WO2010143698A1 - タンパク質の生産方法 - Google Patents

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WO2010143698A1
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cell
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浩一 川上
恵奈 山口
梨沙 小川
正義 塚原
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大学共同利用機関法人情報・システム研究機構
協和発酵キリン株式会社
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Definitions

  • the present invention introduces a protein expression vector containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene into a floating mammalian cell and inserted between a pair of transposon sequences.
  • a method of obtaining a mammalian cell that expresses the target protein by integrating a gene fragment into the chromosome of the mammalian cell, and producing the target protein by suspension culture of the mammalian cell, and a floating that expresses the target protein Relates to sex mammalian cells.
  • the production of foreign proteins by gene recombination technology is used in various industries such as the pharmaceutical and food industries.
  • the production of a recombinant protein involves introducing an expression vector containing a base sequence encoding the target protein into a host such as E. coli, yeast, insect cells, plant cells and animal cells, and integrating the expression vector into the chromosome. This is carried out by selecting the transformed strain, and further culturing the cell strain under appropriate culture conditions to express the target protein.
  • the insect cell system has the merit that the produced protein can be expressed while undergoing post-translational modifications such as phosphorylation and addition of sugar chains, while retaining its original physiological activity.
  • post-translational modifications such as phosphorylation and addition of sugar chains
  • sugar chain structure of the secreted protein is different from that of mammalian cells, antigenicity is a problem for pharmaceutical use.
  • the insect cell system uses a recombinant virus for introduction of a foreign gene, there is a problem that its inactivation and containment are necessary from the viewpoint of safety.
  • a transposon is a transposable genetic element that can move from one locus of a chromosome to another.
  • Transposons are a powerful tool in molecular biology and genetics research, for purposes such as mutagenesis, gene trapping, and generation of transgenic individuals in insects and nematodes (eg Drosophila melanogaster or Caenorhabditis elegans) and plants. It's being used. However, development of such techniques has been delayed in vertebrates including mammalian cells.
  • transposons that are also active in vertebrates have been reported, and it has been confirmed that some of them are also active in mammalian cells such as mice and humans.
  • Typical examples include transposon Tol1 (Patent Document 1) and Tol2 (Non-Patent Document 1) cloned from medaka, and a Sleeping Beauty reconstructed from a non-autonomous transposon that was present in the salmonid fish genome.
  • Patent Document 2 frog-derived artificial transposon Frog Prince (Non-patent Document 3) and insect-derived transposon piggyBac (Non-Patent Document 4).
  • Non-Patent Documents 5 to 12 These DNA transposons will be used as gene transfer tools for introducing new expression systems into the genome of mammalian cells, such as mutation introduction, gene trapping, generation of transgenic individuals, and expression of drug resistance proteins.
  • Patent Document 2 In insects, a method of introducing a foreign gene into a silkworm chromosome using a transposon piggyBac derived from a lepidopterous insect and expressing a protein encoded by the foreign gene has been studied, and a protein production method using this technique has been disclosed. (Patent Document 2).
  • Non-patent Document 12 an example in which a protein related to G418 resistance is expressed in a mammalian cell using a medaka-derived Tol2 transposon is known (Non-patent Document 12).
  • an object of the present invention is to provide a cell that highly expresses a target protein that can be efficiently produced, and a method for producing the target protein using the cell.
  • a protein expression vector containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene has been introduced into a floating mammal.
  • a mammalian cell that highly expresses the target protein is efficiently produced by introducing the gene fragment inserted between a pair of (two) transposon sequences into the chromosome of the mammalian cell after introduction into the animal cell. I found out that I can do it. Furthermore, it has been found that the target protein can be produced with high efficiency by using the cells, and the present invention has been completed.
  • the present invention is as follows. 1. A protein expression vector containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene is introduced into a floating mammalian cell, and the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences is A method of obtaining a mammalian cell that is integrated into a chromosome of a mammalian cell and that expresses the target protein, and produces the target protein by subjecting the mammalian cell to suspension culture. 2.
  • a method for producing a target protein comprising the following steps (A) to (C): (A) Step of simultaneously introducing the following expression vectors (a) and (b) into suspension mammalian cells (a) A transposon sequence is included at both ends of a gene fragment containing DNA encoding a target protein and a selectable marker gene Expression vector (b) An expression vector that recognizes a transposon sequence and contains a DNA encoding a transposase having an activity of transferring a gene fragment inserted between a pair of transposon sequences to a chromosome (B) Introduced in step (A) A floating mammalian cell that expresses the target protein by transiently expressing transposase with the expression vector (b), integrating the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences into the chromosome of the mammalian cell A floating mammal that expresses the target protein obtained in step (B).
  • a protein expression vector containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene is introduced into a floating mammalian cell, and the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences is A method for obtaining a floating mammalian cell that is incorporated into a chromosome of a mammalian cell and expresses the target protein. 4). 4. The method according to any one of items 1 to 3, wherein the floating mammalian cell is a cell that can survive and proliferate in a serum-free culture. 5). Suspension mammalian cells are prepared from the suspension of CHO cells, PER.
  • the cycloheximide resistance gene is a gene encoding a mutant of human ribosomal protein L36a.
  • the mutant is a mutant in which proline at position 54 of human ribosomal protein L36a is substituted with another amino acid.
  • the other amino acid is glutamine.
  • the pair of transposon sequences is a base sequence derived from a pair of DNA-type transposons that function in mammalian cells. 12 12.
  • the base sequence derived from a pair of DNA-type transposons is a base sequence derived from a pair of Tol1 transposon or a base sequence derived from Tol2 transposon. 13. 13.
  • the method according to item 12 above, wherein the base sequence derived from the pair of Tol1 transposons is a base sequence represented by SEQ ID NO: 14 and a base sequence represented by SEQ ID NO: 15. 15.
  • a protein expression vector containing a transposon sequence is introduced at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene, the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences is integrated into a chromosome, and the target Suspended mammalian cells that produce proteins. 16.
  • the gene fragment inserted between the pair of transposon sequences is integrated into the chromosome by simultaneously introducing an expression vector (b) containing a DNA encoding a transposase (transferase) having the activity of transferring to A suspension mammalian cell that produces the target protein. 17.
  • Item 17 The cell according to item 15 or 16, which is a floating mammalian cell that can survive and proliferate in serum-free culture. 18.
  • Permanent CHO cells obtained by acclimating CHO cells to suspension culture, PER. C6 cells, rat myeloma cells YB2 / 3HL. P2. G11.16 Ag. 18.
  • the CHO cell is at least one selected from CHO-K1, CHO-K1SV, DUKXB11, CHO / DG44, Pro-3 and CHO-S. 20. 20.
  • the selectable marker gene is a cycloheximide resistance gene. 21. 21. The cell according to item 20 above, wherein the cycloheximide resistance gene is a gene encoding a mutant of human ribosomal protein L36a. 22. 22. The cell according to item 21 above, wherein the mutant is a mutant in which proline at position 54 of human ribosomal protein L36a is substituted with another amino acid. 23. 23. The cell according to item 22 above, wherein the other amino acid is glutamine. 24. 24.
  • the pair of transposon sequences is a base sequence derived from a pair of DNA-type transposons that function in mammalian cells. 25. 25. The cell according to item 24 above, wherein the base sequence derived from a pair of DNA-type transposons is a base sequence derived from a pair of Tol1 transposon or a base sequence derived from Tol2 transposon. 26. 26. The cell according to item 25 above, wherein the base sequence derived from the pair of Tol2 transposons is the base sequence represented by SEQ ID NO: 2 and the base sequence represented by SEQ ID NO: 3. 27. 26.
  • a protein expression vector comprising a pair of transposon sequences at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene. 29. 29.
  • the protein expression vector according to item 28 above, wherein the pair of transposon sequences is a base sequence derived from a pair of Tol1 transposon or a base sequence derived from Tol2 transposon. 30. 30.
  • a target protein can be efficiently produced using mammalian cells.
  • the cell of the present invention can be used as a protein-producing cell for producing a recombinant protein with high efficiency.
  • the schematic diagram of an anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector is shown.
  • Tol2-L is the left end Tol2 transposon (SEQ ID NO: 2)
  • Tol2-R is the right end Tol2 transposon (SEQ ID NO: 3)
  • CMV is the CMV promoter
  • poly A is the polyadenylation site
  • Hc is the human antibody H
  • the chain cDNA Lc represents the human antibody L chain cDNA
  • CHX-r represents the cycloheximide resistance gene.
  • the schematic diagram of an anti-human influenza M2 antibody expression vector is shown.
  • CMV represents a CMV promoter
  • poly A represents a polyadenylation site
  • Hc represents a human antibody H chain cDNA
  • Lc represents a human antibody L chain cDNA
  • CHX-r represents a cycloheximide resistance gene.
  • CAGGS indicates a CAGGS promoter
  • poly A indicates a polyadenylation site
  • TPase cDNA indicates a Tol2 transposase cDNA.
  • the vertical axis represents the amount of antibody produced ( ⁇ g / mL), and the horizontal axis represents the number of clones into which CHO-K1 cells are introduced in suspension.
  • the results of examining the expression level of anti-human influenza M2 antibody in adherent CHO-K1 cells when using the anti-human influenza M2 antibody-expressing Tol2 transposon vector are shown.
  • the vertical axis represents the antibody production ( ⁇ g / mL), and the horizontal axis represents the gene transfer clone number of the adherent CHO-K1 cells.
  • the schematic diagram of an anti-human influenza M2 antibody expression Tol1 transposon vector is shown.
  • Tol1-L is the left end Tol1 transposon (SEQ ID NO: 14)
  • Tol1-R is the right end Tol1 transposon (SEQ ID NO: 15)
  • CMV is the CMV promoter
  • poly A is the polyadenylation site
  • Hc is the human antibody H.
  • the chain cDNA, Lc represents the human antibody L chain cDNA
  • CHX-r represents the cycloheximide resistance gene.
  • the schematic diagram of a Tol1 transposase expression vector is shown.
  • CAGGS indicates a CAGGS promoter
  • poly A indicates a polyadenylation site
  • TPase cDNA indicates a Tol1 transposase cDNA.
  • the result of examining the expression level of the anti-human influenza M2 antibody in the floating CHO-K1 cells when using the Tol1 transposon vector expressing the anti-human influenza M2 antibody is shown.
  • the vertical axis represents the amount of antibody production ( ⁇ g / mL), and the horizontal axis represents the gene transfer clone number of floating CHO cells.
  • a protein expression vector containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene is introduced into a floating mammalian cell, and between a pair of (two) transposon sequences.
  • the present invention relates to a method for obtaining a mammalian cell expressing the target protein by integrating the inserted gene fragment into the chromosome of the mammalian cell, and producing the target protein by suspension culture of the mammalian cell.
  • Examples of the method for producing the target protein of the present invention include a method for producing the target protein including the following steps (A) to (C).
  • A) Step of simultaneously introducing the following expression vectors (a) and (b) into suspension mammalian cells (a) A transposon sequence is included at both ends of a gene fragment containing DNA encoding a target protein and a selectable marker gene Protein expression vector (b) A vector containing a DNA encoding a transposase that recognizes a transposon sequence and has an activity of transferring a gene fragment inserted between a pair of transposon sequences to a chromosome (B) Introduced in step (A) A suspension mammalian cell that expresses a target protein by transiently expressing a transposase with the expression vector (b) and integrating the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences into the chromosome of the mammalian cell. Step (C) to obtain the target protein obtained in step (B) And suspension culture things
  • a protein expression vector containing a transposon sequence is introduced into both ends of a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene, and the gene fragment inserted between a pair of transposon sequences is inserted into a chromosome.
  • the present invention relates to a floating mammalian cell which is incorporated and produces the target protein.
  • a protein expression vector (a) containing a transposon sequence at both ends of a gene fragment containing a DNA encoding the target protein and a selectable marker gene, and the transposon sequence are recognized.
  • a vector (b) containing a DNA encoding a transposase (transferase) having an activity of transferring a gene fragment inserted between a pair of transposon sequences to a chromosome is introduced at the same time, so that the pair of transposon sequences Examples include suspension mammalian cells in which the gene fragment inserted between them is integrated into a chromosome and the target protein is produced.
  • transposon is a transposable genetic element, and means a gene unit that transposes on a chromosome or from one chromosome to another while maintaining a certain structure.
  • the transposon recognizes the transposon sequence by recognizing the transposon sequence in reverse or in the same direction at both ends of the gene unit (also referred to as inverted repeated sequence (IR sequence) or terminal inverted repeat sequence (TIR sequence)) and the transposon sequence. It includes a base sequence encoding a transposase that transfers a gene existing between the sequences.
  • IR sequence inverted repeated sequence
  • TIR sequence terminal inverted repeat sequence
  • the transposase translated from the transposon recognizes the transposon sequences at both ends of the transposon, cuts out a DNA fragment inserted between a pair of transposon sequences, and inserts it into the transfer destination, whereby DNA can be transferred.
  • transposon sequence means a base sequence of a transposon recognized by transposase and is synonymous with an IR sequence or a TIR sequence. If the DNA containing the nucleotide sequence can be transferred (inserted at another position in the genome) by the action of transposase, it may contain an incomplete repetitive portion, and there is a transposon sequence specific to transposase. .
  • the transposon sequence used in the present invention is preferably a base sequence derived from a DNA-type transposon, and more preferably a base sequence derived from a pair of natural or artificial DNA-type transposons that are recognized by transposase and can be translocated in mammalian cells.
  • Examples of the base sequence derived from the DNA-type transposon include Tol1 and Tol2 transposons derived from medaka, a Sleeping Beauty reconstructed from a non-autonomous transposon present in the salmonid fish genome, and an artificial transposon Frog Prince derived from a frog.
  • a base sequence derived from an insect-derived transposon PiggyBac can be mentioned.
  • the base sequence derived from the medaka-derived Tol2 transposon composed of the base sequence represented by SEQ ID NO: 6 in the sequence listing and the medaka-derived Tol1 transposon composed of the base sequence represented by SEQ ID NO: 13 listed in the sequence listing is preferable.
