WO2009128448A1 - 新規なヒアルロン酸結合能を有するタンパク質及びこれを用いたヒアルロン酸の測定方法 - Google Patents
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- Y10T436/143333—Saccharide [e.g., DNA, etc.]
Definitions
- the present invention is a novel protein having hyaluronic acid binding ability (hyaluronic acid binding protein, hereinafter sometimes abbreviated as “HABP”), which is inexpensive and excellent in quality stability, and a high-
- HABP hyaluronic acid binding protein
- Hyaluronic acid is a kind of mucopolysaccharide, and is mainly contained in connective tissues such as animal joint fluid, eyeglass body fluid, umbilical cord, and dermis surface layer.
- the blood concentration is known to increase during rheumatism, cancer, and liver disease, and is considered useful for diagnosis of these diseases, and various measurement methods are currently being developed.
- a method for measuring hyaluronic acid a method of measuring by HABP using enzyme immunoassay (ELISA) (Patent Document 1, Patent Document 2, etc.) and an immunological measuring method using latex particles are known. .
- ELISA enzyme immunoassay
- proteoglycans such as aggrecan, link protein, hyaluronectin and the like are known.
- aggrecan is a high molecular weight proteoglycan that occupies about 90% of the proteoglycan present in cartilage, contains chondroitin sulfate, and exists in cartilage tissue in a form combined with hyaluronic acid. It is also used for measuring hyaluronic acid.
- aggrecan conventionally used for the measurement of hyaluronic acid is a bovine cartilage refined product, and since it is a natural product, it has a problem that there is a lot difference and the price is high.
- the present inventors have obtained an amino acid sequence having a high homology with a known amino acid sequence of Usia glucan, one of HABP, from a cDNA library prepared from bovine cartilage mRNA. It was found that cDNA containing the base sequence to be encoded was obtained. Furthermore, it has been found that the HABP of the present invention can be obtained by transfecting host cells with a recombinant expression vector containing the cDNA and culturing the host cells to express the cDNA.
- hyaluronic acid is measured using the HABP of the present invention, compared to the conventional hyaluronic acid measuring method using natural aggrecan, there is no variation in quality, and the prozone phenomenon can be suppressed.
- the inventors have found that it is possible to measure hyaluronic acid with high accuracy, and have completed the present invention.
- this invention consists of the following structures.
- a polynucleotide encoding a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, wherein the 130th amino acid residue from the N-terminus of the amino acid sequence is an isoleucine residue, and the 131st amino acid residue Is a polynucleotide comprising a base sequence encoding an amino acid sequence of a protein derived from an amino acid selected from the group consisting of tyrosine, serine, threonine, cysteine, asparagine and glutamine and having a hyaluronic acid binding ability.
- the 130th amino acid residue from the N-terminal of the amino acid sequence is an isoleucine residue, and the 131st amino acid residue is tyrosine, serine, threonine, cysteine ,
- a protein having an ability to bind hyaluronic acid which is a residue derived from an amino acid selected from the group consisting of asparagine and glutamine.
- a host cell transfected with a baculovirus incorporating a recombinant expression vector containing a polynucleotide having the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 or obtained by transforming a host cell with the recombinant expression vector The method for producing a protein having hyaluronic acid binding ability according to (2) above, wherein the transformant is cultured, and the protein is separated and purified from the culture broth, and the hyaluronic acid in the sample, and the above
- a protein having hyaluronic acid binding ability described in (2) is contacted to form a complex of hyaluronic acid and the protein, and then the complex and a carrier carrying an antibody specific for the protein Reacting, measuring an optical change due to an aggregate generated by the reaction, and calculating the amount of hyaluronic acid from the measured value, Method of measuring the acid.
- a reagent kit for measuring hyaluronic acid comprising the protein having the hyaluronic acid binding ability
- the present invention provides a new and inexpensive HABP with no product variations. Since the HABP of the present invention is a recombinant product, it has an excellent quality that it can be obtained at a low cost and in a large amount as compared with a natural aggrecan and there is no variation in quality.
- the HABP of the present invention since the HABP of the present invention has the above-described features, it can be used to measure hyaluronic acid at low cost and with high accuracy.
