CN105838675A - 一种造血干细胞无血清培养基 - Google Patents

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Abstract

本发明的目的在于提供一种造血干细胞无血清培养基，成分包括，细胞因子组合、DMEM培养液、胰岛素、转铁蛋白、BMP‑4、谷胱甘肽、FGF‑2和生长激素。所述细胞因子组合包括IL‑3，IL‑6，SCF和FL，浓度分别为：IL‑3：1‑20ng/ml；IL‑6：1‑100ng/ml；SCF：1‑100ng/ml；FL：1‑100ng/ml。通过研发无血清培养基、改变造血因子的加入顺序，解决目前造血干细胞培养基现有技术的弊端。

Description

一种造血干细胞无血清培养基
技术领域
本发明涉及生物领域，尤其涉及一种造血干细胞无血清培养基。
背景技术
造血干细胞在体液循环中发挥关键作用：一方面，体液中各种血细胞都是由造血干细胞分化而来；另一方面，体液中的血细胞更新和补充也依赖于造血干细胞的增值和分化。随着个性化再生医学技术的兴起，造血干细胞在抗衰老及疾病治疗方面起着日益重要的作用现在临床用于糖尿病、肿瘤、免疫***疾病以及缺血性组织坏死的治疗，造血干细胞移植也用于肿瘤放化疗后的支持治疗，以提高肿瘤治疗效果，降低复发率。
而造血干细胞培养如何实现快速扩增又不影响其功能是造血干细胞培养的关键，然而现有技术中培养造血干细胞技术不够成熟，表现在细胞的增殖速度慢和传代次数较低。
现有的干细胞培养基中添加了胎牛血清(FBS)和动物来源的生长因子。然而这些动物来源的成分会在临床上引起很多潜在的危险：(1)含有的免疫原和毒蛋白能激发免疫反应，发生免疫排斥，比如，体外培养带有动物来源Neu5GC抗体的细胞，移植到人体内后会产生严重的免疫排斥反应。动物来源组分扩增的细胞一直到人体内后会引起严重的过敏反应和免疫排斥反应；(2)增加了病原微生物污染干细胞的危险性，包括病毒和细菌感染、朊病毒和未知的动物传染病；不利于干细胞的临床应用和基础研究。
造血干细胞的增值分化、发育成熟过程相当复杂，依赖于各种造血因子的调节，其中细胞刺激因子发挥的作用极为关键。Ⅲ型酪氨酸激酶受体配体(flt3-ligand FL)是最近几年发现的一种调节早期造血的细胞因子，主要生物活性表现为刺激早期造血干细胞的增值与分化。白细胞介素3(Interleukin3 IL-3)有利于造血细胞的生长和活性维持，然而对造血干细胞早期增值分化有抑制效应。
通过研发无血清培养基、改变造血因子的加入顺序，解决目前造血干细胞培养基现有技术的弊端。
发明内容
本发明的目的在于提供一种无血清的造血干细胞培养基。
为实现本发明的目的，本发明提供了以下技术方案：
一种造血干细胞无血清培养基，成分包括，细胞因子组合、DMEM培养液、胰岛素、转铁蛋白、BMP-4、谷胱甘肽、FGF-2和生长激素。
所述细胞因子组合包括IL-3，IL-6，SCF和FL，浓度分别为：IL-3 1-20ng/ml；IL-61-100ng/ml；SCF 1-100ng/ml；FL 1-100ng/ml。
转铁蛋白的浓度为0.05-0.15μg/ml；BMP-4的浓度为0.05-0.15ng/ml；所述多肽浓度为100-300μg/ml；其特征在于所述FGF-2浓度为5-15ng/ml；所述生长激素浓度为1-20ng/ml。
胰岛素浓度为5-15μg/ml。
所述DMEM培养液为高糖型DMEM培养液，葡萄糖浓度为3000mg/L-4500mg/L。
所述的DMEM培养液包括以下组分：无水氯化钙、无水硫酸铜、九水硝酸铁、七水硫酸亚铁、氯化钾、氯化镁、无水硫酸镁、氯化钠、无水磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、七水硫酸锌、L-精氨酸盐酸盐、L-胱氨酸盐酸盐、L-谷氨酰胺、甘氨酸、L-组氨酸盐酸盐、L-异亮氨酸、L-亮氨酸、L-赖氨酸盐酸盐、L-蛋氨酸、次黄嘌呤、L-苯丙氨酸、L-丝氨酸、L-苏氨酸、L-丙氨酸、L-天门冬酰胺、D-葡萄糖、L-天门冬氨酸、L-半胱氨酸盐酸盐、L-谷氨酸、L-脯氨酸、L-色氨酸、L-酪氨酸、L-缬氨酸、亚油酸、硫辛酸、酚红、维生素B12、1,4-丁二胺二盐酸盐、丙酮酸钠、维生素H、D-泛酸钙、氯化胆碱、胸苷、叶酸、i-肌醇、烟酰胺、盐酸吡哆醛、盐酸吡哆淳、核黄素、盐酸硫胺。
