CN109081775B - 唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法 - Google Patents

唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法。通过采用中压色谱塔、二维制备液相色谱***、二维制备液相色谱***制得二芳基庚烷类化合物单体。本发明具有以下优点：采用中压色谱塔和二维制备液相色谱从唐古特虎耳草95%乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位中定向分离纯化二芳基庚烷类化合物，其中中压色谱塔采用MCI固定相、第一维色谱分离采用亲水色谱柱（正相体系下使用）、第二维色谱分离采用反相色谱柱，三步色谱分离均为可视化操作，不但快速、简单，而且易于规模化扩大。本发明方法可实现二芳基庚烷类化合物的目标制备，可获取批量的已知活性二芳基庚烷，同时富集分离微量二芳基庚烷，从而可以不断丰富二芳基庚烷类化合物库。

Description

唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法
技术领域
本发明涉及二芳基庚烷类化合物的分离纯化技术领域，尤其涉及唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法。
背景技术
唐古特虎耳草(Saxifraga tangutica Engl.)为虎耳草科(Saxifragaceae)虎耳草属(Saxifraga)植物，藏药名：松吉蒂，中药中称之为迭达，主要分布在青海、甘肃、西藏、四川以及不丹与克什米尔地区海拔2900～4900m的针叶林灌丛下。唐古特虎耳草为常用藏药，其味苦性凉，清热，治肝、胆热症和创伤，还可治疗急性中耳炎、风热咳嗽，现代药理学研究表明唐古特虎耳草具有抑菌、抗病毒、抗炎和抗肿瘤的药理作用。
迄今，有关唐古特虎耳草的研报道文献仅有《藏药甘青虎耳草化学成分研究》一文，文中描述了利用传统的柱层析、结晶等分离手段从中分离到四个以槲皮素为母核的二芳基庚烷类化合物，其中包括：(I)槲皮素、(II)槲皮素-3-O-β-D-半乳糖糖苷，(III)槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷，(IV)槲皮素-3-O-β-D-半乳糖-7-O-β-D-葡萄糖苷；以谷甾醇为母核的两个甾醇类化合物，包括：β-谷甾醇以及胡萝卜苷；以及两个小极性的脂肪烃类化合物：正二十九烷和正三十一烷。中国专利CN 105153250B和CN 105085589A报道了唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物类组分的富集方法以及新结构的抗肿瘤活性的二芳基庚烷类化合物，而从唐古特虎耳草中定向获取二芳基庚烷类化合物的高效纯化方法未见文献报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种快速、简单的唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法。
为解决上述问题，本发明所述的唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法，包括以下步骤：
⑴采用中压色谱塔，将唐古特虎耳草95％乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位进行色谱分离，按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～100min，体积浓度0％→100％B；100～120min，体积浓度100％→100％B；收集馏分共计8个组分，利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，确定二芳基庚烷类化合物主要分布于馏分7中，将馏分7减压浓缩至恒重；
⑵采用二维制备液相色谱***，将中压色谱塔分离所得的馏分7经第一维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～50min，体积浓度15％→100％B；50～65min，体积浓度100％→100％B；利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，最终确定收集的馏分共计7个组分，每个组分减压浓缩至恒重；
⑶采用二维制备液相色谱***，将所述馏分1～7共7个组分经第二维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～60min，体积浓度25％→55％B；定向收集二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱的色谱峰，减压浓缩至恒重，即得二芳基庚烷类化合物单体。
所述步骤⑴中中压色谱塔色谱分离的工作参数是指装填MCI微孔树脂固定相；中压色谱塔内径为36.0～100.0mm；制备流动相A水，B为甲醇或乙醇；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为18～50.0mL/min。