- FIG. 1 shows the result of electrophoresis of total RNA solution obtained from bovine nasal septal cartilage obtained in Example 1 (1) on a 1% agarose gel. Moreover, the arrows in FIG. 1 indicate the fractions of 18S rRNA and 28S rRNA, respectively.
- FIG. 2 shows the result of electrophoresis of the PCR product obtained in Example 1 (3) with agarose containing ethidium bromide. In FIG. 2, lane 1 shows a molecular weight marker, and lane 2 shows a result when a PCR product fragment is used as a sample. The arrow indicates the fraction of the PCR product fragment.
- FIG. 3 shows the results obtained in Example 1 (7). In FIG.
- FIG. 3 (a) is the result of silver staining of the gel after SDS-PAGE, and (b) is the result of Western blotting using a peroxidase-labeled anti-Aggrecan antibody.
- lane 1 is a protein molecular weight marker
- lane 2 is a culture supernatant before affinity purification
- lane 3 is a culture supernatant after affinity purification
- lane 4 is obtained by affinity purification.
- the results are shown for the case of using the obtained protein as a sample.
- the arrow of FIG.3 (b) shows the fraction of HABP of this invention.
- FIG. 4 is a calibration curve showing the relationship between the hyaluronic acid concentration in the sample and the absorbance at 805 nm of the sample obtained in Example 2 and Comparative Example 1.
- FIG. 5 is the result of plotting the absorbance at 805 nm of the sample against the hyaluronic acid concentration in the sample obtained in Example 3 and Comparative Example 2.
- FIG. 6 shows the results obtained in Example 4 and Comparative Example 3 with each concentration of HABP of the present invention or known amino acid sequence HAPB, with respect to each HABP concentration in the first magazine solution, 1000 ng / hyaluronic acid. It is the result of having plotted the light absorbency in 805 nm of the sample containing mL.
- Bovine cartilage aggrecan ( Bos taurus aggrecan) is a protein having the ability to bind hyaluronic acid, that is, HAPB, and consists of 2327 amino acids.
- the gene sequence has also been deciphered, and the gene sequence and all amino acid sequences are disclosed in the DDBJ (DNA Data Bank of Japan) database.
- SEQ ID NO: 7 shows the entire known amino acid sequence of usa Titan disclosed in the above database.
- the hyaluronic acid binding site of usaglecan is located at the amino acid residue at the 153rd to 352rd positions from the N-terminal of the sequence.
- the polynucleotide of the present invention encodes a protein consisting of the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue including the hyaluronic acid binding site in the entire amino acid sequence of known siaglucan represented by SEQ ID NO: 7.
- the polynucleotide of the present invention is “a polynucleotide encoding a protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, wherein the 130th amino acid residue from the N-terminus of the amino acid sequence is an isoleucine residue.
- the 131st amino acid residue is a residue derived from an amino acid selected from the group consisting of tyrosine, serine, threonine, cysteine, asparagine and glutamine, and encodes the amino acid sequence of a protein having hyaluronic acid binding ability A polynucleotide consisting of a base sequence.
- a polynucleotide comprising a base sequence encoding an amino acid sequence that is a residue is preferred.
- the polynucleotide of the present invention is similar to a polynucleotide encoding a protein consisting of the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue including the hyaluronic acid binding site in the known total amino acid sequence of usaglecan.
- the nucleotide sequence encoding the 130-131th amino acid residue (Ile-Leu) from the N-terminal of the known amino acid sequence of Usia Inc is “ATTCTA”.
- the base sequence of 388 to 393 from the 5 ′ end, which encodes the amino acid sequence to be encoded has a base sequence in which “ATTCTA” is replaced with another base sequence (that is, the base sequence represented by SEQ ID NO: 1) .
- the polynucleotide of the present invention is “a polynucleotide encoding a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 is a polynucleotide comprising the base sequence represented by SEQ ID NO: 1,
- the 390th base from the end is a base selected from T, C, and A, and the 391st to 393rd bases from the 5 'end are TAT, TAC, TCT, TCC, TCA, TCG, ACT, ACC, ACA , ACG, TGT, TGC, AAT, AAC, CAA, CAG, a polynucleotide having a base sequence (A represents adenine, C represents cytosine, G represents guanine, and T represents thymine, and so on). . "
- the 388th to 389th base sequences of the polynucleotide of the present invention are “AT”.
