CN105492613B - 用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法 - Google Patents

用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN105492613B
CN105492613B CN201380064321.1A CN201380064321A CN105492613B CN 105492613 B CN105492613 B CN 105492613B CN 201380064321 A CN201380064321 A CN 201380064321A CN 105492613 B CN105492613 B CN 105492613B
Authority
CN
China
Prior art keywords
propanol
propionibacterium freudenreichii
propionic acid
fermentation
adhe gene
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201380064321.1A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105492613A (zh
Inventor
S-T·杨
E·阿马尔
C·C·斯托瓦斯
B·A·罗德里格兹
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Ohio University
Dow Global Technologies LLC
Original Assignee
Ohio University
Dow Global Technologies LLC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ohio University, Dow Global Technologies LLC filed Critical Ohio University
Publication of CN105492613A publication Critical patent/CN105492613A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105492613B publication Critical patent/CN105492613B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0006—Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L19/00—Products from fruits or vegetables; Preparation or treatment thereof
    • A23L19/01—Instant products; Powders; Flakes; Granules
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L19/00—Products from fruits or vegetables; Preparation or treatment thereof
    • A23L19/09—Mashed or comminuted products, e.g. pulp, purée, sauce, or products made therefrom, e.g. snacks
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/24—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • C07K14/245—Escherichia (G)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0008—Oxidoreductases (1.) acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/52—Propionic acid; Butyric acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y101/00—Oxidoreductases acting on the CH-OH group of donors (1.1)
    • C12Y101/01—Oxidoreductases acting on the CH-OH group of donors (1.1) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.1.1)
    • C12Y101/01001—Alcohol dehydrogenase (1.1.1.1)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y102/00—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • C12Y102/01—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.2.1)
    • C12Y102/01003—Aldehyde dehydrogenase (NAD+) (1.2.1.3)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y102/00—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • C12Y102/01—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.2.1)
    • C12Y102/0101—Acetaldehyde dehydrogenase (acetylating) (1.2.1.10)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y102/00—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
    • C12Y102/01—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.2.1)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Fruits And Vegetables (AREA)
  • Confectionery (AREA)

Abstract

本发明制备一种代谢工程化丙酸杆菌，其被基因组修饰以表达被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的对丙酰‑CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶，并且将其用于发酵方法中以生物合成地制备正丙醇、丙酸或其组合。