所述步骤⑵中第一维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为亲水色谱柱XION或XAmide，其内径为20.0～100.0mm；制备流动相A为正己烷，B为乙醇；样品溶液浓度为100.0～250.0mg/mL；进样量为2.0～40.0mL；检测波长为281nm；流速为15～330.0mL/min。
所述步骤⑶中第二维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为耐纯水反相色谱柱XAqua C18；其内径为20～100.0mm；制备流动相A为0.2％甲酸-水，B为乙腈；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为15～330.0mL/min。
所述步骤⑴、⑵和⑶中减压浓缩条件是指真空度为0.07～0.09MPa，温度为50～60℃。
本发明与现有技术相比具有以下优点：
1、本发明采用中压色谱塔和二维制备液相色谱从唐古特虎耳草95％乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位中定向分离纯化二芳基庚烷类化合物，其中中压色谱塔采用MCI固定相、第一维色谱分离采用亲水色谱柱(正相体系下使用)、第二维色谱分离采用反相色谱柱，三步色谱分离均为可视化操作，不但快速、简单，而且易于规模化扩大。
2、采用本发明方法，可实现二芳基庚烷类化合物的目标制备，可获取批量的已知活性二芳基庚烷，同时富集分离微量二芳基庚烷，从而可以不断丰富二芳基庚烷类化合物库，为二芳基庚烷类化合物的活性研究和单一成分的新药开发提供物质基础。
附图说明
下面结合附图对本发明的具体实施方式作进一步详细的说明。
图1为本发明的中压色谱塔分离色谱图。
图2为本发明的一维分析及一维制备馏分收集色谱图。
图3为本发明的一维馏分再分析色谱图。
图4为本发明的二维制备馏分收集色谱图。
具体实施方式
唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法，包括以下步骤：
⑴采用中压色谱塔，将唐古特虎耳草95％乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位进行色谱分离，按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～100min，体积浓度0％→100％B；100～120min，体积浓度100％→100％B；收集馏分共计8个组分，利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，确定二芳基庚烷类化合物主要分布于馏分7中，将馏分7减压浓缩至恒重；
其中：
中压色谱塔色谱分离的工作参数是指装填MCI微孔树脂固定相；中压色谱塔内径为36.0～100.0mm；制备流动相A水，B为甲醇或乙醇；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为18～50.0mL/min。
减压浓缩条件是指真空度为0.07～0.09MPa，温度为50～60℃。
⑵采用二维制备液相色谱***，将中压色谱塔分离所得的馏分7经第一维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～50min，体积浓度15％→100％B；50～65min，体积浓度100％→100％B；利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，最终确定收集的馏分共计7个组分，每个组分减压浓缩至恒重；
其中：
第一维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为亲水色谱柱XION或XAmide，其内径为20.0～100.0mm；制备流动相A为正己烷，B为乙醇；样品溶液浓度为100.0～250.0mg/mL；进样量为2.0～40.0mL；检测波长为281nm；流速为15～330.0mL/min。
减压浓缩条件是指真空度为0.07～0.09MPa，温度为50～60℃。
⑶采用二维制备液相色谱***，将所述馏分1～7共7个组分经第二维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0～60min，体积浓度25％→55％B；定向收集二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱的色谱峰，减压浓缩至恒重，即得二芳基庚烷类化合物单体。
其中：
第二维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为耐纯水反相色谱柱XAqua C18；其内径为20～100.0mm；制备流动相A为0.2％甲酸-水，B为乙腈；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为15～330.0mL/min。
