CN104531639A - 一种抑菌的几丁质酶解方法 - Google Patents
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Abstract
一种抑菌的几丁质酶解方法,包括以下步骤:步骤1,微生物发酵产几丁质酶。以产几丁质酶微生物为供试菌,发酵生产几丁质酶,发酵结束后,获得几丁质酶粗酶液,经提纯、透析、浓缩后获得几丁质降解酶;步骤2,酶解几丁质。将几丁质降解酶置于反应釜内,依次加入几丁质粉末、金属离子激活剂、辅助酶制剂和有机试剂,恒温加热并搅拌,待几丁质粉末完全被降解得酶解液;步骤3,产品的回收。离心酶解液,得双相体系,其中上层体系为有机系,下层为水系,用吸附树脂吸附、洗脱,收集洗脱液经处理后获得产品。本发明原料可实现重复利用,转化过程无菌,降低能耗的同时获得高产率,且降解产物生物活性良好,具有显著的经济效益。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,涉及一种抑菌的几丁质酶解方法。
背景技术
糖工业是食品行业的基础工业,也是化工、发酵、医药等产品的原料工业。资料显示2012至2013年度,我国糖产量达1306.8万吨,其中作为食品生物技术领域的朝阳产业,功能糖及其衍生物产业在近几年发展迅猛。几丁质作为一种自然界含量仅次于纤维素的多糖,其降解产物及其衍生物在食品、医药、环保、农业、日化等众多领域内应用广泛,已经形成了巨大的市场需求。但是目前几丁质降解产物及其衍生物的生产多为化学法。反应过程需要用到强酸强碱,过程难以控制,且对环境造成极大的污染。
酶法降解几丁质制备氨基葡萄糖具有生产条件温和可控,对环境友好的优点,是目前的研究热点。但是,几丁质降解产物既可以作为菌体利用的碳源,又可作为氮源。转化过程难以控制,极易染菌。在发酵过程中染菌,会使发酵产物N-乙酰氨基葡萄糖/几丁寡糖被所染杂菌迅速消耗,增加产物的分离提取难度,影响产品质量水平。
目前工业应用上常用的防止染菌措施主要利用紫外灭菌器,超声波灭菌器,高压灭菌器等,例如中国专利一种防止糖醇生产物料染菌的新方法(申请号:CN200910256591.8)中利用反应体系内密闭联接紫外灭菌器或超声波灭菌器,对料液进行灭菌,达到无染效果。中国专利一种降低染菌概率的连续发酵扩培装置(CN201220624316.4)中利用蒸汽湿热灭菌达到抑菌效果,并通过合并管道减少开口数量,并减少阀门数量,降低连续发酵扩培过程的染菌概率。尽管上述技术比较成熟,但是存在着设备昂贵,操作危险的缺点,限制了生物制糖业的发展。
发明内容
针对现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种抑菌的几丁质酶解方法,操作简单,对酶解的副作用小,且产物易分离。
为解决现有技术问题,本发明采用的技术方案:
一种抑菌的几丁质酶解方法,包括以下步骤:
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以产几丁质酶微生物为供试菌,将供试菌接种到种子培养基上,在37℃,200rpm初始pH为6 ~ 8的条件下培养,得种子液,再将种子液接种到装有产酶发酵培养基的发酵罐中,在30℃,200 rpm,初始pH为6 ~ 8,通气量1vvm的条件下发酵,获得几丁质酶粗酶液,经提纯、透析、浓缩后获得几丁质降解酶;
步骤2,酶解几丁质
将几丁质降解酶置于反应釜内,依次加入几丁质粉末、金属离子激活剂、辅助酶制剂和有机试剂,恒温加热并搅拌,待几丁质粉末完全被降解,得酶解液;
步骤3,产品的回收
离心酶解液,得双相体系,其中上层体系为有机系,下层为水系,用吸附树脂吸附、洗脱,收集洗脱液经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。
作为优选的是,步骤2,所述的金属离子激活剂为Mg2+、Mn2+、Ca2+、Na+、K+、Al3+、Fe2+、Fe3+、Zn2+或Cu2+金属盐中的一种或几种。
作为优选的是,步骤2,所述的金属离子激活剂的终浓度为5-25 mmol/L。
作为优选的是,步骤2,所述的辅助酶制剂包括按质量百分比计的纤维素酶2-60%、半纤维素酶1-15%、淀粉酶5-70%、果胶酶2-40%。
作为优选的是,步骤2,所述的辅助酶制剂占反应体系总质量的0.1-0.3%。
作为优选的是,所述的有机试剂为丙酮、***、正己烷、环己烷、二氯甲烷或石油醚中的一种或多种。
作为优选的是,步骤2,恒温加热的温度为20-37℃,搅拌速度为50-200 rpm。
作为优选的是,所述有机试剂占总体系的体积分数为10-70%。
作为优选的是,所述微生物为Chitinolyticbacter meiyuanensis SYBC-H1或Chitinibactersp.GC72。
有益效果