- a polynucleotide comprising the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and a polynucleotide in which the 391st to 393rd bases from the 5 ′ end of the polynucleotide are TAT is preferable.
- a polynucleotide having a base sequence that is, the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 wherein the 391st to 393th base from the 5 'end is TAT and the 390th base from the 5' end is C Is preferred.
- a known base sequence encoding the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue including the hyaluronic acid binding site among the known 2327 amino acid sequences of Usia Incan is represented by SEQ ID NO: 8.
- the amino acid sequence encoded by the base sequence is shown in SEQ ID NO: 9.
- the HABP of the present invention is similar to a protein consisting of the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue including the hyaluronic acid binding site in the above-mentioned all known amino acid sequences of usa Inc.
- the 131st amino acid residue from the N-terminal is a leucine residue, but this consists of an amino acid sequence in which the other amino acid residue is replaced (ie, the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2). Is.
- the HABP of the present invention is “consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, wherein the 130th amino acid residue from the N-terminal of the amino acid sequence is an isoleucine residue, and the 131st amino acid residue is HABP which is a residue derived from an amino acid selected from the group consisting of tyrosine, serine, threonine, cysteine, asparagine and glutamine.
- a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 and the amino acid sequence at the 131st amino acid residue from the N-terminus is a tyrosine residue (that is, the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4) Is mentioned.
- the polynucleotide of the present invention can be obtained by a known DNA synthesis method. For example, it can be obtained by synthesizing a polynucleotide by a normal phosphoramidite method using a DNA synthesizer, which is usually used for DNA synthesis, and purifying it by a conventional method using anion exchange column chromatography.
- polynucleotide of the present invention can also be obtained as cDNA synthesized by extracting mRNA from, for example, animal tissues and the like and synthesizing it by a known method.
- MRNA for synthesizing HABP of the present invention can be obtained from animal cartilage tissues such as nasal septal cartilage and tracheal cartilage.
- RNA is extracted by a conventional method.
- guanidine thiocyanate treatment followed by cesium chloride density gradient centrifugation to prepare total RNA
- cesium chloride density gradient centrifugation to prepare total RNA
- guanidine thiocyanate-hot phenol Method guanidine / thiocyanate-guanidine hydrochloride method
- guanidine / thiocyanate / phenol / chloroform method and the like.
- kits for obtaining total RNA are commercially available, they may be used. For example, RNeasy Lipid Tissue Midi Kit, RNeasy Lipid Tissue Mini Kit (manufactured by QIAGEN) and the like can be mentioned.
- a method for purifying mRNA from total RNA may be performed by a conventional method. Examples include oligo dT cellulose column method, lithium chloride / urea method, guanidine isothiocyanate method, etc. that purify only mRNA in total RNA using a carrier that hybridizes to the polyA tail of mRNA.
- various kits are commercially available, and may be used. Examples thereof include Oligotex TM -dT30 ⁇ Super> (manufactured by Takara Bio Inc.).
- cDNA is synthesized and amplified by a conventional method using reverse transcriptase or polymerase chain reaction (PCR).
- PCR polymerase chain reaction
- the base sequence of the polynucleotide of the present invention encoding the target HABP of the present invention that is, the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 of the present invention
- CDNA with a polynucleotide is obtained.
- the base sequence of the amplified cDNA may be determined by a conventional method such as a cycle sequencing method.
- HABP of the Present Invention (1) Production of Recombinant Expression Vector, Transfected Host Cell, and Transformant of the Present Invention
- the method for producing HAPB of the present invention is described in “Polynucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1.
- a host cell transfected with a baculovirus incorporating a recombinant expression vector containing nucleotides or a transformant obtained by transforming a host cell with the recombinant expression vector is cultured, and the protein is separated from the culture solution. • A method characterized by purification.
- the HABP of the present invention incorporates the polynucleotide of the present invention into an appropriate expression vector such as a plasmid or phage, and the host cell is transfected or transformed with the recombinant expression vector. It can be obtained by a well-known method using a genetic recombination technique of amplification and secretion to the inside or outside of the cell.
