伴随发热、跋行等临床症状。***传播途径多、流行范围广和传染性强,目前在多个国家频繁暴发,已严重威胁全球畜牧业的发展,并对世界经济和人类社会造成了巨大影响。它被世界动物卫生组织列为A类动物疫病名单之首,我国也将该病排在一类动物传染病名单的第一位,同时也是《国家中长期动物疫病防治规划(2012-2020年)》中的三个单列病种之一。目前,疫苗免疫是防控***的主要手段,然而疫苗的使用存在“免疫窗口期”即它不能在7天之内对动物提供保护。因此,为了弥补“免疫窗口期”,急需开发新型有效的抗病毒药物。
发明内容
本发明的目的在于提供常山酮(Halofuginone)在制备预防***病毒感染的药物中的应用。所述应用能够为进一步控制***的传播提供一类高效、安全且质量可控的抗***病毒药物。
本发明提供了常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用。
优选的是,所述***病毒包括A型***病毒和O型***病毒。
优选的是,所述常山酮在所述药物中的浓度>1μmol/L。
本发明提供了常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用。常山酮对A型***病毒和O型***病毒诱导的细胞病变均有抑制作用,抑制病毒的复制。细胞试验显示,常山酮细胞毒性低,对A型***病毒和O型***病毒的复制均具有抑制作用;进一步的实验证实,常山酮只是在FMDV复制早期起作用,而进入病毒复制后期时则不能阻止病毒的复制。常山酮能够作为一种有效的抗***病毒成分。
附图说明
图1为本发明实施例1中不同浓度的Halofuginone对IBRS-2细胞的细胞毒性图;
图2为本发明实施例1中不同浓度的Halofuginone对O型FMDV感染IBRS-2细胞的抑制作用图;
图3为本发明实施例1中不同浓度的Halofuginone对A型FMDV感染IBRS-2细胞的抑制作用图;
图4为本发明实施例1中不同浓度的Halofuginone对O型FMDV感染细胞的FMDVmRNA抑制作用图;
图5为本发明实施例1中不同浓度的Halofuginone对O型FMDV感染细胞的VP1蛋白表达抑制作用图;
图6为本发明实施例1中IFA检测不同浓度的Halofuginone对O型FMDV感染细胞的FMDV蛋白表达抑制作用图;
图7为本发明实施例1中q-PCR检测Halofuginone对FMDV吸附、穿入阶段中的mRNA抑制作用图;
图8为本发明实施例1中Halofuginone在不同时间段对病毒感染细胞的FMDV mRNA抑制作用图;
图9为本发明实施例1中Halofuginone在不同时间段对病毒感染细胞的VP1蛋白表达抑制作用图。
具体实施方式
本发明提供了常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用。在本发明中,所述***病毒包括A型***病毒和O型***病毒。常山酮对A型***病毒和O型***病毒诱导的细胞病变均有抑制作用,抑制病毒的复制,常山酮只是在FMDV复制早期起作用,而进入病毒复制后期时则不能阻止病毒的复制。本发明对常山酮的来源没有特殊的限定,采用本领域的常规市售产品即可。
在本发明中,所述常山酮在所述药物中的浓度>1μmol/L。
下面结合具体实施例对本发明所述的一种常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用做进一步详细的介绍,本发明的技术方案包括但不限于以下实施例。
实施例1
1.实验材料
1.1细胞、病毒和药物
IBRS-2细胞由本课题组保存;FMDV(O/MY98/BY/2010和A/GDMM/CHA/2013)由国家***参考实验室保存并提供;Halofuginone购自MCE公司,以DMSO进行配制。
1.2试剂
DMEM、胎牛血清FBS、胰蛋白酶培养基购自Gibco公司;MTS检测试剂盒购自Abcam公司;TRIZOL购自Invitrogen公司;SYBR Premix Ex TaqⅡ试剂盒均购自宝生物工程(大连)有限公司;RIPA裂解液、BCA法蛋白定量试剂盒、SDS-PAGE凝胶配制试剂盒、ECL购自碧云天公司;BSA、PVDF膜购自BioRad公司;吐温-20购自上海生工生物工程公司;Triton X-100、DMSO购自Sigma公司;小鼠抗β-actin多克隆抗体、HRP标记抗兔或抗鼠IgG抗体均购自Abcam公司;兔抗O型FMDV VP1多克隆抗体由国家***参考实验室郑海学博士惠赠;兔抗O型FMDV高免血清由国家***参考实验室周广青惠赠。
2.实验方法和结果
2.1Halofuginone在IBRS-2细胞上的毒性实验:
采用MTS法测定Halofuginone对IBRS-2细胞的细胞毒性。待铺到96孔板IBRS-2细胞生长满单层后,弃掉细胞上层培养液,用新鲜的DMEM洗3次,最后加入用含2%FBS的DMEM培养液梯度稀释好的Halofuginone 100μL,以Halofuginone的配制溶液相应DMSO浓度作为阴性对照孔,以不作任何处理作细胞对照孔。放入37℃持续培养72h,弃掉上层细胞培养液,用新鲜的DMEM洗三次,再加入100μL新鲜的DMEM,每孔加入20μL MTS溶液。37℃孵育4h后在酶标仪上测490nm处的吸光度值,根据公式“细胞活性率=(OD药物-OD空白)/(OD阴性-OD空白)×100%”计算出不同浓度的Halofuginone对IBRS-2细胞的毒性。实验独立重复三次。
实验结果如图1所示:MTS结果显示,随着药物浓度的不断增加,细胞的活性率仍在80%以上,说明Halofuginone对IBRS-2细胞毒性极低。
2.2Halofuginone在IBRS-2细胞上抗***病毒活性的评价:
将含10%FBS的DMEM完全培养基上生长良好的IBRS-2细胞铺到96孔板,待IBRS-2细胞生长满单层后,弃掉细胞上层培养液,用新鲜的DMEM洗3次,接种100TCID50 O/MY98/BY/2010。1h后,去掉病毒液,用新鲜的DMEM洗3次,加入用含2%FBS的DMEM培养液梯度稀释好的Halofuginone 100μL,以Halofuginone的配制溶液相应DMSO浓度作为病毒对照孔,以无Halofuginone、无病毒的作细胞对照孔。放入37℃持续培养48h,弃掉上层细胞培养液,用新鲜的DMEM洗三次,再加入100μL新鲜的DMEM,每孔加入20μL MTS溶液。37℃孵育4h后在酶标仪上测490nm处的吸光度值,根据公式“细胞活性率=(OD药物-OD空白)/(OD阴性-OD空白)×100%”计算出不同浓度Halofuginone的抗病毒作用。同时收集不同组上清液,q-PCR和Western Blot分别检测FMDV 2B基因的mRNA和FMDVVP1蛋白水平。按照TRIZOL说明书提取细胞的RNA,按照SYBR Premix Ex TaqⅡ操作说明书进行荧光定量PCR,β-actin作为内参基因。用于检测FMDV2B基因mRNA特异的引物序列为:
FMDV-for,5’-CAACAAAACACGGACCCGAC-3’(SEQ ID NO.1);
FMDV-rev,5’-TTGTACCAGGGTTTGGCCTC-3’(SEQ ID NO.2);
β-actin的引物序列为:
β-actin for,5’-GACCACCTTCAACTCGATCA-3’(SEQ ID NO.3);
β-actin-rev,5’-GTGTTGGCGTAGAGGTCCTT-3’(SEQ ID NO.4)。反应体系为:SYBRPremix ExTaq:12.5μL,上游引物:1μL,下游引物:1μL,cDNA:1μL,灭菌水:9.5μL,反应程序为:95℃预变性30s;95℃变性5s,56退火30s,72℃延伸30s,40个循环。根据2-△△CT方法计算样品相对于内参基因的表达量。用蛋白裂解液提取蛋白,应用BCA法测定提取的蛋白浓度。配制12%的分离胶进行蛋白SDS-PAGE变性电泳,电泳2h后,将蛋白电转印至PVDF膜上。转膜2h完毕后,把膜置入新鲜配制的5%脱脂奶粉进行封闭1h。封闭结束后,将膜置入兔抗O型FMDV VP1多克隆抗体(1:3000),小鼠抗β-actin多克隆抗体(1:4000)中,4℃冰箱孵育过夜。用TBST洗膜5次,每次10min,之后把膜放入相应二抗HRP标记山羊抗兔IgG,HRP标记山羊抗小鼠IgG(1:3000),室温孵育1h,TBST洗膜5次,每次10min,最后利用ECL化学发光法显影检测FMDVVP1蛋白。为了研究Halofuginone是否对A型***病毒具有抑制作用,利用100TCID50 A/GDMM/CHA/2013感染细胞,MTS法测定其抗病毒活性。
实验结果如图2~5所示:用MTS检测Halofuginone对FMDV是否具有抗病毒活性,在分别加入不同浓度的药物情况下结果显示在浓度大于0.5μmol时,Halofuginone才可以提供IBRS-2细胞80%以上的保护(图2),并且显著的抑制FMDV mRNA和VP1蛋白水平的表达(图4、图5)。而当浓度为0.5μmol时,Halofuginone则不能提供细胞有效的保护。同样,当用A型***病毒感染细胞时,1μmol及以上浓度的Halofuginone能有效的保护IBRS-2细胞(图3),说明Halofuginone对A型FMDV也有抗病毒活性。
2.3间接免疫荧光检测感染细胞组中FMDV蛋白的表达情况
将密度为3×105/孔IBRS-2细胞铺到12孔板,待IBRS-2细胞生长满单层后,弃掉细胞上层培养液,用新鲜的DMEM洗3次,接种100TCID50 O/MY98/BY/2010。1h后,去掉病毒液,用新鲜的DMEM洗3次,加入用含2%FBS的DMEM培养液梯度稀释好的Halofuginone 100μL,以Halofuginone的配制溶液相应DMSO浓度作为病毒对照孔,放入37℃持续培养12h。弃掉上层细胞培养液,PBS清洗2次,4%多聚甲醛固定细胞15min,弃掉多聚甲醛,加入甲醇作用5min,用PBS漂洗3次,每次5min,加入封闭液(10%FBS,0.3%Triton X-100,89.7%PBS)封闭10min,之后加入用封闭液稀释好的一抗(1:100),室温孵育1h,PBS漂洗3次,每次5min,加入用封闭液稀释好的二抗(1:200),室温孵育1h,PBS漂洗5次,每次5min。最后每孔加入300μLDAPI进行染色,作用5min,PBS漂洗2次,每次5min,荧光显微镜观察结果。
