CN102851266A - 一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 - Google Patents
一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102851266A CN102851266A CN2012102741733A CN201210274173A CN102851266A CN 102851266 A CN102851266 A CN 102851266A CN 2012102741733 A CN2012102741733 A CN 2012102741733A CN 201210274173 A CN201210274173 A CN 201210274173A CN 102851266 A CN102851266 A CN 102851266A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- amylase
- alpha
- aminoacid sequence
- coli
- gene
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及一种α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法,属于基因工程和酶工程领域。本发明涉及一种来源于芽孢杆菌属(Bacillus sp.)细菌的α-淀粉酶编码基因,其基因序列为序列表中的SEQ NO.2。利用该基因构建的重组微生物表达产生的重组α-淀粉酶,其氨基酸序列为序列表中的SEQ NO.1。利用本发明获得的α-淀粉酶编码基因构建重组微生物,可实现α-淀粉酶的高效率生产,具有很好的工业应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及一株α-淀粉酶基因工程菌及其构建方法,属于酶工程和基因工程领域。
背景技术
淀粉酶是能够降解淀粉糖苷键的一类酶的总称。按照水解方式的不同,主要分为α-淀粉酶、β-淀粉酶、糖化酶、异淀粉酶和普鲁兰酶。
淀粉作为原料在工业中的应用,其最主要的方式是将淀粉水解成葡萄糖、麦芽糖或者寡糖糖浆。这些糖浆随后被用作原料用于如酒精、有机酸、氨基酸等工业生产或直接作为产品用于其他工业领域。目前工业上用淀粉制糖主要采用酶水解的方法。酶法制糖工艺一般采用两步法,第一步用α-淀粉酶将淀粉水解成低分子量的糊精,第二步用糖化酶将糊***解成葡萄糖。α-淀粉酶的作用特点是在淀粉分子链中间将α-1,4糖苷键切断。
发明内容
本发明所要解决的一个技术问题是提供了一种耐热α-淀粉酶,其氨基酸序列如1)、或2)或3)所示:
1)其氨基酸序列如SEQ NO.1所示;
2).在1)所限定的氨基酸序列的基础上经过一个或几个氨基酸残基的取代、缺少或添加,且具有α-淀粉酶活性的氨基酸序列;
3).与1)、或2)所限定的氨基酸序列具有90%同源性的,且具有α-淀粉酶活性的氨基酸序列。
所述的α-淀粉酶的核苷酸序列如SEQ NO.2所示。
本发明所解决的另一个技术问题是提供了一株表达α-淀粉酶的基因工程菌。本发明所解决的另一个技术问题是提供了一种α-淀粉酶基因工程菌的构建方法包括如下步骤:
1)化学合成α-淀粉酶基因;
2).将α-淀粉酶基因克隆到重组表达载体;
3).将重组表达载体转化到宿主细胞中。
所述的重组表达质粒载体为为pUC系列,pET系列pT7-7,或pGEX中的任意一种,其中优选重组表达质粒载体为pET-20b。
所述的宿主细胞包括:细菌,酵母及真菌,也是本发明所要保护的范围。
所述的细菌主要是大肠杆菌包括:E.coli BL21(DE3)、E.coli W3110、E.coli JM109、E.coliJM109(DE3)、E.coli DH5α中任意一种。
本发明所解决的另一个技术问题是提供一种α-淀粉酶的基因工程菌的发酵生产方法,37℃,220rpm,摇瓶发酵48小时后,重组α-淀粉酶摇瓶发酵活力达到742U/mL。
利用本发明获得的α-淀粉酶具有良好的稳定性,在95℃下保温4h后还有70%的酶活,编码基因构建重组微生物,可实现α-淀粉酶的高效率生产,摇瓶发酵48小时后,重组α-淀粉酶摇瓶发酵活力达到742U/mL,具有很好的工业应用前景。
附图说明
图1重组α-淀粉酶摇瓶发酵产酶曲线。
图2重组α-淀粉酶蛋白SDS-PAGE图。
1、发酵液上清;2、破壁上清;3、包涵体;M、标准蛋白分子量。
图3重组α-淀粉酶分批补料发酵产酶曲线。
图4重组α-淀粉酶温度稳定性曲线。
具体实施方式
实施例1:基因工程菌的构建
1、将合成的α-淀粉酶基因片段克隆到pUC57载体上。
2、用于构建大肠杆菌的质粒是pET-20b,带有T7启动子。将pET-20b质粒和带有目的基因片段的pUC57分别进行NcoⅠ和HindⅢ双酶切,酶切产物割胶回收后,再用T4连接酶连接,连接产物转化E.coli JM109感受态细胞,经37℃培养8h,挑转化子在含有30μg/mL卡那霉素的LB中振荡培养,提取质粒,酶切验证得到的重组表达质粒。