- a common method is to use an expression system using a prokaryotic organism such as Escherichia coli or an expression system using a general eukaryotic cell such as a mammalian cell, yeast, or insect cell.
- a prokaryotic organism such as Escherichia coli
- an expression system using a general eukaryotic cell such as a mammalian cell, yeast, or insect cell.
- baculoviruses are characterized by producing a large amount of inclusion bodies called polynuclear bodies in the nucleus of infected cells.
- the polynuclear body consists of a protein called polyhedrin, and its expression level is said to reach nearly half of the total cellular protein in the late stage of infection.
- polyhedrin protein called polyhedrin
- an expression system using baculovirus-insect cells can also be used.
- baculoviruses used in expression systems using baculovirus-insect cells include autographa californica nuclear polyhedrosis virus, which is a virus that infects night-spotted insects. .
- insect cells examples include Sf9 and Sf20 derived from Spodoptera Frugiperda , High 5 derived from Trichoplusia ni , BTI-TN-5B1-4 (manufactured by Invitrogen), and the like.
- the polynucleotide of the present invention When the polynucleotide of the present invention is incorporated into a baculovirus, it is not directly incorporated into a baculovirus, but is once incorporated into a transfer vector as in a conventional method, and then co-transfected into an insect cell as a host together with the baculovirus genomic DNA. It is preferable to do.
- transfer vector examples include insect cell vectors such as pVL1392, pVL1393, pBlueBacIII (from Invitrogen), pBacPAK9, and AcNPV derived from Autographa california NPV.
- the transfer vector has a polyhedrin promoter in front of the cloning site
- the polynucleotide of the present invention is inserted downstream of this polyhedrin promoter by a conventional method.
- the recombinant expression vector according to the present invention incorporating the polynucleotide of the present invention can be obtained.
- the transfer vector (recombinant expression vector) incorporating the polynucleotide of the present invention and the baculovirus genomic DNA are applied to insect cells as hosts, for example, the calcium phosphate method (JP-A-2-27075), the lipofection method (Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 84, 7413, 1987).
- the calcium phosphate method JP-A-2-27075
- the lipofection method Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 84, 7413, 1987.
- homologous recombination can be induced at the polyhedrin site, and a recombinant baculovirus introduced with the polynucleotide of the present invention can be produced with high efficiency.
- the culture supernatant is collected 3 to 4 days after co-transfection, and recombinant baculo is extracted from the non-recombinant and recombinant baculoviruses that appear in the culture solution by conventional methods such as limiting dilution and plaque method. Selectively purify viruses.
- the recombinant baculovirus according to the present invention incorporating the recombinant expression vector according to the present invention is obtained.
- MOI Multiphcity of Infection
- the polynucleotide of the present invention can be expressed by the following method.
- the obtained cDNA is incorporated into a vector DNA according to a conventional method, for example.
- an expression vector is useful.
- any expression vector can be used that can be replicated and maintained in various prokaryotic and / or eukaryotic host cells and can express and produce the polynucleotide of the present invention.
- Plasmid vectors, phage vectors and viral vectors are included.
- vectors include plasmids derived from Escherichia coli.
- plasmids derived from Escherichia coli.
- pUC119 (Takara Shuzo)
- pQE-TRI plasmid (Qiagen)
- pBluescript II KS + (Stratagene)
- pBR322 (Takara Shuzo)
- PGEM pGEX
- pUC pBS
- pET pGEM-3ZpMAL
- yeast-derived plasmids such as pB42AD, pESP, and pESC
- Bacillus subtilis-derived plasmids such as pHT926, pTB51, and pHY481.
- mammalian cell-derived plasmids include pCAT3, pcDNA3.1, and pCMV.
- bacteriophages such as ⁇ phage such as ⁇ ENBL3 (Stratagene), ⁇ DASHII (Funakoshi), ⁇ gt10, ⁇ gt11 (both manufactured by Toyobo Co., Ltd.), Charomid DNA (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) Cosmid vectors such as Lorist6 (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and the like.
- animal and insect viruses such as retroviruses, vaccinia viruses, and nuclear polyhedrosis viruses.
- a recombinant expression vector incorporating the polynucleotide of the present invention can be prepared by incorporating the polynucleotide of the present invention into the above-described vector or the like by a conventional method.