(1)通过向几丁质酶解体系中加入几丁质酶激活剂和辅助酶制剂,可使酶解效率提高30%左右。
(2)采用向转化体系中加入有机试剂,可有效地防止染菌,降低了安全隐患。提高酶解速度,加快反应进程,缩短12 h反应周期。
(3)有机试剂在酶解结束后,经简单的离心操作及回收,可实现重复利用,避免了对环境的污染,减小了生产成本,具有推广价值。
具体实施方式
下面的实施例可使本专业技术人员更全面地理解本发明,但不以任何方式限制本发明。
实施例1
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以Chitinolyticbacter meiyuanensis SYBC-H1菌株为几丁质酶生产菌株,种子培养基为(2 g/L葡萄糖,2 g/L蛋白胨,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.4 g/L MgSO4·7H2O, pH 7.0),37℃、200 rpm培养12 h。将种子液以体积分数8%的接种量,接入7.5 L装有产酶发酵培养基的发酵罐,装液量4 L,产酶培养基为(3 g/L粉粒几丁质,3 g/L葡萄糖,3 g/L牛肉浸膏,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.5 g/L MgSO4·7H2O)培养温度30℃,转速为200 rpm,通气量1 vvm,初始pH 7.5,72 h后结束发酵。
将发酵液8000g离心,丢弃菌体,收集上清液后经过硫酸铵沉淀、复溶。将几丁质粗酶液装入透析袋(截留分子量8000 KDa)中,以蒸馏水为透析液,每隔6 h更换一次透析液, 4℃条件下透析24 h后浓缩酶液,浓缩后获得几丁质降解酶。
步骤2,酶解几丁质
向1 L反应釜中加入几丁质降解酶90 U,终浓度为30 g/L的几丁质粉末,并依次加入CaCl2 溶液10mM,辅助酶制剂占反应体系总质量的0.1% ,其中,辅助酶制剂由以下按质量分数计的物质:纤维素酶30%、半纤维素酶10%、淀粉酶20%、果胶酶40%组成。再加入占总体系体积分数40%的正己烷作为抑菌剂,在37℃恒温条件下200 rpm搅拌转化84 h,得酶解液。
步骤3,产品的回收
将酶解液3000g离心处理后,上层有机系用正己烷回收,回收率可达95%。去除底部酶解残渣后下层水系采用吸附树脂吸附的方法吸附所需N-乙酰氨基葡萄糖,经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。其中,树脂吸附可采用强极性吸附树脂、弱极性吸附树脂,流速30-450 mL/h,紫外在线检测器210 nm波长检测流出液,采用梯度乙醇洗脱的方法洗脱吸附产物。经液相检测该法获得的N-乙酰氨基葡萄糖纯度高,84 h转化后收率可达95%。
实施例2
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以Chitinibactersp.GC72菌株为几丁质酶生产菌株,种子培养基为(4 g/L葡萄糖,4 g/L蛋白胨,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.4 g/L MgSO4·7H2O,pH 7.0),37℃、200 rpm培养12 h,将种子液以体积分数6%接种量接入装有产酶发酵培养基的7.5 L发酵罐,装液量4 L,产酶培养基为(4 g/L粉粒几丁质,2 g/L葡萄糖,4 g/L牛肉浸膏,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.5 g/L MgSO4·7H2O)培养温度30℃,转速为200 rpm,通气量1 vvm,初始pH 7.5,72 h结束发酵收集发酵液。
将发酵液8000g离心,丢弃菌体,收集上清液后经过硫酸铵沉淀、复溶。将几丁质粗酶液装入透析袋(截留分子量8000 KDa)中,以蒸馏水为透析液,每隔6 h更换一次透析液, 4℃条件下透析24 h后浓缩酶液,浓缩后获得几丁质降解酶。
步骤2,酶解几丁质
向1 L反应釜中加入几丁质降解酶90 U,终浓度为30 g/L的几丁质粉末,向反应釜中加入MgSO4 溶液15mM,辅助酶制剂占反应体系总质量的0.2% ,其中,辅助酶制剂由以下按质量分数计的物质:含纤维素酶30%、半纤维素酶10%,淀粉酶20%、果胶酶40%组成。再加入占总体系体积分数60%的正己烷作为抑菌剂,在37℃恒温条件下200 rpm搅拌转化84 h,得酶解液。
步骤3,产品的回收
将酶解液3000g离心处理后,上层有机系用正己烷回收,回收率可达95%。去除底部酶解残渣后下层水系采用吸附树脂吸附的方法吸附所需N-乙酰氨基葡萄糖,经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。其中,树脂吸附可采用强极性吸附树脂、弱极性吸附树脂,流速30-450 mL/h,紫外在线检测器210 nm波长检测流出液,采用梯度乙醇洗脱的方法洗脱吸附产物。经液相检测该法获得的N-乙酰氨基葡萄糖纯度高,24 h转化后收率可达40%,84 h转化后收率可达90%。