3、将重组表达质粒转化E.coli BL21(DE3)宿主菌,涂布含卡那霉素(30μg/mL)的LB平板上,37℃培养8h。挑单菌落至液体LB中,37℃培养过夜,获得基因工程菌。
实施例2:含α-淀粉酶基因工程菌的摇瓶发酵
将所述的基因工程菌在LB培养基中37℃液体培养过夜,后接入TB(甘油5g/L,蛋白胨12g/L,酵母膏24g/L,K2HPO412.54g/L,KH2PO42.31g/L)发酵液体培养基中,摇床培养,转速200rpm,37℃恒温发酵48小时后,离心菌体,收集上清液测定酶活力,重组α-淀粉酶摇瓶发酵活力达到742U/mL。重组α-淀粉酶产酶曲线见图1,SDS-PAGE电泳图见图2。
实施例3:含α-淀粉酶基因工程菌的分批补料发酵
将所述的基因工程菌在工业级LB培养基中37℃培养8小时后,按10%接种量接入NBS(New Brunswick Scientific)3L全自动发酵罐,发酵罐初始装入1.1L工业级复合培养基(甘油8g/L,KH2PO413.5g/L,(NH4)2HPO44g/L,柠檬酸1.7g/L,MgSO40.68g/L,工业级蛋白胨1g/L,工业级酵母粉2gL,pH7.1),32℃恒温发酵,维持溶氧在30%左右,利用氨水控制pH7.0左右。初始阶段培养基中甘油耗尽后,溶氧快速上升,开始指数流加补料液,控制比生长速率μ=0.2h-1。当菌浓OD600达到15时,一次性添加终浓度为1%(质量体积分数)甘氨酸。当菌浓OD600达到50时,恒速添流加0.1g/L/h的乳糖进行诱导,整个发酵过程由发酵罐控制***软件进行在线控制和数据采集。发酵过程中,菌浓OD600最高可达160,重组α-淀粉酶摇瓶发酵活力达到1.1万U/mL,重组α-淀粉酶分批补料发酵产酶曲线如图3所示。
实施例4:重组α-淀粉酶在高温下的稳定性
将重组α-淀粉酶用pH6.0的糊精溶液稀释10倍,再加入终浓度为10mM的钙离子,将该体系置于95℃恒温水浴锅中保温,定时取样测酶活力(具体实验方法参见GB8275-2009)。结果表明该重组酶具有良好的稳定性,在95℃下保温4h后还有70%的酶活,温度稳定性曲线如图4所示。
Claims (9)
1.一种耐热α-淀粉酶,其特征在其氨基酸序列如1)或2)或3)所示:
1)其氨基酸序列如SEQ NO.1所示;
2).在1)所限定的氨基酸序列基础上经过一个或几个氨基酸残基的取代、缺少或添加,且具有α-淀粉酶活性的氨基酸序列;
3).与1)、或2)所限定的氨基酸序列具有90%同源性的,且具有α-淀粉酶活性的氨基酸序列。
2.编码权利要求1所述α-淀粉酶的核苷酸序列,其特征在于如SEQ NO.2所示。
3.含有权利要求1所述α-淀粉酶的基因工程菌。
4.权利要求3所述基因工程菌的构建方法,其特征在于包括如下步骤:
1)化学合成α-淀粉酶基因;
2).将α-淀粉酶基因克隆到重组表达载体;
3).将重组表达载体转化到宿主细胞中。
5.根据权利要求4所述构建方法,其特征在于所述的重组表达质粒载体为为pUC系列,pET系列pT7-7,或pGEX中的任意一种。
6.根据权利要求4或5所述的构建方法,其特征在于所述重组表达质粒载体为pET-20b。
7.根据权利要求4或5所述构建方法,其特征在于所述的宿主细胞包括:细菌,酵母及真菌。
8.根据权利要求5所述构建方法,其特征在于所述细菌是大肠杆菌包括:E.coli BL21(DE3)、E.coli W3110、E.coli JM109、E.coli JM109(DE3)、E.coli DH5α中任意一种。
9.权利要求3所述α-淀粉酶的基因工程菌的发酵生产方法,其特征在于37℃,220rpm,摇瓶发酵48小时后,重组α-淀粉酶摇瓶发酵活力达到742U/mL。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210274173.3A CN102851266B (zh) | 2012-08-03 | 2012-08-03 | 一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210274173.3A CN102851266B (zh) | 2012-08-03 | 2012-08-03 | 一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102851266A true CN102851266A (zh) | 2013-01-02 |
CN102851266B CN102851266B (zh) | 2014-12-03 |
Family
ID=47398245