- the expression vector When a bacterium, particularly E. coli, is used as a host cell, the expression vector generally comprises at least a promoter-operator region, an initiation codon, the polynucleotide of the present invention, a termination codon, a terminator region, and a replicable unit.
- the expression vector preferably contains at least a promoter, a start codon, the polynucleotide of the present invention, and a stop codon.
- DNA encoding a signal peptide, an enhancer sequence, 5'-side and 3'-side untranslated regions of the polynucleotide of the present invention, splicing junctions, polyadenylation sites, and the like can be incorporated into an expression vector.
- the promoter-operator region for expressing the polynucleotide of the present invention in bacteria contains a promoter, an operator, and a Shine-Dalgarno (SD) sequence (for example, AAGG).
- SD Shine-Dalgarno
- preferable examples include Tac promoter, Trc promoter, Trp promoter, lac promoter, recA promoter, bacteriophage-derived T7 promoter, T3 promoter, SP6 promoter, ⁇ PL promoter and the like.
- Examples of the promoter for expressing the polynucleotide of the present invention in yeast include ADH promoter, GAL1 promoter and the like.
- the promoter includes penP promoter.
- examples include SV40-derived promoters, CMV-derived promoters, retrovirus promoters, heat shock promoters, polyhedrin promoters possessed by nuclear polyhedrosis viruses, and the like.
- an enhancer is an effective method for expression.
- a suitable start codon is exemplified by methionine codon (ATG).
- stop codons include common stop codons (eg, TAA, TAG, TGA, etc.).
- the terminator region includes a natural or synthetic terminator.
- a replicable unit refers to a DNA having a function capable of replicating its entire DNA sequence in a host cell, and includes a natural plasmid, an artificially modified plasmid (a DNA fragment prepared from a natural plasmid) and Synthetic plasmids and the like are included.
- enhancer sequences include enhancer sequences of major DNA viruses such as CMV, SV40, polyoma, adeno, papilloma, retrovirus LTR (Long Terminal Repeat), immunoglobulin H chain, and L chain gene enhancer sequences.
- major DNA viruses such as CMV, SV40, polyoma, adeno, papilloma, retrovirus LTR (Long Terminal Repeat), immunoglobulin H chain, and L chain gene enhancer sequences.
- An expression vector can be prepared by linking a promoter, an initiation codon, the polynucleotide of the present invention, a termination codon, and a terminator region continuously and circularly to suitable replicable units.
- an appropriate DNA fragment for example, a linker, other restriction sites, etc.
- a conventional method such as digestion with a restriction enzyme or ligation using T4 DNA ligase, if desired.
- the transformant according to the present invention can be prepared by introducing the above-described recombinant expression vector or the like into a host cell.
- Examples of the host cell include microorganisms [bacteria (for example, Escherichia genus, Bacillus genus), yeast (for example, Saccharomyces genus), animal cells, insect cells, etc.).
- Escherichia genus Escherichia coli Escherichia coli . BL21, BL21 (DE3), DH1, DH5, DH5 ⁇ , M15, HB101, C600, XL-1 Blue, JM109, JM105, JM127, XL1-Blue
- Bacillus B. subtilis , B. brevis , B. borstelenis and the like can be mentioned.
- yeast examples include Aspergillus filamentous fungi such as S. cerevisiae , Scizo. Pombe , A. nidulans , and Pichia pastoria , and Asperigillus nidulans .
- animal cells include monkey cells COS-7, Vero, Chinese hamster cells CHO, mouse L cells, human HeLa cells, and FL cells.
- insect cells include BmN4 and Sf9, but are not particularly limited thereto.
- Transformation of a host cell or transduction can be performed using a conventionally known method.
- transformation can be performed by, for example, calcium chloride method, electroporation method, rubidium chloride method, lipofection method, DEAE-dextran method, lithium method, spheroplast method, virus-based method, etc.
- Introduction is described in, for example, the method of B. Hohn (Method in Enzymology, 68, 299-309, 1979) or Meyerowitz, EM, Gvild, GH, Prestidge, LS and Honess, SS, Gene, 11, 271 (1980) It can be performed by a packaging method or the like.
- the HABP of the present invention is a host cell transfected with a virus containing the recombinant expression vector incorporating the polynucleotide of the present invention obtained by the above method, or the recombinant expression vector.