Description

用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法
本申请案要求2012年12月21日提交的美国临时专利申请案61/740,490的优先权，所述申请案以全文引用的方式并入本文中。
技术领域
本发明涉及代谢工程化细菌，以及其制备和其在一种用于将生物基底物生物转化成含有正丙醇、丙酸或其组合的产物的方法中的用途。
背景技术
对化石燃料的未来稀缺、成本和环境影响的顾虑已经激起人们对开采廉价、可再生生物质作为燃料和化学品的替代来源的关注。由于原油价格已经上涨，生物基化学品和工业产品已经变为来源于石油的对应物的有吸引力的替代方案。使用厌氧微生物的发酵方法提供用于将生物质和农业废物转化成化学品和燃料的有前景的途径。存在大量的需要适当处置以避免污染问题的低值农业商品和食品加工副产品/废物。这些生物质废物材料可以用作生产燃料和化学品(例如有机酸和醇)的低成本原料。通过发酵途径衍生的产物尤其为正丙醇和丙酸。
正丙醇(1-丙醇、伯丙醇、丙-1-醇)为可与水和其它常用溶剂自由混溶的无害溶剂，其在工业中有大量应用。这些应用包括例如印刷墨、涂料、清洁剂、粘合剂、除草剂、杀昆虫剂、药物、除冰流体，以及作为用于生产酯、丙胺、卤化物和热塑性树脂的中间物。还已经提出了在燃料掺合物中使用正丙醇，因为这种醇具有与乙醇相同的用于增加辛烷值以及充当汽油中的抗爆添加剂的能力。
举例来说，丙酸是广泛用于生产纤维素塑料、除草剂以及香料的重要化学品。丙酸也是重要的防霉剂。其氨盐、钙盐、钠盐以及钾盐广泛用作食品和饲料防腐剂。某些其它羧酸也具有工业价值，例如琥珀酸，其能够氢解以产生丁二醇，所述丁二醇适用于生产聚酯和热成型树脂。
虽然正丙醇与丙酸两者都可以通过发酵方法产生，但许多常规发酵方法具有生产率(productivity)、产率(yield)以及最终产物浓度和纯度低的问题，并且其对于商业应用而言是不经济的。目前，大部分商业出售的丙酸通过石油化学方法产生。然而，人们对通过丙酸杆菌由糖的发酵来产生丙酸的关注已经逐渐增加。尽管通过各种方法和菌株改良来提升发酵生产率和最终产物浓度已经取得一些成功，但在发酵方法中如何进一步提升丙酸产率和纯度仍然是一个难题。开发用于化学生产的经济上可行的发酵方法需要不仅具有高生产率并且可以容许高浓度的发酵产物的微生物。
用于改良工业微生物的方法在经典菌株改良(CSI)的随机方法到代谢工程的极合理方法范围内。尽管CSI是众所周知并且常用的方法，但其就时间与资源两者而言都是密集型的。为了获得对抑制性发酵产物具有高耐受性的菌株，通过在培养基中用逐渐增加的抑制剂浓度连续培养来连续筛选和选择突变体通常与通过化学诱变剂或紫外线(UV)辐射来诱发诱变结合使用。然而，常规的培养物筛选过程是冗长、耗时的并且通常是徒劳的。最近，还已经对重组DNA技术加以应用来提升对抑制性产品的细胞耐受性。这些方法通常更有效，但使用起来也更复杂，并且需要了解在基因水平上的详细抑制机制，这对于受到特别工业关注的多数微生物而言是无法获得的。
代谢工程广泛用于设计工程化菌株以通过改变代谢流量分布来实现代谢过度生产的较高效率。迄今为止的大部分代谢工程研究与使用生物来产生次级代谢物(例如抗生素)、氨基酸(例如赖氨酸)以及异源蛋白质有关，所述生物具有经充分研究的遗传学和生理学(例如，大肠杆菌(E.coli)、酵母以及杂交瘤细胞)。对代谢流量分布的化学计量分析为代谢工程、最佳培养基调配和喂养策略以及生物过程最佳化提供指导，然而其需要对发酵细胞中的代谢和调节网络的深入了解。尽管合理代谢工程方法已经在涉及单个基因或一个基因簇内的一些基因的情况下取得成功，但其在涉及复杂或在很大程度上未知的代谢途径的许多情况下是无效的。这是因为合理代谢工程方法通常一次靶向一个基因，并且因此不能预测途径中的多个基因之间的复杂相互作用。
丙酸杆菌是革兰氏阳性(Gram-positive)、过氧化氢酶阳性、无芽孢形成、不动、兼性厌氧的杆状细菌。丙酸杆菌属(Propionibacterium)的成员(以复数形式或以在这个属内的任何单个但未鉴别的物种的形式，统称为“丙酸杆菌(propionibacteria或apropionibacteria)”广泛用于产生维生素B12、四吡咯化合物和丙酸，以及用于益生菌和乳酪工业。如图1所示，丙酸杆菌通过二羧酸途径产生丙酸，其中产生乙酸盐和琥珀酸盐作为副产物。理论上，当糖酵解是通过恩伯登-梅耶霍夫-帕纳斯(Embden-Meyerhof-Parnas，EMP)途径时，一摩尔(mol)葡萄糖仅产生4/3mol丙酸盐和2/3mol醋酸盐。当存在显著细胞生长和生物质形成时，实际丙酸盐产率低得多。即使在10克每升(g/L)的相对低浓度下，丙酸盐也是对发酵的强抑制剂。典型分批丙酸发酵需要大致3天以达到20g/L丙酸，其丙酸产率通常小于0.5克每克(g/g)葡萄糖。丙酸杆菌广泛用于工业中，并且已经对其中的若干种的基因组进行完全测序。参见例如帕里奇(Parizzi)等人，“丙酸丙酸杆菌(Propioni-bacterium acidipropionici)的基因组序列对其生物技术和工业潜能提供深入了解(Thegenome sequence of Propioni-bacterium acidipropionici provides insights intoits biotechnological and industrial potential)，”《BMC基因组学》(BMC Genomics)，第13卷，2012，562-602。
尽管迄今为止丙酸杆菌已经受到关注，然而，几乎没有研究针对这些细菌的遗传工程，这是由于其基因组中的高GC含量、转化***的困难以及克隆工具的缺乏。迄今为止，仅已基于最初从丙酸丙酸杆菌(P.acidipropionici)中分离的质粒开发了两个表达载体(其使用两个不同的启动子)pKHEM01和pKHEM04(参见例如库亚特帕潘(Kiatpapan)等人，“构建用于丙酸杆菌的表达载体以及其在通过费氏丙酸杆菌(Propionibacterium freudenreichii)产生5-氨基乙酰丙酸中的用途(Construction ofan expression vector for propionibacteria and its use in production of 5-aminolevulinic acid by Propionibacterium freudenreichii)，”《应用微生物生物技术》(Appl.Microbiol.Biotechnol.)，第56卷，2001，144-149)，以及两个报导子载体(其不具有启动子)pTD210(法页(Faye)等人，“构建用于费氏丙酸杆菌中的启动子活性的活体内分析的报导子向量***(Construction of a reporter vector system for in vivoanalysis of promoter activity in Propionibacterium freudenreichii)，”《应用和环境微生物学》(Appl.and Enviro.Microbiology)，第74卷，第11期，2008，3615-3617)；pCVE1(皮奥(Piao)等人，“来自费氏丙酸杆菌的启动子元件的分子分析(Molecular analysis ofpromoter elements from Propionibacterium freudenreichii)，”《生物科学与生物工程学杂志》(J.Biosci.and Bioeng)，第97卷，第5期，2004，310-316)。这一领域中的大部分发表的研究旨在提升维生素B12产量(参见例如库亚特帕潘等人，如上所引用；室冈(Murooka)等人，“使用费氏丙酸杆菌的遗传工程产生四吡咯化合物和维生素B12.概述(Production oftetrapyrrole compounds and vitamin B 12using genetic engineering ofPropionibacterium freudenreichii.An overview)，”《莱特》(Lait)，第85卷，第1到2期，2005，9-22；并且仅有一篇论文已关注通过敲除丙酸丙酸杆菌ATCC4875中的乙酸激酶(ack)基因来提升丙酸产量(苏瓦纳卡姆(Suwannakham)等人，“构建和表征丙酸丙酸杆菌的基因敲除突变体用于增强的丙酸发酵(Construction and characterization of knock-outmutants of Propionibacterium acidipropionici for enhanced propionic acidfermentation)，”《威立国际科学》(Wiley InterScience)(www.interscience.wiley.com)，2006年2月28日；另外参见帕里奇等人，如上所引用)。