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210274173.3A Active CN102851266B (zh) | 2012-08-03 | 2012-08-03 | 一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102851266B (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103088003A (zh) * | 2013-01-29 | 2013-05-08 | 江南大学 | 一种耐氧化性淀粉酶突变体及其制备方法和应用 |
CN106566820A (zh) * | 2016-09-20 | 2017-04-19 | 江南大学 | α‑淀粉酶的制备方法 |
CN108753671A (zh) * | 2018-06-05 | 2018-11-06 | 江南大学 | 一种高产角质酶的重组大肠杆菌工程菌及其发酵工艺 |
WO2023225459A2 (en) | 2022-05-14 | 2023-11-23 | Novozymes A/S | Compositions and methods for preventing, treating, supressing and/or eliminating phytopathogenic infestations and infections |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101457230A (zh) * | 2008-12-08 | 2009-06-17 | 江南大学 | 一种高温α-淀粉酶及其突变体的高效制备方法 |
WO2011049945A2 (en) * | 2009-10-23 | 2011-04-28 | Danisco Us Inc. | Methods for reducing blue saccharide |
-
2012
- 2012-08-03 CN CN201210274173.3A patent/CN102851266B/zh active Active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101457230A (zh) * | 2008-12-08 | 2009-06-17 | 江南大学 | 一种高温α-淀粉酶及其突变体的高效制备方法 |
WO2011049945A2 (en) * | 2009-10-23 | 2011-04-28 | Danisco Us Inc. | Methods for reducing blue saccharide |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
《World J Microbiol Biotechnol》 20070814 Lin Long-Liu et al Glutamic acid 219 is critical for the thermostability of a truncated alpha-amylase from alkaliphilic and thermophilic Bacillus sp. strain TS-23 619-626 1-9 第24卷, * |
《应用与环境生物学报》 20080825 董晨等 耐高温alpha-淀粉酶基因在枯草芽孢杆菌中的高效表达 534-538 1-9 第14卷, 第4期 * |
LIN LONG-LIU ET AL: "Glutamic acid 219 is critical for the thermostability of a truncated α-amylase from alkaliphilic and thermophilic Bacillus sp. strain TS-23", 《WORLD J MICROBIOL BIOTECHNOL》, vol. 24, 14 August 2007 (2007-08-14), pages 619 - 626 * |
董晨等: "耐高温α-淀粉酶基因在枯草芽孢杆菌中的高效表达", 《应用与环境生物学报》, vol. 14, no. 4, 25 August 2008 (2008-08-25), pages 534 - 538 * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103088003A (zh) * | 2013-01-29 | 2013-05-08 | 江南大学 | 一种耐氧化性淀粉酶突变体及其制备方法和应用 |
CN103088003B (zh) * | 2013-01-29 | 2015-01-07 | 江南大学 | 一种耐氧化性淀粉酶突变体及其制备方法和应用 |
CN106566820A (zh) * | 2016-09-20 | 2017-04-19 | 江南大学 | α‑淀粉酶的制备方法 |
