WO2012157821A1 - 가변색 이광자 형광프로브, 이를 이용한 미토콘드리아 내 티올 활성의 영상화 방법 및 이의 제조방법 - Google Patents

가변색 이광자 형광프로브, 이를 이용한 미토콘드리아 내 티올 활성의 영상화 방법 및 이의 제조방법 Download PDF

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김환명
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Definitions

  • a third object of the present invention is to provide a method for selectively imaging the distribution and activity of mitochondrial thiol in living cells or tissues using the two-photon fluorescent probe.
  • the present invention provides a two-photon fluorescent probe represented by the following formula (1):
  • X is S or O.
  • the present invention comprises the steps of (a) dissolving a compound represented by the formula (2) and a compound represented by the formula (3) in nitrobenzene and stirring to obtain a compound represented by the formula (4);
  • the present invention comprises the steps of (a) injecting the two-photon fluorescent probe into the cell;
  • the probe according to the present invention selectively stains the mitochondria by introducing two probes into one molecule, and at the same time reacts with thiols to show strong fluorescence. It can also be easily loaded into cells due to its good solubility in water and small molecular weight.
  • thiols within the mitochondria can be selectively detected in living cells and 90-190 ⁇ m deep tissues over 60 minutes, thereby imaging the distribution and activity of thiols inside the mitochondria in living cells or intact biological tissues. have.
  • 1 is a graph of fluorescence intensity versus two-photon fluorescence probe concentration in (a) single photon fluorescence spectra and (b) buffer (30 mM MOPS, 100 mM KCl, pH 7.4) (excitation wavelength is 340 nm).
  • FIG. 3 is a graph showing the relative fluorescence intensity of SSH-Mito (5 ⁇ M) for GSH and other analytes in the MOPS buffer.
  • the filled and unfilled bars represent the relative fluorescence intensity ( F yellow / F blue ) of SSH-Mito (5 ⁇ M) in the presence of various analytes before and after GSH addition, respectively.
  • Each spectrum was obtained 2 hours after the addition of each analyte at 37 ° C.
  • Figure 4 shows the change in fluorescence intensity according to the pH change of 5 ⁇ M SSH-Mito in the absence ( ⁇ ) and presence ( ⁇ ) of 10 mM GSH in 3 mL of MOPS buffer (37 °C, 2 h).
  • the excitation wavelength is 380 nm.
  • FIG. 5 shows (a) TPM and (b) OPM images of HeLa cells labeled for 30 minutes at 37 ° C. with (a) SSH-Mito (5 ⁇ M) and (b) 5 ⁇ M MitoTracker Red FM. to be.
  • FIG. 6 is a pseudocolored variable color photon image of HeLa cells incubated with (ad) 5 ⁇ M SSH-Mito (a) and Compound 7 (labeled 1) (d), respectively, before being labeled with SSH-Mito (b) treated with lipoic acid (500 ⁇ M) for one day and (c) treated with NEM (100 ⁇ M) for 30 minutes.
  • Figure 7 measured the viability of HeLa cells incubated for 2 hours with SSH-Mito in the presence of SSH-Mito by CCK-8 kit.
  • FIG. 8 Hippocampal section images of rats stained with 20 ⁇ M SSH-Mito for 2 hours.
  • (b, e) Bright-field image of the CA1-CA3 region.
  • the present invention relates to a fluorescent probe selectively located in the mitochondria, a representative active organelle inside a cell. More specifically, the activity of a thiol present in the mitochondria is determined by two-photon microscopy (TPM).
  • TPM two-photon microscopy
  • the present invention relates to a variable color two-photon fluorescent probe (hereinafter referred to as SSH-Mito), a core material required for real-time imaging, a method for preparing the same, and a method for imaging thiol in mitochondria using the same.
  • X is S or O.
  • the two-photon fluorescent probe (SSH-Mito) of the present invention is a two-photon fluorescent substance by using a triphenylphosphonium salt (TPP) as a mitochondrial probe and a disulfide bond as a thiol reaction site.
  • TPP triphenylphosphonium salt
  • the triphenylphosphonium salt (TPP) and disulfide bonds in the compound are located as far as possible to minimize the interaction between them.
  • the two-photon fluorescent probe of the present invention is selectively stained in the mitochondria of the intracellular organelles, and reacted with thiol to the ratio of the relative fluorescence intensity at 425 ⁇ 475 nm ( F blue ) and 525 ⁇ 575 nm ( F yellow ) ( F yellow / F blue ) increases by 42 to 77 times.
  • F blue 475 nm
  • F yellow 525 ⁇ 575 nm
  • F yellow / F blue increases by 42 to 77 times.
  • Two-photon fluorescent probes of the present invention include glutathione (GSH), thiol (cysteine; Cys), homocysteine (Hcy), dithiothreitol (DTT), 2-mercaptoethanol (thiol) A strong reaction against 2-mercaptoethanol (2-ME), 2-aminoethanethiol (2-AET), etc., and a group of amino acids containing no thiol (glu, ser, val, met, ala, ile) , Metal ions (Na + , K + , Ca + , Mg 2+ , Zn 2+ ), H 2 O 2, and the like have almost no reaction.
  • the two-photon fluorescent probe (SSH-Mito) of the present invention has a characteristic of being pH-unresponsive in a pH range related to a living body.
  • the two-photon fluorescent probe of the present invention has a deep penetration depth of 90 ⁇ m or more, more preferably 90 to 190 ⁇ m, and thus mitochondria in living cells and biological tissues of 90 to 190 ⁇ m deep. Internal thiols can be detected.
  • the two-photon fluorescent probe of the present invention is capable of continuous thiol detection for 60 minutes or more due to the light stability inside the cell, and more preferably, it is possible to stably detect for 30 minutes to 90 minutes. The above results support that the two-photon fluorescent probe of the present invention can be utilized as an excellent variable color fluorescent probe that does not interfere with other physiological substances or pH in cells.
  • the present invention also provides a method for producing a two-photon fluorescent probe comprising the following steps.
  • the solubility of the two-photon fluorescent probe is determined to be the highest concentration exhibiting a linear pattern.
  • the two-photon fluorescent probe (SSH-Mito) according to the present invention in the buffer showed a solubility of ⁇ 5.0 ⁇ M. Therefore, the solubility of 5.0 ⁇ M or more of the two-photon fluorescent probe according to the present invention is very effective in cell staining.
  • Figure 3 shows 30 mM MOPS buffer (100 mM KCl, 10 mM EGTA, pH 7.4) and 10 mM Na + , K + , Ca 2+ , Mg 2+ , Zn 2+ , Ser, Ala, Glu, When Val, Ilu, Met, H 2 O 2 and GSH are added, the graph shows the relative fluorescence intensity of SSH-Mito of 5 ⁇ M. In the graph, the bar with the inside filled with GSH is added, and the bar without the inside filled with GSH added. Referring to FIG.
  • the two-photon fluorescent probe according to the present invention is compared with Na + , K + , Ca 2+ , Mg 2+ , Zn 2+ , Ser, Ala, Glu, Val, Ilu, Met, H 2 O 2 To show high selectivity for GSH (see FIGS. 2 (c) and 3).
  • Figure 4 shows the fluorescence change with pH change of 5 ⁇ M SSH-Mito when 10 mM GSH is absent ( ⁇ ) and present ( ⁇ ) in 3 mL of MOPS buffer. That is, it can be seen that the two-photon fluorescent probe according to the present invention exhibits high fluorescence intensity at biologically related pH conditions and is not affected by pH conditions.
  • the two-photon fluorescent probe GSH according to the present invention has very high selectivity, furthermore, it is not sensitive to pH conditions in vivo and is very useful as a two-photon dye for thiol in vivo.
  • the two-photon fluorescent probes of the present invention were tested to see if they could monitor changes in thiols.

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Abstract

본 발명은 이광자 형광 프로브에 관한 것으로서, 보다 구체적으로는 이광자 형광 프로브, 그 제조 방법 및 이를 이용한 미토콘드리아 내 티올을 이미징 하는 방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브는 한 분자 내에 두 개의 탐침을 도입시킴으로써 미토콘드리아에 선택적으로 염색됨과 동시에 티올과 반응하여 강한 형광을 나타내며, 생체 세포 또는 온건한 생체 조직에서 미토콘드리아 내 티올의 분포 및 활성을 이미징할 수 있다.

Description

가변색 이광자 형광프로브, 이를 이용한 미토콘드리아 내 티올 활성의 영상화 방법 및 이의 제조방법
본 발명은 세포 내부의 대표적인 활성 소기관인 미토콘드리아에 선택적으로 위치하고 티올과 결합하여 이광자 형광의 색이 변화하는 가변색 형광 프로브에 관한 것으로서, 보다 구체적으로는 높은 감도와 선택성으로 미토콘드리아 내부에 존재하는 티올의 활동성을 낮은 에너지 여기원의 이광자 현미경을 통해 실시간으로 영상화 할 수 있는 핵심 소재인 이광자 형광 프로브 및 이의 제조방법에 관한 것이다.
세포 내에 존재하는 티올 유도체(시스테인(Cys), 호모시스테인(Hcy) 및 글루타티온(GSH))는 생리 활성에 있어 필수적인 역할을 한다. 특히 미토콘드리아 내의 티올(RSH) 유도체는 다이설파이드(RSSR) 형태와의 평형 과정을 통하여 단백질의 구조와 산화-환원의 균형을 조절하는데 핵심적인 역할을 수행한다. 또한 미토콘드리아 내부에 존재하는 티올(RSH)과 다이설파이드(RSSR) 유도체의 비는 100:1 이상으로 유지되는 것으로 알려져 있으며, 이 균형이 깨어지면 심각한 세포 손상 및 사멸을 초래하게 된다.
이러한 기능을 이해하기 위하여, 플루오로세인(fluoroscein), 로다민(rhodamine) 또는 녹색 형광 단백질(green fluorescent protein; GFP) 등을 형광체로 사용하여 수많은 단일광자 형광 프로브가 개발되어 왔으나, 대부분의 단일광자 프로브의 공통적인 문제점은 그들의 짧은 여기 파장(<500 ㎚) 사용에 있다. 짧은 여기 파장은 얕은 투과 깊이(<100 ㎛), 광표백(photo bleaching) 및 세포 자가 형광 등의 문제를 야기함으로써 조직 이미징(imaging)에 대한 적용을 제한한다. 이러한 문제에 대한 해결책으로 제시된 것이 이광자 현미경(TPM)을 사용하는 방법이었다. 이광자 현미경은 낮은 여기 에너지를 갖는 2개의 근적외선 광자들을 여기원으로 사용하기 때문에 단일광자 현미경에 비해서 여러 가지 장점들을 제공할 수 있는데, 구체적으로는 증가된 투과 깊이, 국소화된 여기 및 장시간 이미징 등의 장점을 가지고 있다.
표지자와 관련된 세계 시장 규모는 매년 커지고 있으며, 현재 상업적으로 공급되고 있는 일광자 형광 표지자의 수는 약 4,000 개에 이른다. 하지만 지금까지 개발된 이광자 표지자의 수는 10 여개에 불과하며, 특히 세포 내부의 대표적인 활성 소기관인 미토콘드리아 내부에 존재하는 티올을 선택적으로 감지할 수 있는 이광자 형광 프로브는 전무한 상태이다.
이에 본 발명자는 기존의 단일광자 형광 프로브가 가지는 짧은 여기 파장에 따른 문제점을 해결하고, 미토콘드리아 내 티올을 선택적으로 감지할 수 있는 이광자 형광 프로브를 개발하고자 연구, 노력한 결과, 미토콘드리아 내부에 존재하는 티올을 선택적으로 감지할 수 있는 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)를 개발함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서 본 발명은 미토콘드리아에 선택적으로 염색되고 티올에 대한 선택성과 활동성을 영상화시키기에 적합한 이광자 형광 프로브를 제공하는 것을 그 첫 번째 과제로 한다.
또한 본 발명은 상기 이광자 형광 프로브의 제조방법을 제공하는 것을 그 두 번째 과제로 한다.
마지막으로 본 발명은 상기 이광자 형광 프로브를 이용하여 생체 세포 또는 조직에서 미토콘드리아 내부 티올의 분포 및 활동성을 선택적으로 이미징하는 방법을 제공하는 것을 그 세 번째 과제로 한다.
상기 과제를 해결하기 위해 본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브를 제공한다:
[화학식 1]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000001

상기 화학식 1에서, X는 S 또는 O이다.
또한 본 발명은 (a) 하기 화학식 2로 표시되는 화합물과 하기 화학식 3으로 표시되는 화합물을 니트로벤젠에 용해한 후 교반하여 화학식 4로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
(b) 상기 화학식 4로 표시되는 화합물에 화학식 5로 표시되는 화합물을 반응시켜 화학식 6으로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
(c) 상기 얻어진 화학식 6으로 표시되는 화합물에 피리딘 및 화학식 7로 표시되는 화합물을 섞은 후 N,N-디메틸아미노피리딘(DMAP)을 첨가하고, 교반하여 화학식 8로 표시되는 화합물을 얻는 단계; 및
(d) 상기 얻어진 화학식 8로 표시되는 화합물 용매에 녹인 후 교반하고 용매를 증발시키는 단계
를 포함하는 것을 특징으로 하는 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브의 제조방법을 제공한다:
[화학식 1]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000001
[화학식 2]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000002
[화학식 3]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000003
[화학식 4]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000004
[화학식 5]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000005
[화학식 6]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000006
[화학식 7]
Figure PCTKR2011007697-appb-C000007
[화학식 8]
상기 화학식 1, 3, 4, 6 및 8에서, X는 S 또는 O이다.
마지막으로 본 발명은 (a) 상기 이광자 형광 프로브를 세포에 주입하는 단계;
(b) 주입된 이광자 형광 프로브가 미토콘드리아의 티올과 반응하여 형광을 나타내는 단계; 및
(c) 상기 형광을 이광자 현미경을 통해 관측하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 미토콘드리아 내 티올의 이미징 방법을 제공한다.
본 발명에 따른 프로브는 한 분자 내에 두 개의 탐침을 도입시킴으로써 미토콘드리아에 선택적으로 염색됨과 동시에 티올과 반응하여 강한 형광을 나타낸다. 또한 물에 대한 우수한 용해도와 작은 분자량으로 인하여 세포에 쉽게 로딩될 수 있다. 또한, 60 분 이상에 걸쳐 생체 세포 및 90 ~ 190 μm 깊이의 생체 조직에서 선택적으로 미토콘드리아 내부의 티올을 탐지할 수 있으므로, 생체 세포 또는 온전한 생체 조직에서 미토콘드리아 내부의 티올의 분포 및 활성을 이미징할 수 있다.

도 1은 (a) 단일광자 형광 스펙트라 및 (b) 버퍼(30 mM MOPS, 100 mM KCl, pH 7.4)에서 이광자 형광 프로브 농도에 대한 형광강도의 그래프이다(여기파장은 340 nm이다).
도 2는 (a) MOPS 버퍼(30 mM, pH = 7.4)에서 SSH-Mito(5 μM)과 GSH(10 mM)의 반응에 따른 단일광자 형광 반응을 시간에 따라 나타낸 그래프이며, (b)는 GSH의 농도 vs kobs를 나타낸 그래프이고, (c)는 GSH, Cys, DTT, 2-ME 및 2-AET에 대한 SSH-Mito의 형광 반응을 나타낸 그래프이다. 내부가 채워지지 않은 막대와 내부가 채워진 막대는 각각 티올의 첨가 전 및 첨가 후 2시간이 경과한 뒤의 SSH-Mito의 상대적 형광강도(F yellow/F blue)를 나타낸다. (d)는 MOPS 버퍼에서 SSH-Mito와 화합물 7(1로 표시됨)이광자 액션 스펙트라를 나타낸 그래프이다.
도 3은 MOPS 버퍼에서 GSH와 다른 분석 물질들에 대한 SSH-Mito(5μM)의 상대적 형광강도를 나타낸 그래프이다. 내부가 채워진 막대와 내부가 채워지지 않은 막대는 각각 GSH가 첨가되기 전후 다양한 분석 물질의 존재 하에서 SSH-Mito(5μM)의 상대적 형광강도(F yellow/F blue)를 나타낸다. 각각의 스펙트럼은 37 ℃에서 각각의 분석물질을 첨가한 뒤 2 시간 후에 얻어졌다.
도 4는 3 mL의 MOPS 버퍼에서 10 mM의 GSH가 미존재(○) 및 존재(■)할 때 5μM의 SSH-Mito의 pH 변화에 따른 형광강도 변화를 나타낸다(37 ℃, 2 h). 여기파장은 380 nm이다.
도 5는 (a) SSH-Mito(5 μM) 및 (b) 마이토트랙커 레드(MitoTracker Red FM) 5 μM로 37 ℃에서 30 분 동안 표지화된 HeLa 셀의 (a) TPM 및 (b) OPM 이미지이다. (c)는 (a)와 (b)가 함께 로컬라이즈된(Co-localized) 이미지이다. 단일광자 및 이광자 여기 파장은 각각 514 및 740 nm이었으며, 방출(emission)은 425-575 nm(SSH-Mito) 및 600-700 nm(MitoTracker Red FM)에서 수집되었다. 스케일바는 30 μm이다. 나타난 셀은 반복적인 실험(n=5)에 의한 대표 이미지이다.
도 6은 (a-d) 5μM SSH-Mito(a) 및 화합물 7(1로 표시)(d)로 각각 인큐베이트된 HeLa 세포의 슈도 컬러(Pseudocolored) 가변색 이광자 영상이며, SSH-Mito로 표지되기 전에 (b) 리포익산(lipoic acid)(500 μM)으로 하루 동안 처리된 경우 및 (c) NEM (100 μM)로 30 분간 처리된 경우이다. (e)는 (a-d)의 평균 형광강도(F yellow/F blue)를 나타낸다. 이미지는 740 nm 여기를 이용해 얻어졌으며, 방출 윈도우(emission windows)는 블루(425-475 nm), 옐로우(525-575 nm)를 이용하였다. 스케일바는 20 μm이다. 나타난 셀은 반복적인 실험(n=5)에 의한 대표 이미지이다.
도 7은 SSH-Mito의 존재 하에서 SSH-Mito로 2 시간 동안 인큐베이트된 HeLa 세포의 생존능력을 CCK-8 kit로 측정하였다.
도 8은 (a, d) 20 μM SSH-Mito로 2 시간 동안 염색된 쥐의 해마절편 이미지이다. (b, e) CA1-CA3 구역의 밝은-필드(bright-field) 이미지이다. (e) SSH-Mito로 표지하기 전에 NEM(100 μM)로 처리되지 않은 것(b)과 30 분간 처리된(e) 쥐의 해마절편 가변색 이광자 이미지이다. 약 90-190 μm 정도의 깊이에서 z축 방향에 따른 10개의 TPM 이미지를 결합한 영상이다(10x). (c, f) 120 μm 깊이에서 (b)와 (e)의 붉은 박스를 40 배 확대한 이미지이다. 이광자 여기 형광(TPEF)은 fs 펄스와 함께 740 nm 여기파장에서 두 개의 채널(블루 = 425-475 nm, 옐로우 = 525-575 nm)을 통해 수집되었다(스케일바: 300 μm(a, d) 및 75 μm(c, f)).
본 발명은 세포 내부의 대표적인 활성 소기관인 미토콘드리아에 선택적으로 위치하는 형광 프로브에 관한 것으로서, 보다 구체적으로는 미토콘드리아 내부에 존재하는 티올(thiol)의 활동성을 이광자 현미경(two-photon microscopy; TPM)을 통해 실시간으로 영상화하는데 필요한 핵심 소재인 가변색 이광자 형광 프로브(이하 SSH-Mito라고도 함), 이의 제조 방법 및 이를 이용한 미토콘드리아 내 티올의 이미징(imaging) 방법에 관한 것이다.
이하, 본 발명을 상세히 설명한다.
본 발명은 하기 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)를 제공한다.
[화학식 1]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000002
상기 화학식 1에서, X는 S 또는 O이다.
본 발명의 상기 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)는 트리페닐포스포늄염(triphenylphosphonium salt; TPP)을 미토콘드리아 탐침으로, 다이설파이드 결합(disulfide bond)을 티올 반응 사이트(reaction site)로 하여, 이광자 형광체인 6-(벤조[d]티아졸-2′-일)-2-(N,N-디메틸아미노)나프탈렌(6-(benzo[d]thiazol-2′-yl)-2-(N,N-dimethylamino)naphthalene; BTDAN)에 도입시킨 것을 특징으로 한다. 또한 상기 화합물에서 트리페닐포스포늄염(TPP)과 다이설파이드 결합(disulfide bond)은 상호간의 작용을 최소화하기 위해 가능한 한 멀리 위치한다.
본 발명의 이광자 형광 프로브는 세포 내 소기관 중 미토콘드리아에 선택적으로 염색되며, 티올과 반응하여 425 ~ 475 nm(F blue) 및 525 ~ 575 nm(F yellow)에서의 상대적 형광강도의 비율(F yellow/F blue)이 42 ~ 77 배 정도 증가한다. 따라서 티올에 대한 선택성과 활동성을 영상화시키기에 적합한 형광 프로브로써 이용될 수 있다.
본 발명의 이광자 형광 프로브는 티올(thiol)을 포함한 글루타티온(glutathione; GSH), 시스테인(cysteine; Cys), 호모시스테인(homocysteine; Hcy), 디티오트레이톨(dithiothreitol; DTT), 2-머캅토에탄올(2-mercaptoethanol; 2-ME), 2-아미노에탄티올(2-aminoethanethiol; 2-AET) 등에 대하여 강한 반응을 나타내며, 티올을 포함하지 않는 아미노산 그룹(glu, ser, val, met, ala, ile), 금속 이온(Na+, K+, Ca+, Mg2+, Zn2+) 및 H2O2 등에 대해서는 거의 반응을 나타내지 않는다. 또한 본 발명의 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)는 생체와 관련된 pH 범위에서 pH-미반응인 특성을 가지고 있다.
본 발명의 이광자 형광 프로브는 기존 사용되던 단일광자 형광 프로브와는 달리 90 ㎛ 이상, 보다 바람직하게는 90 ~ 190 ㎛ 범위의 깊은 투과 깊이를 가져, 생체 세포 및 90 ~ 190 ㎛ 깊이의 생체 조직에서 미토콘드리아 내부의 티올을 탐지할 수 있다. 또한 본 발명의 이광자 형광 프로브는 세포 내부에서 광안정성의 특징으로 인해 60 분 이상 지속적인 티올 탐지가 가능하며, 보다 바람직하게는 30 분 ~ 90 분 동안 안정적인 탐지가 가능한 것을 특징으로 한다. 상기 결과들은 본 발명의 이광자 형광 프로브가 세포 내에서 다른 생리물질 또는 pH의 간섭을 받지 않는 우수한 가변색 형광 프로브로써 활용될 수 있음을 뒷받침해준다.
본 발명은 또한 하기와 같은 단계를 포함하는 이광자 형광 프로브의 제조방법을 제공한다.
(a) 하기 화학식 2로 표시되는 화합물과 하기 화학식 3으로 표시되는 화합물을 니트로벤젠에 용해한 후 교반하여 화학식 4로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
(b) 상기 화학식 4로 표시되는 화합물에 화학식 5로 표시되는 화합물을 반응시켜 화학식 6으로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
(c) 상기 얻어진 화학식 6으로 표시되는 화합물에 피리딘 및 화학식 7로 표시되는 화합물을 섞은 후 N,N-디메틸아미노피리딘(DMAP)을 첨가하고, 교반하여 화학식 8로 표시되는 화합물을 얻는 단계; 및
(d) 상기 얻어진 화학식 8로 표시되는 화합물 용매에 녹인 후 교반하고 용매를 증발시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브의 제조방법:
[화학식 1]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000003
[화학식 2]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000004
[화학식 3]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000005
[화학식 4]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000006
[화학식 5]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000007
[화학식 6]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000008
[화학식 7]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000009
[화학식 8]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000010
상기 화학식 1, 3, 4, 6 및 8에서, X는 S 또는 O이다.
마지막으로 본 발명은 (a) 상기 이광자 형광 프로브를 세포에 주입하는 단계; (b) 주입된 이광자 형광 프로브가 미토콘드리아의 티올과 반응하여 형광을 나타내는 단계; 및 (c) 상기 형광을 이광자 현미경을 통해 관측하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 미토콘드리아 내 티올의 이미징(imaging) 방법을 제공한다.
본 발명은 상기 (a)단계에서 이광자 형광 프로브를 매우 낮은 농도로 세포에 주입시키는 것만으로도 세포 내 미토콘드리아에 선택적으로 위치시킬 수 있다. 세포에 주입 후 이광자 현미경의 여기원은 740 nm의 파장을 사용하고, 425 ~ 475 nm(F blue) 및 525 ~ 575 nm(F yellow) 두 채널에서 형광의 세기를 동시에 측정한다. 상기에 의해 관측되는 상대적 형광강도의 비율(F yellow/F blue)은 티올의 농도 변화에 따라 가변적인 특징을 나타낸다. 티올과 반응하면 형광강도의 비율(F yellow/F blue)이 42 ~ 77 배 정도 증가되어 고해상도의 이광자 현미경 영상을 얻는 효과를 나타낸다. 낮은 여기 에너지를 갖는 2 개의 근적외선 광자들을 여기원으로 사용하는 이광자 현미경(TPM)은 일광자 현미경에 비해서 증가된 투과 깊이 및 국소화된 여기를 가지며, 장시간 이미징이 가능하다는 장점이 있다. 본 발명은 상기와 같은 이미징 방법을 통해 생체 세포 또는 조직에서 미토콘드리아 내부의 티올의 분포 및 활동성을 효과적으로 이미징할 수 있다.

이하 본 발명을 아래 실시예에서 상세히 설명하지만, 본 발명의 보호범위가 하기 실시예에만 한정되는 것은 아니다.

실시예 1: 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)의 합성
SSH-Mito의 합성
[반응식 1]
Figure PCTKR2011007697-appb-I000011
[(a) 니트로벤젠(nitrobenzene); (b) DCC, HOBt, CH2Cl2; (c) 피리딘(pyridine), DMAP, DMF; (d) TFA, CH2Cl2]
상기 반응식 1에서, 화합물 2[1], 화합물 3[2], 화합물 5[3] 및 화합물 7[4]은 공지된 방법에 의해 합성되었다([1] H. M. Kim, B. H. Jeong, Ju-Y. Hyon, M. J. An, M. S. Seo, J. H. Hong, K. J. Lee, C. H. Kim, T. Joo, Seok-C. Hong, B. R. Cho, J.Am.Chem.Soc,2008,130,42464247.; [2] K. Serdons, C. Terwinghe, P. Vermaelen, K. V. Laere, H. Kung, L. Mortelmans, G. Bormans, A. Verbruggen, J.Med.Chem. 2009,52,14281437.; [3] B. E., A. B. Reitz, B. A. Duhl-Emswiler, J. Am. Chem. Soc. ,107,226.; [4] M. M. Pires, J. Chmielewski, Org.Lett. 2008,10, 837840. 참조).
상기 반응식 1에 나타난 SSH-Mito의 합성 과정을 아래에서 보다 상세하게 설명하기로 한다.
(1) 화합물 4의 합성
화합물 3(0.5 g, 1.48 mmol)과 화합물 2(0.55 g, 2.97 mmol)를 니트로벤젠(30 mL)에 용해하고, 반응 혼합물을 180 ℃ 질소 분위기 하에서 6 시간 동안 저어주었다. 이를 실온에서 식혀준 후 헥산(50 mL)를 넣고 얻어진 침전물을 여과하고 디에틸에터(diethyl ether)로 씻어주었다. 나머지를 끓는 THF(30 mL)로 침지시키고 불용성 불순물들을 필터로 제거하였다. 여과액을 증발시키고, 조생성물은 디에틸에터와 함께 분쇄, 여과한 후 진공(vacuo) 상태에서 건조시켜 노란색 고체인 순수한 화합물 4를 얻었다(수득량: 0.44 g(44 %); m.p. 264-266 ℃)
1H NMR (400 MHz, DMSO-d6 ): d 13.17(br s, 1H), 8.72(s, 1H), 8.43(d, J = 2.0Hz, 1H), 8.06-8.05(m, 2H), 8.00(dd, J = 8.8, 2.0Hz, 1H), 7.82(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.71(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.03(dd, J = 8.8, 2.0Hz, 1H), 6.72(d, J = 2.0Hz, 1H), 6.46(q, J = 4.4Hz, 1H), 2.81(d, J = 4.4Hz, 3H).
13C NMR (400 MHz, DMSO-d6 +CDCl3): 171.9, 167.5, 157.1, 150.0, 137.8, 134.8, 130.2, 128.3, 127.9, 127.8, 126.9, 126.2, 125.5, 124.7, 124.4, 122.4, 119.7, 101.9, 30.3.
(2) 화합물 6의 합성
상기 화합물 4(0.20 g, 0.60 mmol), 1,3-디사이클로헥실카보디이미드(1,3-dicyclohexyl carbodiimide)(DCC, 0.15 g, 0.73 mmol) 및 1-하이드록시벤조트리아졸(1-hydroxybenzotriazole)(0.10 g, 0.74 mmol)을 CH2Cl2(10 mL)에 용해하였다. 상기 반응 혼합물을 질소 분위기 하에서 상온에서 1 시간 동안 교반하였다. 상기 혼합물에 (2-아미노에틸)트리페닐포스포늄 브로마이드[(2-aminoethyl)triphenylphosphonium bromide](화합물 5, 0.23 g, 0.60 mmol)를 첨가하고 전체 반응 혼합물을 10 시간 동안 교반하였다. 용매는 증발되고 조(crude) 생성물을 CHCl3의 8 % 메탄올을 이동상으로 한 컬럼크로마토그래피를 통해 여과함으로써, 노란색 고체인 화합물 6을 얻었다(수득량: 0.19 g(45 %); m.p. 146-148 ℃).
1H NMR (400 MHz, CDCl3): d 9.63(br t, 1H, amide-NH), 8.58(s, 1H), 8.31(s, 1H), 8.12(dd, J = 8.4, 1.2 Hz, 1H), 7.99(d, J = 8.4Hz, 1H), 7.97(d, J = 8.4Hz, 1H), 7.83-7.63(m, 17H), 6.92(dd, J = 8.8, 2.0Hz, 1H), 6.71(d, J = 2.0Hz, 1H), 4.45(br s, 1H), 4.03-3.92(m, 4H), 2.91(s, 3H).
13C NMR (100 MHz, CDCl3): d 171.6, 167.2, 156.4, 148.8, 137.2, 135.3(d, J = 3Hz), 134.7, 133.8(d, J = 10.6Hz), 130.7(d, J = 12.9Hz), 130.1, 129.5, 128.0, 126.7, 126.6, 126.1, 125.0, 122.3, 122.0, 118.9, 117.6(d, J = 85.7Hz), 103.2, 34.2, 30.7, 23.1(d, J = 48.6Hz).
31P NMR (162 MHz, CDCl3): d 21.8 ppm.
(3) 화합물 8의 합성
DMF(5 mL)에 화합물 6(0.30 g, 0.42 mmol), 피리딘(0.35 mL, 4.32 mmol) 및 화합물 7(0.2 g, 0.63 mmol)을 섞은 후 N,N-디메틸아미노피리딘(N,N-dimethylaminopyridine; DMAP)을 촉매량 첨가하고, 전체 반응 혼합물을 실온에서 16 시간 동안 교반하였다. 용매를 진공 상태에서 증발시키고 조(crude)생성물을 CHCl3의 6 % 메탄올을 이동상으로 한 컬럼크로마토그래피를 통해 여과함으로써, 노란색 고체인 화합물 8을 얻었다(수득량: 0.09 g(21 %); m.p.130-134 ℃).
1H NMR(400 MHz, CDCl3):d 9.54(br t, 1H, amide-NH), 8.69(d, J = 1.6Hz, 1H), 8.55(s, 1H), 8.20(dd, J = 8.8, 1.6Hz, 1H), 8.19(dd, J = 8.8, 1.6Hz, 1H), 8.07(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.94(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.89(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.87-7.65(m, 16H), 7.52(d, J = 8.8Hz, 1H), 4.96(br t, 1H, Boc-NH), 4.42(t, J = 6.0Hz, 2H), 4.09-3.98(m, 4H), 3.44(s, 3H), 3.41(q, J = 6.0Hz, 2H), 2.93(t, J = 6.0Hz, 2H), 2.77(t, J = 6.0Hz, 2H), 1.43(s, 9H).
13C NMR(100 MHz, CDCl3): d 170.5, 166.9, 156.3, 155.2, 142.2, 135.3(d, J = 3Hz), 135.09, 134.9, 133.8(d, J = 10.6Hz), 131.3, 130.9, 130.7(d, J = 12.9Hz), 130.0, 129.7, 128.7, 127.6, 126.4, 125.8, 125.1, 124.1, 122.9, 122.3, 117.6(d, J = 85.7Hz), 64.0, 39.5, 38.9, 38.1, 37.6, 34.2, 31.9, 28.7, 23.3(d, J = 48.6Hz).
31P NMR(162 MHz, CDCl3): d 21.8 ppm.
(4) SSH-Mito의 합성
화합물 8(70 mg, 0.0713 mmol)을 TFA/CH2Cl2 = 5/5 mL의 차가운(0 ℃) 용액에 녹였다. 상기 용액을 0 ℃의 암조건에서 1 시간 동안 교반한 후 상온으로 옮겨 2 시간을 더 교반하였다. 용매를 진공 조건에서 제거한 후, 조생성물을 30% 용리액A(eluent A)(HPLC-grade water containing 0.1% TFA)와 70% 용리액B(eluent B)(HPLC-grade CH3CN containing 0.1% TFA)를 사용하여 prep-LC로 15분간 세정한 후 유속 40 mL/min 하에서 55% 용리액A와 45% 용리액B를 사용하여 분리하였다. 용매를 증발시킨 후 노란색 고체인 SSH-Mito 수득할 수 있었다(수득량: 0.035 g(50 %); m.p. 62-64 ℃).
1H NMR(400 MHz, CDCl3/DMSO-d6 ): d 9.97(br t, 1H, amide-NH), 8.52(s, 1H), 8.49(s, 1H), 8.43(br s, 3H, NH3 +), 8.14(dd, J = 8.8,2.0Hz, 1H), 8.02-8.00(m, 2H), 7.88(d, J = 8.4Hz, 1H), 7.84(d, J = 8.8Hz, 1H), 7.77-7.70(m, 9H), 7.65-7.60(m, 7H), 7.43(d, J = 8.4Hz, 1H), 4.33(t, J = 6.0Hz, 2H), 3.88-3.78(m, 4H), 3.36(s, 3H), 3.14(br t, 2H), 2.87(br t, 4H).
13C NMR(100 MHz, CD2Cl2): d 172.7, 169.4, 157.9, 157.3, 144.2, 137.4, 137.1, 136.8, 135.4 (d, J = 10.6Hz), 132.9, 132.5(d, J = 12.9Hz), 132.0, 131.4, 130.6, 129.6, 127.8, 127.5, 126.7, 124.6, 123.7, 119.4(d, J = 85.7Hz), 65.8, 40.9, 39.7, 39.2, 36.8, 36.5, 33.8, 24.9.
31P NMR(162 MHz, CD3OD): d 21.8 ppm; HRMS (FAB+):m/z calcd for [C44H43N4O3PS3]2+: 802.2224, found: 802.2219.

실험예 1: 수용해도 측정
본 발명에 따른 실시예 1의 이광자 형광 프로브(SSH-Mito) 소량을 DMSO에 용해시켜 스톡 용액(1.0 x 10-2M)을 준비하였다. 이후 상기 용액을 6.0 x 10-3 내지 6.0 x 10-5 M로 희석시키고 마이크로 주사기를 이용하여, 3.0 mL의 버퍼(30 mM MOPS, 100 mM KCl, pH 7.4)를 함유하는 큐벳에 첨가하였다. 모든 경우 물에서의 DMSO 농도는 0.2 %를 유지하였다. 도 1을 살펴보면 이광자 형광 프로브 농도에 대한 형광강도의 그래프는 저농도에서 선형을 나타내지만, 고농도로 갈수록 아래쪽으로 떨어지는 곡선을 나타낸다. 이 경우 이광자 형광 프로브의 용해도는 선형 패턴을 나타내는 최고 농도로 결정된다. 버퍼에서 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)는 ~5.0μM의 용해도를 나타내었다. 따라서 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브가 가지는 5.0μM 이상의 용해도는 세포 염색에 있어서 매우 효과적이라는 것을 나타낸다.

실험예 2: 광물리적(photophysical) 특성
MOPS 버퍼(30 mM MOPS, 100 mM KCl, pH 7.4)에서 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)(실시예 1) 및 상기 실시예 1에 기재된 화합물 6의 광물리적 특성을 측정하여 결과를 하기 표 1에 나타내었다.
[표1]
Figure PCTKR2011007697-appb-T000001
[a] 모든 데이터는 다르게 기재되지 않는 한 MOPS 버퍼(30 mM MOPS, 100 mM KCl, pH 7.4) 하에서 측정되었다.
[b] 단일광자 흡수 스펙트라로 lmax의 단위는 nm이다. 괄호 안의 숫자는 몰 흡광 계수로 M-1cm-1 단위이다.
[c] 단일광자 방출 스펙트라로 lmax의 단위는 nm이다.
[d] 형광 양자 수율(fluorescence quantum yield), ±15 %.
[e] 10 mM GSH의 첨가 전 및 첨가 후 2 시간 후에 단일광자 과정에 의해 측정된 방출비(F 525-575/F 425-475) 컨버전 펙터(Emission ratio conversion factor)(R max/R min). 괄호 안의 숫자는 이광자 과정에 의해 측정된 값을 나타낸다.
[f] 이광자 여기 스펙트라의 lmax 값으로 단위는 nm이다.
[g] 광자당 피크 이광자 단면적으로 10-5cm4s의 단위를 가진다. ±15 %
[h] 이광자 동작 단면적(two photon action cross-section)을 나타낸다.
상기 결과를 통해 SSH-Mito의 고유한 분광학적 성질 및 티올과의 감응 후 나타나는 분광학적 성질 변화를 알 수 있었다.

실험예 3: 이광자 형광 프로브의 티올(thiol) 선택성 측정
도 3은 각각 30 mM의 MOPS 완충용액(100 mM KCl, 10 mM EGTA, pH 7.4)과 10 mM의 Na+, K+, Ca2+, Mg2+, Zn2+, Ser, Ala, Glu, Val, Ilu, Met, H2O2 및 GSH를 첨가한 경우 5μM의 SSH-Mito의 상대적 형광강도를 나타내는 그래프이다. 그래프 중 내부가 채워진 막대는 GSH가 첨가된 경우이며, 내부가 채워지지 않은 막대는 GSH가 첨가되지 않은 경우이다. 도 3을 참조하면, 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브는 Na+, K+, Ca2+, Mg2+, Zn2+, Ser, Ala, Glu, Val, Ilu, Met, H2O2와 비교하여 GSH에 대한 높은 선택도를 보여준다(도 2(c) 및 도 3 참조).
도 4는 3 mL의 MOPS 버퍼에서 10 mM의 GSH가 미존재(○) 및 존재(■)할 때 5μM의 SSH-Mito의 pH 변화에 따른 형광 변화를 나타낸다. 즉, 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브는 생물학적으로 연관된 pH 조건에서 높은 형광강도를 나타내며, pH 조건에 따라 영향을 받지 않음을 알 수 있다.
이상의 결과로부터 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브 GSH에서 매우 높은 선택성을 가지고, 더 나아가 생체 내의 pH 조건에 민감하지 않으며, 생체 내 티올(thiol)에 대한 이광자 염료로서 매우 유용하다는 것을 알 수 있다.

실험예 4: 이광자 형광 프로브의 미토콘드리아 선택성
본 발명의 이광자 형광 프로브가 미토콘드리아에 특이한 선택성을 나타내는지 확인하기 위해 SSH-Mito와 마이토트랙커를 이용하여 Co-로컬리제이션(Co-localization) 실험을 실시하였다. 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)에 의해 염색된 도 5(a)에 나타난 강한 녹색 형광 이미지가 실제 미토콘드리아를 영상화하는지를 확인하기 위하여, HeLa 세포를 종래의 알려진 미토콘드리아용 단일광자 형광 표지자인 마이토트랙커레드(Mito TrackerRed. Invitrogen 사 제품)로 염색하여 단일광자 적색 형광 이미지를 얻은 후(도 5(b)), 얻어진 두 이미지를 함께 중첩시켰다(도 5(c)). 도 5(c)를 살펴보면 두 염료로 염색한 후 얻어진 이미지(도 5(a), (b))는 서로 일치하는 것을 확인할 수 있으며, 또한 Autoquant X2 software에 의한 SSH-Mito와 마이토트랙커의 Pearson's co-localization 효율은 0.85로 나타나, SSH-Mito가 미토콘드리아에 우세하게 나타나는 것을 확인할 수 있다. 이러한 결과를 통해 본 발명에 따른 이광자 프로브가 미토콘드리아를 정확하게 영상화하는 것을 확인할 수 있었다.

실험예 5: 이광자 형광 프로브 및 이광자 현미경을 통한 미토콘드리아 내 티올의 활성 이미징
살아있는 세포에서 본 발명의 이광자 형광 프로브가 티올의 변화를 모니터할 수 있는지 확인하기 위해 테스트하였다.
740 nm 이광자 여기(TP excitation) 상태에서, 본 발명의 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)로 라벨된 HeLa 세포의 영상은 평균 1.24의 방출비(emission ratio)를 보여준다(도 6(a),(e)). 여기에 GSH의 생산을 증가시키는 시약인 알파-리폴리산(a-lipolic acid)을 하루 동안 처리(pre-incubated)한 경우(도 6(b)) 세포의 F yellow/F blue는 2.64로 증가하였다. 또한 티올 억제 물질(blocking agent)로 알려져 있는 N-에틸말레이미드(N-ethylmaleimide; NEM)를 처리하는 경우 F yellow/F blue는 0.77로 감소하였다(도 6(c)). 이러한 결과는 본 발명의 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)가 살아있는 세포 내에서 장시간 동안 경쟁 금속 이온, pH 등의 최소한의 간섭을 받으면서 티올을 탐지할 수 있음을 뒷받침해 준다.

실험예 6: 세포독성 측정
본 발명의 이광자 형광 프로브가 세포에 독성을 나타내지 않는다는 사실을 확인하기 위하여, HeLa 세포에서 CCK-8 키트(Cell Counting Kit-8, Dojindo, 일본)를 사용하여, 매뉴얼의 프로토콜에 따라 측정하였다. 상기 측정 결과를 도 7에 나타내었다. 측정 결과, SSH-Mito가 살아있는 세포 내의 티올을 감지하기 적합하다는 결과를 확인할 수 있었다.

실험예 7: 이광자 형광 프로브 및 이광자 현미경을 통한 쥐의 해마절편 내부영상
조직 내 세포의 영상화에 있어서 본 발명의 이광자 형광 프로브가 갖는 유용성을 증명하기 위하여, 마우스 해마상 돌기의 미세박편을 모니터링하였다.
본 실험예에서는 쥐의 해마상 돌기의 미세박편에 대한 밝은-필드(bright-field) 이미지를 얻었으며, 이는 CA1 및 CA3 구역을 나타낸다(도 8(a), (d)). 뇌 조직의 구조는 모든 깊이에서 불균질하므로, 약 90-190μm 깊이의 두께에서 10개의 TPM 영상을 얻고, 이를 결합하여 전체적인 티올 분포를 영상화하였다. 상기 영상을 통해 티올은 CA1 및 CA3 영역 모두에서 고르게 분포되어 있지 않음을 밝혀내었다(도 8(b)). 게다가 보다 고배율의 이미지는 CA1 구역에 존재하는 각각의 세포에서 120μm 깊이에서 1.66의 평균 방출비를 가지는 티올(RSH)의 분포를 명확하게 보여준다(도 8(c)). 조직을 100μm의 NEM으로 30 분간 처리하는 경우, 상기 비율이 0.85까지 감소하였다(도 8(f)). 상기를 통해 조직 미세박편(tissue slice) 깊은 곳의 방출비 변화까지 확인할 수 있다는 것을 알 수 있다.
이상의 실험 결과들은 본 발명에 따른 이광자 형광 프로브(SSH-Mito)가 TPM을 이용하여 생체 조직 내부, 특히 미토콘드리아 내에 존재하는 티올을 90 내지 190 μm의 두께까지 매우 효과적으로 검출할 수 있다는 것을 나타낸다.

Claims (6)

  1. 하기 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000012

    상기 화학식 1에서, X는 S 또는 O이다.

  2. 제 1 항에 있어서, 미토콘드리아에 선택적으로 염색되는 것을 특징으로 하는 이광자 형광 프로브.

  3. 제 1 항에 있어서, 티올과 반응하여 형광을 나타내는 것을 특징으로 하는 이광자 형광 프로브.



  4. 제 1 항에 있어서, 생체 세포 및 90 ~ 190 ㎛ 깊이의 생체 조직에서 미토콘드리아 내 티올의 탐지가 가능한 것을 특징으로 하는 이광자 형광 프로브.

  5. (a) 하기 화학식 2로 표시되는 화합물과 하기 화학식 3으로 표시되는 화합물을 니트로벤젠에 용해한 후 교반하여 화학식 4로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
    (b) 상기 화학식 4로 표시되는 화합물에 화학식 5로 표시되는 화합물을 반응시켜 화학식 6으로 표시되는 화합물을 얻는 단계;
    (c) 상기 얻어진 화학식 6으로 표시되는 화합물에 피리딘 및 화학식 7로 표시되는 화합물을 섞은 후 N,N-디메틸아미노피리딘(DMAP)을 첨가하고, 교반하여 화학식 8로 표시되는 화합물을 얻는 단계; 및
    (d) 상기 얻어진 화학식 8로 표시되는 화합물 용매에 녹인 후 교반하고 용매를 증발시키는 단계
    를 포함하는 것을 특징으로 하는 화학식 1로 표시되는 이광자 형광 프로브의 제조방법:
    [화학식 1]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000013

    [화학식 2]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000014

    [화학식 3]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000015

    [화학식 4]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000016

    [화학식 5]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000017

    [화학식 6]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000018

    [화학식 7]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000019

    [화학식 8]
    Figure PCTKR2011007697-appb-I000020

    상기 화학식 1, 3, 4, 6 및 8에서, X는 S 또는 O이다.
  6. (a) 제 1 항의 이광자 형광 프로브를 세포에 주입하는 단계;
    (b) 주입된 이광자 형광 프로브가 미토콘드리아의 티올과 반응하여 형광을 나타내는 단계; 및
    (c) 상기 형광을 이광자 현미경을 통해 관측하는 단계
    를 포함하는 것을 특징으로 하는 미토콘드리아 내 티올의 이미징 방법.
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