  • Examples of the base sequence derived from a pair of Tol2 transposons include the 1st to 2229th base sequences and the 4148th to 4682th base sequences of the base sequence of Tol2 transposon represented by SEQ ID NO: 6 in the sequence listing.
  • the base sequence derived from a pair of Tol2 transposons is more preferably the first to 200th base sequences (SEQ ID NO: 2) (hereinafter referred to as “Tol2” in the base sequence of Tol2 transposon represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing).
  • SEQ ID NO: 2 hereinafter referred to as “Tol2” in the base sequence of Tol2 transposon represented by SEQ ID NO: 1 in the sequence listing.
  • -L sequence " and 2285th to 2788th base sequence SEQ ID NO: 3
  • transposon sequences derived from a pair of Tol1 transposons include a base sequence including the first to 157th base sequences of the base sequence of Tol1 transposon represented by SEQ ID NO: 13 in the sequence listing and a base sequence from 1748th to 1855th. It is done.
  • the transposon sequences derived from a pair of Tol1 transposons are more preferably the first to 200th base sequences (SEQ ID NO: 14) (hereinafter referred to as “Tol1”) in the base sequence of Tol1 transposon represented by SEQ ID NO: 13 in the sequence listing. -L sequence ”) and the 1351st to 1855th base sequence (SEQ ID NO: 15) (hereinafter referred to as" Tol1-R sequence ").
  • transposon sequences by using a partial sequence of the transposon sequence derived from the above-mentioned transposon, adjusting the length of the base sequence, and modifying the base sequence by addition, deletion or substitution, Also included are transposon sequences with controlled transfer reactions.
  • Control of the transposon transfer reaction can promote or suppress the transfer reaction by promoting or suppressing the recognition of the transposon sequence by the transposase.
  • transposase means an enzyme that recognizes a base sequence having a transposon sequence and translocates DNA existing between the base sequences from one chromosome to another.
  • transposase examples include Tol1 and Tol2 derived from medaka, Sleeping Beauty reconstructed from non-autonomous transposons that existed in the salmonid genome, frog-derived artificial transposon Frog Prince, and insect-derived transposon PiggyBac Enzymes can be used.
  • transposase a natural enzyme may be used, and a part of the amino acids may be substituted, deleted, inserted, and / or added as long as the transposase activity similar to that of the transposase is maintained.
  • the transfer reaction of DNA existing between the transposon sequences can be controlled.
  • the nonautonomous Tol2 element is transformed into a mammalian cell by the action of the transposase. It can be analyzed whether it can be transferred or inserted into the chromosome.
  • non-autonomous transposon refers to a transposon that lacks the transposase present in the transposon and cannot metastasize autonomously.
  • a non-autonomous transposon is a transposase protein, mRNA that encodes a transposase protein, or DNA that encodes a transposase protein. Can be transferred into the chromosome of the host cell.
  • the transposase gene means a gene encoding transposase.
  • a kozak consensus sequence (Kozak, M. Nucleic Acids Res., 12, 857-872 (1984)
  • ribosome upstream of the translation initiation codon ATG of the gene
  • a sequence that adjusts the binding sequence between a Shine-Dalgarno sequence and an initiation codon to an appropriate distance (eg, 6 to 18 bases) may be linked.
  • the DNA fragment encoding the target protein and the gene fragment containing the selectable marker gene in order to incorporate a gene fragment containing a DNA encoding a target protein and a selectable marker gene in an expression vector into the host cell chromosome, the DNA fragment encoding the target protein and the gene fragment containing the selectable marker gene
  • An expression vector containing a transposon sequence at both ends is introduced into a host cell, and a transposase is allowed to act on the transposon sequence contained in the expression vector introduced into the cell.
  • the transposase may be injected into the cell, or an expression vector containing DNA encoding the transposase is used. It may be introduced into a host cell together with an expression vector containing DNA encoding a protein and a selectable marker gene. Alternatively, RNA encoding a transposase gene may be introduced into a host cell and the transposase expressed in the cell.
  • the expression vector is not particularly limited, and can be appropriately selected from expression vectors known to those skilled in the art according to the host cell into which the expression vector into which the transposase gene has been introduced, the purpose of use, and the like.
  • DNAs encoding two or more polypeptides are incorporated into the same or different expression vectors, and the expression vectors are introduced into host cells. By doing so, the DNA can be integrated into the chromosome of the cell.
  • the transposase may be incorporated into an expression vector and expressed together with the target protein, or may be incorporated into a vector different from the expression vector and expressed.
  • the transposase may work transiently or may work continuously, but it is desirable to make the transposase work transiently in order to produce stable production cells.
  • transposase As a method of making the transposase work transiently, for example, there is a method in which the DNA encoding the transposase is incorporated into an expression vector different from the expression vector containing the DNA encoding the target protein, and both expression plasmids are simultaneously introduced into the host cell. Can be mentioned.
  • the “expression vector” means an expression vector used for transforming mammalian cells in order to express a target protein.
  • the expression vector used in the present invention has a structure in which at least one pair of transposon sequences exists on both sides of the expression cassette.
  • the “expression cassette” means a nucleic acid sequence having a gene expression control region necessary for expressing a target protein and a sequence encoding the target protein.
  • the gene expression control region include an enhancer, a promoter, and a terminator.
  • the expression cassette may contain a selection marker gene.
  • CMV cytomegalovirus
  • SV40 early promoter SV40 early promoter
  • retrovirus promoter metallothionein promoter
  • heat shock promoter SR ⁇ promoter
  • moloney murine leukemia virus promoter moloney murine leukemia virus promoter
  • enhancers an enhancer of human CMV IE gene may be used together with a promoter.
  • “Selectable marker gene” means any other marker gene that can be used to distinguish between a cell into which a plasmid vector has been introduced and a cell lacking the vector.
  • selectable marker genes include drug resistance genes (neomycin resistance gene, DHFR gene, puromycin resistance gene, blasticidin resistance gene, hygromycin resistance gene, cycloheximide resistance gene (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2002-262879)).
  • drug resistance genes neomycin resistance gene, DHFR gene, puromycin resistance gene, blasticidin resistance gene, hygromycin resistance gene, cycloheximide resistance gene (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2002-262879)
  • fluorescent and bioluminescent marker genes such as green fluorescent protein GFP
  • a preferable selectable marker is a drug resistance gene
  • a particularly preferable selectable marker is a cycloheximide resistance gene.
  • the drug resistance performance and luminescence ability of the selectable marker protein can be changed by genetic modification of the selectable marker gene.
  • Cycloheximide (hereinafter also abbreviated as CHX) is a protein synthesis inhibitor, and yeast (Kondo KJ Bacteriol., 177, 24, 7171-7177) is an example of using CHX resistance gene as a selection marker. (1995)), and examples of animal cells (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-262879) are known.
  • a protein expression vector containing the above-described transposon sequence a plasmid vector expressing transposase
  • RNA RNA
  • the calcium phosphate method, electroporation method, liposome method, gene gun method, and lipofection The method etc. can be used.
  • transposase as a protein examples include microinjection and supply to cells by endocytosis. Gene transfer can be carried out, for example, by the method described in New Genetic Engineering Handbook, Masaaki Muramatsu / Masaka Yamamoto / hen, Yodosha, ISBN 97848970637737.
  • host cells include mammalian cells that can be subcultured and can stably express the target protein.
  • host cells include PER. C6 cells, human leukemia cells Namalwa cells, monkey cells COS cells, rat myeloma cells YB2 / 3HL. P2. G11.16 Ag. 20 (also referred to as YB2 / 0), mouse myeloma cell NS0, mouse myeloma cell SP2 / 0-Ag14, Syrian hamster cell BHK, HBT5637 (Japanese Unexamined Patent Publication No. 63-000299) Chinese hamster ovary cell CHO cell ( Journal of Experimental Medicine, 108, 945 (1958); Proc. Natl.
  • the above host cell can be modified so as to be suitable for protein production by modification of chromosomal DNA, introduction of an exogenous gene, or the like, and used for the protein production method of the present invention.
  • the target protein may be any protein as long as it can be expressed by the method of the present invention.
  • Specific examples include human serum proteins, peptide hormones, growth factors, cytokines, blood coagulation factors, fibrinolytic proteins and antibodies, and partial fragments of various proteins.
  • a chimeric antibody for example, a humanized antibody, a monoclonal antibody such as a human antibody, an Fc fusion protein, an albumin binding protein, and a partial fragment thereof can be preferably mentioned.
  • the effector activity of the monoclonal antibody produced by the method of the present invention can be controlled by various methods.
  • fucose that is ⁇ -1,6 linked to N-acetylglucosamine (GlcNAc) present at the reducing end of an N-linked complex sugar chain that binds to the 297th asparagine (Asn) of the Fc region of an antibody also referred to as core fucose
  • For controlling the amount of the antibody WO05 / 035586, WO02 / 31140, WO00 / 61739
  • a method of controlling the amino acid residues in the Fc region of the antibody etc. It has been known.
  • the effector activity can be controlled by any method used for the monoclonal antibody produced by the method of the present invention.
  • effector activity refers to an antibody-dependent activity caused through the Fc region of an antibody.
  • Antibody-dependent cytotoxic activity ADCC activity
  • complement-dependent cytotoxic activity CDC activity
  • macrophage macrophage
  • ADP activity Antibody-dependent phagocytosis
  • effector activity of an antibody can be increased or decreased by controlling the core fucose content of the N-linked complex type sugar chain of the Fc region of the monoclonal antibody produced by the method of the present invention.
  • the antibody As a method for reducing the content of fucose bound to the N-linked complex sugar chain bound to the Fc region of the antibody, the antibody is expressed using CHO cells deficient in the ⁇ 1,6-fucose transferase gene. An antibody to which fucose is not bound can be obtained. Antibodies without fucose binding have high ADCC activity.
  • the antibody is expressed using a host cell into which an ⁇ 1,6-fucose transferase gene has been introduced.
  • an antibody to which fucose is bound can be obtained.
  • An antibody to which fucose is bound has a lower ADCC activity than an antibody to which fucose is not bound.
  • ADCC activity and CDC activity can be increased or decreased by modifying amino acid residues in the Fc region of the antibody. For example, by using the amino acid sequence of the Fc region of an antibody described in US Patent Application Publication No. 2007/0148165, the CDC activity of the antibody can be increased.
  • the antibody can be modified. ADCC activity or CDC activity can be increased or decreased.
  • the “floating mammalian cell” used in the present invention means a cell culture support coated with a culture cell such as a microbead or a tissue culture incubator (also referred to as a tissue culture or an adhesion culture vessel) that is easy to adhere.
  • a culture cell such as a microbead or a tissue culture incubator (also referred to as a tissue culture or an adhesion culture vessel) that is easy to adhere.
  • the cells may survive and proliferate in the state of one cell in the culture solution, or they may survive and proliferate in the state of a cell aggregate in which cells are aggregated. Either state is acceptable.
  • the floating mammalian cells used in the present invention include a culture solution that does not adhere to a cell culture support in a serum-free medium that does not contain fetal calf serum (hereinafter referred to as FCS).
  • FCS fetal calf serum
  • Cells that can float and survive and proliferate are preferred, and mammalian cells that can float and survive and proliferate in a protein-free medium that does not contain protein are more preferred.
  • any incubator may be used as long as it is a flask, a petri dish or the like coated with a coating for adhesion culture.
  • a commercially available tissue culture flask manufactured by Greiner
  • an adhesion culture flask manufactured by Sumitomo Bakelite
  • the suspension mammalian cell used in the present invention may be a cell originally adapted to suspension culture having suspension properties, or a suspension in which adhesive mammalian cells are adapted to suspension culture conditions. Any mammalian cell may be used.
  • mammalian cells having originally floating properties include, for example, PER. C6 cells, rat myeloma cells YB2 / 3HL. P2. G11.16 Ag. 20 (also referred to as YB2 / 0) and CHO-S cells (manufactured by Invitrogen).
  • the floating mammalian cells obtained by acclimatizing adhesive mammalian cells to the floating culture conditions are described in Mol. Biotechnol. 2000, 15 (3), 249-57, and the following method, etc., and cells that show the same growth and viability as before suspension culture acclimation or better than suspension culture acclimation (J. Biotechnol. 2007, 130 (3), 282-90).
  • “Equivalent to suspension culture acclimation” means that the survival rate and growth rate (doubling time) of cells acclimated to suspension culture are substantially the same as those before suspension culture acclimation. To do.
  • the following method may be mentioned as a method for acclimatizing adherent mammalian cells to suspension culture conditions.
  • the serum content of the serum-containing medium is reduced to 1/10, the subculture is repeated at a relatively high cell concentration, and when the mammalian cells can survive and proliferate, the serum content is further reduced, Repeat subculture.
  • this method floating mammalian cells that can survive and grow under non-serum can be produced.
  • floating mammalian cells can be produced by a method of culturing by adding an appropriate nonionic surfactant Pluronic-F68 or the like to the culture solution.
  • Examples of the adherent mammalian cells that become buoyant when acclimated to the buoyant culture conditions include mouse myeloma cells NS0 and CHO cells.
  • the property of the floating mammalian cell is that when the cell is cultured in suspension at 2 ⁇ 10 5 cells / mL, the cell density at the end of the culture after 3 to 4 days is 5 ⁇ 10 5. It is preferably cells / mL or more, more preferably 8 ⁇ 10 5 cells / mL or more, particularly preferably 1 ⁇ 10 6 cells / mL or more, and 1.5 ⁇ 10 6 cells / mL or more. Most preferably.
  • the doubling time of the floating mammalian cell of the present invention is preferably 48 hours or less, more preferably 24 hours or less, particularly preferably 18 hours or less, and most preferably 11 hours or less.
  • suspension medium for example, a commercially available medium such as CD-CHO medium (Invitrogen), EX-CELL 325-PF medium (SAFC Biosciences) and SFM4CHO medium (HyClone) can be used. It can also be obtained by blending and preparing saccharides, amino acids and the like necessary for mammalian cell culture.
  • CD-CHO medium Invitrogen
  • EX-CELL 325-PF medium SAFC Biosciences
  • SFM4CHO medium HyClone
  • Suspension mammalian cells can be cultured using a culture vessel capable of suspension culture under culture conditions capable of suspension culture.
  • a culture vessel for example, a 96-well plate for cell culture (Corning), T-flask (Becton Dickinson), Erlenmeyer (Corning) and the like can be used.
  • static culture can be performed in a 5% CO 2 atmosphere at a culture temperature of 37 ° C.
  • a shaking culture apparatus such as a Wave bioreactor (GE Healthcare Bioscience), which is a culture facility dedicated to suspension culture, can also be used.
  • culturing with a swirl stirrer such as a bioreactor is also possible.
  • Culture in a bioreactor can be performed by the method described in Cytotechnology (2006) 52: 199-207.
  • a cell line other than suspension mammalian cells is used in the present invention, it is a mammalian cell line adapted to suspension culture by the method as described above and can be used for the protein production method of the present invention. Any cell line can be used.
  • Purification of the target protein produced in suspension mammalian cells is performed by separating the target protein and impurities other than the target protein from the culture solution or cell disruption solution containing the target protein.
  • the separation method can be carried out, for example, using centrifugation, dialysis, ammonium sulfate precipitation, column chromatography, a filter, or the like, depending on the difference in the physicochemical properties of the target protein and impurities and the difference in binding strength to the column alone.
  • the method of purifying the target protein can be carried out, for example, by the method described in Protein Experiment Notes (above) extraction / separation and expression of recombinant protein (Yodosha, Masato Okada / Kaoru Miyazaki / hen, ISBN 978489069180).
  • a plasmid vector for protein expression contains a gene expression cassette for mammalian cells containing any human antibody gene and drug resistance marker gene inserted between a pair of Tol2 transposon sequences. The containing plasmid was used.
  • the DNA of the gene used was obtained by artificially chemically synthesizing based on a known base sequence, or preparing primers at both end sequences and performing PCR using an appropriate DNA source as a template. A restriction enzyme cleavage site was added to the end of the primer for later gene manipulation.
  • the transposon sequence is the first to 200th base sequence (Tol2-L sequence) (sequence) of the non-autonomous Tol2 transposon base sequence (SEQ ID NO: 1) disclosed in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2003-235575. No. 2) and the nucleotide sequence of the 2285th to 2788th nucleotide sequence (Tol2-R sequence) (SEQ ID NO: 3) were used.
  • Synthetic DNA fragments each containing a pair of transposon sequences were prepared by the following method (manufactured by Takara Bio Inc.). A DNA fragment containing a base sequence in which the recognition sequence of the restriction enzyme NruI was linked to both the 5 'end and 3' end of the Tol2-R sequence was prepared. In addition, a DNA fragment containing a base sequence in which the recognition sequence of the restriction enzyme FseI was linked to the 5 'end of the Tol2-L sequence and the recognition sequence of the restriction enzyme AscI was linked to the 3' end was prepared.
  • an expression vector N5LG1_M2_Z3 vector (International Publication No. 06/061723) containing a nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of the anti-human influenza M2 antibody Z3G1 is used as the prepared DNA fragment containing the Tol2-R sequence and Tol2-L sequence. ).
  • the antibody gene expression cassette includes an anti-human influenza M2 antibody Z3G1 (ATCC Deposition No. PTA-5968; deposited March 13, 2004, American Type Collection, Manassas, VA, USA) under the control of a CMV enhancer / promoter.
  • N5LG1_M2_Z3 vector International Publication No. 06/067233 into which a nucleotide sequence encoding SEQ ID NO: 8 (SEQ ID NO: 8) and a nucleotide sequence encoding SEQ ID NO: 10 (SEQ ID NO: 10) are inserted. .
  • a DNA fragment containing the Tol2-R sequence was inserted into the restriction enzyme NruI site present at the 5 'end of the gene fragment containing the antibody gene expression cassette and the resistance marker gene expression cassette of the M5LG1_M2_Z3 vector.
  • a DNA fragment containing the Tol2-L sequence was inserted into the restriction enzyme FseI and AscI sites present on the 3 'end side.
  • a cycloheximide resistance gene expression cassette in which a nucleotide sequence (SEQ ID NO: 5) encoding a resistance gene for cycloheximide (a gene in which proline at position 54 of human ribosomal protein L36a is mutated to glutamine) is connected under the control of a CMV enhancer / promoter. Then, it was inserted into the FseI recognition site of the N5LG1_M2_Z3 vector linked with the Tol2 transposon sequence to construct an anti-human influenza M2 antibody transposon expression vector (FIG. 1).
  • a vector containing no transposon sequence was named an anti-human influenza M2 antibody expression vector and used as a control vector (FIG. 2).
  • Example 2 Production of Transposase Expression Vector Transposase was expressed using an expression vector independent of the target antibody expression vector. That is, a gene encoding medaka-derived Tol2 transposase (SEQ ID NO: 4) was inserted downstream of the CAGGS promoter of the pCAGGS vector (Gene 108, 193-200, 1991) and used as an expression vector (FIG. 3).
  • SEQ ID NO: 4 a gene encoding medaka-derived Tol2 transposase (SEQ ID NO: 4) was inserted downstream of the CAGGS promoter of the pCAGGS vector (Gene 108, 193-200, 1991) and used as an expression vector (FIG. 3).
  • Example 3 Preparation of transformants using mammalian cells (1) Preparation of suspended CHO cells Adhesive CHO cells cultured in ⁇ -MEM medium (Invitrogen) supplemented with 10% serum (FCS) are detached by trypsin treatment. The cells were collected and cultured with shaking at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator using fresh ⁇ -MEM medium supplemented with 10% FCS. Several days later, after confirming that these cells were proliferating, they were seeded at a concentration of 2 ⁇ 10 5 cells / mL in ⁇ -MEM medium supplemented with 5% FCS, and cultured with shaking.
  • ⁇ -MEM medium Invitrogen
  • FCS 10% serum
  • transposon vector anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector
  • transposon vector anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector
  • pCAGGS-T2TP Tol2 transposase expression vector pCAGGS-T2TP
  • the expression vector was introduced into CHO-K1 cells (American Type Culture Cat. No. CCL-61) or HEK293 cells (Invitrogen FreeStyle 293F cells) acclimated to suspension culture to compare the frequency with which a clone resistant to cycloheximide was obtained. did.
  • Each cell (4 ⁇ 10 6 cells) was suspended in 400 ⁇ L of PBS, and anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector (10 ⁇ g) and Tol2 transposase expression vector (25 ⁇ g) were co-introduced as circular DNA by electroporation. .
  • the Tol2 transposase expression vector was introduced as a circular DNA for the purpose of preventing integration into the host chromosome in order to transiently express the Tol2 transposase.
  • an anti-human influenza M2 antibody expression vector (10 ⁇ g) was linearized with a restriction enzyme in accordance with a standard electroporation gene transfer method and then introduced into each cell.
  • an electroporator (Gene Pulser XceII system (manufactured by Bio-Rad)) was used, and a cuvette (manufactured by Bio-Rad) with a gap width of 4 mm was used under conditions of a voltage of 300 V, a capacitance of 500 ⁇ F, and room temperature. I went there.
  • each cell is seeded in 3 96-well plates, CHO cells use SAFC Biosciences EX-CELL 325-PF medium, HEK293 cells use freeStyle-293 medium (Invitrogen). Then, the cells were cultured for 3 days in a CO 2 incubator.
  • a cycloheximide-resistant transformant was not obtained by introducing either an anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector or an anti-human influenza M2 antibody expression vector into HEK293 cells. It was.
  • Anti-human influenza M2 antibody expression transposon vector (10 ⁇ g) and Tol2 transposase expression vector (25 ⁇ g) were electroporated in suspension CHO-K1 cells and adherent CHO-K1 cells, respectively. Thereafter, floating CHO-K1 cells and adherent CHO-K1 cells were seeded in three 96-well plates each.
  • the suspension CHO-K1 cells used suspension medium (SAFC Biosciences EX-CELL 325-PF), and the adherent CHO-K1 cells used ⁇ -MEM medium (Invitrogen) supplemented with 10% serum.
  • SAFC Biosciences EX-CELL 325-PF suspension medium
  • adherent CHO-K1 cells used ⁇ -MEM medium (Invitrogen) supplemented with 10% serum.
  • Each cell was cultured in a CO 2 incubator for 3 days, and cultured for 3 weeks in the presence of 3 ⁇ g / mL cycloheximide from the medium change 4 days after electroporation. At this time, the medium was changed every week.
  • Adherent CHO-K1 cells reached confluence in a 6-well plate (2 ⁇ 10 6 cells), and the medium was replaced. After static culture for 3 days, the amount of antibody protein was measured by HPLC using the culture supernatant. .
  • the antibody concentration in the culture supernatant is measured by FEMS Yeast Res. , 7, (2007), 1307-1316. The results are shown in FIGS. 4A and 4B.
  • FIG. 4A in CHO-K1 cells adapted to suspension culture, a large number of cells exhibiting an extremely high antibody expression level were obtained.
  • FIG. 4B in the adherent CHO-K1 cells, only cells showing the expression level below the HPLC detection limit (5 ⁇ g / mL) were obtained.
  • the target protein in order to express a target protein using a transposon vector, the target protein can be highly expressed when floating mammalian cells are used.
  • the method of the present invention efficiently produces production cells that highly express foreign genes using suspension mammalian cells adapted to suspension culture, and produces the target protein. It has been found that it can be used as a novel method.
  • Example 4 Production of anti-human influenza M2 antibody-expressing Tol1 transposon vector
  • the plasmid vector for protein expression contains an arbitrary human antibody gene and a drug resistance marker gene inserted between a pair of Tol1 transposon sequences.
  • a plasmid containing a gene expression cassette for mammalian cells was used.
  • the DNA of the gene used was obtained by artificially chemically synthesizing based on the known sequence information, or by preparing primers for both end sequences and performing PCR using an appropriate DNA source as a template. A restriction enzyme cleavage site was added to the end of the primer for later gene manipulation.
  • the transposon sequence is the first to 200th nucleotide sequence (Tol1-L sequence) of the non-autonomous Tol1 transposon nucleotide sequence (International Publication No. 2008/072540) represented by SEQ ID NO: 13 in the Sequence Listing (SEQ ID NO: 13). No. 14) and the 1351st to 1855th base sequence (Tol1-R sequence) (SEQ ID NO: 15) were used.
  • Synthetic DNA fragments each containing a pair of transposon sequences were prepared by the following method.
  • a DNA fragment containing a base sequence in which the recognition sequence of the restriction enzyme NruI was linked to both the 5 'end and 3' end of the Tol1-R sequence was prepared.
  • a DNA fragment containing a base sequence in which a restriction enzyme FseI recognition sequence was linked to the 5 'end of the Tol1-L sequence and a restriction enzyme AscI recognition sequence was linked to the 3' end was prepared.
  • the prepared DNA fragment containing the Tol1-R sequence and Tol1-L sequence was inserted into the N5LG1_M2_Z3 vector. Restriction that a DNA fragment containing the Tol1-R sequence is present at the 3 ′ end side of the restriction enzyme NruI site present at the 5 ′ end side of the gene fragment containing the antibody gene expression cassette and the resistance marker gene expression cassette of the N5LG1_M2_Z3 vector A DNA fragment containing the Tol1-L sequence was inserted into the enzyme FseI and AscI sites.
  • a cycloheximide resistance gene expression cassette in which a resistance gene for cycloheximide (a gene in which proline at position 54 of human ribosomal protein L36a was mutated to glutamine) (SEQ ID NO: 7) was connected under the control of a CMV enhancer / promoter, and the Tol1 transposon sequence was An anti-human influenza M2 antibody Tol1 transposon expression vector was constructed by inserting it into the FseI recognition site of the linked N5LG1_M2_Z3 vector (FIG. 5).
  • Example 5 Preparation of Tol1 transposase expression vector Transposase was expressed using an expression vector independent of the expression vector of the target antibody. That is, a Tol1 transposase gene expression cassette in which a DNA fragment encoding a medaka-derived Tol1 transposase consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 16 in the sequence listing is connected under the control of a CMV enhancer / promoter, pBluescript II SK (+) It was inserted into (Stratagene) and used as the expression vector pTol1ase (FIG. 6).
  • a Tol1 transposase gene expression cassette in which a DNA fragment encoding a medaka-derived Tol1 transposase consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 16 in the sequence listing is connected under the control of a CMV enhancer / promoter, pBluescript II SK (+) It was inserted into (Stratagene)
  • Example 6 (1) Preparation of antibody-producing CHO cells As expression vectors, the anti-human influenza M2 antibody expression Tol1 transposon vector (hereinafter abbreviated as Tol1 transposon vector) and Tol1 transposase expression vector pTol1ase of Example 4 and Example 5 are used. It was. The cells used were CHO-K1 cells adapted to suspension culture in the same manner as in Example 3 (1).
  • the expression vector was introduced into CHO-K1 cells adapted to suspension culture, and the frequency of obtaining clones resistant to cycloheximide was measured.
  • CHO-K1 cells (4 ⁇ 10 6 cells) adapted to suspension culture were suspended in 400 ⁇ L of PBS, and anti-human influenza M2 antibody expression Tol1 transposon vector (10 ⁇ g) and Tol1 transposase expression vector (50 ⁇ g) were electroporated. Were co-introduced as circular DNA.
  • the Tol1 transposase expression vector was introduced as circular DNA for the purpose of preventing integration into the host chromosome in order to transiently express the Tol1 transposase.
  • an electroporator (Gene Pulser XceII system (manufactured by Bio-Rad)) was used, and a cuvette (manufactured by Bio-Rad) with a gap width of 4 mm was obtained under the conditions of a voltage of 300 V, a capacitance of 500 ⁇ F, and room temperature. Done using.
  • each cell was seeded in two 96-well plates, and CHO cells were cultured in a CO 2 incubator using EX-CELL 325-PF medium (SAFC Biosciences) for 3 days. .
  • EX-CELL 325-PF medium SAFC Biosciences
  • 3 ⁇ g / mL cycloheximide was added, and the medium was cultured in the presence of cycloheximide, and cultured for 3 weeks while changing the medium every week.
  • Example 3 As shown in Table 3, when the anti-human influenza M2 antibody-expressing Tol1 transposon vector was introduced into the floating CHO-K1 cells, the anti-human influenza M2 antibody-expressing Tol2 transposon vector was introduced, as in Example 3, which was resistant to cycloheximide. The transformant was obtained at a high frequency.
  • the cells were seeded in two 96-well plates, and cultured in a CO 2 incubator for 3 days using the suspension cell medium EX-CELL 325-PF. From the medium change 4 days after electroporation, the cells were cultured for 3 weeks in the presence of 3 ⁇ g / mL cycloheximide. At this time, the medium was changed every week.
  • the antibody concentration in the culture supernatant is measured by FEMS Yeast Res. , 7, (2007), 1307-1316. The results are shown in FIG.
  • the target protein can be efficiently produced using floating mammalian cells.
  • the cell of the present invention can be used as a protein-producing cell for producing a recombinant protein.

Abstract

　本発明は、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する哺乳動物細胞を得て、かつ該哺乳動物細胞を浮遊培養して該目的タンパク質を生産する方法、および目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞に関する。

Description

タンパク質の生産方法
　本発明は、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する哺乳動物細胞を得て、かつ該哺乳動物細胞を浮遊培養して該目的タンパク質を生産する方法、および目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞に関する。
　遺伝子組換え技術による外来タンパク質の生産は、医薬品および食品業界など様々な産業に利用されている。多くの場合、組換えタンパク質の生産は、目的タンパク質をコードする塩基配列を含む発現ベクターを、大腸菌、酵母、昆虫細胞、植物細胞および動物細胞などの宿主に導入し、該発現ベクターが染色体に組み込まれた形質転換株を選択し、さらに該細胞株を適切な培養条件で培養して目的タンパク質を発現させることにより行われている。
　しかし、外来タンパク質を効率よく生産できる宿主を開発するためには、目的とするタンパク質ごとに生産性の良い宿主細胞を選定することが必要であり、個々の宿主における外来タンパク質生産技術においてさらなる技術革新が望まれている。
　大腸菌などの細菌および酵母の系では、動物細胞とは異なり糖鎖修飾など翻訳後修飾が困難であることが多く、活性を有するタンパク質を生産する上で問題となる。
　昆虫細胞の系は、生産されたタンパク質がリン酸化、糖鎖の付加など翻訳後修飾を受け、本来の生理活性を保持したまま発現させることができるというメリットを有する。しかし、分泌タンパク質の糖鎖構造は哺乳類由来の細胞のものとは異なることから、医薬品用途とするには抗原性などが問題となる。
　また、昆虫細胞の系は外来遺伝子の導入に組換えウイルスを用いることから、安全性の点から、その不活性化や封じ込めが必要であるという課題がある。
　動物細胞の系では、ヒトをはじめとする高等動物由来のタンパク質に対し、リン酸化、糖鎖付加およびフォールディングなどの翻訳後修飾を、より生体でつくられるものと同じように施すことが可能である。この正確な翻訳後修飾は、タンパク質の本来有する生理活性を組換えタンパク質で再現するために必要なものであり、そのような生理活性が必要とされる医薬品などには、哺乳動物細胞を宿主としたタンパク質生産系がよく用いられている。
　しかしながら、動物細胞を宿主としたタンパク質発現系の生産性は一般に低く、導入遺伝子の安定性にも問題がある場合が多い。哺乳動物培養細胞を宿主としたタンパク質の生産性向上は、治療用医薬品や診断薬などの製造において非常に重要であるばかりでなく、それらの開発研究にも多いに寄与している。そのため、哺乳動物培養細胞、特にチャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞）を宿主として、容易に高生産株の獲得を可能にする遺伝子発現系の開発は急務とされている。
　トランスポゾンは、染色体のひとつの遺伝子座から別の遺伝子座へ移動しうる転位性遺伝要素である。トランスポゾンは、分子生物学や遺伝学の研究において強力なツールであり、昆虫や線虫（例えば、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ　ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒまたはＣａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓ　ｅｌｅｇａｎｓ）および植物において、変異導入、遺伝子トラッピングおよびトランスジェニック個体の作製などの目的として利用されている。しかし、このような技術は、哺乳動物細胞を含む脊椎動物では開発が遅れていた。
　ところが近年、脊椎動物においても活性のあるトランスポゾンが報告され、そのいくつかがマウスやヒトなどの哺乳動物細胞でも活性をもつことが確認された。代表的なものに、メダカからクローニングされたトランスポゾンＴｏｌ１（特許文献１）、Ｔｏｌ２（非特許文献１）、サケ科魚類ゲノムに存在していた非自律性のトランスポゾンから再構築されたＳｌｅｅｐｉｎｇ　Ｂｅａｕｔｙ（非特許文献２）、カエル由来の人工トランスポゾンＦｒｏｇ　ｐｒｉｎｃｅ（非特許文献３）および昆虫由来のトランスポゾンｐｉｇｇｙＢａｃ（非特許文献４）が挙げられる。
　これらのＤＮＡトランスポゾンは、哺乳動物細胞のゲノムに新たな表現系を持ち込むための遺伝子導入ツールとして、変異導入、遺伝子トラッピング、トランスジェニック個体の作製および薬剤耐性タンパク質を発現させることなどに利用されるようになった（非特許文献５～１２）。
　昆虫においては、鱗翅目昆虫由来のトランスポゾンｐｉｇｇｙＢａｃを用いて、外来遺伝子をカイコ染色体へ導入し、該外来遺伝子がコードするタンパクを発現させる方法が研究され、その技術を用いたタンパク質生産方法が開示されている（特許文献２）。
　しかし、発現させた目的タンパクの発現量が十分ではなく、かつ、カイコ全身に生産されるため、大量の夾雑タンパク質が存在する体液から発現させた外来タンパク質を高純度な形で回収するためには、高度な精製技術を必要とすることから、経済的に問題があった。
　また、メダカ由来Ｔｏｌ２トランスポゾンを用いて、哺乳動物細胞にＧ４１８耐性に関わるタンパク質を発現させた例が知られている（非特許文献１２）。
国際公開第２００８／０７２５４０号 日本国特表２００１－５３２１８８号公報
Ｎａｔｕｒｅ　３８３，　３０（１９９６） Ｃｅｌｌ　９１，　５０１－５１０（１９９７） Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ，３１，６８７３－６８８１（２００３） Ｉｎｓｅｃｔ　Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．５，１４１－１５１（１９９６） Ｇｅｎｅｔｉｃｓ．１６６，８９５－８９９（２００４） ＰＬｏＳ　Ｇｅｎｅｔ，２，ｅ１６９（２００６） Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ　９５，１０７６９－１０７７３（１９９８） Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ　９８：６７５９－６７６４（２００１） Ｎａｔｕｒｅ　４３６，２２１－２２６（２００５） Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ,３１，６８７３－６８８１（２００３） Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ.３５，ｅ８７（２００７） Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ，１０３，１５００８－１５０１３（２００６）
　目的タンパク質を生産、解析するためには、哺乳動物由来の培養細胞を用いて目的タンパク質を安定的に高発現する細胞株を選択しなければならないが、目的タンパク質を生産する細胞の作製および培養には、多大な労力と時間を要する。
　また、これまでに、トランスポゾン配列を用いて哺乳動物細胞で目的タンパク質の発現を行うことは知られていたが、トランスポゾン配列を用いることで、タンパク質の生産系として利用できるような、目的タンパク質を高発現する細胞を作製すること、トランスポゾン配列を用いた目的タンパク質を高生産する哺乳動物細胞の作製方法および該細胞を用いたタンパク質の生産方法については何ら知られてない。
　上記のように哺乳動物培養細胞を用いて目的タンパク質を高発現するタンパク質生産系を効率的かつ短期間に作製し、目的のタンパク質を高生産することが従来求められていた。従って、本発明は、効率的に作製し得る目的タンパク質を高発現する細胞および該細胞を用いて目的タンパク質を生産する方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上述した課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対（二つ）のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込むことにより、該目的タンパク質を高発現する哺乳動物細胞を効率的に作製できることを見出した。さらに、当該細胞を用いることにより、目的タンパク質を高効率で生産できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は以下のとおりである。
１．目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する哺乳動物細胞を得て、かつ該哺乳動物細胞を浮遊培養して該目的タンパク質を生産する方法。
２．以下の工程（Ａ）～（Ｃ）を含むことを特徴とする、目的タンパク質の生産方法。
(Ａ)以下の発現ベクター（ａ）および（ｂ）を浮遊性の哺乳動物細胞に同時に導入する工程
　(ａ)目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含む発現ベクター
　(ｂ)トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼースをコードするＤＮＡを含む発現ベクター
（Ｂ）工程（Ａ）で導入した発現ベクター（ｂ）によりトランスポゼースを一過性発現させて、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された前記遺伝子断片を前記哺乳動物細胞の染色体に組み込み、目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を得る工程
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を浮遊培養して、目的タンパク質を生産させる工程
３．目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を得る方法。
４．浮遊性の哺乳動物細胞が、無血清培養で生存および増殖可能な細胞である、前項１～３のいずれか１項に記載の方法。
５．浮遊性の哺乳動物細胞が、ＣＨＯ細胞を浮遊培養に馴化した浮遊性のＣＨＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０（またはＹＢ２／０ともいう）および浮遊培養に馴化した浮遊性のマウスミエローマ細胞ＮＳ０から選ばれる少なくとも１である前項１～４のいずれか１項に記載の方法。
６．ＣＨＯ細胞がＣＨＯ－Ｋ１、ＣＨＯ－Ｋ１ＳＶ、ＤＵＫＸＢ１１、ＣＨＯ／ＤＧ４４、Ｐｒｏ－３およびＣＨＯ－Ｓから選ばれる少なくとも１である前項５に記載の方法。
７．選択マーカー遺伝子がシクロヘキシミド耐性遺伝子である前項１～６のいずれか１項に記載の方法。
８．シクロヘキシミド耐性遺伝子がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの変異体をコードする遺伝子である前項７に記載の方法。
９．変異体がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンが他のアミノ酸に置換された変異体である前項８に記載の方法。
１０．他のアミノ酸がグルタミンである前項９に記載の方法。
１１．一対のトランスポゾン配列が哺乳動物細胞で機能する一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列である前項１～１０のいずれか１項に記載の方法。
１２．一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列が、一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である前項１１に記載の方法。
１３．一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される塩基配列を含む塩基配列および配列番号３で表される塩基配列である前項１２に記載の方法。
１４．一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である前項１２に記載の方法。
１５．目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターが導入され、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、且つ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞。
１６．目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含む発現ベクター（ａ）、および該トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼース（転移酵素）をコードするＤＮＡを含む発現ベクター（ｂ）を同時に導入されることで、該一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、かつ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞。
１７．無血清培養で生存および増殖可能な浮遊性の哺乳動物細胞である、前項１５または１６に記載の細胞。
１８．ＣＨＯ細胞を浮遊培養に馴化した浮遊性のＣＨＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０(またはＹＢ２／０ともいう）および浮遊培養に馴化した浮遊性のマウスミエローマ細胞ＮＳ０から選ばれる少なくとも１の浮遊性の哺乳動物細胞である前項１５～１７のいずれか１項に記載の細胞。
１９．ＣＨＯ細胞がＣＨＯ－Ｋ１、ＣＨＯ－Ｋ１ＳＶ、ＤＵＫＸＢ１１、ＣＨＯ／ＤＧ４４、Ｐｒｏ－３およびＣＨＯ－Ｓから選ばれる少なくとも１である前項１８に記載の細胞。
２０．選択マーカー遺伝子がシクロヘキシミド耐性遺伝子である前項１５～１９のいずれか１項に記載の細胞。
２１．シクロヘキシミド耐性遺伝子がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの変異体をコードする遺伝子である前項２０に記載の細胞。
２２．変異体がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンが他のアミノ酸に置換された変異体である前項２１に記載の細胞。
２３．他のアミノ酸がグルタミンである前項２２に記載の細胞。
２４．一対のトランスポゾン配列が哺乳動物細胞で機能する一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列である前項１５～２３のいずれか１項に記載の細胞。
２５．一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列が、一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である前項２４に記載の細胞。
２６．一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される塩基配列および配列番号３で表される塩基配列である前項２５に記載の細胞。
２７．一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である前項２５に記載の細胞。
２８．目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端に一対のトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクター。
２９．一対のトランスポゾン配列が一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である前項２８に記載のタンパク質発現ベクター。
３０．一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される配列および配列番号３で表される塩基配列である前項２９に記載のタンパク質発現ベクター。
３１．一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である前項２９に記載のタンパク質発現ベクター。
　本発明のタンパク質の生産方法によれば、哺乳動物細胞を用いて目的タンパク質を効率よく生産することができる。また、本発明の細胞は、遺伝子組み換えタンパク質を高効率で生産するためのタンパク質生産細胞として使用することができる。
抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクターの模式図を示す。Ｔｏｌ２－Ｌはｌｅｆｔ　ｅｎｄ　Ｔｏｌ２トランスポゾン（配列番号２）を、Ｔｏｌ２－Ｒはｒｉｇｈｔ　ｅｎｄ　Ｔｏｌ２トランスポゾン（配列番号３）を、ＣＭＶはＣＭＶプロモーターを、ｐｏｌｙ　Ａはポリアデニレーションサイトを、Ｈｃはヒト抗体Ｈ鎖ｃＤＮＡを、Ｌｃはヒト抗体Ｌ鎖ｃＤＮＡを、ＣＨＸ－ｒはシクロヘキシミド耐性遺伝子を示す。 抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターの模式図を示す。ＣＭＶはＣＭＶプロモーターを、ｐｏｌｙ　Ａはポリアデニレーションサイトを、Ｈｃはヒト抗体Ｈ鎖ｃＤＮＡを、Ｌｃはヒト抗体Ｌ鎖ｃＤＮＡを、ＣＨＸ－ｒはシクロヘキシミド耐性遺伝子を示す。 Ｔｏｌ２トランスポゼース発現ベクターの模式図を示す。ＣＡＧＧＳはＣＡＧＧＳプロモーターを、ｐｏｌｙ　Ａはポリアデニレーションサイトを、ＴＰａｓｅ　ｃＤＮＡはＴｏｌ２トランスポゼースｃＤＮＡを示す。 抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ２トランスポゾンベクターを用いた場合の、浮遊性のＣＨＯ－Ｋ１細胞における抗ヒトインフルエンザＭ２抗体の発現量を検討した結果を示す。縦軸は抗体産生量（μｇ／ｍＬ）、横軸は浮遊性のＣＨＯ－Ｋ１細胞の遺伝子導入クローン番号を示す。 抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ２トランスポゾンベクターを用いた場合の、接着性のＣＨＯ－Ｋ１細胞における抗ヒトインフルエンザＭ２抗体の発現量を検討した結果を示す。縦軸は抗体産生量（μｇ／ｍＬ）、横軸は接着性のＣＨＯ－Ｋ１細胞の遺伝子導入クローン番号を示す。 抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクターの模式図を示す。Ｔｏｌ１－Ｌはｌｅｆｔ　ｅｎｄ　Ｔｏｌ１トランスポゾン（配列番号１４）を、Ｔｏｌ１－Ｒはｒｉｇｈｔ　ｅｎｄ　Ｔｏｌ１トランスポゾン（配列番号１５）を、ＣＭＶはＣＭＶプロモーターを、ｐｏｌｙ　Ａはポリアデニレーションサイトを、Ｈｃはヒト抗体Ｈ鎖ｃＤＮＡを、Ｌｃはヒト抗体Ｌ鎖ｃＤＮＡを、ＣＨＸ－ｒはシクロヘキシミド耐性遺伝子を示す。 Ｔｏｌ１トランスポゼース発現ベクターの模式図を示す。ＣＡＧＧＳはＣＡＧＧＳプロモーターを、ｐｏｌｙ　Ａはポリアデニレーションサイトを、ＴＰａｓｅ　ｃＤＮＡはＴｏｌ１トランスポゼースｃＤＮＡを示す。 抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクターを用いた場合の、浮遊性のＣＨＯ－Ｋ１細胞における抗ヒトインフルエンザＭ２抗体の発現量を検討した結果を示す。縦軸は抗体産生量（μｇ／ｍＬ）、横軸は浮遊性のＣＨＯ細胞の遺伝子導入クローン番号を示す。
　本発明は、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対（二つ）のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する哺乳動物細胞を得て、かつ該哺乳動物細胞を浮遊培養して該目的タンパク質を生産する方法に関する。
　本発明の目的タンパク質を生産する方法としては、以下の工程（Ａ）～（Ｃ）を含む、目的タンパク質の生産方法を挙げることができる。
(Ａ)以下の発現ベクター（ａ）および（ｂ）を浮遊性の哺乳動物細胞に同時に導入する工程
　(ａ)目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクター
　(ｂ)トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼースをコードするＤＮＡを含むベクター
（Ｂ）工程（Ａ）で導入した発現ベクター（ｂ）によりトランスポゼースを一過性発現させて、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された前記遺伝子断片を前記哺乳動物細胞の染色体に組込み、目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を得る工程
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を浮遊培養して、目的タンパク質を生産させる工程
　また、本発明は、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターが導入され、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、かつ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞に関する。
　また、本発明の目的タンパク質を生産する細胞としては、目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクター（ａ）、および該トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼース（転移酵素）をコードするＤＮＡを含むベクター（ｂ）を同時に導入されることで、該一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、かつ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞が挙げられる。
　本明細書において、「トランスポゾン」とは、転位性遺伝要素であり、一定の構造を保ったまま染色体上を、または染色体から別の染色体へ転位（ｔｒａｎｓｐｏｓｉｔｉｏｎ）する遺伝子単位を意味する。
　トランスポゾンは、遺伝子単位の両端に逆向きまたは同じ向きの繰り返しのトランスポゾン配列［Ｉｎｖｅｒｔｅｄ　Ｒｅｐｅａｔ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅ（ＩＲ配列）またはＴｅｒｍｉｎａｌ　Ｉｎｖｅｒｔｅｄ　Ｒｅｐｅａｔ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅ（ＴＩＲ配列）ともいう］および、該トランスポゾン配列を認識して、該トランスポゾン配列の間に存在する遺伝子を転移させるトランスポゼースをコードする塩基配列を含む。
　トランスポゾンから翻訳されたトランスポゼースは、トランスポゾンの両端のトランスポゾン配列を認識し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入されたＤＮＡ断片を切り出し、転移先へ挿入することで、ＤＮＡの転移を行うことができる。
　本明細書において「トランスポゾン配列」とは、トランスポゼースによって認識されるトランスポゾンの塩基配列を意味し、ＩＲ配列またはＴＩＲ配列と同義である。該塩基配列を含むＤＮＡは、トランスポゼースの作用により転移（ゲノム中のほかの位置に挿入）可能であれば、不完全な繰り返し部分を含んでいてもよく、トランスポゼースに特異的なトランスポゾン配列が存在する。
　本発明で用いるトランスポゾン配列は、ＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列が好ましく、トランスポゼースにより認識される、哺乳動物細胞内で転位可能な天然または人工の一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列がより好ましい。
　ＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列としては、例えば、メダカ由来のＴｏｌ１トランスポゾンおよびＴｏｌ２トランスポゾン、サケ科魚類ゲノムに存在していた非自律性のトランスポゾンから再構築されたＳｌｅｅｐｉｎｇ　Ｂｅａｕｔｙ、カエル由来の人工トランスポゾンＦｒｏｇ　Ｐｒｉｎｃｅ並びに昆虫由来のトランスポゾンＰｉｇｇｙＢａｃ由来の塩基配列が挙げられる。
　これらの中でも、配列表の配列番号６で表される塩基配列からなるメダカ由来Ｔｏｌ２トランスポゾンおよび配列表の配列番号１３で表される塩基配列からなるメダカ由来Ｔｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列が好ましい。
　一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列としては、配列表の配列番号６で表されるＴｏｌ２トランスポゾンの塩基配列の１番目から２２２９番目の塩基配列および４１４８番目から４６８２番目の塩基配列が挙げられる。
　一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列としては、より好ましくは、配列表の配列番号１で表されるＴｏｌ２トランスポゾンの塩基配列における、１番目から２００番目の塩基配列（配列番号２）（以下、「Ｔｏｌ２－Ｌ配列」と記載する）と、２２８５番目から２７８８番目の塩基配列（配列番号３）（以下、「Ｔｏｌ２－Ｒ配列」と記載する）が挙げられる。
　一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来のトランスポゾン配列としては、配列表の配列番号１３で表されるＴｏｌ１トランスポゾンの塩基配列の１番目から１５７番目の塩基配列を含む塩基配列および１７４８番目から１８５５番目の塩基配列が挙げられる。
　一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来のトランスポゾン配列としては、より好ましくは、配列表の配列番号１３で表されるＴｏｌ１トランスポゾンの塩基配列における、１番目から２００番目の塩基配列（配列番号１４）（以下、「Ｔｏｌ１－Ｌ配列」と記載する）と、１３５１番目から１８５５番目の塩基配列（配列番号１５）の（以下、「Ｔｏｌ１－Ｒ配列」と記載する）が挙げられる。
　本発明に用いるトランスポゾン配列には、上記のトランスポゾン由来のトランスポゾン配列の部分配列を用いること、塩基配列の長さを調節すること、および塩基配列の付加、欠失または置換による改変を行うことにより、転移反応が制御されたトランスポゾン配列も含まれる。
　トランスポゾンの転移反応の制御は、トランスポゼースによるトランスポゾン配列の認識を促進または抑制することによって、転移反応を促進または抑制することができる。
　本明細書において「トランスポゼース」とは、トランスポゾン配列を有する塩基配列を認識して、該塩基配列の間に存在するＤＮＡを染色体上、または染色体から別の染色体へ転位させる酵素を意味する。
　トランスポゼースとしては、例えば、メダカ由来のＴｏｌ１およびＴｏｌ２、サケ科魚類ゲノムに存在していた非自律性のトランスポゾンから再構築されたＳｌｅｅｐｉｎｇ　Ｂｅａｕｔｙ、カエル由来の人工トランスポゾンＦｒｏｇ　Ｐｒｉｎｃｅ、昆虫由来のトランスポゾンＰｉｇｇｙＢａｃ由来の酵素を用いることができる。
　トランスポゼースは、天然型の酵素を用いてもいいし、トランスポゼースと同様の転位活性を保持していれば、その一部のアミノ酸が置換、欠失、挿入、および／または付加されていてもよい。トランスポゼースの酵素活性を制御することで、トランスポゾン配列の間に存在するＤＮＡの転移反応を制御することができる。
　トランスポゼースと同様の転移活性を保持するかを解析するには、日本国特開２００３－２３５５７５号公報により開示されている２－コンポーネント解析システムにより測定することができる。
　具体的には、別々の、Ｔｏｌ２トランスポゼースを欠損したＴｏｌ２トランスポゾン（Ｔｏｌ２由来非自律性トランスポゾン）を含むプラスミドとＴｏｌ２トランスポゼースを含むプラスミドを用いて、トランスポゼースの作用により非自律性Ｔｏｌ２エレメントが哺乳動物細胞の染色体内に転移、挿入し得るかを解析することができる。
　本明細書において「非自律性トランスポゾン」とは、トランスポゾン内に存在するトランスポゼースを欠損し、自律的には転移し得ないトランスポゾンをいう。非自律性トランスポゾンは、トランスポゼースのタンパク質、トランスポゼースのタンパク質をコードするｍＲＮＡまたはトランスポゼースのタンパク質をコードするＤＮＡを細胞内に同時に存在させることで、非自律性トランスポゾンのトランスポゾン配列の間に挿入されたＤＮＡを、宿主細胞の染色体内に転移させることができる。
　トランスポゼース遺伝子とは、トランスポゼースをコードする遺伝子を意味する。哺乳動物細胞での発現効率を向上させるために、該遺伝子の翻訳開始コドンＡＴＧの上流に、ｋｏｚａｋのコンセンサス配列（Ｋｏｚａｋ，　Ｍ．Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄｓ　Ｒｅｓ．,１２，８５７－８７２（１９８４））や、リボソーム結合配列であるシャイン・ダルガルノ（Ｓｈｉｎｅ－Ｄａｌｇａｒｎｏ）配列と開始コドンとの間を適当な距離（例えば６～１８塩基）に調節する配列が連結されてもよい。
　本発明の方法において、発現ベクター中の目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片を宿主細胞の染色体に組み込むためには、目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含む発現ベクターを宿主細胞に導入し、該細胞内に導入された発現ベクターに含まれるトランスポゾン配列に対してトランスポゼースを作用させる。
　宿主細胞内に導入された発現ベクターに含まれるトランスポゾン配列に対してトランスポゼースを作用させるためには、トランスポゼースを該細胞内に注入してもよいし、トランスポゼースをコードするＤＮＡを含む発現ベクターを、目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む発現ベクターと共に宿主細胞に導入してもよい。また、トランスポゼース遺伝子をコードするＲＮＡを宿主細胞内に導入して、トランスポゼースを該細胞内で発現させても良い。
　発現ベクターとしては特に限定はなく、トランスポゼース遺伝子を組み込んだ発現ベクターを導入する宿主細胞、用途などに応じて、当業者において知られている発現ベクターから適宜選択して使用することができる。
　本発明の方法において、２以上のポリペプチドから構成されるタンパク質を生産する場合には、２以上のポリペプチドをコードするＤＮＡを同一のまたは異なる発現ベクターに組み込み、当該発現ベクターを宿主細胞に導入することにより、該細胞の染色体に該ＤＮＡを組み込むことができる。
　トランスポゼースは、発現ベクターに組み込んで目的タンパク質と一緒に発現させてもいいし、発現ベクターとは別のベクターに組み込んで発現させてもいい。トランスポゼースは一過性に働かせてもいいし、継続的に働かせても良いが、安定した産生細胞を作製するためにはトランスポゼースを一過性に働かせることが望ましい。
　トランスポゼースを一過性に働かせる方法としては、例えば、目的タンパク質をコードするＤＮＡを含む発現ベクターとは別の発現ベクターにトランスポゼースをコードするＤＮＡを組み込み、両発現プラスミドを宿主細胞に同時に導入する方法が挙げられる。
　本明細書において「発現ベクター」とは、目的タンパク質を発現させるために、哺乳動物細胞を形質転換させるために用いる発現ベクターを意味する。本発明で用いる発現ベクターは、発現カセットの両側に少なくとも１対のトランスポゾン配列が存在する構造を有する。
　本明細書において「発現カセット」とは、目的タンパク質を発現させるために必要な遺伝子発現制御領域および目的タンパク質をコードする配列を有する核酸配列を意味する。該遺伝子発現制御領域としては、例えば、エンハンサー、プロモーターおよびターミネーターなどが挙げられる。発現カセットには、選択マーカー遺伝子を含んでいても良い。
　プロモーターとしては、哺乳動物細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができる。例えば、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）のＩＥ（ｉｍｍｅｄｉａｔｅ　ｅａｒｌｙ）遺伝子のプロモーター、ＳＶ４０の初期プロモーター、レトロウイルスのプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ヒートショックプロモーター、ＳＲαプロモーター、モロニーマウス白血病ウイルス（ｍｏｌｏｎｅｙ　ｍｕｒｉｎｅ　ｌｅｕｋｅｍｉａ　ｖｉｒｕｓ）のプロモーターおよびエンハンサー等を挙げることができる。また、ヒトＣＭＶのＩＥ遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。
　「選択マーカー遺伝子」とは、プラスミドベクターが導入された細胞と該ベクターを欠く細胞とを区別するために使用することができる任意の他マーカー遺伝子を意味する。
　選択マーカー遺伝子としては、例えば、薬剤耐性遺伝子(ネオマイシン耐性遺伝子、ＤＨＦＲ遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子、ブラストサイジン耐性遺伝子、ハイグロマイシン耐性遺伝子、シクロヘキシミド耐性遺伝子（日本国特開２００２－２６２８７９号公報）)並びに蛍光および生体発光マーカー遺伝子（緑色蛍光タンパクＧＦＰなど）などを用いることができる。
　本発明において、好ましい選択マーカーは薬剤耐性遺伝子であり、特に好ましい選択マーカーはシクロヘキシミド耐性遺伝子である。更に、選択マーカー遺伝子の遺伝子改変を行うことで、選択マーカータンパク質の薬剤耐性能および発光能を変えることもできる。
　シクロヘキシミド（以下、ＣＨＸと略記する場合もある）はタンパク質合成阻害剤であり、ＣＨＸ耐性遺伝子を選択マーカーとした利用例としては、酵母（Ｋｏｎｄｏ　Ｋ．Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，１７７，２４，７１７１－７１７７（１９９５））、動物細胞（日本国特開２００２－２６２８７９号公報）の例が知られている。
　動物細胞では、配列表の配列番号５で表される塩基配列でコードされるヒトリボソームタンパク質サブユニットのＬ３６ａの５４位のプロリンがグルタミンに置換された、配列表の配列番号７で表される塩基配列でコードされるタンパク質を発現させた形質転換株が、シクロヘキシミドに対する耐性を付与することが明らかとなっている。
　宿主細胞に、上記のトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクター、トランスポゼースを発現するプラスミドベクターおよびＲＮＡを導入する方法は、特に限定はなく、例えば、リン酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、リポソーム法、ジーンガン法およびリポフェクション法などを用いることができる。
　トランスポゼースを直接タンパク質として導入する方法としては、例えば、マイクロインジェクション法およびエンドサイトーシスによる細胞への供給が挙げられる。遺伝子導入は、例えば、新遺伝子工学ハンドブック、村松正實・山本雅／編、羊土社、ＩＳＢＮ　９７８４８９７０６３７３７に記載の方法で実施できる。
　宿主細胞としては、継代培養が可能で安定的に目的タンパク質を発現することができる哺乳動物細胞が挙げられる。宿主細胞としては、例えば、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ヒト白血病細胞Ｎａｍａｌｗａ細胞、サル細胞ＣＯＳ細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０（またはＹＢ２／０ともいう）、マウスミエローマ細胞ＮＳ０、マウスミエローマ細胞ＳＰ２／０－Ａｇ１４、シリアンハムスター細胞ＢＨＫ、ＨＢＴ５６３７（日本国特開昭６３－０００２９９号公報）チャイニーズ・ハムスター卵巣細胞ＣＨＯ細胞（Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ,１０８，９４５（１９５８）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，６０１２７５（１９６８）；Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，５５，５１３（１９６８);Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａ，４１，１２９（１９７３）；Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｃｅｌｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１８，１１５（１９９６）；Ｒａｄｉａｔｉｏｎ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１４８，２６０（１９９７）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，７７，４２１６（１９８０）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，６０，１２７５（１９６８）；Ｃｅｌｌ，６，１２１（１９７５）；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｅｌｌ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，　Ａｐｐｅｎｄｉｘ　Ｉ，ＩＩ（ｐｐ．８８３－９００）；）、ＣＨＯ／ＤＧ４４、ＣＨＯ－Ｋ１（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－６１）、ＤＵＫＸＢ１１（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－９０９６）、Ｐｒｏ－５（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－１７８１）、ＣＨＯ－Ｓ（Ｌｉｆｅ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｃａｔ　＃１１６１９）、Ｐｒｏ－３およびＣＨＯ細胞の亜株が挙げられる。
　また、上記の宿主細胞は、染色体ＤＮＡの改変および外来性遺伝子の導入等により、タンパク質の生産に適するように改変して、本発明のタンパク質の生産方法に用いることもできる。
　更に、宿主細胞として、生産する目的タンパク質に結合した糖鎖構造を制御するために、レクチン耐性を獲得したＬｅｃ１３［Ｓｏｍａｔｉｃ　Ｃｅｌｌ　ａｎｄ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｇｅｎｅｔｉｃｓ，１２，５５（１９８６）］およびα１，６－フコース転移酵素遺伝子が欠損したＣＨＯ細胞（国際公開第０５／３５５８６号、国際公開第０２／３１１４０号）を用いることもできる。
　目的タンパク質は、本発明の方法により発現可能であれば、いかなるタンパク質でもよい。具体的には、例えば、ヒト血清タンパク質、ペプチドホルモン、増殖因子、サイトカイン、血液凝固因子、線溶系タンパク質および抗体並びに各種タンパク質の部分断片などが挙げられる。
　また、目的タンパク質として、例えば、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体などのモノクローナル抗体、Ｆｃ融合タンパク質およびアルブミン結合タンパク質並びに該部分断片などが好適に挙げられる。
　本発明の方法により生産されるモノクローナル抗体のエフェクター活性は、種々の方法で制御することができる。例えば、抗体のＦｃ領域の２９７番目のアスパラギン（Ａｓｎ）に結合するＮ結合複合型糖鎖の還元末端に存在するＮ－アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にα-１,６結合するフコース（コアフコースともいう）の量を制御する方法（国際公開第０５／０３５５８６号、国際公開第０２／３１１４０号、国際公開第００／６１７３９号）や、抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基を改変することで制御する方法などが知られている。本発明の方法により生産されるモノクローナル抗体にはいずれの方法を用いても、エフェクター活性を制御することができる。
　「エフェクター活性」とは、抗体のＦｃ領域を介して引き起こされる抗体依存性の活性をいい、抗体依存性細胞傷害活性（ＡＤＣＣ活性）、補体依存性傷害活性（ＣＤＣ活性）や、マクロファージや樹状細胞などの食細胞による抗体依存性ファゴサイトーシス（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｐｈａｇｏｃｙｔｏｓｉｓ、ＡＤＰ活性）などが知られている。
　また、本発明の方法により生産されるモノクローナル抗体のＦｃ領域のＮ結合複合型糖鎖のコアフコースの含量を制御することで、抗体のエフェクター活性を増加または低下させることができる。
　抗体のＦｃ領域に結合しているＮ結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を低下させる方法としては、α１,６－フコース転移酵素遺伝子が欠損したＣＨＯ細胞を用いて抗体を発現することで、フコースが結合していない抗体を取得することができる。フコースが結合していない抗体は高いＡＤＣＣ活性を有する。
　一方、抗体のＦｃに結合しているN結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を増加させる方法としては、α１,６－フコース転移酵素遺伝子を導入した宿主細胞を用いて抗体を発現させることで、フコースが結合している抗体を取得できる。フコースが結合している抗体は、フコースが結合していない抗体よりも低いＡＤＣＣ活性を有する。
　また、抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基を改変することでＡＤＣＣ活性やＣＤＣ活性を増加または低下させることができる。例えば、米国特許出願公開第２００７／０１４８１６５号明細書に記載の抗体のＦｃ領域のアミノ酸配列を用いることで、抗体のＣＤＣ活性を増加させることができる。
　また、米国特許第６，７３７，０５６号明細書、米国特許第７，２９７，７７５号明細書、や米国特許第７，３１７，０９１号明細書に記載のアミノ酸改変を行うことで、抗体のＡＤＣＣ活性またはＣＤＣ活性を、増加させることも低下させることもできる。
　本発明で用いられる「浮遊性の哺乳動物細胞」とは、マイクロビーズや組織培養用培養器（組織培養または接着培養容器などともいう）などの、培養細胞が接着し易くコーティングされた細胞培養支持体に接着せずに、培養液中に浮遊して生存および増殖できる細胞のことをいう。
　細胞培養支持体に細胞が接着しなければ、培養液中において１つの細胞の状態で生存、増殖してもよく、または細胞同士が複数凝集した細胞塊の状態で生存、増殖していても、いずれの状態でもよい。
　更に本発明で用いられる浮遊性の哺乳動物細胞としては、ウシ胎児血清（ｆｅｔａｌ　ｃａｌｆ　ｓｅｒｕｍ、以下ＦＣＳと記す）などが含まれていない無血清培地中で、細胞培養支持体に接着せず培養液中に浮遊して生存および増殖できる細胞が好ましく、タンパク質が含まれていない無タンパク質培地中で、浮遊して生存および増殖できる哺乳動物細胞がより好ましい。
　組織培養用培養器としては、接着培養用のコーティングがなされているフラスコ、シャーレ等であればいかなる培養器でもよい。具体的には、例えば、市販されている組織培養フラスコ（グライナー社製）および接着培養フラスコ（住友ベークライト社製）などを用いることで、浮遊性の哺乳動物細胞であることが確認できる。
　本発明で用いられる浮遊性の哺乳動物細胞としては、元来浮遊性の性質を有する浮遊培養に馴化された細胞でもよいし、接着性の哺乳動物細胞を浮遊性の培養条件に馴化させた浮遊性の哺乳動物細胞いずれのものでもよい。
　元来浮遊性の性質を有する哺乳動物細胞としては、例えば、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０（またはＹＢ２／０ともいう）およびＣＨＯ－Ｓ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）などを挙げることができる。
　前記「接着性の哺乳動物細胞を浮遊性の培養条件に馴化させた浮遊性の哺乳動物細胞」は、Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０００，１５（３），２４９－５７記載の方法や、以下に示す方法などで作製することができ、浮遊培養馴化前と同様、または浮遊培養馴化前より優れた増殖および生存性を示す細胞を確立することで作製することができる（Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２００７，１３０（３），２８２－９０）。
　「浮遊培養馴化前と同等」とは、浮遊培養に馴化された細胞の生存率および増殖速度（倍化時間）などが、浮遊培養馴化前の細胞と比べて実質的に同じであることを意味する。
　本発明において接着性の哺乳動物細胞を浮遊性の培養条件に馴化させる方法としては、次の方法が挙げられる。血清含有の培地の血清含量を１／１０に減らし、比較的高い細胞濃度で継代培養を繰り返し、哺乳動物細胞が生存および増殖できるようになった時点で、更に血清含量を斬減して、継代培養を繰り返す。この方法により、非血清下で生存、増殖可能な浮遊性の哺乳動物細胞を作製することができる。
　また、培養液中に適当な非イオン性界面活性剤Ｐｌｕｒｏｎｉｃ－Ｆ６８などを添加して培養する方法によっても、浮遊性の哺乳動物細胞を作製することができる。
　浮遊性の培養条件に馴化させることにより浮遊性となる接着性の哺乳動物細胞としては、例えば、マウスミエローマ細胞ＮＳ０およびＣＨＯ細胞などが挙げられる。
　本発明において、浮遊性の哺乳動物細胞が有する性質としては、該細胞を２×１０５細胞／ｍＬで浮遊培養した場合、３～４日間後の培養終了時の細胞密度が、５×１０５細胞／ｍＬ以上であることが好ましく、８×１０５細胞／ｍＬ以上であることがより好ましく、１×１０６細胞／ｍＬ以上であることが特に好ましく、１．５×１０６細胞／ｍＬ以上であることが最も好ましい。
　また、本発明の浮遊性の哺乳動物細胞の倍化時間としては、４８時間以下であることが好ましく、２４時間以下がより好ましく、１８時間以下が特に好ましく、１１時間以下が最も好ましい。
　浮遊培地は、例えば、ＣＤ－ＣＨＯ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、ＥＸ－ＣＥＬＬ　３２５－ＰＦ培地（ＳＡＦＣ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）およびＳＦＭ４ＣＨＯ培地（ＨｙＣｌｏｎｅ社）などの市販の培地を用いることができる。また、哺乳動物細胞の培養に必要な糖類、アミノ酸類などを配合して調製することによっても得られる。
　浮遊性の哺乳動物細胞の培養は、浮遊培養が可能な培養容器を用いて、浮遊培養が可能な培養条件によって行うことができる。培養容器としては、例えば、細胞培養用の９６穴プレート（コーニング社）、Ｔ－フラスコ（ベクトン・ディッキンソン社）および三角フラスコ（コーニング社）などを利用できる。
　培養条件としては、例えば、５％　ＣＯ２雰囲気中、培養温度３７℃で静置培養などによって行うことができる。浮遊培養専用の培養設備であるＷａｖｅバイオリアクター（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社）などの振とう培養装置などを用いることもできる。
　Ｗａｖｅバイオリアクター装置を用いた浮遊性の哺乳動物細胞の浮遊培養条件についてはＧＥヘルスケアバイオサイエンス社ホームページｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｇｅｌｉｆｅｓｃｉｅｎｃｅｓ．ｃｏ．ｊｐ／ｔｅｃｈ＿ｓｕｐｐｏｒｔ／ｍａｎｕａｌ／ｐｄｆ／ｃｅｌｌｃｕｌｔ／ｗａｖｅ＿０３＿１６．ｐｄｆに記載の方法で行うことができる。
　振とう培養の他、バイオリアクターなどの旋回撹拌装置による培養も可能である。バイオリアクターでの培養は、Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００６）５２：１９９－２０７に記載の方法などで行うことができる。
　本発明において浮遊性の哺乳動物細胞以外の細胞株を用いる場合、上記のような方法で浮遊培養に馴化させた哺乳動物細胞株であり、かつ本発明のタンパク質生産方法を用いることができる細胞株であれば、いずれの細胞株も用いることができる。
　浮遊性の哺乳動物細胞で生産した目的タンパク質の精製は目的タンパク質を含む培養液や細胞破砕液から目的タンパク質と目的タンパク質以外の不純物を分離することによって行う。分離の方法は、例えば、遠心、透析、硫安沈殿、カラムクロマトグラフィーおよびフィルターなどを用い、目的タンパク質と不純物の物理化学的性質の違いやカラム単体への結合力の違いによって行うことができる。
　目的タンパク質を精製する方法は、例えば、タンパク質実験ノート（上）抽出・分離と組換えタンパク質の発現（羊土社、岡田雅人・宮崎香／編、ＩＳＢＮ　９７８４８９７０６９１８０）に記載の方法によって実施できる。
　本明細書において引用された、科学文献、特許、特許出願などの参考文献は、その全体が、各々具体的に記載されたのと同じ程度に本明細書において参考として援用される。
　以上、本発明を、理解の容易のために好ましい実施形態を示して説明してきた。以下に、実施例に基づいて本発明をさらに具体的に説明するが、上述の説明および以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、本発明を限定する目的で提供したのではない。したがって、本発明の範囲は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、請求の範囲によってのみ限定される。
　以降に記述するクローニング等、遺伝子組換えに関する各種実験技術については、Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｅ．Ｆ．Ｆｒｉｓｃｈ，Ｔ．Ｍａｎｉａｔｉｓ著；モレキュラー　クローニング第２版（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　２ｎｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ）及びＦｒｅｄｅｒｉｃｋ　Ｍ．　Ａｕｓｕｂｅｌら編、Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ発行、Ｃｕｒｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ等に記載の遺伝子工学的方法に準じて行った。
[実施例１]
抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクターの作製
　タンパク質発現用プラスミドベクターには、一対のＴｏｌ２トランスポゾン配列の間に挿入された任意のヒト抗体遺伝子および薬剤耐性マーカー遺伝子を含む、哺乳動物細胞用遺伝子発現カセットを含むプラスミドを用いた。
　用いた遺伝子のＤＮＡは既知の塩基配列をもとに、人工的に化学合成するか、またはその両端配列のプライマーを作製し、適当なＤＮＡソースを鋳型としてＰＣＲを行うことにより取得した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
　トランスポゾン配列は、日本国特開２００３－２３５５７５号公報により開示されている非自律性Ｔｏｌ２トランスポゾンの塩基配列（配列番号１）のうち、１番目から２００番目の塩基配列（Ｔｏｌ２－Ｌ配列）（配列番号２）と、２２８５番目から２７８８番目の塩基配列（Ｔｏｌ２－Ｒ配列）（配列番号３）の塩基配列を用いた。
　次の方法により、それぞれ一対のトランスポゾン配列を含む合成ＤＮＡ断片を作製した（タカラバイオ株式会社製）。Ｔｏｌ２－Ｒ配列の５’末端および３’末端の両方に制限酵素ＮｒｕＩの認識配列を連結した塩基配列を含むＤＮＡ断片を作製した。また、Ｔｏｌ２－Ｌ配列の５’末端には制限酵素ＦｓｅＩの認識配列を連結し、３’末端には制限酵素ＡｓｃＩの認識配列を連結した塩基配列を含むＤＮＡ断片を作製した。
　次に、作製したＴｏｌ２－Ｒ配列およびＴｏｌ２－Ｌ配列を含むＤＮＡ断片を、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体Ｚ３Ｇ１のアミノ酸配列をコードしている塩基配列を含む発現ベクターＮ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクター（国際公開第０６／０６１７２３号）に挿入した。
　抗体遺伝子発現カセットには、ＣＭＶエンハンサー／プロモーター制御下に、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体Ｚ３Ｇ１（ＡＴＣＣ　Ｄｅｐｏｓｉｔ　Ｎｏ．ＰＴＡ－５９６８；ｄｅｐｏｓｉｔｅｄ　Ｍａｒｃｈ　１３,２００４，Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｙｐｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ，　Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ，ＵＳＡ）のＨ鎖をコードする塩基配列（配列番号８）およびＬ鎖（配列番号９）をコードする塩基配列（配列番号１０および配列番号１１）が挿入されたＮ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクター（国際公開第０６／０６１７２３号）を用いた。
　Ｍ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクターの、抗体遺伝子発現カセットおよび耐性マーカー遺伝子発現カセットを含む遺伝子断片の５’末端側に存在する制限酵素ＮｒｕＩサイトに、Ｔｏｌ２－Ｒ配列を含むＤＮＡ断片を挿入した。また、３’末端側に存在する制限酵素ＦｓｅＩおよびＡｓｃＩサイトに、Ｔｏｌ２－Ｌ配列を含むＤＮＡ断片を挿入した。
　更にＣＭＶエンハンサー／プロモーター制御下に、シクロヘキシミドに対する耐性遺伝子（ヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンがグルタミンに変異した遺伝子）をコードする塩基配列（配列番号５）が接続されたシクロヘキシミド耐性遺伝子発現カセットを、Ｔｏｌ２トランスポゾン配列が連結されたＮ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクターのＦｓｅＩ認識部位に挿入し、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体トランスポゾン発現ベクターを構築した（図１）。
　一方、トランスポゾン配列を含まないベクターを抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターと命名し、コントロールベクターとして使用した（図２）。
[実施例２]
トランスポゼース発現ベクターの作製
　トランスポゼースは、目的とする抗体の発現ベクターとは独立した発現ベクターを用いて発現させた。すなわち、ｐＣＡＧＧＳベクター（Ｇｅｎｅ　１０８，１９３－２００，１９９１）のＣＡＧＧＳプロモーターの下流にメダカ由来のＴｏｌ２トランスポゼースをコードする遺伝子（配列番号４）を挿入し、発現ベクターとして利用した（図３）。
[実施例３]
哺乳動物細胞を用いた形質転換体の作製
（１）浮遊化ＣＨＯ細胞の作製
　１０％血清（ＦＣＳ）を添加したα－ＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で培養した接着性ＣＨＯ細胞を、トリプシン処理により剥離、回収し、新しい１０％　ＦＣＳ添加α－ＭＥＭ培地を用いて、５％　ＣＯ２インキュベータ内で、３７℃にて振とう培養した。数日後、これらの細胞が増殖していることを確認したのち、５％ＦＣＳ添加α－ＭＥＭ培地に２×１０５個／ｍＬの濃度で播種し、振とう培養を行った。
　さらに数日後、５％　ＦＣＳ添加α－ＭＥＭ培地を用いて同様の播種作業を行った。最終的に、血清を含まないα－ＭＥＭ培地を用いて継代、振とう培養を繰り返し、血清存在下での培養と同様の増殖能を有していることを確認して、浮遊培養馴化株を作製した。
（２）抗体を生産するＣＨＯ細胞の作製
　発現ベクターとして、実施例１および実施例２の抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクター（以下、トランスポゾンベクターと略記する）およびＴｏｌ２トランスポゼース発現ベクターｐＣＡＧＧＳ－Ｔ２ＴＰ（図３、Ｋａｗａｋａｍｉ　Ｋ＆Ｎｏｄａ　Ｔ．Ｇｅｎｅｔｉｃｓ．１６６，８９５－８９９（２００４））を用いた。また、コントロールとしてトランスポゾン配列を有していない抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターを用いた。
　前記発現ベクターを浮遊培養に馴化したＣＨＯ－Ｋ１細胞（Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｙｐｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ　Ｃａｔ．Ｎｏ．ＣＣＬ－６１）またはＨＥＫ２９３細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　２９３Ｆ細胞）に導入し、シクロヘキシミドに対する耐性クローンが得られる頻度を比較した。
　各細胞（４×１０６個）を４００μＬのＰＢＳに懸濁し、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクター（１０μg）とＴｏｌ２トランスポゼース発現ベクター（２５μg）を、エレクトロポレーション法により環状ＤＮＡのまま共導入した。なお、Ｔｏｌ２トランスポゼース発現ベクターは、Ｔｏｌ２トランスポゼースを一過性に発現させるため、宿主染色体への組込みを防ぐ目的で、環状ＤＮＡのまま導入した。
　また、コントロールとして、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクター（１０μg）を、標準的なエレクトロポレーションによる遺伝子導入法に従い、制限酵素により直鎖状にした後、各細胞に導入した。
　エレクトロポレーションは、エレクトロポレーター（Ｇｅｎｅ　Ｐｕｌｓｅｒ　ＸｃｅＩＩ　ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ－Ｒａｄ社製）を用い、電圧３００Ｖ、静電容量５００μＦ、室温の条件で、ｇａｐ幅４ｍｍのキュベット（Ｂｉｏ－Ｒａｄ社製）を使用して行った。
　エレクトロポレーションによる遺伝子導入後、各々の細胞について３枚の９６穴プレートに播種し、ＣＨＯ細胞はＳＡＦＣ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社　ＥＸ－ＣＥＬＬ　３２５－ＰＦ培地を、ＨＥＫ２９３細胞はｆｒｅｅＳｔｙｌｅ－２９３培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて、ＣＯ２インキュベータ内で３日間培養した。
　次に、遺伝子導入後４日後の培地交換から、３μｇ／ｍＬのシクロヘキシミドを加え、シクロヘキシミド存在下で培養し、１週間毎に培地交換を行いながら、３週間培養した。
　３週間培養後、シクロヘキシミド耐性コロニーが認められるウェル数をカウントした。その結果を表１および表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表１に示すように、浮遊性のＣＨＯ－Ｋ１細胞に、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクターまたは抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターを導入したところ、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターを導入した細胞からは、他の細胞株と同様に、シクロヘキシミド耐性の形質転換株が取得されなかったが、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクター導入細胞からは、シクロヘキシミド耐性の形質転換株が高頻度で得られた。
　一方、表２に示すように、ＨＥＫ２９３細胞に、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクターまたは抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現ベクターのいずれの発現ベクターを導入しても、シクロヘキシミド耐性の形質転換株は取得されなかった。
　これらの結果から、浮遊性の哺乳動物細胞において、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された目的タンパク質をコードする遺伝子およびシクロヘキシミド耐性遺伝子が、効率よく宿主細胞の染色体内に導入されることがわかった。
（３）浮遊性ＣＨＯ細胞と接着性ＣＨＯ細胞における抗体生産の検討
　浮遊性ＣＨＯ細胞または接着性ＣＨＯ細胞における抗体生産効率を検討するために、各細胞株における抗体の産生量を検討した。浮遊性ＣＨＯ細胞としては、浮遊培養に馴化した浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞を用いた。また、接着性ＣＨＯ細胞としては浮遊培養馴化前の接着性ＣＨＯ－Ｋ１細胞を用いた。
　浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞および接着性ＣＨＯ－Ｋ１細胞に抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクター（１０μg）とＴｏｌ２トランスポゼース発現ベクター（２５μg）をそれぞれ、エレクトロポレーションした。その後、浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞と接着性ＣＨＯ－Ｋ１細胞を、各々３枚の９６穴プレートに播種した。
　浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞は浮遊細胞用培地（ＳＡＦＣ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社ＥＸ－ＣＥＬＬ　３２５－ＰＦ）を用い、接着性ＣＨＯ－Ｋ１細胞は１０％血清を添加したα－ＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いた。各細胞をＣＯ２インキュベータ内で３日間培養し、エレクトロポレーションから４日後の培地交換から、３μg／ｍＬのシクロヘキシミド存在下で３週間培養した。この際、１週間毎に培地交換を行った。
　浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞は１×１０６個の細胞を６穴プレートに播種し、ＣＯ２インキュベータ内で３日間振とう培養し、培養上清を用いて抗ヒトインフルエンザＭ２抗体のタンパク質量をＨＰＬＣにて測定した。
　接着性ＣＨＯ－Ｋ１細胞は６穴プレートでコンフルエントに到達した後（２×１０６個）培地交換し、３日間静置培養した後、培養上清を用いて抗体タンパク質量をＨＰＬＣにて測定した。
　培養上清中の抗体濃度の測定はＦＥＭＳ　Ｙｅａｓｔ　Ｒｅｓ．，７,（２００７），１３０７－１３１６に記載の方法に従って行った。結果を図４Ａおよび図４Ｂに示す。
　図４Ａに示すように、浮遊培養に馴化したＣＨＯ－Ｋ１細胞では、極めて高い抗体発現量を示す細胞が多数得られた。一方、図４Ｂに示すように、接着性のＣＨＯ－Ｋ１細胞では、ＨＰＬＣの検出限界（５μg／ｍＬ）以下の発現量を示す細胞しか得られなかった。
　これらの結果から、トランスポゾンベクターを用いて目的タンパク質を発現させるためには、浮遊性の哺乳動物細胞を用いた場合に目的タンパク質を高発現できることを見出した。
　また、実施例１～３の結果より、本発明の方法は、浮遊培養に馴化した浮遊性の哺乳動物細胞を用いて外来遺伝子を高発現する生産細胞を効率的に作製し、目的タンパク質を生産する新規な方法として利用し得ることがわかった。
[実施例４]
抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクターの作製
　実施例１と同様に、タンパク質発現用プラスミドベクターには、一対のＴｏｌ１トランスポゾン配列の間に挿入された任意のヒト抗体遺伝子および薬剤耐性マーカー遺伝子を含む、哺乳動物細胞用遺伝子発現カセットを含むプラスミドを用いた。
　用いた遺伝子のＤＮＡは既知の配列情報をもとに、人工的に化学合成するか、またはその両端配列のプライマーを作製し、適当なＤＮＡソースを鋳型としてＰＣＲを行うことにより取得した。プライマーの端には後の遺伝子操作のために制限酵素切断部位を付加した。
　トランスポゾン配列は、配列表の配列番号１３で表される非自律性Ｔｏｌ１トランスポゾンの塩基配列（国際公開第２００８／０７２５４０号）のうち、１番目から２００番目の塩基配列（Ｔｏｌ１－Ｌ配列）（配列番号１４）と、１３５１番目から１８５５番目の塩基配列（Ｔｏｌ１－Ｒ配列）（配列番号１５）を用いた。
　次の方法により、それぞれ一対のトランスポゾン配列を含む合成ＤＮＡ断片を作製した。Ｔｏｌ１－Ｒ配列の５’末端および３’末端の両方に制限酵素ＮｒｕＩの認識配列を連結した塩基配列を含むＤＮＡ断片を作製した。また、Ｔｏｌ１－Ｌ配列の５’末端には制限酵素ＦｓｅＩの認識配列を連結し、３’末端には制限酵素ＡｓｃＩの認識配列を連結した塩基配列を含むＤＮＡ断片を作製した。
　次に、作製したＴｏｌ１－Ｒ配列およびＴｏｌ１－Ｌ配列を含むＤＮＡ断片を、Ｎ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクターに挿入した。Ｎ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクターの、抗体遺伝子発現カセットおよび耐性マーカー遺伝子発現カセットを含む遺伝子断片の５’末端側に存在する制限酵素ＮｒｕＩサイトに、Ｔｏｌ１－Ｒ配列を含むＤＮＡ断片を、３’末端側に存在する制限酵素ＦｓｅＩおよびＡｓｃＩサイトに、Ｔｏｌ１－Ｌ配列を含むＤＮＡ断片を挿入した。
　更にＣＭＶエンハンサー／プロモーター制御下に、シクロヘキシミドに対する耐性遺伝子（ヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンがグルタミンに変異した遺伝子）（配列番号７）が接続されたシクロヘキシミド耐性遺伝子発現カセットを、Ｔｏｌ１トランスポゾン配列が連結されたＮ５ＬＧ１＿Ｍ２＿Ｚ３ベクターのＦｓｅＩ認識部位に挿入し、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体Ｔｏｌ１トランスポゾン発現ベクターを構築した（図５）。
[実施例５]
Ｔｏｌ１トランスポゼース発現ベクターの作製
　トランスポゼースは目的抗体の発現ベクターとは独立した発現ベクターを用いて発現させた。すなわち、ＣＭＶエンハンサー／プロモーター制御下に、配列表の配列番号１６で表される塩基配列からなるメダカ由来のＴｏｌ１トランスポゼースをコードするＤＮＡ断片が接続されたＴｏｌ１トランスポゼース遺伝子発現カセットを、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ　ＳＫ（＋）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）に挿入し、発現ベクターｐＴｏｌ１ａｓｅとして利用した（図６）。
[実施例６]
（１）抗体を生産するＣＨＯ細胞の作製
　発現ベクターとして、実施例４および実施例５の抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクター（以下、Ｔｏｌ１トランスポゾンベクターと略記する）およびＴｏｌ１トランスポゼース発現ベクターｐＴｏｌ１ａｓｅを用いた。また、細胞は実施例３（１）と同様にして浮遊培養に馴化したＣＨＯ－Ｋ１細胞を用いた。
　前記発現ベクターを浮遊培養に馴化したＣＨＯ－Ｋ１細胞に導入し、シクロヘキシミドに対する耐性クローンの得られる頻度を測定した。浮遊培養に馴化したＣＨＯ－Ｋ１細胞（４×１０６個）を４００μＬのＰＢＳに懸濁し、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクター（１０μg）とＴｏｌ１トランスポゼース発現ベクター（５０μg）を、エレクトロポレーション法により環状ＤＮＡのまま共導入した。Ｔｏｌ１トランスポゼース発現ベクターは、Ｔｏｌ１トランスポゼースを一過性に発現させるため、宿主染色体への組込みを防ぐ目的で、環状ＤＮＡのまま導入した。
　エレクトロポレーションは、エレクトロポレーター（Ｇｅｎｅ　Ｐｕｌｓｅｒ　ＸｃｅＩＩ　ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏ－Ｒａｄ社製））を用い、電圧３００Ｖ、静電容量５００μＦ、室温の条件で、ｇａｐ幅４ｍｍのキュベット（Ｂｉｏ－Ｒａｄ社製）を使用して行った。
　エレクトロポレーションによる遺伝子導入後、各々の細胞について２枚の９６穴プレートに播種し、ＣＨＯ細胞はＥＸ－ＣＥＬＬ　３２５－ＰＦ培地（ＳＡＦＣ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を用いて、ＣＯ２インキュベータ内で３日間培養した。次に、遺伝子導入後４日後の培地交換から、３μｇ／ｍＬのシクロヘキシミドを加え、シクロヘキシミド存在下で培養し、１週間毎に培地交換を行いながら、３週間培養した。
　３週間培養後、シクロヘキシミド耐性コロニーが認められるウェル数をカウントした。その結果を表３に示す。表３において実験１～３は、それぞれ遺伝子導入を３度行った結果を示している。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表３に示すように、浮遊性のＣＨＯ－Ｋ１細胞に、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ１トランスポゾンベクターを導入すると、抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現Ｔｏｌ２トランスポゾンベクターを導入した実施例３と同様に、シクロヘキシミド耐性の形質転換株が高頻度で得られた。
　この結果から、浮遊性の哺乳動物細胞において、Ｔｏｌ１トランスポゾンを使用しても２つのトランスポゾン配列の間に挿入された抗体遺伝子およびシクロヘキシミド耐性遺伝子が、効率よく宿主細胞の染色体内に導入されることがわかった。
（２）浮遊性ＣＨＯ細胞における抗体生産の検討
　Ｔｏｌ１トランスポゾンを用いて、浮遊性ＣＨＯ細胞における抗体生産効率を検討した。浮遊培養に馴化した浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞に抗ヒトインフルエンザＭ２抗体発現トランスポゾンベクター（１０μg）とＴｏｌ１トランスポゼース発現ベクター（５０μg）をエレクトロポレーションした。
　その後、各々２枚の９６穴プレートに播種し、浮遊細胞用培地ＥＸ－ＣＥＬＬ　３２５－ＰＦを用いて、ＣＯ２インキュベータ内で３日間培養した。エレクトロポレーションから４日後の培地交換から、３μｇ／ｍＬのシクロヘキシミド存在下で３週間培養した。この際、１週間毎に培地交換を行った。
　浮遊性ＣＨＯ－Ｋ１細胞は１×１０６個の細胞を６穴プレートに播種し、ＣＯ２インキュベータ内で３日間振とう培養し、培養上清を用いて抗ヒトインフルエンザＭ２抗体のタンパク質量をＨＰＬＣにて測定した。
　培養上清中の抗体濃度の測定はＦＥＭＳ　Ｙｅａｓｔ　Ｒｅｓ．，７，（２００７）、１３０７－１３１６に記載の方法に従って行った。結果を図７に示す。
　図７に示すように、Ｔｏｌ１トランスポゾンを用いた場合でも、極めて高い抗体発現量を示す細胞が多数得られた。この結果から、トランスポゾン配列としてＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列を用いた場合にも、Ｔｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列を用いた場合と同様に、目的タンパク質を高発現する浮遊性の哺乳動物細胞が得られることがわかった。
　本発明を特定の態様を用いて詳細に説明したが、本発明の意図と範囲を離れることなく様々な変更および変形が可能であることは、当業者にとって明らかである。なお、本出願は、２００９年６月１１日付けで出願された日本特許出願（特願２００９－１４０６２６号）および２００９年６月１１日付けで出願された米国仮出願（６１／１８６，１３８号）に基づいており、その全体が引用により援用される。
　本発明のタンパク質の生産方法により、目的タンパク質を浮遊性の哺乳動物細胞を用いて効率よく生産することができる。本発明の細胞は、遺伝子組み換えタンパク質を生産するためのタンパク質生産細胞として使用できる。
配列番号１－人工配列の説明；非自律性Ｔｏｌ２トランスポゾンの塩基配列
配列番号２－人工配列の説明；Ｔｏｌ２－Ｌ配列
配列番号３－人工配列の説明；Ｔｏｌ２－Ｒ配列
配列番号７－人工配列の説明；シクロヘキシミド耐性遺伝子の塩基配列
配列番号８－人工配列の説明；シクロヘキシミド耐性遺伝子がコードするタンパク質のアミノ酸配列
配列番号９－人工配列の説明；Ｍ２Ｚ３抗体Ｈ鎖をコードする塩基配列
配列番号１０－人工配列の説明；Ｍ２Ｚ３抗体Ｈ鎖のアミノ酸配列
配列番号１１－人工配列の説明；Ｍ２Ｚ３抗体Ｌ鎖をコードする塩基配列
配列番号１２－人工配列の説明；Ｍ２Ｚ３抗体Ｌ鎖のアミノ酸配列
配列番号１３－人工配列の説明；非自律性Ｔｏｌ１トランスポゾンの塩基配列
配列番号１４－人工配列の説明；Ｔｏｌ１－Ｌ配列
配列番号１５－人工配列の説明；Ｔｏｌ１－Ｒ配列

Claims (31)

  1. 　目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する哺乳動物細胞を得て、かつ該哺乳動物細胞を浮遊培養して該目的タンパク質を生産する方法。
  2. 　以下の工程（Ａ）～（Ｃ）を含むことを特徴とする、目的タンパク質の生産方法。
    (Ａ)以下の発現ベクター（ａ）および（ｂ）を浮遊性の哺乳動物細胞に同時に導入する工程
    　(ａ)目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含む発現ベクター
    　(ｂ)トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼースをコードするＤＮＡを含む発現ベクター
    （Ｂ）工程（Ａ）で導入した発現ベクター（ｂ）によりトランスポゼースを一過性発現させて、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された前記遺伝子断片を前記哺乳動物細胞の染色体に組み込み、目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を得る工程
    （Ｃ）工程（Ｂ）で得られた目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を浮遊培養して、目的タンパク質を生産させる工程
  3. 　目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターを浮遊性の哺乳動物細胞に導入し、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片を該哺乳動物細胞の染色体に組み込んで該目的タンパク質を発現する浮遊性の哺乳動物細胞を得る方法。
  4. 　浮遊性の哺乳動物細胞が、無血清培養で生存および増殖可能な細胞である、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
  5. 　浮遊性の哺乳動物細胞が、ＣＨＯ細胞を浮遊培養に馴化した浮遊性のＣＨＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０（またはＹＢ２／０ともいう）および浮遊培養に馴化した浮遊性のマウスミエローマ細胞ＮＳ０から選ばれる少なくとも１である請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 　ＣＨＯ細胞がＣＨＯ－Ｋ１、ＣＨＯ－Ｋ１ＳＶ、ＤＵＫＸＢ１１、ＣＨＯ／ＤＧ４４、Ｐｒｏ－３およびＣＨＯ－Ｓから選ばれる少なくとも１である請求項５に記載の方法。
  7. 　選択マーカー遺伝子がシクロヘキシミド耐性遺伝子である請求項１～６のいずれか１項に記載の方法。
  8. 　シクロヘキシミド耐性遺伝子がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの変異体をコードする遺伝子である請求項７に記載の方法。
  9. 　変異体がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンが他のアミノ酸に置換された変異体である請求項８に記載の方法。
  10. 　他のアミノ酸がグルタミンである請求項９に記載の方法。
  11. 　一対のトランスポゾン配列が哺乳動物細胞で機能する一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列である請求項１～１０のいずれか１項に記載の方法。
  12. 　一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列が、一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である請求項１１に記載の方法。
  13. 　一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される塩基配列を含む塩基配列および配列番号３で表される塩基配列である請求項１２に記載の方法。
  14. 　一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である請求項１２に記載の方法。
  15. 　目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクターが導入され、一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、且つ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞。
  16. 　目的タンパク質をコードするＤＮＡと選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端にトランスポゾン配列を含む発現ベクター（ａ）、および該トランスポゾン配列を認識し、かつ一対のトランスポゾン配列の間に挿入された遺伝子断片を染色体に転移させる活性を有するトランスポゼース（転移酵素）をコードするＤＮＡを含む発現ベクター（ｂ）を同時に導入されることで、該一対のトランスポゾン配列の間に挿入された該遺伝子断片が染色体に組み込まれ、かつ該目的タンパク質を生産する浮遊性の哺乳動物細胞。
  17. 　無血清培養で生存および増殖可能な浮遊性の哺乳動物細胞である、請求項１５または１６に記載の細胞。
  18. 　ＣＨＯ細胞を浮遊培養に馴化した浮遊性のＣＨＯ細胞、ＰＥＲ．Ｃ６細胞、ラットミエローマ細胞ＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０(またはＹＢ２／０ともいう）および浮遊培養に馴化した浮遊性のマウスミエローマ細胞ＮＳ０から選ばれる少なくとも１の浮遊性の哺乳動物細胞である請求項１５～１７のいずれか１項に記載の細胞。
  19. 　ＣＨＯ細胞がＣＨＯ－Ｋ１、ＣＨＯ－Ｋ１ＳＶ、ＤＵＫＸＢ１１、ＣＨＯ／ＤＧ４４、Ｐｒｏ－３およびＣＨＯ－Ｓから選ばれる少なくとも１である請求項１８に記載の細胞。
  20. 　選択マーカー遺伝子がシクロヘキシミド耐性遺伝子である請求項１５～１９のいずれか１項に記載の細胞。
  21. 　シクロヘキシミド耐性遺伝子がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの変異体をコードする遺伝子である請求項２０に記載の細胞。
  22. 　変異体がヒトリボソームタンパク質Ｌ３６ａの５４位のプロリンが他のアミノ酸に置換された変異体である請求項２１に記載の細胞。
  23. 　他のアミノ酸がグルタミンである請求項２２に記載の細胞。
  24. 　一対のトランスポゾン配列が哺乳動物細胞で機能する一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列である請求項１５～２３のいずれか１項に記載の細胞。
  25. 　一対のＤＮＡ型トランスポゾン由来の塩基配列が、一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である請求項２４に記載の細胞。
  26. 　一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される塩基配列および配列番号３で表される塩基配列である請求項２５に記載の細胞。
  27. 　一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である請求項２５に記載の細胞。
  28. 　目的タンパク質をコードするＤＮＡおよび選択マーカー遺伝子を含む遺伝子断片の両端に一対のトランスポゾン配列を含むタンパク質発現ベクター。
  29. 　一対のトランスポゾン配列が一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の塩基配列またはＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列である請求項２８に記載のタンパク質発現ベクター。
  30. 　一対のＴｏｌ２トランスポゾン由来の塩基配列が、配列番号２で表される配列および配列番号３で表される塩基配列である請求項２９に記載のタンパク質発現ベクター。
  31. 　一対のＴｏｌ１トランスポゾン由来の配列が、配列番号１４で表される塩基配列および配列番号１５で表される塩基配列である請求項２９に記載のタンパク質発現ベクター。
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