已经显示双功能醛/醇脱氢酶能够将乙酰-CoA和丁酰-CoA分别转化成乙醇和丁醇(参见例如纳尔(Nair)等人，“来自丙酮丁醇梭菌(Clostridium acetobutylicum)ATCC 824的醛/醇脱氢酶基因的分子表征(Molecular characterization of an aldehyde/alcoholdehydrogenase gene from Clostridium acetobutylicum ATCC 824)，”《细菌学杂志》(J.Bacteriology)，第176卷，1994，871-885；余(Yu)等人，“酪丁酸梭菌(Clostridiumtyrobutyricum)的代谢工程用于正丁醇生产(Metabolic engineering of Clostridiumtyrobutyricum for n-butanol production)，”《代谢工程》(Metabolic Engineering)，第12卷，2011，373-382；布吕昂(Bruant)等人，“通过食一氧化碳梭菌(Clostridiumcarboxidivorans)菌株P7T的一氧化碳利用和丁醇生产的基因组分析(Genomic analysisof carbon monoxide utilization and butanol production by Clostridiumcarboxidivorans Strain P7T)，”公共科学图书馆(PLOSOne)(www.plosone.org)，第5卷，第9期，2010年9月，e13033)。作为发酵产物的丙醇在例如詹森(Janssen)，“作为苏氨酸发酵的最终产物的丙醇(Propanol as an end product ofthreonine fermentation)，”《微生物文献》(Arch.Microbiol.)，第182卷，2004，482-486中论述。
WO2011029166公开一种用于将底物生物转化成正丙醇的方法，其使用遗传修饰的微生物与用于在发酵期间以NAD(P)H形式供应还原当量的方法组合。基因编码用于丙酸盐形成的二羧酸途径的酶，并且至少一个基因编码用于催化丙酸盐/丙酰-CoA到正丙醇的转化的酶。
WO2008098254公开组合生物与热化学转化方法以产生中间物，接着将中间物重组到所需产物中。使用多种碳底物，其条件是总底物的不超过75百分比(％)是碳水化合物。可以产生丙醇，以及其它产物，包括乙醇、丙二醇以及1，4-丁二醇。
WO2009154624公开一种使用代谢工程化突变体细菌的发酵，所述细菌的ack与pta基因中的一者或两者被破坏。使用这些工程化细菌发酵的结果是大于50g/L的产物浓度。产物可以包括丙酸、丁酸以及乙酸。在一些实施例中使用纤维床生物反应器。
发明内容
在一个方面中，本发明提供一种用于生物合成正丙醇或丙酸的方法，其包含(a)进行起始发酵培养液的发酵，所述起始发酵培养液包含底物、水以及丙酸杆菌，所述丙酸杆菌被遗传修饰以包括从鸟嘌呤-胞嘧啶(GC)含量为40百分比(％)或更高的兼性厌氧生物获得的adhE基因，以表达被识别为基因库基因(GenBank Gene)ID：6062148；GI：170080868的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶，从而形成包括正丙醇和丙酸作为产物的发酵产物培养液；和(b)从发酵产物培养液回收产物正丙醇、丙酸或其组合的至少一部分。
在另一方面中，本发明提供一种用于修饰供正丙醇或丙酸生物合成使用的丙酸杆菌的方法，其包含(a)从GC含量为40％或更高的兼性厌氧生物获得adhE基因片段；和(b)修饰丙酸杆菌的基因组以包括所述adhE基因片段；以使得丙酸杆菌表达被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶。
在又一方面中，本发明提供一种供生物合成使用的修饰的丙酸杆菌，其包含具有基因组DNA的丙酸杆菌，所述基因组DNA包括从GC含量为40％或更大的兼性厌氧生物获得的***adhE基因片段，以使得丙酸杆菌表达被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶。
附图说明
图1.用于在丙酸杆菌中的正丙醇生物合成的二羧酸途径和异源adhE的表达。
图2.pKHEM04-adhE的构建。
图3.通过费氏丙酸杆菌(P.freudenreichii)野生型的葡萄糖分批发酵的动力学。
图4.通过表达adhE的费氏丙酸杆菌突变体菌株Pf(adhE)-1的葡萄糖分批发酵的动力学。
图5.通过表达adhE的费氏丙酸杆菌突变体菌株Pf(adhE)-2的葡萄糖分批发酵的动力学。
图6.通过费氏丙酸杆菌野生型的甘油分批发酵的动力学。
图7.通过表达adhE的费氏丙酸杆菌突变体菌株Pf(adhE)-1的甘油分批发酵的动力学。
图8.通过表达adhE的费氏丙酸杆菌突变体菌株Pf(adhE)-2的甘油分批发酵的动力学。
图9.在各种浓度的丙醇存在下，丙醇在生长于甘油上的费氏丙酸杆菌野生型的分批发酵中对细胞生长的作用。
图10.在各种浓度的丙醇存在下，丙醇在生长于甘油上的费氏丙酸杆菌野生型的分批发酵中对甘油消耗的作用。
图11.在各种浓度的丙醇存在下，丙醇在生长于甘油上的费氏丙酸杆菌野生型的分批发酵中对丙酸产量的作用。
具体实施方式
总体而言，本发明包括一种特定的遗传修饰的丙酸杆菌微生物，其表达特定的双功能醛/醇脱氢酶；一种制备所述微生物的方法；以及其在发酵培养基中用于制备含有正丙醇、丙酸或其两者的产物的用途，其中与使用在其他方面相同但未被相同地遗传修饰的丙酸杆菌相比，正丙醇的产率、滴度以及生产率有所提升，并且丙酸的滴度和生产率也得到提升。这一结果得以实现是因为特定双功能醛/醇脱氢酶相对地增加丙酰-CoA到正丙醇的转化。
微生物可以选自各种物种中的任一个，所述物种包括(在非限制性实例中)费氏丙酸杆菌、丙酸丙酸杆菌以及其组合。所选择的生物被遗传修饰以产生被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶。为了根据本发明遗传修饰(即转化)这些微生物以使得其将表达所需的脱氢酶，用于双功能醛/醇脱氢酶的特定基因编码(adhE)从特定来源克隆。包括“基因ID”以及“GI”的基因库识别信息指的是特定蛋白质结构，其可以通过应用公开可获得的名为“BLAST”的网络寄存(web-hosted)软件容易地获得，所述软件可以在美国国家卫生研究院(National Institutes ofHealth，NIH)网站http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank上获得，并且涉及特定相关基因的信息可以更特定地在http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/？term＝6062148处找到。用于修饰丙酸杆菌的基因编码的来源理想地是GC含量为40％或更高的兼性厌氧生物。任何给定基因的GC含量百分比可以通过参考发表的论文及/或通过使用适当的计算软件从已公布的序列计算来获得。