减压浓缩条件是指真空度为0.07～0.09MPa，温度为50～60℃。
实施例
选取唐古特虎耳草95％乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位过MCI所得馏分7第一维制备所得3个有代表性的馏分(Fr2，Fr3和F6)，通过第二维反相色谱制备获得8个二芳基庚烷类化合物单体。该化合物的结构信息如表1：
表1 7个二芳基庚烷类化合物单体
Figure GDA0001869591120000051
Figure GDA0001869591120000061
具体过程如下：
①选取Fraction 2采用反相色谱分离模式进行第二维制备型高效液相色谱分离，色谱条件：色谱柱为耐纯水柱(XAqua C18,250×20mm,i.d.,10μm)；0.2％甲酸-水(A)和乙腈(B)流动相体系；0～60min，体积浓度25％→55％B梯度洗脱；流速为15mL/min；检测波长为281nm；收集40～55min内的两个色谱主峰，减压干燥回收溶剂，经1H NMR和13C NMR核磁确定获得Fr2-1和Fr2-2两个单体化合物。HPLC检测纯度均大于98％，经理化测定，数据如下：
Fr2-1：黄色油状物，1H-NMR(CDCl3,600MHz)δ:7.00(2H,d,J＝8.5Hz,H-2',H-6'),6.80(1H,d,J＝8.0Hz,H-5”),6.73(2H,d,J＝8.5Hz,H-3',H-5'),6.68(1H,d,J＝2.0Hz,H-2”),6.64(1H,dd,J＝8.0,2.0Hz,H-6”),4.03(1H,m,H-5),3.85(3H,s,-OCH3),2.82(2H,t,J＝7.3Hz,H-1),2.72(1H,m,H-7a),2.69(2H,t,J＝7.3Hz,H-2),2.60(1H,m,H-7b),2.52(2H,m,H-4),1.78(1H,m,H-6a),1.62(1H,m,H-6b)；13C NMR(151MHz,CDCl3)δ:211.3(C-3),154.0(C-4'),146.3(C-3”),143.7(C-4”),133.7(C-1”),132.6(C-1'),129.5(C-2',C-6'),120.9(C-6”),115.4(C-3',C-5'),114.2(C-5”),111.1(C-2”),66.8(C-5),56.0(-OCH3),49.2(C-4),45.2(C-2),38.1(C-6),31.3(C-7),28.6(C-1)。
Fr2-2：黄色粉末，1H-NMR(DMSO-d6,600MHz)δ:6.62(1H,d,J＝2.6Hz,H-2'),6.60(1H,d,J＝2.6Hz,H-2”),6.56(2H,t,J＝2.2Hz,H-5',H-5”),6.42(1H,m,H-6'),6.40(1H,m,H-6”),4.65(1H,brs,H-5),2.66(2H,t,J＝7.3Hz,H-1),2.65(2H,t,J＝7.3Hz,H-2),2.59(1H,s,H-7a),2.57(2H,m,H-4),2.47(1H,m,H-7b),1.54(2H,m,H-6)；13C NMR(151MHz,DMSO-d6)δ:209.3(C-3),145.0(C-3',C-3”),143.3(C-4'),143.1(C-4”),133.0(C-1”),132.0(C-1'),118.8(C-6'),118.7(C-6”),115.7(C-2”,C-2'),115.5(C-5”,C-5'),66.3(C-5),50.4(C-4),44.7(C-2),39.5(C-6),30.7(C-7),28.4(C-1)。
②选取Fraction 3采用反相色谱分离模式进行第二维制备型高效液相色谱分离，色谱条件：色谱柱为耐纯水柱(XAqua C18,250×50mm,i.d.,10μm)；0.2％甲酸-水(A)和乙腈(B)流动相体系；0～60min，体积浓度25％→55％B梯度洗脱；流速为60mL/min；检测波长为281nm；收集15～50min内的三个色谱主峰，减压干燥回收溶剂，经1H NMR和13C NMR核磁确定获得Fr3-1、Fr3-2和Fr3-3三个单体化合物。HPLC检测纯度均大于98％，经理化测定，数据如下：
Fr3-1：黄色油状物，1H-NMR(CDCl3,600MHz)δ:7.00(2H,d,J＝8.0Hz,H-2',H-6'),6.83(1H,s,H-5”),6.80(1H,d,J＝13.0Hz,H-5),6.70(2H,d,J＝8.2Hz,H-3',H-5'),6.64(1H,s,H-2”),6.62(1H,s,H-6”),6.07(1H,d,J＝13.0Hz,H-4),3.84(3H,s,-OCH3),2.84(2H,t,J＝6.7Hz,H-1),2.81(2H,t,J＝6.7Hz,H-2),2.68(2H,t,J＝7.3Hz,H-7),2.47(2H,m,H-6)；13C NMR(151MHz,CDCl3)δ:199.0(C-3),154.2(C-4'),147.8(C-5),146.5(C-3”),145.2(C-4”),132.8(C-1'),132.6(C-1”),131.0(C-4),129.5(C-2',C-6'),121.2(C-6”),115.4(C-3',C-5'),115.1(C-5”),112.4(C-2”),55.8(-OCH3),42.1(C-2),34.8(C-6),34.3(C-7),29.2(C-1)。