实验结果如图6所示:未处理感染病毒后的IBRS-2细胞及用0.5μmolHalofuginone处理过的病毒感染组可见大量的特异性荧光,而其他处理组的IBRS-2细胞中则有少量的荧光。这一结果进一步的证实了Halofuginone在IBRS-2细胞上的抗***病毒活性呈现剂量依赖性。
2.4FMDV抑制病毒复制阶段的检测
将IBRS-2细胞铺至24孔板中,待细胞长满单层后,弃掉培养液。在病毒的吸附阶段:每孔加入FMDV病毒液。然后向每孔中加入不同浓度的Halofuginone,使其终浓度分别为1、3、6、12、25μmol,设立不加入药物的阴性对照组,将细胞板放入4℃冰箱作用1h,只允许病毒附着于细胞表面。弃去病毒液,用DMEM洗去未结合的病毒,每孔加入400μL培养液,放入-80℃冰箱反复冻融3次,收集病毒液,10000r/min离心10min去除细胞碎片,上清液用于检测mRNA表达水平情况。在病毒穿入阶段:每孔加入200μL的FMDV病毒液,将细胞放入37℃培养箱1h,允许病毒吸附细胞表面,用DMEM洗去未结合的病毒,然后向每孔中加入不同浓度的Halofuginone 200μL,使Halofuginone的终浓度分别为1、3、6、12、25μmol,同时设立不加药物的阴性对照组,将细胞板放入37℃温箱培养1h,去掉药物,用PBS洗去残留的药物,加入含有2%FBS的维持液,放入37℃温箱继续培养48h,收集上清检测mRNA表达水平情况。
实验结果如图7所示。在病毒的吸附(Attachment)阶段,分别用不同浓度的Halofuginone和FMDV病毒液处理细胞,在培养箱中共同作用1h,结果显示无论用不同浓度的Halofuginone处理细胞,病毒的mRNA表达水平与未处理组无明显差别,所以Halofuginone不会影响FMDV对细胞的吸附。在病毒的穿入(Entry)阶段,各药物处理组的mRNA和未经药物处理的阴性对照组相比没有明显差别,说明Halofuginone不会影响病毒进入细胞的能力。
2.5Halofuginone对***病毒感染IBRS-2细胞抑制时间的评价:
将在含10%FBS的DMEM完全培养基上生长良好的IBRS-2细胞铺到12孔板,待IBRS-2细胞生长满单层后,弃掉细胞上层培养液,用新鲜的DMEM洗3次,接种100TCID50 O/MY98/BY/2010。1h后,去掉病毒液,用新鲜的DMEM洗3次,加入用含2%FBS的DMEM培养液,此时作为0h。在病毒感染后0h,2h,4h,8h,16h分别向不同孔中加入Halofuginone,使其的终浓度为3μmol。同时设立不加药物的阴性对照。37℃CO2恒温细胞培养箱中培养48h。收集不同组上清液,q-PCR和Western Blot分别检测FMDV 2B基因的mRNA和FMDVVP1蛋白水平。
实验结果如图8~9所示:在病毒感染后不同时间段用Halofuginone处理细胞,结果显示,在FMDV复制的0~8h内,与阴性对照相比,FMDV mRNA水平(图8)和VP1蛋白水平明显受到抑制(图9)。而在16h时Halofuginone的抑制作用并不明显,说明Halofuginone只是在FMDV复制早期起作用,而进入病毒复制后期时则不能阻止病毒的复制。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 中国农业科学院兰州兽医研究所
<120> 一种常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
caacaaaaca cggacccgac 20
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ttgtaccagg gtttggcctc 20
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gaccaccttc aactcgatca 20
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
gtgttggcgt agaggtcctt 20

Claims (3)

1.常山酮在制备预防***病毒感染的药物中的应用。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述***病毒包括A型***病毒和O型***病毒。
3.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述常山酮在所述药物中的浓度>1μmol/L。
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