举例来说，在本发明的一个特定实施例中，adhE基因可以从大肠杆菌(Escherichiacoli)获得，基于基因库基因ID 6062148(大肠杆菌菌株K-12亚株DH10B)，已知所述大肠杆菌具有大致51％的GC含量。(为获得关于大肠杆菌基因组的更多以及通用信息，参见例如德菲(Durfee)等人，“大肠杆菌DH10B的全基因组序列：对实验室主力的生物学的深入了解(The complete genome sequence ofEscherichia coli DH10B：Insightsinto the biology of a laboratory workhorse)，”《细菌学杂志》(J.Bacteriology)，第190卷，第7期，2008，2597-2606。还已知其为兼性厌氧生物。如所述术语在本文中使用，“兼性厌氧生物”被定义为指一种生物，通常是细菌，其在氧气存在的情况下通过有氧呼吸产生三磷酸腺苷(ATP)但也能够切换为发酵。相反，专性厌氧菌在氧气存在下死亡。
将克隆的adhE基因***到丙酸杆菌基因组中的结果是一种突变体丙酸杆菌，其通过表达***的adhE基因，即产生被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的特定醛/醇脱氢酶而将丙酰-CoA转化成正丙醇。这一正丙醇可以随后按原样回收，或使其与也是通过突变体丙酸杆菌或通过相同或不同物种的未被修饰丙酸杆菌产生的丙酸一起保留在发酵培养液中。因此，本发明方法的一个优势是可以从发酵培养液中回收最终产物，其可以是正丙醇、丙酸或其组合。
用于将adhE编码***到基因组中的代谢工程可以通过所属领域的技术人员已知的方式和方法来进行。尤其便利的是这种编码仅表示关于丙酸杆菌的单一基因，由此与涉及一些其它生物和/或多个基因的方法相比简化修饰方法。
总体而言，本发明代谢工程化丙酸杆菌在一个非限制性实施例中可以通过以下步骤制备：首先从所选择的兼性厌氧生物，例如大肠杆菌菌株K-12亚株DH10B分离基因组DNA，接着使用常规设计的引物根据所属领域的技术人员的一般技术进行PCR扩增。在PCR扩增之后，可以将adhE基因克隆到pGEM-T载体中。其后，可以随后使用pGEM-T载体作为模板将adhE基因克隆到pKHEM04载体中，其通过使质粒经受BspHI和NdeI的限制性消化以产生DNA片段产物，所述产物随后被连接到NcoI和NdeI限制性消化的pKHEM04质粒上来实现。经抗生素选择的突变体可以随后通过用pKHEM04载体使丙酸杆菌培养物电穿孔来产生。所属领域的技术人员将通常了解有效地实现所需丙酸杆菌基因组转化的转化方式和方法，并且认为额外描述在此是不必要的。
一旦本发明的代谢工程化丙酸杆菌已经制备好后，所述丙酸杆菌可以用于生物合成方法中以制备例如正丙醇、丙酸或其组合。所述方法可以理想地以制备适合的发酵培养液开始。除代谢工程化丙酸杆菌以外，发酵培养液还理想地包括水和至少一种底物，其中以发酵培养液的总体积计，丙酸杆菌培养物的初始量在1％到50％(体积/体积(v/v))范围内，并且优选地为5％到25％(v/v)。总体而言，优选的是使用在0.5到4.0范围内的600纳米下接种物光密度(OD600)，但经常为约1.5到约2.5。代谢工程化丙酸杆菌可以用作给定发酵培养液中的唯一发酵生物，或可以与一或多种额外发酵生物组合，所述额外发酵性生物包括(但不限于)未被修饰的丙酸杆菌以及被修饰和未被修饰的其它属生物。
本发明方法的发酵部分中的遗传修饰的丙酸杆菌可以使用广泛多种底物。所述底物可以包括一或多种碳源，例如在非限制性实例中，碳水化合物、醇、酸、醛、酮、氨基酸、肽等。举例来说，这些可以包括单糖(例如葡萄糖、果糖以及木糖)、寡糖(即蔗糖、乳糖)、多糖(即淀粉、纤维素、半纤维素)、木质纤维素材料、脂肪酸、琥珀酸盐、乳酸盐、乙酸盐、甘油等，或其组合。底物可以是光合作用的产物，例如葡萄糖或纤维素。用作底物的单糖可以是多糖水解的产物，例如纤维素、淀粉以及果胶的酸或酶促水解产物。出于理解目的，术语“能源”可以与碳源互换使用，因为在化能有机营养代谢中，碳源在分解代谢期间用作电子供体并且在细胞生长期间用作碳源。
按比例，以水计，理想的是底物表示发酵培养液的1％到15％(w/v)，并且理想地为2.5％、更理想地5％到10％(w/v)。发酵温度(包括斜线上升和/或下降)、发酵时间、pH以及其它条件为所属领域的技术人员已知，并且所述各者的差异将被认为是影响产物产率、副产物、比例等的因素。尽管如此，从商业观点出发，通常认为理想的是以低于72小时的时间为目标以实现至少50g/L，并且更理想地至少80g/L的产物(正丙醇和/或丙酸)滴度。尽管如上所述，但应理解产物滴度在某些实施例中可以在低于(＜)1g/L到120g/L范围内。
这一反应中的正丙醇产量受烟酰胺腺嘌呤二核苷酸脱氢酶(NADH)可获得性限制，其可以通过使用甘油而非葡萄糖作为底物而显著提升。在非限制性实例中，所属领域的技术人员所熟知的解决这一限制的其它方式可以包括：用甲酸盐补充剂在生长培养基中过度表达甲酸脱氢酶、使用电极以在培养液中建立还原环境或施加氧化还原介体或人造电子载体以为丙醇和丙酸生物合成增加NADH可获得性。
本发明的一个特定优势为起始发酵培养液可以被改质以使得与代谢工程化丙酸杆菌、底物和水组合的丙醇(在本文中称为“刺激剂丙醇”)被包括在内。所述丙醇区别于产物丙醇，因为其在发酵开始时添加。所述丙醇可以选自正丙醇和其它丙醇异构体，其中正丙醇为优选的。外部引入的(“掺加”)丙醇可以以任何手段自身产生，如细胞内、细胞外，或为其它化学合成的结果。然而，可以衍生出一个尤其并且出人意料地有利的影响，其中用于“掺加”发酵培养液的丙醇自身已于细胞内产生，其例如通过单独进行的(即额外的)与本发明方法相同的方法来实现。优选的是以发酵培养液的体积作为整体计，外部引入，但在一些实施例中细胞内产生的“掺加”丙醇以在0.01g/L到10g/L，更优选地2g/L到7g/L范围内的量使用。在起始发酵培养液中的所述外部引入丙醇用以增加产物发酵培养液中的丙酸和正丙醇产量，因此命名法的使用将其称为“刺激剂”。所述增加的量可以在10％重量每体积(w/v)到125％w/v范围内，优选为25％w/v到125％w/v，例如在1g/L到7g/L范围内的滴度增加，其中不同底物的差异在相同条件下指出。举例来说，全甘油底物可以在某些实施例中展现与全葡萄糖底物相比实质上更大的提升。
本发明的一个优势是，在某些非限制性实施例中，底物的分解代谢与在其他方面相同但不含有遗传修饰的丙酸杆菌而是含有在其他方面相同的尚未被遗传修饰的丙酸杆菌的起始发酵培养液的底物的分解代谢相比可以增加至少5百分比的量，所述遗传修饰通过***从GC含量为40％或更高的兼性厌氧生物获得的adhE基因以表达被识别为基因库基因ID：6062148；GI：170080868的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶来实现。
使用本发明代谢工程化微生物，表达adhE，本发明方法的结果是丙酰-CoA有效并且便利地大量被转化成正丙醇。以下实例和比较实例将更全面地说明本发明的某些实施例和方面，但其不应解释为限制本发明的范围。
实例1和比较实例1
细菌菌株、质粒以及培养基：
用于本实例的所有细菌菌株和质粒都在表1中列出。在37摄氏度(℃)下于补充有100微克每毫升(μg/ml)氨苄青霉素(ampicillin)的卢里亚-贝尔塔尼(Luria-Bertani，LB)培养基中有氧生长大肠杆菌DH5α(一种GC含量为40％或更高的兼性厌氧生物)以得到其转化体。出于比较目的，丙酮丁醇梭菌(Clostridium acetobutylicum，C.acetobutylicum)美国典型培养物保藏中心(American Type Culture Collection，ATCC)824(其也是一种兼性厌氧生物)在37℃下于强化梭菌培养基(RCM，蒂夫科(Difco))中厌氧培养。丙酸杆菌在32℃下于含有10g/L乳酸钠、10g/L酵母提取物以及10g/L胰蛋白酶解酪蛋白大豆培养液的北光生物科学(Northern Lights BioScience，NLB)培养基中厌氧生长以制备感受态细胞并且用于细胞在电穿孔之后恢复。对于发酵动力学研究，细胞在含有10g/L酵母提取物、5g/L胰蛋白酶解酪蛋白、0.25g/L K2HPO4、0.05g/L MnSO4、25g/L葡萄糖或甘油(作为碳源)以及2％CaCO3(用于缓冲培养基pH)的培养基中生长。为获得关于更多细节的方法，参见例如杨(Yang)等人，“由甘油通过代谢工程化丙酸丙酸杆菌的丙酸生产(Propionic acidproduction from glycerol by metabolically engineered Propionibacteriumacidipropionici)，”《过程生物化学》(Process Biochem)，第44卷，2009，1346-1351。这些培养基通过121℃、15磅每平方英寸表压(psig)(约204.75千帕斯卡，kPa)下高压灭菌30分钟(min)来灭菌。除非另外指出，否则将过滤灭菌的潮霉素B无菌添加到无菌培养基中达到250μg/ml的最终浓度以用于培养和维持血清瓶中的丙酸杆菌转化体。所有储备培养物都保持在4℃下用于短期使用并且保持在-80℃下用于长期存储。