所述的DMEM培养液各组分的浓度为：
一种造血干细胞无血清培养基的使用方法，培养造血干细胞过程如下：a、在制备好DMEM培养液中按浓度加入胰岛素、转铁蛋白、BMP-4、谷胱甘肽、FGF-2和生长激素制作成培养液；b、在24孔板中进行培养，每孔1ml培养液，接种接种所需的造血干细胞，接种密度为1×105cells/ml，于37℃、5％CO2的全饱和湿度下培养；c、培养第一周加入IL-3+IL-6+SCF；第7天同时加入FL直到第四周结束；第14d起停用IL-3。
补充说明
FL是(flt3-ligand)Ⅲ型酪氨酸激酶受体配体；
IL-3是Interleukin3白细胞介素3；
IL-6是Interleukin6白细胞介素6；
SCF是stem cell factor干细胞因子；
BMP-4是Bone Morphogenetic Protein骨形态发生蛋白4；
DMEM是(Dulbeco’s Modified Eagle Medium)杜尔伯科极限必需培养基；
FGF-2是Fibroblast Growth Factor 2成纤维细胞生长因子2；
FBS是胎牛血清；
凋亡率＝凋亡阳性的细胞数/细胞总数×100％。
有益效果：本发明通过研发无血清培养基，即培养基中不加胎牛血清，从而避免了临床应用中可能产生的免疫排斥反应，减少了病原微生物污染的风险；通过改变造血因子的加入顺序，可减弱FL对造血干细胞早起增值的抑制作用，提高造血干细胞在体外增殖分化的活性，降低细胞凋亡率。
具体实施方式
按照表格1配制高糖型DMEM培养液
表1高糖型DMEM配方表
a、配制造血干细胞培养液：在DMEM培养液中按浓度加入胰岛素、转铁蛋白、BMP-4、谷胱甘肽、FGF-2和生长激素制作成造血干细胞培养液；
b、加入细胞因子：实验分成五个组，第一组为不加IL-3的对照组，第二组为不加FL的对照组，第三组为四种细胞因子同时加入，不分先后顺序，第四组为本发明造血干细胞培养方法，第五组为空白对照实验，四种细胞因子均不加，具体情况如下：
第一组IL-6+SCF+FL
第二组IL-3+IL-6+SCF
第三组IL-3+IL-6+SCF+FL
第四组培养第一周加入IL-3+IL-6+SCF；第7天同时加入FL直到第四周结束；第14d起停用IL-3；
其中细胞因子的浓度为IL-3 5ng/ml，IL-6 50ng/ml，SCF 50ng/ml，FL 50ng/ml；
c、接种造血干细胞：培养试验在24孔板中进行，每孔1ml培养液，接种纯化的AC133+细胞，接种密度为1×105cells/ml，于37℃、5％CO2的全饱和湿度下培养。在培养开始及第7天、14天、21天、28天分别计算细胞总数。
结果统计与分析：
AC133+细胞在不同细胞因子组合刺激下扩增倍数
结果分析：细胞扩增方面，除了第四组外，其他组合都在培养21d时扩增倍数达到最高，随后出现下降，且在21d时都小于第四组扩增倍数，第四组的最高扩增倍数为培养28d(9847.2倍)时。说明本发明组合扩增效果最好。
AC133+细胞在不同细胞因子组合刺激下细胞凋亡情况比较(％)
结果分析：结果二：在细胞凋亡方面，都在培养至14d达到最高，以后有所下降。第四组的最高凋亡率为低于其他组合，说明本发明组合凋亡率最低。
以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，可轻易想到的变化或替换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此，本发明的保护范围应该以权利要求的保护范围为准。

Claims (8)

1.一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：成分包括，细胞因子组合、DMEM培养液、胰岛素、转铁蛋白、BMP-4、谷胱甘肽、FGF-2和生长激素。
2.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：所述细胞因子组合包括IL-3，IL-6，SCF和FL，浓度分别为：IL-3 1-20ng/ml；IL-6 1-100ng/ml；SCF 1-100ng/ml；FL 1-100ng/ml。
3.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在：转铁蛋白的浓度为0.05-0.15μg/ml；BMP-4的浓度为0.05-0.15ng/ml；所述多肽浓度为100-300μg/ml；其特征在于所述FGF-2浓度为5-15ng/ml；所述生长激素浓度为1-20ng/ml。
4.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：胰岛素浓度为5-15μg/ml。
5.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：所述DMEM培养液为高糖型DMEM培养液，葡萄糖浓度为3000mg/L-4500mg/L。
6.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：所述的DMEM培养液包括以下组分：无水氯化钙、无水硫酸铜、九水硝酸铁、七水硫酸亚铁、氯化钾、氯化镁、无水硫酸镁、氯化钠、无水磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、七水硫酸锌、L-精氨酸盐酸盐、L-胱氨酸盐酸盐、L-谷氨酰胺、甘氨酸、L-组氨酸盐酸盐、L-异亮氨酸、L-亮氨酸、L-赖氨酸盐酸盐、L-蛋氨酸、次黄嘌呤、L-苯丙氨酸、L-丝氨酸、L-苏氨酸、L-丙氨酸、L-天门冬酰胺、D-葡萄糖、L-天门冬氨酸、L-半胱氨酸盐酸盐、L-谷氨酸、L-脯氨酸、L-色氨酸、L-酪氨酸、L-缬氨酸、亚油酸、硫辛酸、酚红、维生素B12、1,4-丁二胺二盐酸盐、丙酮酸钠、维生素H、D-泛酸钙、氯化胆碱、胸苷、叶酸、i-肌醇、烟酰胺、盐酸吡哆醛、盐酸吡哆淳、核黄素、盐酸硫胺。
7.根据权利要求1所述的一种造血干细胞无血清培养基，其特征在于：所述的DMEM培养液各组分的浓度为：
8.一种权利要求1-7任一项所述的造血干细胞无血清培养基的使用方法，其特征在于：培养造血干细胞过程如下：a、在制备好DMEM培养液中按浓度加入胰岛素、转铁蛋白、BMP-4、谷胱甘肽、FGF-2和生长激素制作成培养液；b、在24孔板中进行培养，每孔1ml培养液，接种接种所需的造血干细胞，接种密度为1×105cells/ml，于37℃、5％CO2的全饱和湿度下培养；c、培养第一周加入IL-3+IL-6+SCF；第7天同时加入FL直到第四周结束；第14d起停用IL-3。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108220241A (zh) * 2017-12-28 2018-06-29 安徽中盛溯源生物科技有限公司 一种红细胞祖细胞无血清培养基及其使用方法
CN108265028A (zh) * 2016-12-30 2018-07-10 联亘生物科技（上海）有限公司 用于体外扩增造血干细胞的培养体系
CN109593717A (zh) * 2018-12-29 2019-04-09 广州和能生物科技有限公司 一种干细胞无血清培养基
CN110894490A (zh) * 2018-09-13 2020-03-20 李陶 一种脐带造血干细胞体外扩增培养体系和脐带造血干细胞体外扩增方法
CN113151172A (zh) * 2021-05-14 2021-07-23 郑州优倍得生物科技有限公司 一种用于扩增脐带血造血干细胞的培养基

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102329769A (zh) * 2011-09-28 2012-01-25 浙江大学 一种获得造血干细胞的方法
CN103805562A (zh) * 2014-01-13 2014-05-21 章毅 培养胎盘间充质干细胞的无血清培养基
CN104711226A (zh) * 2015-04-09 2015-06-17 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种胎盘造血干细胞的制备方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102329769A (zh) * 2011-09-28 2012-01-25 浙江大学 一种获得造血干细胞的方法
CN103805562A (zh) * 2014-01-13 2014-05-21 章毅 培养胎盘间充质干细胞的无血清培养基
CN104711226A (zh) * 2015-04-09 2015-06-17 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 一种胎盘造血干细胞的制备方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HZSWYQ222: "常用细胞培养基配方及缓冲液", 《百度文库》 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108265028A (zh) * 2016-12-30 2018-07-10 联亘生物科技（上海）有限公司 用于体外扩增造血干细胞的培养体系
CN108220241A (zh) * 2017-12-28 2018-06-29 安徽中盛溯源生物科技有限公司 一种红细胞祖细胞无血清培养基及其使用方法
CN108220241B (zh) * 2017-12-28 2021-02-09 安徽中盛溯源生物科技有限公司 一种红细胞祖细胞无血清培养基及其使用方法
CN110894490A (zh) * 2018-09-13 2020-03-20 李陶 一种脐带造血干细胞体外扩增培养体系和脐带造血干细胞体外扩增方法
CN109593717A (zh) * 2018-12-29 2019-04-09 广州和能生物科技有限公司 一种干细胞无血清培养基
CN113151172A (zh) * 2021-05-14 2021-07-23 郑州优倍得生物科技有限公司 一种用于扩增脐带血造血干细胞的培养基

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