Fr3-2：黄色油状物，1H-NMR(CDCl3,600MHz)δ:7.28(2H,d,J＝8.5Hz,H-2”,H-6”),7.20(1H,d,J＝8.0Hz,H-4”),7.16(2H,d,J＝8.5Hz,H-3”,H-5”),6.81(1H,d,J＝8.0Hz,H-2'),6.66(2H,m,H-5',H-6'),3.84(3H,s,-OCH3),2.80(2H,t,J＝3.5Hz,H-1),2.68(2H,t,J＝3.5Hz,H-2),2.59(2H,t,J＝7.2Hz,H-7),2.42(2H,m,H-4),1.60(4H,m,H-5,H-6)；13C NMR(151MHz,CDCl3)δ:210.0(C-3),146.4(C-3'),144.4(C-5'),143.9(C-4'),142.1(C-1”),133.0(C-1'),128.4(C-3”,C-5”),128.3(C-2”,C-6”),125.7(C-4”),120.7(C-6'),111.0(C-2'),55.8(-OCH3),44.5(C-2),42.8(C-4),35.6(C-7),30.9(C-6),29.5(C-1),23.4(C-5)。
Fr3-3：黄色油状物，1H-NMR(CDCl3,600MHz)δ:6.82(1H,d,J＝8.0Hz,H-2'),6.80(1H,d,J＝8.0Hz,H-2”),6.68(2H,dd,J＝8.0,2.0Hz,H-6',H-6”),6.66(1H,d,J＝2.0Hz,H-5”,H-5”),4.02(1H,m,H-5),3.87(3H,s,-OCH3),3.85(3H,s,-OCH3),2.81(2H,t,J＝3.5Hz,H-1),2.72(2H,t,J＝3.5Hz,H-2),2.58(2H,t,J＝7.2Hz,H-7),2.53(2H,m,H-4),1.64(2H,m,H-6)；13C NMR(151MHz,CDCl3)δ:211.8(C-3),146.6(C-3”),146.5(C-3'),143.9(C-4'),144.0(C-4”),133.9(C-1'),132.8(C-1”),121.1(C-6”),121.0(C-6'),111.2(C-2',C-2”),114.5(C-5'),114.4(C-5”),66.8(C-5),56.0(-OCH3),55.8(-OCH3),49.6(C-4),45.7(C-2),38.5(C-6),31.6(C-7),29.5(C-1)。
③选取Fraction 6采用反相色谱分离模式进行第二维制备型高效液相色谱分离，色谱条件：色谱柱为耐纯水柱(XAqua C18,250×100mm,i.d.,10μm)；0.2％甲酸-水(A)和乙腈(B)流动相体系；0～60min，体积浓度25％→55％B梯度洗脱；流速为330mL/min；检测波长为281nm；收集25～60min内的三个色谱主峰，减压干燥回收溶剂，经1H NMR和13C NMR核磁确定获得Fr6-1、Fr6-2和Fr6-3三个单体化合物。HPLC检测纯度均大于98％，经理化测定，数据如下：
Fr6-1：黄色油状物，1H-NMR(CDCl3,600MHz)δ:7.15(2H,d,J＝8.2Hz,H-2”,H-6”),7.05(2H,d,J＝8.2Hz,H-2',H-6'),6.82(2H,d,J＝8.2Hz,H-3”,H-5”),6.80(2H,d,J＝8.2Hz,H-3”,H-5”),6.70(2H,d,J＝8.2Hz,H-3',H-5'),6.34(1H,d,J＝16.0Hz,H-2”),6.01(1H,d,J＝16.0,7.0Hz,H-2”),2.84(1H,d,J＝6.2Hz,H-1),2.82(1H,d,J＝6.2Hz,H-2),2.55(1H,d,J＝7.4Hz,H-4),2.38(1H,d,J＝7.4Hz,H-5)；13C NMR(151MHz,CDCl3)δ:210.2(C-3),157.2(C-4”),156.2(C-4'),132.9(C-1'),131.2(C-7),130.2(C-1”),129.8(C-2',C-6'),127.9(C-2”,C-6”),126.1(C-6),116.0(C-3”,C-5”),115.9(C-5”),115.8(C-3',C-5'),45.0(C-2),42.8(C-4),29.8(C-1),27.9(C-5)。
