CN105713841B - 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用 - Google Patents

一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用 Download PDF

Info

Publication number
CN105713841B
CN105713841B CN201610184554.0A CN201610184554A CN105713841B CN 105713841 B CN105713841 B CN 105713841B CN 201610184554 A CN201610184554 A CN 201610184554A CN 105713841 B CN105713841 B CN 105713841B
Authority
CN
China
Prior art keywords
fusarium oxysporum
bitter buckwheat
fataf9
mycelia
polysaccharide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201610184554.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105713841A (zh
Inventor
赵江林
赵钢
钟灵允
彭镰心
邹亮
向达兵
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Huantai Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Chengdu University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Chengdu University filed Critical Chengdu University
Priority to CN201610184554.0A priority Critical patent/CN105713841B/zh
Publication of CN105713841A publication Critical patent/CN105713841A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105713841B publication Critical patent/CN105713841B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungal isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/77Fusarium
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01CPLANTING; SOWING; FERTILISING
    • A01C1/00Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
    • A01C1/02Germinating apparatus; Determining germination capacity of seeds or the like

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Soil Sciences (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
  • Cosmetics (AREA)

Abstract

本发明公开了一种尖孢镰孢,所述尖孢镰孢于2014年11月21日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号CGMCC No.10102。还公开了尖孢镰孢在苦荞麦种子萌发预处理上的应用。本发明尖孢镰孢对苦荞麦种子的预处理方法简单易行,成本低廉、容易操作、无过高的技术要求,且提高苦荞种子发芽率和缩短萌发时间效果十分明显。

Description

一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用
技术领域
本发明属于微生物技术领域,涉及一种真菌及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用,尤其涉及一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用。
背景技术
苦荞又称鞑靼荞麦(Fagopyrum tataricum),是一种著名的食药两用杂粮作物,具有很高的营养价值和保健功能。苦荞富含蛋白质、淀粉、脂肪、维生素、矿物质和微量元素等营养功能成分,尤其是苦荞中所含有的芦丁、槲皮素等生物黄酮类活性成分,具有降低血糖、胆固醇、血脂和增强人体免疫力等功效。我国是世界上第一大苦荞种植生产国,其常年种植面积在600万亩以上,年产量约40万吨,主产区主要集中在长江以南的四川、云南、贵州和西藏等省区。
目前当季收获的新鲜苦荞麦子发芽率通常在95%以上。然而,苦荞麦种子在自然环境存储过程中随着储存时间的增加,其酶蛋白逐渐发生变性,胚乳内的养分有所减少,从而导致发芽质量下降,造成发芽率降低,其中一年后其发芽率降为80-85%,两年后降低为50-60%,三年后发芽率仅为20-25%,甚至不发芽,其幼苗的质量及活力也大为降低,严重影响苦荞麦的种植生产及进一步开发利用。
发明内容
本发明要解决的技术问题在于,针对现有技术的缺陷,提供一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用。尖孢镰孢对苦荞麦种子的预处理方法简单易行,成本低廉、容易操作、无过高的技术要求,且在提高苦荞种子发芽率和缩短萌发时间效果十分明显。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是:
本发明提供一种新型的尖孢镰孢,命名为尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9,所述尖孢镰孢于2014年11月21日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号CGMCC No.10102。尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9自健康苦荞植株中分离所得,为一株苦荞内生真菌。
尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9具有以下特征:
在PDA平板上的菌落为紫色,边缘白色,背部轮纹状,白色和紫色相间,菌落边缘整齐,气生菌丝较长,大孢子近镰刀形或长椭圆形,2~3个隔,小孢子为卵圆形或椭圆形,两种孢子大小为(4.3μm~17.5μm)×(1.8μm~4.7μm)。
该尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9在PDA培养基上生长良好,适宜的生长温度为20℃~32℃,最佳生长温度为25℃~28℃。另外,尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9培养是在好氧条件进行的,培养基的适宜pH范围为pH6.0~pH7.5。
所述的尖孢镰孢的ITS序列为:
尖孢镰孢Fataf9的基因同源性的***发育树为:
尖孢镰孢可以在苦荞麦种子萌发预处理上有具体应用。
所述的尖孢镰孢在苦荞麦种子萌发预处理上的应用,包括以下处理方法:
A、尖孢镰孢菌丝水提多糖的制备:将尖孢镰孢菌丝接种培养,收获菌丝体;菌丝体干燥后先去除单糖、二糖和脂类物质,再水提、精制后得到菌丝水提多糖;
B、纯度测定:测定尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的糖含量及相应纯度,以葡萄糖为标准品建立标准曲线;
C、处理液的配制:取尖孢镰孢菌丝水提多糖溶于无菌水中,调整其浓度为15-25mg/mL,过滤后备用;
D、苦荞麦种子消毒:选取成熟饱满、大小一致、无霉变的苦荞麦种子用消毒剂浸泡消毒,然后用无菌水洗净,晾干;
E、苦荞麦种子处理:将消毒后的苦荞麦种子置于步骤C所制得的并稀释的处理液中,在25℃、黑暗条件下浸泡10-16h,苦荞麦种子重量与处理液的体积比为1:10(m/v);
所述的尖孢镰孢在苦荞麦种子萌发预处理上的应用,优选所述步骤A中,尖孢镰孢菌丝接种培养时,采用将活化的菌丝接种在PD培养基上,所述PD培养基含有苦荞粉水提液。
所述的尖孢镰孢在苦荞麦种子萌发预处理上的应用中,优选所述步骤E中,稀释的处理液的浓度为150-200μg/mL。
本发明以源自苦荞麦自身的有益内生真菌--尖孢镰孢Fataf9所产生的活性代谢物(菌丝水提多糖WPS)为诱导物对苦荞种子进行预处理,提高种子发芽率,且对苦荞种子无毒害作用,安全性高,促进萌发效果显著。尖孢镰孢Fataf9制备方便,有利于生产中规模化使用。采用尖孢镰孢Fataf9进行预处理的处理方法简单易行,成本低廉,容易操作,无过高的技术要求,并且提高苦荞种子发芽率和缩短萌发时间效果十分明显。同时,该方法具有很好的经济社会价值和应用前景。
附图说明
下面将结合附图及实施例对本发明作进一步说明,附图中:
图1是对不同储存年限的苦荞麦种子,本发明实施例与未处理的种子发芽率对比图;
图2是对不同储存年限的苦荞麦种子,本发明实施例与未处理的种子发芽率对比图。
图1图示中每组柱形图中6个柱体分别依次代表西荞1号(对照)、西荞1号(WPS处理)、川荞1号(对照)、川荞1号(WPS处理)、米荞1号(对照)和米荞1号(WPS处理)后的种子发芽率。
图2图示中每组柱形图中6个柱体分别依次代表西荞1号(对照)、西荞1号(WPS处理)、川荞1号(对照)、川荞1号(WPS处理)、米荞1号(对照)和米荞1号(WPS处理)后的种子发芽率。
具体实施方式
为了对本发明的技术特征、目的和效果有更加清楚的理解,现对照附图详细说明本发明的具体实施方式。
一、尖孢镰孢Fataf9的分离培养和鉴定
分离纯化
1、苦荞麦处理:选取健康的苦荞麦根和茎,对其根茎表面先用70%乙醇处理30s,然后用0.2%氯化汞处理20min进行表面消毒,去除苦荞麦的根茎表皮,将根、茎分成约0.5cm×0.5cm×0.5cm大小的块段,摆放在马铃薯葡萄糖琼脂(PDA)培养基上。
2、培养:先将PDA培养基中加入200μg/mL硫酸链霉素(Streptomycin sulfate)抑制细菌干扰,然后将其置于25℃下进行暗培养。
3、分离纯化:从培养第3天开始观察,观察PDA平板中苦荞根、茎组织块上长出的真菌菌落,在无菌操作条件下用接种针挑取其边缘菌丝进行分离培养;进一步对所分离得到的真菌菌落进行分离纯化,连续纯化4-5次,至菌落形态一致,即得到苦荞麦尖孢镰孢Fataf9。
然后将苦荞尖孢镰孢Fataf9保存在PDA试管斜面和平板上,并对其进行形态特征观察和分子生物学鉴定。
培养性状观察
将在PDA平板上生长良好的尖孢镰孢Fataf9打菌饼,菌饼直径为Ф=5mm,每个PDA平板上放置一块直径6cm的玻璃纸,将菌饼接种到玻璃纸上,25℃下黑暗培养,每24h观察记录Fataf9菌落的形状、大小、色泽变化、质地、生长速度、是否产生色素等。
该尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9在PDA培养基上生长良好,适宜的生长温度为20℃~32℃,最佳生长温度为25℃~28℃。另外,尖孢镰孢(Fusarium oxysporum)Fataf9培养是在好氧条件进行的,培养基的适宜pH范围为pH6.0~pH7.5。
显微观察
将玻璃纸从PDA平板上取下,剪成1cm2大小,将其置于载玻片上,以无菌水为浮载剂制成标本后,在显微镜下观察菌丝体的粗细、分生孢子体的着生部位、形状、类型、大小、产孢方式等详细情况,以及分生孢子的出芽方式、是否有隔、大小、形状、表面特点、色泽等形态特征。
在PDA平板上的菌落为紫色,边缘白色,背部轮纹状,白色和紫色相间,菌落边缘整齐,气生菌丝较长,大孢子近镰刀形或长椭圆形,2~3个隔,小孢子为卵圆形或椭圆形,两种孢子大小为(4.3μm~17.5μm)×(1.8μm~4.7μm)。
分子生物学鉴定
活化苦荞尖孢镰孢Fataf9打菌饼,菌饼直径为Ф=5mm,将其接种到PD液体培养基上,在25℃、150rpm下暗培养6天后收获,真空抽滤至干,收获新鲜菌丝。然后采用CTAB冻融法提取尖孢镰孢Fataf9的基因组DNA。
然后选用真菌通用引物:序列1:ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和序列2:ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)对尖孢镰孢Fataf9的ITS区进行PCR扩增。扩增后的序列测序得到的结果与GenBank中其它种的真菌ITS全序列进行比对,找出相似性最高的亲缘关系最近的真菌。
所述的尖孢镰孢的ITS序列(序列3)为:
二、所述的尖孢镰孢Fataf9在苦荞麦种子萌发预处理上的应用:
1、具体应用是包括以下处理方法:
A、尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的制备:将尖孢镰孢菌丝接种培养,收获菌丝体;菌丝体干燥后先去除单糖、二糖和脂类物质,再水提、精制后得到菌丝水提多糖。
具体为:从斜面上挑取少许尖孢镰孢菌丝到PDA平板上活化培养,然后将尖孢镰孢Fataf9活化的菌丝接种于盛有PD培养基的三角瓶中,PD培养基中优选含2.5g/L的苦荞粉水提液,将其在25℃、150rpm下暗培养7d后收获菌丝体;将所得尖孢镰孢Fataf9菌丝体进行真空冷冻干燥,粉碎,采用95%乙醇:石油醚(1:1,v/v)对其进行热回流提取,以去除单糖、二糖和脂类物质。然后称取定量预处理的尖孢镰孢Fataf9菌丝粉末,采用90℃热水回流提取结合醇沉、透析等方法得到尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖(WPS)。
B、纯度测定:测定尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的糖含量及相应纯度,以葡萄糖为标准品建立标准曲线;纯度测定是采用硫酸蒽酮比色法测定尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的糖含量及相应纯度。
C、处理液的配制:取菌丝水提多糖溶于无菌水中,调整其浓度为15-25mg/mL,过滤后得处理液备用;过滤方式可以采用多种,本实施例采用经微孔滤膜(0.4μm)过滤。
D、苦荞麦种子消毒:选取成熟饱满、大小一致、无霉变的苦荞麦种子用消毒剂浸泡消毒,然后用无菌水洗净,晾干;消毒剂采用0.5%次氯酸钠溶液,也可以采用其他适用本发明的消毒剂。消毒浸泡时间为10-15min。
E、苦荞麦种子处理:将消毒后的苦荞麦种子置于步骤C所制得的处理液中,在25℃、黑暗条件下浸泡10-16h,苦荞麦种子重量与处理液的体积比为1:10(m/v),处理后的种子即可用于种植。
苦荞麦种子的发芽率通过发芽培养实验进行验证。
发芽培养的条件为:培养温度25℃、湿度70-75%,每天光照时间为10-12小时。
以下以具体实施例来说明本发明的应用:
实施例1
1、尖孢镰孢Fataf9在苦荞麦种子萌发预处理上的应用包括以下处理方法:
(1)尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的制备:
a.尖孢镰孢Fataf9的发酵培养:从试管斜面上挑取少许尖孢镰孢菌丝到PDA平板上活化培养5天,然后将活化的尖孢镰孢菌丝接种于PD培养基,其中按照每200mL PD溶液需加入20.0-25.0g/L的苦荞粉水提液20mL计,在PD培养基中加入苦荞粉水提液。接种后于25℃、150rpm下悬浮培养7天后收获,离心(4000rpm)得到尖孢镰孢Fataf9新鲜菌丝体。
b.尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的制备:
将所得尖孢镰孢Fataf9鲜菌丝体进行真空冷冻干燥,粉碎,然后采用95%乙醇:石油醚(1:1,v/v)对其在50-55℃下进行热回流提取2h,以去除菌丝体中的单糖、二糖和脂类物质,离心,收集残渣,50-55℃下烘干。
水提:称取定量预处理Fataf9菌丝粉末,将其置于热回流提取器内,添加一定比例的蒸馏水进行热回流提取,提取条件为:水料比为25:1-30:1(v/w)、提取温度90℃,提取时间2-3h,共提取2次,合并提取液。
分离精制:通过离心的方式分离提取液和菌丝体残渣,离心上清液浓缩至一定体积,添加3倍体积95%乙醇,在4℃下沉淀48~72h,然后采用离心方式将沉淀和上清液分开,收集沉淀,依次用无水乙醇、丙酮洗涤。
进一步将其溶液置于透析袋中透析,每隔12h更换一次透析外液(本实施例采用去离子水作为透析外液),48h后,将透析袋内溶液进行真空冷冻干燥,即得苦荞尖孢镰孢Fat9菌丝水提多糖(WPS)。
c.处理液的配制:取一定量的苦荞尖孢镰孢Fat9菌丝水提多糖(经硫酸蒽酮比色法测定,其纯度达到85.6%),将其溶于无菌水中,调整其浓度为20.0mg/mL,经微孔滤膜(0.4μm)过滤后备用。
(2)苦荞种子的选取:选择成熟饱满、大小适中、均匀一致、无霉变健康的苦荞种子作为材料。
(3)苦荞种子的消毒:将选取的苦荞种子用0.5%次氯酸钠溶液浸泡处理10min,然后用无菌水洗净,将其置于无菌滤纸上晾干。
(4)Fataf9菌丝水提多糖诱导处理苦荞种子:将消毒后的苦荞种子置于(1)所制得的处理液WPS溶液中(浓度调至150μg/mL),在25℃、黑暗条件下浸泡12-16h,种子重量与菌丝多糖溶液的体积比为1:10(m/v)。
(5)苦荞种子发芽培养:将经过步骤(4)处理的苦荞种子均匀放置在铺有3层润湿滤纸的发芽盒(120×120×50mm)内,每盒100粒种子,然后将其置于人工气候箱内(温度25℃,湿度70-75%,光照时间12h/天)进行发芽培养,发芽周期为2-4d。发芽结束后,统计其发芽率。
实施例2
(1)尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖和处理液的制备方法同实施例1。
(2)苦荞种子的选取:选择成熟饱满、大小适中、均匀一致、无霉变健康的苦荞种子作为材料。
(3)苦荞种子的消毒:将选取的苦荞种子用0.5%次氯酸钠溶液浸泡处理10min,然后用无菌水洗净,将其置于滤纸上晾干。
(4)Fataf9菌丝水提多糖诱导处理苦荞种子:将消毒后的苦荞种子置于(1)所制得的处理液WPS溶液中(浓度调至200μg/mL),在25℃、黑暗条件下浸泡10-12h,种子重量与菌丝多糖溶液的体积比为1:10(m/v)。
(5)苦荞种子发芽培养:将经过步骤(4)处理的苦荞种子均匀放置在铺有3层润湿滤纸的发芽盒(120×120×50mm)内,每盒100粒种子,然后将其置于人工气候箱内(温度25℃,湿度70-75%,光照时间10h/天)进行发芽培养,发芽周期为2-4d。发芽结束后,统计其发芽率。
采用下述实验验证本发明效果:
对比实验1:
提高苦荞麦种子萌发的预处理方法按照以下步骤进行:
采用实施例1的方法,制备浓度为150μg/mL的苦荞尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖(WPS)溶液,备用。
选取当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1年、1.5年、2.0年、2.5年,以及3.0年的苦荞种子(西荞1号)为实验材料。
将不同储存期的苦荞麦种子用0.5%次氯酸钠溶液浸泡处理10min,然后用无菌水洗净,将其置于滤纸上晾干。
将消毒后的苦荞种子分别置于WPS溶液中(浓度调至150μg/mL),在25℃、黑暗条件下浸泡16h,种子重量与菌丝多糖溶液的体积比为1:10(m/v)。
五、将处理后的各苦荞种子均匀放置在铺有3层润湿滤纸的发芽盒内,每盒100粒种子,然后将其置于人工气候箱内(温度25℃,湿度70-75%,光照时间12h/天)进行发芽培养。发芽结束后,统计其发芽率。
空白对照:将各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子不经WPS溶液处理,而只是置于无菌水中,浸泡温度、时间及料液比均与上述处理方法一致。
如图1所示,本对比实验1中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到91%,86.3%,83.0%,72.0%,61.0%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第2个柱体,相应空白对照的发芽率为82.3%,74.7%,56%,35%,21.3%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第1个柱体,本发明的发芽率为空白对照的1.1-2.9倍,平均萌发时间有效缩短为60小时。
对比实验2:
以当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1.0年、1.5年、2.0年、2.5年和3.0年的苦荞种子“川荞1号”作为实验材料,其余提高苦荞麦种子萌发的预处理方法与对比实验1相同。
如图1所示,本实验中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到90.3%,85.3%,82.0%,73.0%,62.3%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第4个柱体,相应空白对照的发芽率为82.0%,73.7%,55.7%,34.0%,22.7%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第3个柱体,本发明的发芽率为空白对照的1.1-2.7倍,平均萌发时间有效缩短为60小时。
对比实验3:
以当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1.0年、1.5年、2.0年、2.5年和3.0年的苦荞种子“米荞1号”作为实验材料,其余提高苦荞麦种子萌发的预处理方法与对比实验1相同。
如图1所示,本实验中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到91.3%,86.0%,81.0%,69.0%,60.3%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第6个柱体,相应空白对照的发芽率为83.0%,76.0%,58.0%,38.0%,22.3%,在图1中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第5个柱体),本发明的发芽率为空白对照发芽率的1.1-2.7倍,平均萌发时间有效缩短为48小时。
对比实验4:
提高苦荞麦种子萌发的预处理方法按照以下步骤进行:
根据实施例2,制备浓度为200μg/mL的苦荞尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖(WPS)溶液作为处理液,备用。
选取当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1年、1.5年、2.0年、2.5年,以及3.0年的苦荞种子(西荞1号)为实验材料。
将不同储存期的苦荞麦种子用0.5%次氯酸钠溶液浸泡处理10min,然后用无菌水洗净,将其置于滤纸上晾干。
将消毒后的苦荞种子分别置于WPS溶液中(浓度调至200μg/mL),在25℃、黑暗条件下浸泡12h,种子重量与菌丝多糖溶液的体积比为1:10(m/v),空白对照:将各苦荞种子置于无菌水中,浸泡温度,时间及料液比均与上述处理方法一致。
将处理后的各苦荞种子均匀放置在铺有3层润湿滤纸的发芽盒内,每盒100粒种子,然后将其置于人工气候箱内(温度25℃,湿度70-75%,光照时间10h/天)进行发芽培养。
如图2所示,本实验中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到91.7%,87.7%,81.7%,71.0%,58.7%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第2个柱体,相应空白对照的发芽率为82.3%,74.7%,56%,35%,21.3%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第1个柱体,本发明的发芽率为空白对照的1.1-2.8倍,平均萌发时间有效缩短为48小时。
对比实验5:
以当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1.0年、1.5年、2.0年、2.5年和3.0年的苦荞种子“川荞1号”作为实验材料,其余提高苦荞麦种子萌发的预处理方法与实验四相同。
如图2所示,本实验中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到90.0%,86.3%,81.3%,74.0%,60.7%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第4个柱体,相应空白对照的发芽率为82.0%,73.7%,55.7%,34.0%,22.7%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第3个柱体,本发明的发芽率为空白对照的1.1-2.7倍,平均萌发时间有效缩短为54小时。
对比实验6:
以当季收获的新鲜苦荞种子(0年)以及室温自然储存0.5年、1.0年、1.5年、2.0年、2.5年和3.0年的苦荞种子“米荞1号”作为实验材料,其余提高苦荞麦种子萌发的预处理方法与实验四、五相同。本实验中经Fataf9菌丝多糖溶液处理后各储存年限(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0年)的苦荞种子发芽率分别达到90.3%,86.3%,80.0%,70.0%,58.7%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第6个柱体,相应空白对照的发芽率为83.0%,76.0%,58.0%,38.0%,22.3%,在图2中分别依次为柱形图第3组、第4组、第5组、第6组中和第7组中的第5个柱体,本发明的发芽率为空白对照的1.1-2.6倍,平均萌发时间有效缩短为36小时。

Claims (2)

1.一种尖孢镰孢菌丝水提多糖在苦荞麦种子萌发预处理上的应用,尖孢镰孢Fataf9于2014年11月21日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号CGMCCNo.10102。
2.根据权利要求1所述的尖孢镰孢菌丝水提多糖在苦荞麦种子萌发预处理上的应用,其特征在于,包括以下处理方法:
A、尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的制备:将尖孢镰孢Fataf9菌丝接种培养,收获菌丝体;菌丝体干燥后先去除单糖、二糖和脂类物质,再水提、精制后得到尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖;
B、纯度测定:测定尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖的糖含量及相应纯度,以葡萄糖为标准品建立标准曲线;
C、处理液的配制:取尖孢镰孢Fataf9菌丝水提多糖溶于无菌水中,调整其浓度为15-25mg/mL,过滤后备用得到处理液;
D、苦荞麦种子消毒:选取成熟饱满、大小一致、无霉变的苦荞麦种子用消毒剂浸泡消毒,然后用无菌水洗净,晾干;
E、苦荞麦种子处理:将消毒后的苦荞麦种子置于步骤C所制得并稀释的处理液中,在25℃、黑暗条件下浸泡10-16h,苦荞麦种子重量与处理液的体积比为1:10(m/v);
所述步骤A中,尖孢镰孢Fataf9菌丝接种培养时,采用将活化的菌丝接种在PD培养基上,所述PD培养基含有苦荞粉水提液;
所述步骤E中,稀释的处理液的浓度为150-200μg/mL。
CN201610184554.0A 2016-03-28 2016-03-28 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用 Active CN105713841B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610184554.0A CN105713841B (zh) 2016-03-28 2016-03-28 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610184554.0A CN105713841B (zh) 2016-03-28 2016-03-28 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105713841A CN105713841A (zh) 2016-06-29
CN105713841B true CN105713841B (zh) 2019-04-19