构建aad和adhE表达载体：
在于10毫克每毫升(mg/ml)溶菌酶中在37℃下培育20min到30min之后，细胞被溶解。随后使用凯杰(QIAGEN)基因组DNA试剂盒(凯杰，巴伦西亚市(Valencia)，加利福尼亚州)分离染色体DNA。使用个别基因组DNA作为模板和具有引入BspHI和NdeI限制性位点(参见表1)的引物于DNA引擎(MJ研究(MJ Research)，里诺市，内华达州)中PCR扩增大肠杆菌adhE和(比较)丙酮丁醇梭菌aad基因(aad基因的GC含量为35％，基于基因库登记号：AE001438.3)。使含有5μl 10×PCR缓冲液(英维罗根(Invitrogen)，格兰德岛(GrandIsland)，纽约，美国)、1μl 25mM MgCl2、1μl 10mM dNTP(每一)、1μl10mM正向引物、1μl10mM反向引物、1μl基因组DNA以及2.5U TaqDNA聚合酶(英维罗根)的反应混合物(50微升(μl))经受在94℃下的初始变性步骤2min、在94℃下的34个重复变性循环30秒、在55℃下的退火30s以及在72℃下的延伸3min以及在72℃下的PCR产物最终延伸10min。将PCR产物克隆到pGEM-T载体(普洛麦格(Promega)，麦迪逊(Madison)，威斯康星州，美国)中以构建对应的pGEM-aad和pGEM-adhE载体，其使用QIAprep微量制备(MiniPrep)质粒纯化试剂盒来分离和纯化。为了构建表达载体pKHEM04-aad和pKHEM04-adhE，用BspHI和NdeI RE双重消化pGEM-aad和pGEM-adhE，并且对应的aad和adhE DNA片段在使用QIAquick凝胶提取试剂盒从琼脂糖凝胶纯化之后与用NcoI和NdeI RE消化的pKHEM04连接(参见图2)。BspHI与NcoI两者都具有相容的粘性末端。为了检验克隆基因，通过俄亥俄州立大学(Ohio State University)的植物-微生物基因组设施(Plant-Microbe Genomic Facility)对其DNA序列进行测序。
丙酸杆菌的转化：
用pKHEM04-aad和pKHEM04-adhE转化丙酸杆菌根据所属领域的技术人员熟知的程序通过电穿孔来进行。为获得额外细节，参见例如薛(Xue)等人，“高摩尔渗透压浓度提升***枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)和地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)的电转化效率(High osmolarity improves the electro-transformation efficiency of the Gram-positive bacteria Bacillus subtilis andBacillus licheniformis)，”《微生物学方法杂志》(J.Microbiol.Methods)，第34卷，1999，183-191。将在NLB培养基中生长到OD600为大致0.6到0.8的细胞在冰水上冷却10min，通过在4℃和4,000转每分钟(rpm)下离心10min收集，用冰冷电穿孔培养基(10％甘油)洗涤4次，并且再悬浮于电穿孔培养基(初始培养物体积的1/40)中。随后，将在0.1cm比色杯中与1μg到2μg质粒DNA混合的100μl感受态细胞在冰上培育2min到5min并且用基因-脉冲发生器(Gene-Pulser)(拜耳-雷德实验室(Bio-RadLaboratories)，里奇蒙(Richmond)，加利福尼亚州)在25微法拉(μF)、200欧姆(Ω)、20千伏特每厘米(kV/cm)以及在4.5与5.0毫秒(ms)之间的时间常数下电穿孔。将电穿孔的细胞转移到1ml恢复培养基中培养3小时(h)，随后涂在具有250μg/ml潮霉素B的NLB琼脂培养基上。在培养大致10天之后，拾取在培养板上的菌落，并且通过PCR使用表1中所示的对应adhE或aad基因引物确认转化体。
发酵动力学：
在血清瓶中于32℃和大致pH 6.8(在CaCO3存在下)研究用所选择的转化体和亲本菌株进行的葡萄糖和甘油分批发酵。定期取得样品以监测底物消耗以及正丙醇和有机酸产量。为研究正丙醇对细胞生长和发酵的作用，将各种量的正丙醇添加在血清瓶中的培养基中。未在用于生长测试的培养基中添加CaCO3。除非另外指出，否则对于每一被研究的条件至少使用一式两个瓶子。
碳流量分布的化学计量分析：
为评估adhE表达和正丙醇生物合成对丙酸发酵的作用，使用在补充材料(Supplemental Material)中给出的化学计量反应式以及以下假设进行野生型和突变体菌株中的碳流量分布的化学计量分析：1)无中间代谢物的净累积或消耗，所述中间代谢物包括丙酮酸盐和磷酸烯醇丙酮酸盐(PEP)；2)氧化还原被平衡以使得NADH或NAD+无净改变；3)产生充足量的三磷酸腺苷(ATP)用于细胞生长和维持，或有净ATP产生。基于最终产物(丙酸盐、琥珀酸盐、乙酸盐以及正丙醇)和在发酵中所消耗的底物(葡萄糖或甘油)的量来估计碳流量分布。发酵最终产物和细胞生物质的摩尔碳流量分布用所消耗的底物来标准化。
分析方法：
细胞生长通过用分光光度计(岛津(Shimazu)，哥伦比亚，马里兰州，UV-16-1)在1.5mL比色杯(光路长度＝1cm)中测量600nm下的光密度(OD600)来监测。正丙醇用配备有火焰离子化检测器(FID)和30.0m熔融硅石柱(Stabilwax-DA，0.25毫米(mm)膜厚度和0.25mmID，瑞斯泰克(Restek)，贝尔丰特(Bellefonte)，宾夕法尼亚州)的气相色谱仪(GC)(GC-2014岛津，哥伦比亚，马里兰州)来分析。注射温度为200℃，并且使用自动注入器(AOC-20i，岛津)注射1μl样品。最初，柱温在60℃下保持3min。随后，以每分钟30℃的恒定速率使柱温增加到150℃，并且保持在150℃下4min，每个样品总共10min。葡萄糖、甘油以及有机酸(乙酸、琥珀酸以及丙酸)根据所属领域的技术人员常用的程序使用在45℃下以0.01N H2SO4作为洗脱剂在0.6ml/min下操作的配备有有机酸柱(拜耳雷德(Bio-Rad)，HPX-87)的高效液相色谱仪(HPLC)来分析。为获得进一步细节，参见例如苏瓦纳卡姆等人，“通过由在纤维床生物反应器中适应而获得的丙酸丙酸杆菌突变体进行的增强丙酸发酵(Enhanced propionicacid fermentation by Propionibacterium acidipropionici mutant obtained byadaptation in a fibrous-bed bioreactor)，”《生物技术与生物工程学》(Biotechnol.Bioeng.)，第91卷，2005，325-337。
统计分析：
除非另外指出，否则所有实验都是一式两份地进行，并且报告平均值和标准差。数据分析通过使用适当的软件计算t-测试值来进行，其中统计学上显著的差异在p＜0.05下。
在丙酸杆菌中克隆和表达adhE和aad：