Fr6-2：黄色粉末，1H-NMR(DMSO-d6,600MHz)δ:7.20(1H,d,J＝16.0,11.0Hz,H-6),6.82(1H,brs,H-2”),6.71(1H,d,J＝8.2Hz,H-6”),6.70(1H,d,J＝16.0Hz,H-7),6.60(1H,d,J＝16.0,11.0Hz,H-5),6.58(1H,d,J＝8.2Hz,H-5”),6.50(2H,d,J＝8.2Hz,H-3',H-5'),6.07(1H,d,J＝16.0Hz,H-7),2.62(1H,d,J＝7.5Hz,H-1),2.70(1H,d,J＝6.2Hz,H-2)；13CNMR(151MHz,CDCl3)δ:201.8(C-3),155.9(C-4'),147.8(C-4”),145.9(C-3”),145.1(C-5),143.0(C-7),132.2(C-1'),129.6(C-4),129.3(C-2',C-6'),128.8(C-1”),122.4(C-6),120.8(C-6”),115.5(C-5”),115.2(C-3',C-5'),113.8(C-2”),41.8(C-2),30.0(C-1)。
Fr6-3：白色粉末，1H-NMR(DMSO-d6,600MHz)δ:6.98(4H,d,J＝8.5Hz,H-3',H-5',H-3”,H-5”),6.67(4H,d,J＝8.5Hz,H-2',H-6',H-2”,H-6”),3.79(2H,m,H-3,H-5),2.61(2H,m,H-1b,H-7b),1.62(4H,m,H-2,H-6),1.48(2H,m,H-4)；13C NMR(151MHz,DMSO-d6)δ:155.7(C-4',C-4”),133.7(C-1',C-1”),129.2(C-2',C-2”,C-6',C-6”),115.0(C-3',C-3”,C-5',C-5”),67.4(C-3,C-5),44.2(C-4),39.2(C-2,C-6),31.0(C-1,C-7)。

Claims (1)

1.唐古特虎耳草中二芳基庚烷类化合物的定向分离纯化方法，包括以下步骤：
（1）采用中压色谱塔，将唐古特虎耳草95%乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位进行色谱分离，按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0~100 min，体积浓度0%→100%B；100~120 min，体积浓度100%B；收集馏分共计8个组分，利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，确定二芳基庚烷类化合物主要分布于馏分7中，将馏分7减压浓缩至恒重，所述减压浓缩是指真空度为0.07~0.09 MPa，温度为50~60℃；所述中压色谱塔色谱分离的工作参数是指装填MCI微孔树脂固定相；中压色谱塔内径为36.0~100.0 mm；制备流动相A水，B为甲醇或乙醇；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为18~50.0 mL/min；
（2）采用二维制备液相色谱***，将中压色谱塔分离所得的馏分7经第一维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0~50 min，体积浓度15%→100%B；50~65 min，体积浓度100%B；利用高效液相色谱结合二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱进行筛查，最终确定收集的馏分共计7个组分，每个组分减压浓缩至恒重，所述减压浓缩是指真空度为0.07~0.09 MPa，温度为50~60℃；所述第一维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为亲水色谱柱XION或XAmide，其内径为20.0~100.0 mm；制备流动相A为正己烷，B为乙醇；样品溶液浓度为100.0~250.0 mg/mL；进样量为2.0~40.0 mL；检测波长为281nm；流速为15~330.0mL/min；
（3）采用二维制备液相色谱***，将步骤（2）所得馏分1~7共7个组分经第二维制备型高效液相色谱分离，并按下述线性梯度洗脱方式进行洗脱：0~60 min，体积浓度25%→55%B；定向收集二芳基庚烷类化合物特征紫外吸收光谱的色谱峰，减压浓缩至恒重，即得二芳基庚烷类化合物单体，所述减压浓缩是指真空度为0.07~0.09 MPa，温度为50~60℃；所述第二维制备型高效液相色谱分离的工作参数是指色谱柱为耐纯水反相色谱柱XAqua C18；其内径为20~100.0 mm；制备流动相A为0.2%甲酸-水，B为乙腈；分离过程中采用紫外检测器检测，检测波长为281nm；流速为15~330.0 mL/min；其中，所得二芳基庚烷类化合物单体的化学结构式如下所示：
Figure 889614DEST_PATH_IMAGE001
、
Figure 275596DEST_PATH_IMAGE002
、
Figure 789754DEST_PATH_IMAGE003
、
Figure 168652DEST_PATH_IMAGE004
、
Figure 451866DEST_PATH_IMAGE005
、
Figure 8749DEST_PATH_IMAGE006
、
Figure 744624DEST_PATH_IMAGE007
和
Figure 677945DEST_PATH_IMAGE008
。
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