CN105861332A - 一种促进带叶兜兰植株生长的菌株及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明属于植物促生菌技术领域,具体涉及的是一种促进带叶兜兰植株生长的菌株及其应用。一种促进带叶兜兰植株生长的菌株,其分类学命名为丝膜菌属b‑2‑2(Cortinarius sp.),于2016年5月12日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,保藏号为GDMCC No.60037。本发明的促进带叶兜兰植株生长的菌株在促进带叶兜兰植株生长中的应用。采用本发明提供的方法促进带叶兜兰植株生长,操作简单、成本低廉。本发明对于带叶兜兰的人工繁育有重要的经济价值。
Description
技术领域
本发明属于植物促生菌技术领域,具体涉及的是一种促进带叶兜兰植株生长的菌株及其应用。
背景技术
兜兰属(Paphiopedilum)植物,花形奇特,花色艳丽,是人们最喜爱的兰科植物之一,人们常称兜兰为“拖鞋兰”、“仙履兰”。近十几年来,由于猖獗走私以及生境破坏等原因,野生兜兰的数量急剧减少,分布区逐渐萎缩,不少种类已经到了灭绝的边缘。
为了缓解对野生植株的采集压力,保护濒危物种,以及满足人们对兜兰属植物的需求,国内外学者对兜兰植物的人工繁殖进行了大量地研究。目前,部分兜兰种类的无菌播种和组织培养技术已获成功,但无菌苗栽培后生长缓慢,成活率低,制约着兜兰的人工繁育。在自然条件下,菌根真菌可以帮助植物度过脆弱的幼苗期长成植株,提高植株提高养分的吸收效率和逆境抵抗力。但因为兜兰属植物菌根真菌分离培养困难,尚缺乏具有较为显著的促生菌株。因此,筛选和培养具有促进兜兰植株生长的菌株对兜兰栽培和种群恢复具有重要意义。
公开于该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解,而不应当被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已为本领域一般技术人员所公知的现有技术。
发明内容
本发明的目的是提供一种促进带叶兜兰植株生长的菌株及其应用。
本发明提供的菌株b-2-2是从硬叶兜兰根部分离得来,经形态学和分子生物学鉴定为担子菌亚门伞菌目的丝膜菌属(Cortinarius sp.),已于2016年5月12日保藏于广东省微生物菌种保藏中心(简称GDMCC,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,广东省微生物研究所,邮编510075),保藏号为GDMCC No.60037。
本发明还提供了所述的菌株A6-2在促进带叶兜兰植株生长中的应用。
与现有技术相比,本发明具有以下有益的技术效果:
1.本发明的菌株b-2-2与带叶兜兰植株共培养可以促进幼苗发育,长出能进行光合作用的叶片,将幼苗移栽至基质培育,幼苗均能存活且生长良好。
2.采用本发明提供的方法促进带叶兜兰育苗效率和进程,操作简单、成本低廉。本发明对于带叶兜兰的人工繁育有重要的经济价值。
保藏信息说明
丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.),保藏编号为GDMCC No.60037,保藏日期为2016年5月12日,保藏单位为广东省微生物菌种保藏中心(GDMCC),保藏地址为广州市先烈中路100号大院59号楼5楼。
附图说明
图1为本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)在PDA固态培养基上的溶的菌落形态;
图2为本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)的菌丝形态;
图3为本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)制备的菌剂对植株生长对比图;
有关附图标记的说明:
CK为未使用本发明的菌剂的植株;b-2-2是使用本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)制备的菌剂的植株。
具体实施方式
下面结合具体的实施例对本发明做进一步的详细说明,所述是对本发明的解释而不是限定。
下述实施例中所用的材料和试剂,如无特殊说明,均可从商业途径得到。下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
实施例1:菌根真菌的分离鉴定和培养
1.1分离及纯化培养基
分离菌根真菌培养基为马铃薯葡萄糖培养基(PDA),马铃薯200g,琼脂6g,葡萄糖15g补水至1000ml,PH自然。依照常规生物学试验方法,配置分离培养基,121℃高压湿热灭菌20min,待培养基冷却至45℃左右,加入链霉素(100ug/ml)和青霉素(100ug/ml),摇匀后制备平板。