CN106566820B (zh) * | 2016-09-20 | 2019-07-16 | 江南大学 | α-淀粉酶的制备方法 |
CN108753671A (zh) * | 2018-06-05 | 2018-11-06 | 江南大学 | 一种高产角质酶的重组大肠杆菌工程菌及其发酵工艺 |
WO2023225459A2 (en) | 2022-05-14 | 2023-11-23 | Novozymes A/S | Compositions and methods for preventing, treating, supressing and/or eliminating phytopathogenic infestations and infections |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102851266B (zh) | 2014-12-03 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Liu et al. | Molecular characterization and expression of microbial inulinase genes | |
CN112553134B (zh) | 一种在枯草芽孢杆菌中表达α-淀粉酶的方法 | |
CN101531988B (zh) | 碱性果胶酶基因工程菌及其构建方法 | |
CN102787130B (zh) | 一种耐酸性高温α-淀粉酶及其基因、工程菌和制备方法 | |
CN102876650A (zh) | 一种普鲁兰酶突变体及其制备方法 | |
WO2020228458A1 (zh) | 一种敲除spoⅡQ和pcf基因提高地衣芽孢杆菌发酵产酶的方法及应用 | |
CN105062997A (zh) | 一种酶活提高的l-天冬酰胺酶突变体及其构建方法 | |
CN102851266B (zh) | 一株耐热α-淀粉酶及其基因工程菌的构建方法 | |
CN105349515A (zh) | 一种分泌能力提高的天冬酰胺酶突变体及其应用 | |
US20230272443A1 (en) | N-Acetylglucosamine-Producing Bacterial Strain As Well As Method Of Construction And Use Thereof | |
Song et al. | Cloning of two cellobiohydrolase genes from Trichoderma viride and heterogenous expression in yeast Saccharomyces cerevisiae | |
CN102994425A (zh) | 一种基因重组大肠杆菌及其高效生产普鲁兰酶的方法 | |
CN102559568A (zh) | 一种酸性耐热异淀粉酶基因工程菌及其应用 | |
CN105950579B (zh) | 一种无信号肽胞外生产淀粉分支酶的方法 | |
CN101974441A (zh) | 一种α-葡萄糖苷酶基因工程菌及其应用 | |
CN103275960B (zh) | 一种人工设计的青霉素g酰化酶原及编码序列和发酵方法 | |
CN102586312A (zh) | 一种将胞内蛋白基质表达的方法和其应用 | |
Guo et al. | Engineering of Clostridium tyrobutyricum for butyric acid and butyl butyrate production from cassava starch | |
CN116144571B (zh) | 一种不依赖于抗生素并稳定高产α-淀粉酶的短小芽孢杆菌及其构建方法和应用 | |
CN101457230B (zh) | 一种高温α-淀粉酶及其突变体的高效制备方法 | |
CN111334446B (zh) | 一株耐高温糖化酵母菌株及其应用 | |
CN102392003B (zh) | Edta在提高大肠杆菌重组蛋白胞外分泌量和表达量中的应用 | |
US20150368678A1 (en) | Production of butanol | |
CN105316274A (zh) | 一种天冬酰胺酶分泌能力提高的重组枯草芽孢杆菌及其应用 | |
He et al. | Ethanol production by mixed-cultures of Paenibacillus sp. and Zymomonas mobilis using the raw starchy material from sweet potato |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |