WO2011126030A1 - 保存安定性に優れたｓ－アデノシル－ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物及びその製造方法 - Google Patents

保存安定性に優れたｓ－アデノシル－ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物及びその製造方法 Download PDF

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methionine
adenosyl
yeast
dry yeast
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健太郎 高野
眞與 莪山
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    • C12P19/28—N-glycosides
    • C12P19/38—Nucleosides
    • C12P19/40—Nucleosides having a condensed ring system containing a six-membered ring having two nitrogen atoms in the same ring, e.g. purine nucleosides

Definitions

  • the present invention relates to a dry yeast composition excellent in storage stability containing S-adenosyl-L-methionine (hereinafter referred to as SAMe) useful as a water-soluble physiologically active substance at a high concentration, and a method for producing the same.
  • SAMe S-adenosyl-L-methionine
  • SAMe is widely present in the living body and plays an important role as a methyl group donor in methylation reactions by various transmethylases in the synthesis and metabolism of nucleic acids, neurotransmitters, phospholipids, hormones, proteins, etc. It is a water-soluble physiologically active substance. SAMe is found in almost all cells of the human body, acts as a cofactor in various biochemical reactions, and is metabolized by three metabolic pathways: methyl group transfer, sulfur group transfer, and aminopropyl group transfer. For example, it is a substance indispensable for maintenance of cartilage and biosynthesis of substances in the brain.
  • SAMe is an important physiologically active substance, and is widely used in Western countries as a therapeutic agent for depression, liver disease, arthritis, etc., or as a health food.
  • SAMe synthase methionine adenosyltransferase isolated and purified from microorganisms such as yeast
  • ATP adenosine 5′-triphosphate
  • L-methionine adenosine 5′-triphosphate
  • SAMe synthase methionine adenosyltransferase isolated and purified from microorganisms such as yeast is used, and SAMe is enzymatically produced using adenosine 5'-triphosphate (ATP) and L-methionine as substrates.
  • ATP adenosine 5'-triphosphate
  • this method has advantages such as a large amount of SAMe accumulated and no need for SAMe extraction from cells, compared with the fermentation method, but the preparation of the enzyme is complicated. There are various problems such as that the activity of the enzyme to be obtained is weak, that it is necessary to remove interfering substances such as ATP-degrading enzyme, and that ATP as a substrate is extremely expensive.
  • SAMe is thermally unstable and has the property of easily decomposing at room temperature, which is a major obstacle when used as pharmaceuticals and health foods.
  • many attempts have been made to improve storage stability.
  • the composition of SAMe obtained by the above-described production method is purified by chromatography and the like, and then the salt of SAMe is stabilized by using a salt with sulfuric acid, p-toluenesulfonic acid, or a salt with butanedisulfonic acid.
  • Patent Document 1 there are many methods (for example, see Patent Document 1) or methods for stabilizing the SAMe composition (for example, see Patent Document 1) by treating the purified SAMe with additives.
  • An object of the present invention is to establish a process capable of easily and easily producing a dry yeast composition having a high concentration of SAMe and having excellent storage stability.
  • the present inventors have intensively studied a method for economically producing a composition containing SAMe at a high concentration and capable of being stored in a stable state for a long period of time. It was obtained by using a yeast having SAMe-producing ability and capable of being orally ingested, producing and accumulating SAMe in a high concentration in the microbial cells, and then separating the yeast cells from the culture solution by a separation means such as centrifugation. After adding a thickener to the yeast cell concentrate, it is dried to easily produce dry yeast, which is a composition containing the desired SAMe at a high concentration and excellent in storage stability. The present inventors have found that this can be done and have completed the present invention. Moreover, it discovered that the SAMe containing dry yeast composition of this invention was excellent also in bioabsorbability in addition to storage stability, and came to complete this invention.
  • the present invention (1) S-adenosyl-L-methionine and a S-adenosyl-L-methionine-containing dry yeast composition containing a thickener, and (2) a yeast having the ability to produce S-adenosyl-L-methionine,
  • a method for producing a dried yeast composition containing S-adenosyl-L-methionine, which is dried after adding a thickener to a yeast cell concentrate obtained from a yeast cell culture solution, I will provide a.
  • the S-adenosyl-L-methinion-containing dry yeast composition of the present invention is excellent in storage stability and bioabsorbability, so it can be crushed into a powder form or other physiologically active ingredients as necessary. Or additives such as excipients, compressed into tablets to form tablet-like compositions, granulated powders, packed granulated granules and encapsulated, A composition useful as a water-soluble physiologically active substance for pharmaceuticals and health foods can be provided. In addition, it is possible to provide a method for easily producing a composition containing S-adenosyl-L-methionine at a high concentration and excellent in storage stability and a SAMe-containing dry yeast composition excellent in bioabsorbability at low cost.
  • the type of yeast used in the present invention is not particularly limited as long as it has SAMe-producing ability and can be taken orally, and examples thereof include yeast belonging to the genus Saccharomyces. Of these, Saccharomyces cerevisiae is more preferred. Dry yeast contains useful components such as 5'-nucleotide, free amino acids, glutathione that has an antioxidant action and is useful for improving liver function, ⁇ -glucan that promotes immunity and intestinal regulation, and dietary fiber. Many are included and widely used as health foods.
  • the carbon source used for culturing the yeast is not particularly limited as long as the yeast can assimilate, for example, carbohydrates such as glucose, sucrose, starch, and molasses, alcohols such as ethanol, acetic acid, and the like. Organic acids are mentioned.
  • the nitrogen source is not particularly limited as long as the yeast to be used can be assimilated.
  • the nitrogen source includes inorganic nitrogen compounds such as ammonia, nitric acid, urea, or organic nitrogen compounds such as yeast extract and malt extract. Can be mentioned.
  • inorganic salts salts of phosphoric acid, potassium, sodium, magnesium, calcium, iron, zinc, manganese, cobalt, copper, molybdenum and the like are used.
  • methionine, adenine, and adenosylribonucleoside which are related to the skeleton structure of SAMe can be added and cultured.
  • an L-methionine-containing medium (Shiozaki S., et all, J. Biotechnology, 4, 345-354 (1986)) was used. Inoculate a medium containing sucrose, yeast extract, L-methionine, urea, glycine, potassium dihydrogen phosphate, magnesium sulfate heptahydrate, biotin, calcium chloride dihydrate, and trace metal salts Then, SAM-containing cells can be obtained by culturing aerobically while feeding a carbon source such as sucrose or / and ethanol.
  • a carbon source such as sucrose or / and ethanol.
  • the culture temperature and the pH of the culture solution vary depending on the type of yeast used, the culture temperature can be in the range of 20 to 35 ° C., and the culture solution pH can be in the range of pH 4 to 7.
  • the culture tank is not particularly limited as long as it can be ventilated and can be stirred if necessary.
  • a mechanical stirring culture tank, an air lift type culture tank, a bubble column type culture tank, or the like can be used.
  • a method for supplying the culture medium a carbon source, a nitrogen source, various inorganic salts, various additives, and the like are supplied all at once or continuously or intermittently.
  • a substrate such as sucrose or ethanol may be supplied to the culture tank as a mixture with other medium components, or may be supplied to the culture tank independently of the other medium components.
  • the pH of the culture solution is controlled by an acid or alkali solution.
  • the alkali it is desirable to control the pH using ammonia, urea, or a non-nitrogen base used as a nitrogen source, such as caustic soda or caustic potash.
  • the acid an inorganic acid such as phosphoric acid, sulfuric acid, nitric acid, or an organic acid is used.
  • the pH can also be controlled using inorganic salts such as phosphates, potassium salts, sodium salts, nitrates and the like.
  • the separation method is not particularly limited as long as it is a method capable of efficiently separating and washing the cells, but a suitable example is an ultrafiltration device using a counter-current type yeast separator or a separation membrane.
  • the amount of the thickening agent to be added is preferably in the range of 0.1 to 70 mass percent as a mass ratio with respect to the S-adenosyl-L-methionine-containing dry yeast composition, preferably 0.4 to 70 mass.
  • the percentage range is more preferable, and the range of 0.7 to 70 mass percent is more preferable.
  • the thickener refers to various thickeners that have a thickening action and can be added to foods, so-called gelling agents.
  • a thickener that can be specifically used, (1) a microorganism-derived thickener selected from xanthan gum, gellan gum, curdlan, argin xanthan gum, pullulan, and natto fungus gum, (2) a seed-derived thickener selected from guar gum, tara gum, locust bean gum, tamarind gum, and psyllium seed gum; (3) plant-derived thickener selected from cellulose, methylcellulose, hydroxypropylcellulose, hydroxypropylmethylcellulose, carboxymethylcellulose, starch, and sodium carboxymethylate; (4) Seaweed-derived thickener selected from carrageenan, sodium alginate, alginic acid, and propylene glycol alginate, (5) A resin-derived thickener selected from gum arabic, gum tragacanth, shellac, and arabinogalactan
  • a microorganism-derived thickener selected from xanthan gum, gellan gum, curdlan, argin xanthan gum, pullulan, and natto fungus gum
  • a seed-derived thickener selected from guar gum, tara gum, locust bean gum, tamarind gum, and psyllium seed gum
  • a resin-derived thickener selected from gum arabic, gum tragacanth, shellac, and arabinogalactan
  • a shell-derived thickener selected from chitosan and chitin
  • a thickener selected from pectin, mannan, hyaluronic acid, chondroitin, agar, collagen, albumin, zein, casein, and sodium caseinate More preferred.
  • microorganism-derived thickeners such as xanthan gum, gellan gum, curdlan, algin xanthan gum, pullulan, and natto fungus gum, and (2) guar gum, tara gum, locust bean gum, tamarind gum, and psyllium seed gum Seed-derived thickeners are particularly preferred.
  • the thickener used in the present invention is widely used in food, cosmetics and pharmaceutical applications and can be used safely.
  • the yeast cell concentrate is evaporated by a drying method such as a spray drying method using a spray dryer or a freeze drying method to obtain a SAMe-containing dry yeast composition.
  • a drying method such as a spray drying method using a spray dryer or a freeze drying method to obtain a SAMe-containing dry yeast composition.
  • the drying conditions in the spray drying method, it is desirable to dry at an inlet temperature of 210 ° C. or lower and an outlet temperature of 110 ° C. or lower.
  • the freeze-drying method it is desirable to dry at a final shelf temperature of 30 ° C. or lower.
  • the SAMe-containing composition of the present invention preferably has a water content of 5.0% by mass or less from the viewpoint of storage stability.
  • this dry yeast composition is crushed into a powder form, or, if necessary, additives such as other physiologically active ingredients and excipients are added to the powdered dry yeast, and then compressed into tablets to form tablets. It is also possible to coat the surface of the composition. Also, the powder can be granulated, or the powder or granulated granule can be packed and encapsulated.
  • yeast Saccharomyces cerevisiae IFO2346 belonging to the genus Saccharomyces is added to an L-methionine-containing medium (Shiozaki S., et all, J. Biotechnology, 4, 345-354 (1986)). And cultured for 6 days at a culture temperature of 27-29 ° C. under aerobic aeration and stirring. As a result, a yeast cell culture solution 18 L of a cell concentration of 3.5 wt% and a SAMe content of 205 mg / g-dry yeast was obtained.
  • yeast cell culture solution 18L was treated with a continuous rotary centrifuge (Hitachi HIMAC CENTRIFUGE CR10B2), and the yeast concentration was liquid yeast corresponding to 18% by mass in terms of dry matter. 3.4 kg of body concentrate was obtained.
  • C Addition of thickener to yeast cell concentrate The mass ratio of xanthan gum to SAMe in the yeast concentrate is 0.02, 0.2, 2.2 to 3.4 kg of the yeast cell concentrate. 11.1 times the amount was added and stirred and mixed at room temperature for 30 minutes to obtain a yeast cell concentrate to which xanthan gum was added.
  • the SAMe remaining rate was determined by a comparative quantification method using liquid chromatography after extracting SAMe from a SAMe-containing dry yeast by a known method using perchloric acid.
  • the presence or absence of odor after storage was determined by a sensory test with five panelists.
  • the sensory evaluation method is “ ⁇ ” when all five panelists have no off-flavors, “ ⁇ ” when one to two out of five people have off-flavors, and “three” or more out of five. The case where there was an off-flavor was marked as “x”.
  • the SAMe measurement method in the present invention used liquid chromatography under the following conditions.
  • Examples 5-8 The yeast cell concentrate was treated with curdlan in the same manner as in Example 1 to obtain dry powder yeast.
  • Example 9 Powdered dry yeast was obtained in the same manner as in Example 1, except that guar gum was added to the yeast cell concentrate in an amount of 0.2 times the mass ratio of SAMe in the yeast concentrate.
  • Example 10 Powdered dry yeast was obtained by treating in the same manner as in Example 1 except that tamarind gum was added to the yeast cell concentrate in an amount of 0.2 times the mass ratio of SAMe in the yeast concentrate.
  • Example 11 Powdered dry yeast was obtained by treating in the same manner as in Example 1 except that gellan gum was added to the yeast cell concentrate in an amount of 0.2 times the mass ratio of SAMe in the yeast concentrate.
  • Comparative Example 1 Powdered dry yeast was obtained in the same manner as in Example 1 except that xanthan gum was not added to the yeast cell concentrate.
  • Table 3 shows the SAMe content and mass in the obtained powdered dry yeast, the results of the storage stability test under the accelerated condition of 40 ° C and RH 75% in the sealed glass container of the obtained SAMe-containing dry yeast, and the results of the sensory test. It is shown in 1.
  • Comparative Example 2 Powdered dry yeast was obtained in the same manner as in Example 1 except that trehalose was added to the yeast cell concentrate in a 2.2-fold amount as a mass ratio to SAMe in the yeast concentrate.
  • Table 3 shows the SAMe content and mass in the obtained powdered dry yeast, the results of the storage stability test under the accelerated condition of 40 ° C and RH 75% in the sealed glass container of the obtained SAMe-containing dry yeast, and the results of the sensory test. It is shown in 1.
  • Examples 12-19 Using a 200 L culture tank, the amount of additive to the SAMe-containing yeast concentrate (SAMe content 3.7% by mass) having a solid concentration of 18.2% by mass is 1% by mass, and ⁇ -carrageenan (Example) 12), xanthan gum (Example 13), guar gum (Example 14), tamarind gum (Example 15), curdlan (Example 16), gellan gum (Example 17), alginic acid (Example 18), Ceraos ST- O2 (crystalline cellulose) (Example 19) was added, and the recovery rate after freeze-drying, the SAMe content (mass%) at 40 ° C. for 30 days, and the SAMe residual rate after 60 days were measured.
  • SAMe content mass 3.7% by mass
  • SAMe residual rate after 60 days were measured.
  • the conditions of the detailed examples of Examples 12 to 19 are as follows.
  • A Cultivation of yeast cells Culture was performed under the same conditions as in Example 1 to obtain 120 L of yeast cell culture solution of 3.5% by mass of cell concentration and 201.5 mg / g-SAMe content of dry yeast.
  • B Collection of yeast cells The above yeast cell culture solution 120L is treated with a continuous rotary centrifuge (Hitachi HIMAC CENTRIFUGE CR10B2), and the yeast concentration is liquid yeast corresponding to 18% by mass in terms of dry matter. 23.4 kg of body concentrate was obtained.
  • C Addition of thickener to yeast cell concentrate 23.4 kg of the above yeast cell concentrate is mixed with the thickeners of Examples 12 to 19 as a mass ratio to SAMe in the yeast concentrate.
  • a 0.0-fold amount was added and stirred and mixed at room temperature for 30 minutes to obtain a yeast cell concentrate to which the thickeners of Examples 12 to 19 were added.
  • (D) Production of dry yeast The yeast cell concentrate to which the thickeners of Examples 12 to 19 above were added was poured into a freeze-drying stainless steel tray of a freeze dryer (manufactured by Nippon Vacuum Technology Co., Ltd.) at -50 ° C. After freezing, it was lyophilized for 36 hours under conditions of a final shelf temperature of 25 ° C. The obtained freeze-dried yeast was further pulverized to obtain powder-dried yeast. The powder dry yeast thus obtained was packed in a sealed glass container, and a storage stability test was performed under an acceleration test condition of 40 ° C.
  • Table 2 shows the results of the accelerated storage stability test at 40 ° C. and RH 75%.
  • the SAMe remaining rate was measured by the above method.
  • distribution condition was observed visually and evaluated.
  • Table 2 summarizes the results of mixing conditions of additives, recovery rate after freeze-drying, shape, SAMe content after drying (mass%), 30 days at 40 ° C., and SAMe residual rate after 60 days.
  • Comparative Example 3 Powdered dry yeast was obtained in the same manner as in Example 1 except that the culture was performed in a medium not containing L-methionine. SAMe was not contained in the obtained powder dry yeast. The following experiment was conducted using this.
  • the absorptivity test was performed using the method of nonpatent literature 2 (J of Chromatography B, 863, 94-100 (2008)).
  • the dose of dry yeast to rats was orally administered to rats in a state where dry yeast was dispersed in distilled water so that the dose of 300 mg / kg-rat as SAMe, and 0.5, 2,
  • the blood of the rat after 3 and 5 hours was collected, and the blood was rapidly centrifuged to separate the plasma components.
  • the extract of the SAMe component using perchloric acid was analyzed by high performance liquid chromatography (HPLC) with LC.
  • HPLC high performance liquid chromatography
  • the analysis was performed under the following conditions by -MS-MS (Liquid chromatography coupled with mass spectrometry).
  • -MS-MS Liquid chromatography coupled with mass spectrometry
  • LC-MS-MS Thermo Accela, LTQ orbitrap Discovery HPLC condition column: Intersil ODS-3 (4.6 mm ⁇ 150 mm) manufactured by GL Sciences Inc.
  • composition of the present invention a composition containing S-adenosyl-L-methionine having excellent storage stability, and further having excellent bioabsorbability as a physiologically active substance for pharmaceuticals and health foods Can be used effectively.
  • the production method of the present invention can be used as a method for easily producing a composition containing S-adenosyl-L-methionine at a high concentration and excellent in storage stability at low cost.

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Abstract

　本発明のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニンと、増粘剤を含有する保存安定性に優れた乾燥酵母組成物を提供する。ＳＡＭe生産能を有する酵母を培養集菌した酵母菌体濃縮物に増粘剤を添加した後に乾燥することによって、保存安定性、さらには生体吸収性に優れたＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニンを高濃度に含む乾燥酵母を簡便かつ経済的に製造できるので、水溶性の生理活性物質として有用なＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニンを高濃度に含む、保存安定性、さらには生体吸収性に優れた乾燥酵母組成物を市場に提供できる。

Description

保存安定性に優れたＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物及びその製造方法
　本発明は、水溶性の生理活性物質として有用なＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン（以下、ＳＡＭeと記す）を高濃度に含む保存安定性に優れた乾燥酵母組成物、及びその製造方法に関する。
　ＳＡＭｅは、生体内に広く存在し、核酸、神経伝達物質、リン脂質、ホルモン、タンパク質などの合成・代謝にて種々のトランスメチラーゼによるメチル化反応のメチル基供与体として重要な役割を演じている水溶性の生理活性物質である。ＳＡＭｅは、人体の殆ど全ての細胞に見られ、様々な生化学反応における共同因子として働き、メチル基転移、硫黄基転移、およびアミノプロピル基転移の３つの代謝経路により代謝される。例えば、軟骨の維持や脳内物質の生合成に欠かすことの出来ない物質である。近年のＳＡＭeの機能研究より脂肪肝、高脂血症、動脈硬化症、不眠症、アルコール性肝炎、老人性痴呆症などに対する治療効果についても報告されている。このようにＳＡＭeは、重要な生理活性物質であり、欧米諸国において鬱病、肝臓疾患及び関節炎等の治療薬、或いは健康食品として広く利用されている。
　そのため、ＳＡＭeを安価で、簡便に製造供給することが強く望まれる。従来、ＳＡＭｅの製造方法としては、前駆物質であるＬ－メチオニンを含有させた培地を用いて醗酵生産する方法、酵母などの微生物より単離精製したＳＡＭe合成酵素（メチオニンアデノシルトランスフェラーゼ）を用い、アデノシン５’－三リン酸（ＡＴＰ）とＬ－メチオニンを基質としてＳＡＭeを酵素的に合成する方法及び合成法による方法などが知られている。
　酵素的合成法については、酵母などの微生物より単離精製したＳＡＭe合成酵素（メチオニンアデノシルトランスフェラーゼ）を用い、アデノシン５’－三リン酸（ＡＴＰ）とＬ－メチオニンを基質としてＳＡＭeを酵素的に合成する方法であるが、この方法は、醗酵法と比べ、ＳＡＭeの蓄積量が多く、菌体からのＳＡＭe抽出操作が必要ないなどの利点はあるものの、酵素の調製が煩雑であること、得られる酵素の活性が微弱であること、ＡＴＰ分解酵素等の妨害物質を除去する必要があること、さらには、基質であるＡＴＰが極めて高価であるなど様々な問題を有し、必ずしも実用的な方法とは成り得なかった。また、近年の遺伝子工学の発展により、クローン化したＳＡＭe合成酵素遺伝子を用いることによって該酵素の調製がより簡便になり、酵素調製の問題は解決されつつあるものの、依然として高価なＡＴＰを基質として使用する必要があるなど、他の実用上の問題は解決されていない。
　また、ＳＡＭｅは熱的に不安定で常温においても容易に分解する性質を有することから、医薬品、健康食品として使用する際の大きな障害となっている。その対策として、保存安定性の向上を目的とした多くの試みがなされてきた。例えば、前述した製造方法で得られたＳＡＭｅの組成物をクロマトグラフィー等により精製した後、硫酸やｐ－トルエンスルフォン酸との塩、又はブタンジスルフォン酸との塩等にすることによりＳＡＭｅの安定化をはかる方法（例えば、特許文献１参照）、または、精製したＳＡＭｅに添加物処理を行い、ＳＡＭｅ組成物として安定化をはかる方法（例えば、特許文献１参照）が一般的で、多くの手間と費用を要するため、治療薬や健康食品として重要なＳＡＭｅを安価に製造し提供することは極めて困難なことであった。そして近年、ＳＡＭｅをより安価で、精製工程が少なく、簡便に製造できるＳＡＭｅ生産能を有し且つ経口摂取が可能な微生物を用いた、ＳＡＭｅ含有乾燥微生物について研究が行われている。（例えば、特許文献２、非特許文献１参照）しかし、現状では、ＳＡＭｅ含有乾燥微生物は、精製したＳＡＭｅ、ＳＡＭｅ組成物に比べ保存安定性が低いことが問題となっている。
特開昭５９－５１２１３号公報 国際公開第２００８／０９０９０５号
Biochemica et Biophysica Acta, 1573,105-108,(2002) J of Chromatography B,863,94-100(2008)
　本発明の目的は、ＳＡＭｅを高濃度に含む保存安定性に優れた乾燥酵母組成物を、低コストで簡便に製造できるプロセスを確立することにある。
　本発明者等は、上記課題を解決するべく、ＳＡＭｅを高濃度に含有し、かつ安定な状態で長期間保存できる性能的に優れた組成物を経済的に生産できる方法について鋭意検討した結果、ＳＡＭｅ生産能を有し且つ経口摂取が可能な酵母を用いて菌体内にＳＡＭｅを高濃度に産生蓄積させた後、培養液より遠心分離等の分離手段で酵母菌体を分離し、得られた酵母菌体濃縮物に増粘剤を添加した後、乾燥させることによって、目的とするＳＡＭｅを高濃度に含有し、かつ保存安定性に優れた組成物である乾燥酵母を簡便に収率良く製造できることを見出し、本発明を完成するに至った。また、本発明のＳＡＭｅ含有乾燥酵母組成物は、保存安定性に加えて、生体吸収性にも優れることを見出し、本発明を完成するに至った。
　本発明は、
（１）Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニンと、増粘剤を含有するＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物、及び
（２）　Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニン生産能を有する酵母を用い、酵母の菌体培養液より得られる酵母菌体濃縮物に増粘剤を添加した後、乾燥するＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物の製造方法、
を提供する。
　本発明のＳ－アデノシル－Ｌ－メチニオン含有乾燥酵母組成物は、保存安定性に優れ、さらには生体吸収性にも優れるので、破砕して粉末状にしたり、必要に応じて他の生理活性成分や賦型剤等の添加剤を加えて、圧縮打錠して錠剤状の組成物としたり、粉体を顆粒状に造粒したり、造粒した顆粒を詰めてカプセル化するなどして、医薬や健康食品用の水溶性の生理活性物質として有用な組成物を提供できる。
　また、Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニンを高濃度に含み保存安定性に優れる組成物を、さらに生体吸収性にも優れるＳＡＭｅ含有乾燥酵母組成物を低コストで簡便に製造する方法を提供できる。
　本発明に使用される酵母の種類は、ＳＡＭｅ生産能を有し且つ経口摂取可能なものであればよく、例えばサッカロマイセス属に属する酵母が挙げられる。このうち、サッカロマイセス・セレビジエ（Saccharomyces cerevisiae）がより好適である。なお、乾燥酵母には、５'－ヌクレオチド、遊離アミノ酸、抗酸化作用を有し肝機能改善に役立つグルタチオン、免疫力の増進作用や整腸作用を有するβ－グルカンや食物繊維などの有用成分が多く含まれており、健康食品等として広く利用されている。
　上記酵母を培養する際に使用する炭素源は、酵母が資化し得るものであれば特に制限はなく、例えば、グルコース、蔗糖、澱粉、廃糖蜜等の炭水化物、エタノール等のアルコール、又は酢酸等の有機酸が挙げられる。窒素源も、使用する酵母が資化し得るものであれば特に制限はなく、例えば、アンモニア、硝酸、尿素等の無機体窒素化合物、又は酵母エキス、麦芽エキス等の有機体窒素化合物を含むものが挙げられる。また、無機塩類としては、リン酸、カリウム、ナトリウム、マグネシウム、カルシウム、鉄、亜鉛、マンガン、コバルト、銅、モリブデン等の塩が用いられる。さらには、ＳＡＭｅの骨格構成にあずかるメチオニン、アデニン、アデノシルリボヌクレオシドを添加し培養することもできる。
　培地として、Ｌ－メチオニン含有培地（Shiozaki S.,et all,J.Biotechnology,4,345-354(1986))を用いた。
　培地成分としては、スクロース、酵母エキス、Ｌ－メチオニン、尿素、グリシン、リン酸二水素カリウム、硫酸マグネシウム七水和物、ビオチン、塩化カルシウム二水和物、及び微量金属塩を含む培地に植菌し、スクロース又は／及びエタノール等の炭素源を流加しつつ、好気的に培養することによりＳＡＭ含有菌体を得ることができる。
　培養温度及び培養液のｐＨは使用する酵母の種類よって異なるが、培養温度としては２０～３５℃の範囲を、培養液のｐＨとしてはｐＨ４～７の範囲を挙げることができる。
　また、菌体内のＳＡＭｅ含量を高めるには、好気的に培養することが好ましい。培養槽は、通気可能で必要に応じ攪拌できるものであればよく、例えば、機械的攪拌培養槽、エアーリフト式培養槽及び気泡塔型培養槽等を利用することができる。
　培地の供給方法は、炭素源、窒素源、各種無機塩類、各種添加剤等を、一括若しくは個別に連続的又は間欠的に供給する。例えば、蔗糖、エタノール等の基質は他の培地成分との混合物として培養槽に供給してもよく、また他の培地成分とは別に独立して培養槽に供給してもよい。培養液のｐＨ制御は、酸、アルカリ溶液によって行われる。アルカリとしては窒素源として使用されるアンモニア、尿素、又は非窒素系塩基、例えば、苛性ソーダ、苛性カリ等を用いてｐＨ制御するのが望ましい。酸としては無機酸、例えば、リン酸、硫酸、硝酸、又は有機酸が用いられる。なお、無機塩類であるリン酸塩、カリウム塩、ナトリウム塩、硝酸塩等を用いてｐＨ制御することもできる。
　このような条件で培養し、目標量のＳＡＭｅが酵母菌体中に蓄積された段階で培養液を抜き出し酵母菌体を分離する。分離方法としては、菌体の分離と洗浄が効率的に行える方法であれば特に制限はないが、向流型のイーストセパレーターや分離膜を用いた限外濾過装置が好適な例として挙げられる。
　ついで、分離した酵母菌体の分離濃縮物に増粘剤を添加する。これによって、乾燥酵母中のＳＡＭｅの保存安定性、さらには、生体吸収性が増し、また酵母の乾燥工程での歩留まりも向上し、また乾燥酵母独特の臭気もマスキングされる。添加する増粘剤の量としては、Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物に対する質量比として０．１～７０質量パーセントの範囲になるようにすることが好ましく、０．４～７０質量パーセント範囲になるようにすることがより好ましく、０．７～７０質量パーセント範囲になるようにすることがさらに好ましい。さらにまた、４．５～７０質量パーセント範囲になるようにすることが特に好ましい。０．１質量パーセントを下回ると乾燥酵母中のＳＡＭｅの保存安定性が不充分となり、７０質量パーセントを超えると無駄であるばかりか乾燥酵母中のＳＡＭｅの保存安定性が用量依存的に低下する傾向を示す。
　本発明において増粘剤とは、増粘作用を有し、いわゆるゲル化剤といわれているような食品に添加可能な各種増粘剤等をいう。
　具体的に使用できる増粘剤としては、（１）キサンタンガム、ジェランガム、カードラン、アルギンキサンタンガム、プルラン、及び納豆菌ガムから選択される微生物由来増粘剤、
（２）グアーガム、タラガム、ローカストビーンガム、タマリンドガム、及びサイリウムシードガムから選択される種子由来増粘剤、
（３）セルロース、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、デンプン、及びカルボキシメチル酸ナトリウムから選択される植物由来増粘剤、
（４）カラギーナン、アルギン酸ナトリウム、アルギン酸、及びアルギン酸プロピレングリコールエステルから選択される海藻由来増粘剤、
（５）アラビアガム、トラガントガム、シェラック、及びアラビノガラクタンから選択される樹脂由来増粘剤、
（６）キトサン、及びキチンから選択される甲殻由来増粘剤、及び
（７）ペクチン、マンナン、ヒアルロン酸、コンドロイチン、寒天、コラーゲン、アルブミン、ツェイン、カゼイン、及びカゼインナトリウム等から選ばれる増粘剤が挙げられ、これらから１種以上を選択して用いることができる。
　これらのうち、（１）キサンタンガム、ジェランガム、カードラン、アルギンキサンタンガム、プルラン、及び納豆菌ガムから選択される微生物由来増粘剤、
（２）グアーガム、タラガム、ローカストビーンガム、タマリンドガム、及びサイリウムシードガムから選択される種子由来増粘剤、
（５）アラビアガム、トラガントガム、シェラック、及びアラビノガラクタンから選択される樹脂由来増粘剤、
（６）キトサン、及びキチンから選択される甲殻由来増粘剤、及び
（７）ペクチン、マンナン、ヒアルロン酸、コンドロイチン、寒天、コラーゲン、アルブミン、ツェイン、カゼイン、及びカゼインナトリウムから選ばれる増粘剤がより好ましい。
　さらに、（１）キサンタンガム、ジェランガム、カードラン、アルギンキサンタンガム、プルラン、及び納豆菌ガム等の微生物由来増粘剤、及び（２）グアーガム、タラガム、ローカストビーンガム、タマリンドガム、及びサイリウムシードガム等の種子由来増粘剤が特に好ましい。
　本発明で使用する増粘剤は食品、化粧品、医薬品用途で汎用されており、安全に使用することができる。
　このようにして増粘剤の添加処理を行った後に、酵母菌体の濃縮物をスプレードライヤによる噴霧乾燥法や凍結乾燥法等の乾燥方法により水分を蒸発させてＳＡＭｅ含有乾燥酵母組成物とする。
　乾燥条件としては、噴霧乾燥法では、入口温度２１０℃以下、出口温度１１０℃以下にて乾燥させることが望ましい。凍結乾燥法では、最終棚温度３０℃以下にて乾燥させることが望ましい。本発明のＳＡＭｅ含有組成物は保存安定性の観点から、その水分含量が５．０質量％以下になるようにすることが望ましい。
　さらには、この乾燥酵母組成物を破砕して粉末状にしたり、粉末状の乾燥酵母に必要に応じて他の生理活性成分や賦形剤等の添加剤を加えた後に圧縮打錠し錠剤状の組成物となし、さらに、その表面を被覆したりすることもできる。
　また、粉体を顆粒状に造粒することや、粉体や造粒した顆粒を詰めてカプセル化することもできる。
　以下、本発明を実施例及び比較例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの例によって限定されるものではない。
実施例１～４
（ａ）酵母菌体の培養
　前述した公知の培養法に従って、Ｌ－メチオニン含有培地（Shiozaki S.,et all,J.Biotechnology,4,345-354(1986))にサッカロマイセス属に属する酵母サッカロマイセス・セレビジエＩＦＯ２３４６を接種し、培養温度２７～２９℃で好気的に通気攪拌しながら６日間培養した。その結果、菌体濃度３．５ｗｔ％，ＳＡＭｅ含量２０５ｍｇ／ｇ－乾燥酵母の酵母菌体培養液１８Ｌを得た。
（ｂ）酵母菌体の集菌
　上記の酵母菌体培養液１８Ｌを連続ロータリー型遠心分離器（日立ＨＩＭＡＣ　ＣＥＮＴＲＩＦＵＧＥ　ＣＲ１０Ｂ２）で処理し、菌濃度が乾物換算で１８質量％に相当する液状の酵母菌体濃縮物３．４ｋｇを得た。
（ｃ）酵母菌体濃縮物への増粘剤の添加
上記の酵母菌体濃縮物３．４ｋｇにキサンタンガムを該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として０．０２、０．２、２．２、１１．１倍量加えて、室温にて３０分間攪拌混合し、キサンタンガムを添加した酵母菌体濃縮物を得た。
（ｄ）乾燥酵母の製造
　上記のキサンタンガムを添加した酵母菌体濃縮物を凍結乾燥器（日本真空技術株式会社製）の凍結乾燥用ステンレストレーに流し込み－５０℃で凍結した後、最終棚段温度２５℃の条件で３６時間凍結乾燥した。得られた凍結乾燥酵母をさらに粉砕することによって粉末乾燥酵母を得た。このようにして得られた粉末乾燥酵母を密閉ガラス容器中に詰め、４０℃、ＲＨ７５％の加速度試験条件下で保存安定性試験を行った。表１に４０℃、ＲＨ７５％での加速保存安定性試験結果を示した。なお、ＳＡＭｅ残存率は、ＳＡＭｅ含有乾燥酵母より過塩素酸を用いた公知の方法でＳＡＭｅを抽出し、液体クロマトグラフィーを用いた比較定量法にて実施した。保存後の臭気の有無については５名のパネラーによる官能検査にて求めた。官能検査の評価方法は、５名のパネラー全員が異臭なしとした場合を「○」、５名のうち１～２名が異臭があるとした場合を「△」、５名のうち３名以上が異臭ありとした場合を「×」とした。
　本発明におけるＳＡＭｅ測定法は、以下の条件の液体クロマトグラフィーを使用した。
用いられた分析条件
カラム：ナカライ（nacalai tesque） COSMOSIL  ４．６φ×１００ｍｍ
溶離液：０．２Ｍ　ＫＨ2ＰＯ4水溶液／メタノール＝９５／５
流速：０．７ｍＬ/ｍｉｎ、検出器：ＵＶ（２６０ｎｍ）
ＳＡＭｅ保持時間：約１５０秒
実施例５～８
　酵母菌体濃縮物にカードランを用いて、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、及び得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
実施例９
　酵母菌体濃縮物にグアーガムを該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として０．２倍量加えた以外は、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、及び得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
実施例１０
　酵母菌体濃縮物にタマリンドガムを該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として０．２倍量加えた以外は、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、及び得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
実施例１１
　酵母菌体濃縮物にジェランガムを該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として０．２倍量加えた以外は、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、及び得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
比較例１
　酵母菌体濃縮物へキサンタンガムを添加しなかったこと以外は実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
比較例２
　酵母菌体濃縮物にトレハロースを該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として２．２倍量加えた以外は、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中のＳＡＭｅ含量、質量、得られたＳＡＭｅ含有乾燥酵母の密閉ガラス容器中、４０℃、ＲＨ７５％の加速条件下での保存安定性試験の結果、官能検査の結果を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
実施例１２～１９
　２００Ｌ培養槽を用い、固形分濃度が１８．２質量％のＳＡＭｅ含有酵母濃縮液（ＳＡＭe含量３．７質量％）に対する添加物の量を１質量％とし、添加物としてκ－カラギーナン（実施例１２）、キサンタンガム（実施例１３）、グアーガム（実施例１４）、タマリンドガム（実施例１５）、カードラン（実施例１６）、ジェランガム（実施例１７）、アルギン酸（実施例１８）、セラオスＳＴ－Ｏ２（結晶セルロース）（実施例１９）を添加し、凍結乾燥後の回収率、ＳＡＭｅ含有量（質量％）４０℃で３０日、６０日後のＳＡＭｅ残存率を測定した。
　実施例１２～１９の詳細な実施例の条件は以下のとおりである。
（ａ）酵母菌体の培養
　実施例１と同様の条件で培養し、菌体濃度３．５質量％、ＳＡＭｅ含量２０１．５ｍｇ／ｇ－乾燥酵母の酵母菌体培養液１２０Ｌを得た。
（ｂ）酵母菌体の集菌
　上記の酵母菌体培養液１２０Ｌを連続ロータリー型遠心分離器（日立ＨＩＭＡＣ　ＣＥＮＴＲＩＦＵＧＥ　ＣＲ１０Ｂ２）で処理し、菌濃度が乾物換算で１８質量％に相当する液状の酵母菌体濃縮物２３．４ｋｇを得た。
（ｃ）酵母菌体濃縮物への増粘剤の添加
　上記の酵母菌体濃縮物２３．４ｋｇに上記の実施例１２～１９の増粘剤を該酵母濃縮物中のＳＡＭｅに対する質量比として１．０倍量加えて、室温にて３０分間攪拌混合し、実施例１２～１９の増粘剤を添加した酵母菌体濃縮物を得た。
（ｄ）乾燥酵母の製造
　上記の実施例１２～１９の増粘剤を添加した酵母菌体濃縮物を凍結乾燥器（日本真空技術株式会社製）の凍結乾燥用ステンレストレーに流し込み－５０℃で凍結した後、最終棚段温度２５℃の条件で３６時間凍結乾燥した。得られた凍結乾燥酵母をさらに粉砕することによって粉末乾燥酵母を得た。このようにして得られた粉末乾燥酵母を密閉ガラス容器中に詰め、４０℃、ＲＨ７５％の加速度試験条件下で保存安定性試験を行った。表２に４０℃、ＲＨ７５％での加速保存安定性試験の結果を示した。なお、ＳＡＭｅ残存率は、前記の方法で測定した。また、ＳＡＭe含有酵母濃縮液に対する添加物の混合具合については、目視により分散状況を観察して評価した。添加物の混合具合、凍結乾燥後の回収率、形状、乾燥後ＳＡＭｅ含有量（質量％）、４０℃で３０日、６０日後のＳＡＭｅ残存率の結果をまとめて表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
比較例３
　Ｌ－メチオニンを含まない培地にて培養を行った以外は、実施例１と同様に処理して、粉末乾燥酵母を得た。得られた粉末乾燥酵母中にはＳＡＭｅは含有されていなかった。これを用いて以下の実験を行った。
性能評価の試験例１～５、比較性能試験の評価例１、２
　実施例２、６、９、１０、１１、比較例１、及び比較例３で得られた乾燥酵母について、文献記載の方法（非特許文献２）と同様にＳＤ系ラット（雄 ８週齢、動物数：各群ｎ＝３）を用いて、生体吸収性試験を性能評価の試験例１～５、比較性能試験の評価例１，２として行った。
　吸収性試験は、非特許文献２（J of Chromatography B,863,94-100(2008)）の方法を用いて行った。ラットへの乾燥酵母の投与量は、ＳＡＭｅとして３００ｍｇ／ｋｇ-ラットの投与量になる様に乾燥酵母を蒸留水へ分散した状態でラットに経口投与を行い、経口投与後０．５、２、３、５時間後のラットの血液を採取し、血液は速やかに遠心分離により血漿成分の分離を行い、過塩素酸を用いたＳＡＭｅ成分の抽出物を、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で、ＬＣ－ＭＳ－ＭＳ法（Liquid chromatography coupled with mass spectrometry）により下記の条件で分析した。その結果、各乾燥酵母ともに経口投与２時間後血漿中ＳＡＭｅ濃度が最も高かった。各乾燥酵母の経口投与２時間後生体吸収性試験の結果を表３に示す。表３より、いずれの試験例も、増粘剤を添加した乾燥酵母の生体吸収性が、評価例１として示す添加処理を行っていない比較例１の乾燥酵母による場合よりも向上することが確認された。
　なお、生体吸収性試験に用いられた分析機器、条件は以下の通りである。
ＬＣ-ＭＳ-ＭＳ法
ＬＣ-ＭＳ-ＭＳ装置：Thermo社製 Accela、LTQ orbitrap Discovery
ＨＰＬＣ条件
カラム：ジーエルサイエンス社製　Intersil ODS-3(４．６ｍｍ×１５０ｍｍ)
流速：０．５ｍＬ/ｍｉｎ、カラムオーブン：４０℃、検出器：ＵＶ（２６０ｎｍ）、ＳＡＭｅ保持時間：約１４５秒、注入量：１０μL
溶離液： 2 ｍｍｏｌ／Ｌヘプタフルオロ酪酸水溶液：アセトニトリル＝３０：７０
ＭＳ条件
Ion Source:ＥＳＩ
Ion Polarity Mode: Ｐｏｓｉｔｉｖｅ
Scan Mode Type:ＦＴフルマス
Resolution：３００００
Mass Range：ｍ／z ３６０－４１０
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　本発明の組成物を用いることによって、Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニンを含有する保存安定性に優れた組成物、さらには生体吸収性に優れた組成物として、医薬や健康食品用の生理活性物質として有効に利用できる。
　本発明の製造方法は、Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニンを高濃度に含み、保存安定性に優れる組成物を、低コストで簡便に製造する方法として利用できる。

Claims (7)

  1. 　Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニンと、増粘剤を含有するＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
  2. 　前記増粘剤が、下記の（１）～（７）のいずれかから選ばれる少なくとも１種である請求項１に記載のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
    （１）キサンタンガム、ジェランガム、カードラン、アルギンキサンタンガム、プルラン、及び納豆菌ガムから選択される微生物由来増粘剤、
    （２）グアーガム、タラガム、ローカストビーンガム、タマリンドガム、及びサイリウムシードガムから選択される種子由来増粘剤、
    （３）セルロース、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、デンプン、及びカルボキシメチル酸ナトリウムから選択される植物由来増粘剤、
    （４）カラギーナン、アルギン酸ナトリウム、アルギン酸、及びアルギン酸プロピレングリコールエステルから選択される海藻由来増粘剤、
    （５）アラビアガム、トラガントガム、シェラック、及びアラビノガラクタンから選択さ　れる樹脂由来増粘剤、
    （６）キトサン、及びキチンから選択される甲殻由来増粘剤、及び
    （７）ペクチン、マンナン、ヒアルロン酸、コンドロイチン、寒天、コラーゲン、アルブミン、ツェイン、カゼイン、及びカゼインナトリウムから選ばれる増粘剤
  3. 前記増粘剤が、下記の（１）、（２）及び（５）～（７）のいずれかから選ばれる少なくとも１種である請求項２に記載のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
    （１）キサンタンガム、ジェランガム、カードラン、アルギンキサンタンガム、プルラン、及び納豆菌ガムから選択される微生物由来増粘剤、
    （２）グアーガム、タラガム、ローカストビーンガム、タマリンドガム、及びサイリウムシードガムから選択される種子由来増粘剤、
    （５）アラビアガム、トラガントガム、シェラック、及びアラビノガラクタンから選択される樹脂由来増粘剤、
    （６）キトサン、及びキチンから選択される甲殻由来増粘剤、及び
    （７）ペクチン、マンナン、ヒアルロン酸、コンドロイチン、寒天、コラーゲン、アルブミン、ツェイン、カゼイン、及びカゼインナトリウムから選ばれる増粘剤
  4. 　前記増粘剤が、Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物に対して０．１～７０質量％含まれてなる請求項１～３のいずれかに記載のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
  5. 　乾燥酵母が、サッカロマイセス属に属する酵母である、請求項１～４のいずれかに記載のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
  6. 　前記サッカロマイセス属に属する酵母がサッカロマイセス・セレビジエである、請求項５に記載のＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物。
  7. 　Ｓ－アデノシル－Ｌ－メチオニン生産能を有する酵母を用い、酵母の菌体培養液より得られる酵母菌体濃縮物に増粘剤を添加した後、乾燥する、ことを特徴とするＳ－アデノシル－Ｌ－メチオニン含有乾燥酵母組成物の製造方法。
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