分别将来自丙酮丁醇梭菌ATCC 824和大肠杆菌菌株K-12亚株DH10B的aad和adhE基因成功克隆到pKHEM04中，其含有来自费氏丙酸杆菌(Propionibacteriumfreudenreichii，P.freudenreichii))亚种谢氏亚种(shermanii)IFO12424的用于基因表达的强p4启动子(参见例如皮奥，如上所引用)。通过电穿孔将所得质粒pKHEM04-aad 和pKHEM04-adhE转化成三种不同的丙酸杆菌(丙酸丙酸杆菌ATCC 4875、费氏丙酸杆菌DSM20271以及费氏丙酸杆菌DSM 4209)。未从丙酸丙酸杆菌获得菌落，其被解释为仅指示pKHEM04-adhE与宿主细胞的不相容性，并且不指示丙酸丙酸杆菌不能通过使用相同或不同的载体而被遗传修饰以表达醛/醇脱氢酶基因。对于用pKHEM04-aad与pKHEM04-adhE转化的费氏丙酸杆菌菌株两者都获得稳定的菌落。为消除任何来自污染的假阳性，拾取在NLB琼脂培养板上的菌落并且检查其在液体培养基中产生丙酸的能力。对于用aad或adhE的引物给出阳性培养物PCR的菌落，和用aad或adhE引物使用从突变体提取的质粒作为模板给出阳性PCR的菌落验证了阳性转化。最后，将从转化体提取的质粒转化成大肠杆菌并且再次提取，并且用来自大肠杆菌培养物和来自再次提取的质粒的aad或adhE引物检测到阳性PCR。
随后测试经证实为阳性转化体的突变体从葡萄糖生产丙醇的产量。在仅2个具有表现于费氏丙酸杆菌DSM 4209中的adhE基因的突变体的发酵培养液中检测到正丙醇生产，所述2个突变体即Pf(adhE)-1和Pf(adhE)-2，其发酵动力学用葡萄糖和甘油作为底物进一步表征。从任何其它阳性转化体未产生可检测量的正丙醇，这表明酶的表达水平过低或酶在宿主细胞中不起作用。这些丙酸杆菌的野生型(WT)菌株在相同测试条件下不产生任何可检测量的正丙醇。
以葡萄糖作为碳源的分批发酵动力学：
图3、图4以及图5显示用生长在葡萄糖(作为底物)上的费氏丙酸杆菌DSM 4209野生型(WT)和两个表达adhE基因的突变体Pf(adhE)-1和Pf(adhE)-2的发酵动力学。正如所预期的，仅是两个突变体而不是WT能够产生正丙醇。在72h之后在突变体的发酵培养液中检测到正丙醇，并且在约270h时达到最大浓度(来自Pf(adhE)-1的342mg/L和来自Pf(adhE)-2的291mg/L)。其后，丙醇生产水平由于培养基中的葡萄糖的可获得性有限而趋平。值得注意的是，与用WT相比，用突变体的葡萄糖消耗和酸生产都显著较快。与用WT相比，在用突变体时，丙酸与乙酸两者在发酵中都以较快速率产生并且达到较高最终浓度。约9.9g/L到1.1g/L丙酸和4g/L到4.5g/L乙酸在突变体中产生，而仅8.7g/L丙酸和2.8g/L乙酸通过WT产生。
表2概括并且比较来自这些发酵的底物消耗速率以及酸生产率和产率。总体而言，在所有菌株中获得相当的丙酸产率，但突变体具有显著较高的生产率。明显地，adhE基因在突变体中的表达不仅导致正丙醇生物合成，并且相对地增加突变体中的有机酸产量。
实例2和比较实例2
用甘油作为底物的分批发酵动力学
还以甘油作为碳源研究了各种菌株的分批发酵动力学，并且结果显示在图6、图7以及图8中，关键的动力学参数概括于表2中。再次，突变体产生显著量的正丙醇，而WT不产生任何可检测的量。与葡萄糖发酵相比，多50％到65％的正丙醇以较快速率自甘油产生，在发酵结束时达到大致500mg/L的最大丙醇滴度。尤其值得注意的是，突变体能够快得多并且有效得多地使用甘油，其中在200h中消耗全部20g/L甘油(消耗速率：大致0.10g/L·h)，而WT在300h中仅使用大致10g/L甘油(消耗速率：大致0.032g/L·h)。因此，较多丙酸由突变体以0.047g/L·h的较高生产率产生，所述生产率超过用WT的双倍产量(0.021g/L·h)，并且甚至比用葡萄糖作为碳源的生产率(大致0.031g/L·h)更快。然而，丙酸产率在WT与突变体两者中类似，大致为0.64g/g，其高于来自葡萄糖的丙酸产率(大致0.49g/g)。类似于葡萄糖发酵，通过突变体从甘油产生的乙酸盐也比通过WT产生的更多(大致1.35相对于(vs.)大致0.6g/L)。来自甘油发酵的P/A比率是用葡萄糖的P/A比率的3到4倍(大致10相对于大致3)，其指示与针对乙酸生物合成相比，较多甘油碳针对丙酸生物合成。
adhE表达和正丙醇生物合成对流量分布的作用：
adhE的表达和正丙醇生物合成可以改变NADH平衡，并且由此影响丙酸发酵中的碳流量分布。基于发酵中间物(丙酮酸盐和PEP)中无净改变以及氧化还原平衡的假设，在各种发酵条件下的摩尔流量分布是由对底物(葡萄糖或甘油)消耗和产物形成的实验数据计算得到，并且结果概括于表3中。在以葡萄糖作为底物的情况下，大部分丙酮酸盐通过恩伯登-梅耶霍夫-帕纳斯(EMP)途径产生。与WT相比，突变体有较少的底物碳进入到细胞生物质中(5.9％相对于15.8％)，但较多进入到乙酸盐中(28.0％相对于21.1％)，可能是因为细胞需要较多NADH用于正丙醇和增加的丙酸生物合成。在用较为还原性的底物甘油的情况下，所有丙酮酸盐都通过EMP途径产生，并且与WT相比，突变体有较多底物碳进入到细胞生物质中(11.9％相对于5.3％)并且较少进入到琥珀酸盐中(4.8％相对于11.6％)。另一方面，就突变体和WT而言，到丙酸盐和正丙醇中的相对碳流量几乎相同，为约75％。到乙酸盐中的碳流量就突变体(8.6％)与WT(8.2％)两者而言也是类似的。在突变体中产生稍微较多的乙酸盐以补偿在正丙醇的生物合成中被adhE消耗的额外NADH。用于确定碳流量的反应式提供于表5和表6中。
实例3和比较实例3
丙醇对丙酸发酵的作用：
在培养基中培养费氏丙酸杆菌DSM 4209野生型细胞，所述培养基具有甘油作为碳源以及各种量的正丙醇(0g/L、0.5g/L、1g/L、5g/L以及10g/L)以说明正丙醇对细胞生长和发酵的作用。如在图9、图10以及图11中可见，丙醇在0.1g/L到1g/L的低浓度下不显著影响细胞生长或发酵，但在10g/L的较高浓度下以显著较长的停滞期抑制细胞生长。然而，在5g/L丙醇存在下，细胞能够在停滞期中的短期适应之后以显著较高的速率消耗甘油并且产生丙酸。比生长速率、甘油消耗速率以及丙酸生产率和产率由时程数据估计得到并且概括于表4中。结果显示，在5g/L正丙醇(p＜0.05)存在下，丙酸生产率和滴度增加约20％。同时，乙酸盐产量在5g/L到10g/L丙醇存在下显著减少，尽管归因于在低浓度水平下的乙酸盐产量的较大差异，对P/A比率的作用并不显著。琥珀酸产量未受所研究的浓度范围中的正丙醇影响。
表1.用于本研究的细菌菌株、质粒以及引物
Figure BDA0000734320650000141
Figure BDA0000734320650000151
Apr，氨苄青霉素抗性基因；Hygr，潮霉素B抗性
表2. WT、Pf(adhE)-1以及Pf(adhE)-2在不同碳源上的动力学参数
Figure BDA0000734320650000152
P/A比率：丙酸盐/乙酸盐比率；
*指示值显著高于对照物(野生型)的值，p＜0.05
表3.在分批发酵中生长在葡萄糖和甘油上的野生型和adhE-突变体中的碳流量分布的化学计量分析
Figure BDA0000734320650000153
Figure BDA0000734320650000161
表4.正丙醇对在血清瓶中生长在甘油上的费氏丙酸杆菌WT丙酸发酵的作用
Figure BDA0000734320650000162
aP/A比率：内酸盐/乙酸盐比率
*指示值显著高于对照物(0g/L丙醇)的值，p＜0.05
**指示值显著低于对照物(0g/L丙醇)的值，p＜0.05
表5.用于碳流量分布的化学计量反应式
Figure BDA0000734320650000163
Figure BDA0000734320650000171
细胞生物质由式C4H4xO4yN4z表示
表6.用于代谢碳流量分布计算的条件或约束
葡萄糖 甘油
底物消耗： a+3b A
丙酮酸盐平衡： c＝d+f+g+4h c＝d+f+g+4h
PEP平衡： 2a+5b＝c+e a＝c+e
NADH平衡： 2a+11b+d＝2e+2f+4g+5.75h 2a+d＝2e+2f+4g+5.75h
ATP产生： 2a+5b+c+d+2e+f+g-33.7h≥0 a+c+d+2e+f+g-33.7h≥0
d＝产生的乙酸盐；e＝产生的琥珀酸盐；f＝产生的丙酸盐；g＝产生的正丙醇；生物质＝3h
Figure IDA0001866271330000011
Figure IDA0001866271330000021
Figure IDA0001866271330000031
Figure IDA0001866271330000041
Figure IDA0001866271330000051