实施例3
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以Chitinibactersp.GC72菌株为几丁质酶生产菌株,种子培养基为(4 g/L葡萄糖,4 g/L蛋白胨,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.4 g/L MgSO4·7H2O,pH 7.0),37℃、200 rpm培养12 h,将种子液以体积分数6%接种量接入装有产酶发酵培养基的7.5 L发酵罐,装液量4 L,产酶培养基为(4 g/L粉粒几丁质,2 g/L葡萄糖,4 g/L牛肉浸膏,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.5 g/L MgSO4·7H2O)培养温度30℃,转速为200 rpm,通气量1 vvm,初始pH 7.5,72 h结束发酵收集发酵液。
将发酵液8000g离心,丢弃菌体,收集上清液后经过硫酸铵沉淀、复溶。将几丁质粗酶液装入透析袋(截留分子量8000 KDa)中,以蒸馏水为透析液,每隔6 h更换一次透析液, 4℃条件下透析24 h后浓缩酶液,浓缩后获得几丁质降解酶。
步骤2,酶解几丁质
向1 L反应釜中加入几丁质降解酶90 U,终浓度为30 g/L的几丁质粉末,加入向反应釜中加入MgSO4 溶液15mM,辅助酶制剂占反应体系总质量的0.3% ,其中,辅助酶制剂由以下按质量分数计的物质:纤维素酶10%、半纤维素酶40%,淀粉酶25%,果胶酶25%。再加入占总体系体积分数60%的正己烷作为抑菌剂,在37℃恒温条件下200 rpm搅拌转化84 h,得酶解液。
步骤3,产品的回收
将酶解液进行3000g离心处理后,上层有机系用正己烷回收,回收率可达95%。去除底部酶解残渣后下层水系采用吸附树脂吸附的方法吸附所需N-乙酰氨基葡萄糖,经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。其中,树脂吸附可采用强极性吸附树脂、弱极性吸附树脂,流速30-450 mL/h,紫外在线检测器210 nm波长检测流出液,采用梯度乙醇洗脱的方法洗脱吸附产物。经液相检测该法获得的N-乙酰氨基葡萄糖纯度高,24 h转化后收率可达48%,96 h转化后收率可达99%。
对比例1
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以Chitinibactersp.GC72菌株为几丁质酶生产菌株,种子培养基为(4 g/L葡萄糖,4 g/L蛋白胨,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.4 g/L MgSO4·7H2O,pH 7.0),37℃、200 rpm培养12 h,将种子液以体积分数6%接种量接入装有产酶发酵培养基的7.5 L发酵罐,装液量4 L,产酶培养基为(4 g/L粉粒几丁质,2 g/L葡萄糖,4 g/L牛肉浸膏,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.5 g/L MgSO4·7H2O)培养温度30℃,转速为200 rpm,通气量1 vvm,初始pH 7.5,72 h结束发酵收集发酵液。
将发酵液8000g离心,丢弃菌体,收集上清液后经过硫酸铵沉淀、复溶。将几丁质粗酶液装入透析袋(截留分子量8000 KDa)中,以蒸馏水为透析液,每隔6 h更换一次透析液, 4℃条件下透析24 h后浓缩酶液,浓缩后获得几丁质降解酶。
步骤2,酶解几丁质
向1 L反应釜中加入几丁质降解酶90 U,终浓度为30 g/L的几丁质粉末,在37℃恒温条件下200 rpm搅拌转化84 h。
步骤3,产品的回收
将酶解液3000g离心处理后,经液相检测获得的N-乙酰氨基葡萄糖,24 h时转化后收率可达35%,由于体系染菌,96 h未检出N-乙酰氨基葡萄糖的存在。
对比例2
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以Chitinibactersp.GC72菌株为几丁质酶生产菌株,种子培养基为(4 g/L葡萄糖,4 g/L蛋白胨,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O,0.4 g/L MgSO4·7H2O,pH 7.0),37℃、200 rpm培养12 h,将种子液以体积分数6%接种量接入装有产酶发酵培养基的7.5 L发酵罐,装液量4 L,产酶培养基为(4 g/L粉粒几丁质,2 g/L葡萄糖,4 g/L牛肉浸膏,0.7 g/L KH2PO4,0.3 g/L K2HPO4·3H2O ,0.5 g/L MgSO4·7H2O)培养温度30℃,转速为200 rpm,通气量1 vvm,初始pH 7.5,72 h结束发酵收集发酵液。
将发酵液8000g离心,丢弃菌体,收集上清液后经过硫酸铵沉淀、复溶。将几丁质粗酶液装入透析袋(截留分子量8000 KDa)中,以蒸馏水为透析液,每隔6 h更换一次透析液, 4℃条件下透析24 h后浓缩酶液,浓缩后获得几丁质降解酶。
步骤2,酶解几丁质
向1 L反应釜中加入几丁质降解酶90 U,终浓度为30 g/L的几丁质粉末,加入向反应釜中加入MgSO4 溶液15mM,辅助酶制剂占反应体系总质量的0.3%,其中,辅助酶制剂由以下按质量分数计的物质:含纤维素酶50%、半纤维素酶10%,淀粉酶10%,果胶酶30%组成。再加入体积分数60%的正己烷作为抑菌剂,在20℃条件下200 rpm搅拌转化84 h,得酶解液。
步骤3,产品的回收
将酶解液3000g离心处理后,上层有机系用正己烷回收,回收率可达95%。去除底部酶解残渣后下层水系采用吸附树脂吸附的方法吸附所需N-乙酰氨基葡萄糖,经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。其中,树脂吸附可采用强极性吸附树脂、弱极性吸附树脂,流速30-450 mL/h,紫外在线检测器210 nm波长检测流出液,采用梯度乙醇洗脱的方法洗脱吸附产物。经液相检测该法获得的N-乙酰氨基葡萄糖纯度高,24 h转化后收率为28%,96 h转化后收率为71%。
通过上述实施例和对比例的结果可知,本发明抑菌材料可实现重复利用,转化过程无菌,降低能耗的同时获得高产率,其中,几丁质酶激活剂和辅助酶制剂的添加,可使酶解效率提高30%左右。有机试剂的应用可以抑制转化体系染菌,使96 h后的转化体系N-乙酰氨基葡萄糖的收率由0最高升至99%,且降解产物生物活性良好,具有显著的经济效益。
Claims (9)
1. 一种抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤1,微生物发酵产几丁质酶
以产几丁质酶微生物为供试菌,将供试菌接种到种子培养基上,在37℃,200 rpm,初始pH为6 ~ 8的条件下培养,得种子液,再将种子液接种到装有产酶发酵培养基的发酵罐中,在30℃,200 rpm,初始pH为6 ~ 8,通气量1vvm的条件下发酵,获得几丁质酶粗酶液,经提纯、透析、浓缩后获得几丁质降解酶;
步骤2,酶解几丁质
将几丁质降解酶置于反应釜内,依次加入几丁质粉末、金属离子激活剂、辅助酶制剂和有机试剂,恒温加热并搅拌,待几丁质粉末完全被降解,得酶解液;
步骤3,产品的回收
离心酶解液,得双相体系,其中上层体系为有机系,下层为水系,下层水系用吸附树脂吸附、洗脱,收集洗脱液经低温浓缩、醇洗、结晶、干燥后获得产品。
2. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:步骤2,所述的金属离子激活剂为Mg2+、Mn2+、Ca2+、Na+、K+、Al3+、Fe2+、Fe3+、Zn2+或Cu2+金属盐中的一种或几种。
3. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:步骤2,所述的金属离子激活剂的终浓度为5-25 mmol/L。
4. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:步骤2,所述的辅助酶制剂包括以下按质量百分比计的纤维素酶2-60%、半纤维素酶1-15%、淀粉酶5-70%、果胶酶2-40%。
5. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:步骤2,所述的辅助酶制剂占反应体系总质量的0.1-0.3%。
6. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:所述的有机试剂为丙酮、***、正己烷、环己烷、二氯甲烷或石油醚中的一种或多种。
7. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:步骤2,恒温加热的温度为20-37℃,搅拌速度为50-200 rpm。
8. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:所述有机试剂占总体系的体积分数为10-70%。
9. 根据权利要求1所述的抑菌的几丁质酶解方法,其特征在于:所述微生物为Chitinolyticbacter meiyuanensis SYBC-H1或Chitinibactersp.GC72。
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