1.2菌根真菌分离及纯化方法
菌根真菌分离按照常规组织分离法:取带叶兜兰新鲜营养根,选取在莱卡显微镜下观察选择具有菌丝团的根段,在流水下冲洗干净,用75%酒精漂洗分别处理8min,无菌水冲洗1-2次,再用10%NaClO消毒8min,无菌水冲洗7-8次。将预处理过的根切成1-2mm的小段,然后将处理好的材料置于PDA平板上,24℃恒温培养3-5d,可见从皮层细胞内长出的菌丝长入培养基内。利用菌丝尖端挑取法对菌株进行分离和纯化,再接到试管中保存。
1.3菌根真菌的形态学鉴定
观察菌株的菌落特征,包括菌落形状、大小、色泽、生长速度及菌丝、孢子梗及孢子形态等。观察发现在PDA培养基上,菌落成乳白色,早期菌丝紧贴培养基生长,边缘极不规则;后期可产生大量气生菌丝,并形成毡层状菌丝层,菌落成乳黄色;菌丝生长较慢约5.5d左右即可长满培养皿;菌丝无隔,菌丝融合程度高,易形成菌丝融合圈;不产生孢子。
分子鉴定方法:菌丝的收集:将菌株接种至PDA液体培养基摇菌7-10天(200rpm,25℃),滤纸过滤收集菌丝,用于基因组提取。总DNA提取使用CTAB法。
ITS区段的PCR扩增:rDNA ITS区段的扩增采用通用引物ITS1(5'TCCGTAGGTGAACCTGCGG3'),ITS4(5'TCCTCCGCTTATTGATATGC3')。PCR反应体系的组成为10×Buffer 5ul,10mmol/L NTP(Mg+)1ul,10u mol/L引物各1ul,模板DNA 1ul(终浓度在80ng/L左右),Taq酶1U(0.25ul),用无菌纯水定容至50ul。PCR反应采用BIARAD Engine型PCR仪,循环参数为:预变性95℃,4min,变性95℃,40s,退火56℃,40s,延伸72℃,45s;补平72℃,8min。共进行35个循环。
产物送至北京奥科生物技术有限责任公司进行测序(使用仪器为ABI3730XL)。所得序列结果使用PRIMER3软件进行网上比对,并辅以人工校对,确定序列的可靠性。得到序列在NCBI上BLAST。
测序结果如序列表中序列1所示。将测序结果在GenBank进行在线比对,该菌株与丝膜菌属(Cortinarius sp.)的相似性较高,确定分离到的菌株为胶膜菌属真菌,将其命名为菌株b-2-2。
实施例2:菌剂的制备及应用
2.1液体菌剂制备及应用
采用PDA液体培养基(马铃薯200g,葡萄糖15g补水至1000mL)121℃高压湿热灭菌20min,待培养基冷却至室温。接种菌株A6-2后在摇床以160-220rpm摇菌20d左右,稀释菌液200-300倍,对近期移栽的组培苗进行蘸根或灌根,约60d灌根1次。组培苗出瓶要求为根长至少在2cm以上,3片以上叶片的植株才可移栽。
2.2固体菌剂制备及应用
将栽培基质(松树皮约2m2大小:珍珠岩4:1)浸泡到完全水饱和后在121℃高压湿热灭菌20min,待培养基冷却至室温。接种菌株A6-2制备的菌剂后在30℃放置25d左右,直至观察到树皮有乳白色后为止,将带菌基质分装后移栽组培苗。
对施用菌剂(b-2-2)和未施用菌剂(对照)的移栽苗在移栽后约180d,随机各选择30株进行叶片数、最长叶、根数、最长根和鲜重进行测量,结果如表1所示。
表1本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)制备的菌剂对带叶兜兰植株生物量的影响
注:数据后不同小写字母表示0.05水平上差异显著;不同大写字母表示0.01水平上的差异显著。
如表1可知,施用本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)制备的菌剂的带叶兜兰植株根长度显著增加,鲜重增加也极为显著。
综上所述,本发明的丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.)制备的菌剂可以显著增加植株的叶片生长,促进根的伸长,增加植株生物量的积累。
前述对本发明的具体示例性实施方案的描述是为了说明和例证的目的。这些描述并非想将本发明限定为所公开的精确形式,并且很显然,根据上述教导,可以进行很多改变和变化。对示例性实施例进行选择和描述的目的在于解释本发明的特定原理及其实际应用,从而使得本领域的技术人员能够实现并利用本发明的各种不同的示例性实施方案以及各种不同的选择和改变。本发明的范围意在由权利要求书及其等同形式所限定。
Claims (2)
1.一种促进带叶兜兰植株生长的菌株,其分类学命名为丝膜菌属b-2-2(Cortinarius sp.),于2016年5月12日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,保藏号为GDMCC No.60037。
2.权利要求1所述的促进带叶兜兰植株生长的菌株在促进带叶兜兰植株生长中的应用。
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