Claims (15)

1.一种生物合成地制备正丙醇、丙酸或其组合的方法，其包含
(a)进行起始发酵培养液的发酵，所述起始发酵培养液包含
含有甘油和葡萄糖的底物、水以及费氏丙酸杆菌(Propionibacteriumfreudenreichii)，所述费氏丙酸杆菌被遗传修饰以包括从鸟嘌呤-胞嘧啶含量为40百分比或更高的兼性厌氧生物获得的adhE基因，以表达由SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列组成的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶，从而形成包括正丙醇和丙酸作为产物的发酵产物培养液；和
(b)从所述发酵产物培养液回收所述产物正丙醇、丙酸或其组合的至少一部分。
2.根据权利要求1所述的方法，其中所述兼性厌氧生物是大肠杆菌(Escherichiacoli)。
3.根据权利要求1所述的方法，其中所述起始发酵培养液进一步包含5g/L的刺激剂正丙醇。
4.根据权利要求3所述的方法，其中所述刺激剂正丙醇在细胞内产生。
5.根据权利要求4所述的方法，其中所述细胞内产生的正丙醇是通过以下制备的
(a)进行培养液的发酵，所述培养液包含
含有甘油和葡萄糖的底物、水以及费氏丙酸杆菌，所述费氏丙酸杆菌被遗传修饰以包括从鸟嘌呤-胞嘧啶含量为40百分比或更高的兼性厌氧生物获得的adhE基因，以表达由SEQID NO:1所示的氨基酸序列组成的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶，
从而形成发酵产物培养液，其包括细胞内产生的正丙醇；和
(b)从所述发酵产物培养液回收所述细胞内产生的正丙醇的至少一部分。
6.根据权利要求1所述的方法，其中所述费氏丙酸杆菌转化底物为正丙醇的效率比未经遗传修饰以包含该adhE基因的费氏丙酸杆菌高至少5％。
7.一种用于修饰供正丙醇或丙酸生物合成使用的费氏丙酸杆菌的方法，其包含
(a)从鸟嘌呤-胞嘧啶含量为40百分比或更高的兼性厌氧生物获得adhE基因片段；和
(b)修饰费氏丙酸杆菌的基因组以包括所述adhE基因片段；以使得所述费氏丙酸杆菌表达由SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列组成的对丙酰-CoA具有活性的双功能醛/醇脱氢酶。
8.根据权利要求7所述的方法，其中所述adhE基因片段是从大肠杆菌获得的。
9.一种供生物合成使用的修饰的费氏丙酸杆菌，其包含具有以下基因组DNA的费氏丙酸杆菌，所述基因组DNA包括从鸟嘌呤-胞嘧啶含量为40％或更大的兼性厌氧生物获得的***adhE基因片段，以使得所述费氏丙酸杆菌表达由SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列组成的双功能醛/醇脱氢酶。
10.根据权利要求9所述的修饰的费氏丙酸杆菌，其中所述兼性厌氧生物是大肠杆菌。
11.一种生物合成制备正丙醇、丙酸或其组合的方法，包括：
发酵起始发酵液以形成包含正丙醇和丙酸的发酵产物培养液；和
从所述发酵产物培养液回收至少一部分正丙醇、丙酸或其组合，
其中：
所述起始发酵液包含含有甘油和葡萄糖的底物、水和费氏丙酸杆菌；
所述费氏丙酸杆菌被遗传修饰以包括从大肠杆菌菌株K-12获得的adhE基因片段，所述adhE基因片段编码如SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列；
所述费氏丙酸杆菌表达由所述adhE基因片段编码的双功能醛/醇脱氢酶；且
所述双功能醛/醇脱氢酶对丙酰-CoA具有活性。
12.一种修饰用于正丙醇或丙酸生物合成的费氏丙酸杆菌的方法，包括：
获得来自大肠杆菌菌株K-12的adhE基因片段，所述adhE基因片段编码如SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列；和
修饰费氏丙酸杆菌的基因组以包括adhE基因片段，使得该费氏丙酸杆菌表达由该adhE基因片段编码的双功能醛/醇脱氢酶。
13.权利要求11或12的方法，其中所述adhE基因片段是能够使用核苷酸序列如SEQ IDNO:2和SEQ ID NO:3所示的PCR引物从大肠杆菌菌株K-12获得的。
14.用于生物合成的修饰的费氏丙酸杆菌，其中：
该修饰的费氏丙酸杆菌具有包含***的adhE基因片段的基因组DNA；
该adhE基因片段获自大肠杆菌菌株K-12，并编码如SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列；且
该费氏丙酸杆菌表达由adhE基因编码的双功能醛/醇脱氢酶。
15.权利要求14的修饰的费氏丙酸杆菌，其中该adhE基因片段是能够使用核苷酸序列如SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3所示的PCR引物从大肠杆菌菌株K-12中获得的。
CN201380064321.1A 2012-12-21 2013-12-16 用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法 Expired - Fee Related CN105492613B (zh)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201261740490P 2012-12-21 2012-12-21
US61/740490 2012-12-21
PCT/US2013/075248 WO2014099707A2 (en) 2012-12-21 2013-12-16 Process for producing n-propanol and propionic acid using metabolically engineered propionibacteria