Family

ID=56158476

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610184554.0A Active CN105713841B (zh) 2016-03-28 2016-03-28 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105713841B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107494541B (zh) * 2017-08-28 2020-09-11 成都大学 抗倒伏调节剂及提高作物苗期抗倒伏能力的方法
CN107432135B (zh) * 2017-09-18 2020-09-29 山西大学 利用真菌促进锁阳种子萌发的方法
CN109182144A (zh) * 2018-09-29 2019-01-11 江苏农林职业技术学院 促进紫皮石斛种子萌发的真菌诱导子及其制备方法与应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
非致病尖孢镰孢FO47和FO47B10的防病促生作用研究;杨猛;《中国优秀博硕士学位论文全文数据库 (硕士) 农业科技辑》;20070515;第18页第4-9行,第26页第2段 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN105713841A (zh) 2016-06-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106399129B (zh) 一株哈茨木霉菌株及其应用
CN109452088B (zh) 金针菇x18及其栽培方法
CN107475130B (zh) 细柄棒束孢新菌种及其栽培方法和用途
CN105713841B (zh) 一种尖孢镰孢及其在苦荞麦种子萌发预处理上的应用
CN117417840B (zh) 一种外生菌根真菌云南硬皮马勃zss01及其应用
CN108865895A (zh) 蝙蝠蛾拟青霉zjb18001及其应用
CN103224900B (zh) 一种植物内生菌及其应用
CN102399703B (zh) 一种具杀线虫活性的木霉属真菌及其制备方法与应用
CN105462850B (zh) 越南槐内生真菌sdte-p在防治三七根腐病中的应用
CN106119136A (zh) 黑附球菌及其应用
CN113684138B (zh) 一种赫氏灵芝新菌株及其人工栽培方法
CN115261283A (zh) 一种蜡样芽孢杆菌及其在旱作马铃薯病害防控中的应用
CN105483020B (zh) 越南槐内生真菌trxy-34-1在防治三七根腐病中的应用
CN104982225B (zh) 雄性蚕虫草培育工艺及培养蚕虫草母种的方法
CN110343621A (zh) 一种棘孢木霉菌株及其应用
CN105462854B (zh) 越南槐内生真菌sdte-p在防治三七炭疽病中的应用
CN105462847B (zh) 越南槐内生真菌trxy-46在防治三七根腐病中的应用
CN109402215A (zh) 一种分离自桑椹白化病果新病原的鉴定及致病性检测方法
CN107893034A (zh) 一种金针菇病原细菌的鉴定及抗病白色金针菇菌株的筛选方法
CN105695334B (zh) 一种新的棘孢木霉及其用途
CN103789222A (zh) 防治苹果果实轮纹病的生防菌娄彻氏链霉菌a-1及其生防制剂
CN109220514B (zh) 一种野生新食用菌的分离及其人工驯化栽培方法
CN110447457A (zh) 一种血红密孔菌新菌株及其人工栽培方法和用途
CN106085880B (zh) 一种黑粉菌的分离方法及所用培养基
CN105219651B (zh) 一种提高水稻抗干旱、盐害胁迫能力的内生烟曲霉及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
TR01 Transfer of patent right
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20221122

Address after: No. 979, Airport 3rd Road, Airport Economic Development Zone, Shuangliu District, Chengdu, Sichuan 610200

Patentee after: Huantai Biotechnology Co.,Ltd.

Address before: 610106 Sichuan province Chengdu City Shiling Town East

Patentee before: CHENGDU University