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105492613A CN105492613A (zh) 2016-04-13
CN105492613B true CN105492613B (zh) 2020-04-21

Family

ID=50979379

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201380064321.1A Expired - Fee Related CN105492613B (zh) 2012-12-21 2013-12-16 用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法

Country Status (7)

Country Link
US (1) US10150951B2 (zh)
EP (1) EP2935596A2 (zh)
JP (1) JP6410731B2 (zh)
CN (1) CN105492613B (zh)
AU (1) AU2013363249B2 (zh)
BR (1) BR112015014755A2 (zh)
WO (1) WO2014099707A2 (zh)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BR112018006473A2 (pt) * 2015-09-30 2018-11-21 The University Of Queensland cepa de propionibacterium isolada, cepa p. acidipropionici wgs 7, cepa de propionibacterium melhorada, cepa de p. acidipropionici isolada, cepa de p. acidipropionici f3e8, método para produzir ácido propiônico, nova cepa p. acidipropionici, método para produzir uma nova cepa propionibacterium e método para produzir uma nova cepa p. acidipropionici
US10801050B2 (en) 2015-10-23 2020-10-13 Metabolic Explorer Microorganism modified for the assimilation of levulinic acid
WO2018049242A1 (en) * 2016-09-09 2018-03-15 International Agriculture Group, LLC Yogurt product from high starch fruits
EP3509428B1 (en) * 2016-09-09 2021-06-16 International Agriculture Group, LLC Natural cocoa alternative
US11191289B2 (en) 2018-04-30 2021-12-07 Kraft Foods Group Brands Llc Spoonable smoothie and methods of production thereof
KR20210084420A (ko) 2018-06-18 2021-07-07 에스엔피 인그레디언트 디벨롭먼트, 엘엘씨 유기산 생성용 미생물 세포주의 단리

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011029166A1 (en) * 2009-09-09 2011-03-17 Braskem S.A. Microorganisms and process for producing n-propanol
WO2012067510A1 (en) * 2010-11-18 2012-05-24 C5 Yeast Company B.V. Yeast strains engineered to produce ethanol from glycerol

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5563069A (en) 1992-04-24 1996-10-08 The Ohio State University Research Foundation Extractive fermentation using convoluted fibrous bed bioreactor
EP2121946A4 (en) 2007-02-09 2012-08-29 Zeachem Inc ENERGY-EFFICIENT METHOD FOR MANUFACTURING PRODUCTS
AP2011005545A0 (en) 2008-06-19 2011-02-28 Univ Ohio State Methods and processes for producing organic acids.

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011029166A1 (en) * 2009-09-09 2011-03-17 Braskem S.A. Microorganisms and process for producing n-propanol
WO2012067510A1 (en) * 2010-11-18 2012-05-24 C5 Yeast Company B.V. Yeast strains engineered to produce ethanol from glycerol

Also Published As

Publication number Publication date
US10150951B2 (en) 2018-12-11
EP2935596A2 (en) 2015-10-28
US20150366248A1 (en) 2015-12-24
AU2013363249A1 (en) 2015-07-23
WO2014099707A2 (en) 2014-06-26
JP6410731B2 (ja) 2018-10-24
CN105492613A (zh) 2016-04-13
WO2014099707A3 (en) 2014-09-25
JP2016502848A (ja) 2016-02-01
BR112015014755A2 (pt) 2017-10-10
AU2013363249B2 (en) 2018-03-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rogers et al. Zymomonas mobilis for fuel ethanol and higher value products
CN103502435B (zh) 重组微生物及其用途
US9297026B2 (en) Recombinant microorganisms and methods of use thereof
CN105492613B (zh) 用于使用代谢工程化丙酸杆菌产生正丙醇和丙酸的方法
US20140080190A1 (en) Sporulation-deficient thermophilic microorganisms for the production of ethanol
Li et al. Acetone–butanol–ethanol fermentation of corn stover by Clostridium species: present status and future perspectives
JP2012187121A (ja) リグノセルロース系バイオマスをエタノールに変換する好熱性生物
JP2010504758A (ja) エタノール産生のためのキシロース資化性ザイモモナス（Ｚｙｍｏｍｏｎａｓ）のキシリトール合成変異体
WO2005093060A1 (ja) １，３−プロパンジオール及び／又は３−ヒドロキシプロピオン酸を製造する方法
Liao et al. The significance of proline on lignocellulose-derived inhibitors tolerance in Clostridium acetobutylicum ATCC 824
JP5243546B2 (ja) 植物由来原料から乳酸を生産する方法及び乳酸生産細菌
MX2015004180A (es) Microorganismos recombinantes para producir acidos organicos organicos.
JPWO2010032698A6 (ja) 植物由来原料から乳酸を生産する方法及び乳酸生産細菌
CN112430560B (zh) 一种2-酮基-l-古龙酸生产菌株及其构建方法
JP6228323B2 (ja) 高効率エタノール発酵菌
EP2508597A1 (en) Production of butanol by fermentation in Arxula sp.
WO2017223025A1 (en) Engineering escherichia coli for production of butyric acid
CN113840909A (zh) 从气态底物发酵生产2-苯乙醇
RU2375451C1 (ru) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ СИНТЕЗА БУТАНОЛА ИЗ Clostridium acetobutylicum (ВАРИАНТЫ), РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ Lactobacillus brevis - ПРОДУЦЕНТ Н-БУТАНОЛА (ВАРИАНТЫ) И СПОСОБ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО СИНТЕЗА Н-БУТАНОЛА
EP2964757A1 (en) Improvement of clostridial butanol production by gene overexpression
CN105802990B (zh) 重组型酵母菌细胞及其制备方法与用途
CN107429218B (zh) 高效乙醇发酵菌
CN114015634B (zh) 高产琥珀酸的重组大肠杆菌及其构建方法和应用
US10808265B2 (en) Microbes and methods for improved conversion of a feedstock
WO2015044101A1 (en) Process for conversion of pentose containing substrate

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20200421

Termination date: 20201216