- a transformant obtained by transforming a host cell is cultured in an appropriate medium according to the host cell, the HABP of the present invention is produced in the culture, and separated and purified from the culture. Can be manufactured.
- the medium preferably contains a carbon source, an inorganic nitrogen source or an organic nitrogen source necessary for the growth of the host cell (transformant).
- the carbon source include glucose, dextran, soluble starch, and sucrose.
- the inorganic or organic nitrogen source include ammonium salts, nitrates, amino acids, corn steep liquor, peptone, casein, meat extract, large extract, and the like. Examples include soybean koji and potato extract.
- other nutrients for example, calcium chloride, sodium dihydrogen phosphate, magnesium chloride], vitamins, and antibiotics may be included.
- Cultivation is performed by methods known in the art.
- the culture conditions such as temperature, medium pH and fermentation time are selected so as to obtain the highest titer of the HAPB of the present invention.
- examples of the medium include TNM-FH medium, Grace's InsectMedium medium [Proc.Natl.Acad.Sci.USA, (1985) 82,8404], Sf-100 II SFM medium (Life Technologies) Manufactured), ExCell400, ExCell405 (all manufactured by JRH Biosciences) and the like.
- a medium obtained by adding fetal calf serum (FCS) or the like to these mediums can be used, and the pH is preferably 5 to 8.
- Culturing of the host cells transfected with the recombinant baculovirus obtained above is usually performed at 20 to 40 ° C., preferably 25 to 30 ° C., for about 12 hours to 10 days, and if necessary, aerated and agitated. You can also
- the host is a bacterium, actinomycete, yeast, or filamentous fungus
- a liquid medium containing the above nutrient source is appropriate.
- the pH is desirably 5 to 8.
- preferred media include LB medium, 2YT medium, Terrific Broth, M9 medium [Molecular Cloning, 3rd ed., Appendix 2.2 (2001) Cold Spring Harbor Laboratory, New York].
- the culture can be performed usually at 14 to 42 ° C., preferably at 28 to 39 ° C. for about 3 to 24 hours, with aeration and agitation as necessary.
- the treatment can be performed usually at 14 to 42 ° C., preferably at 28 to 39 ° C. for about 3 to 96 hours with aeration and stirring as necessary.
- examples of the medium include YPD medium (Molecular Cloning, 3rd ed., Appendix 2.2 (2001) Cold Spring Harbor Laboratory, New York), and the pH is preferably 5-8. Culturing is usually carried out at 14 to 42 ° C., preferably 20 to 35 ° C. for about 12 hours to 10 days, and if necessary, aeration and agitation can be performed.
- MEM medium Science, (1952) 122,501
- DMEM medium Virology, (1959) 8,396)
- RPMI1640 medium J. Am. Med. Assoc., (1967) 199, 519]
- 199 medium proc. SSoc. Exp. Biol. Med., (1950) 73, 1)
- Daigo T2 medium manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
- the pH of the medium is preferably about 6 to 8, and the culture is usually performed at about 30 to 40 ° C., preferably 34 to 38 ° C. for about 12 to 72 hours. .
- HABP of the Present Invention The culture obtained in (2) above is subjected to filtration or centrifugation to remove cells and collected to obtain a culture filtrate or culture supernatant. Next, the HABP of the present invention is separated and purified from the culture filtrate or culture supernatant according to a conventional method generally used for separating and purifying natural or synthetic proteins.
- the HABP separation / purification method of the present invention includes known methods such as salting out, solubility using solvent precipitation, dialysis, ultrafiltration, gel filtration chromatography, molecular weight such as sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, etc.
- the culture is subjected to a conventional method such as filtration or centrifugation, and the cells or cells are collected and an appropriate buffer is obtained.
- a crude extract containing the HABP of the present invention is obtained by a method such as centrifugation or filtration. .
- the crude extract can be isolated and purified by using a conventional method as exemplified above.
- HABP of the present invention For the purification index of HABP of the present invention or its confirmation, Western blotting using the antibody having reactivity to HAPB of the present invention as a probe, ELISA method or the like can be used.
- Examples of the protein thus obtained include a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 4.
- the HABP of the present invention can be produced by a general chemical method according to the amino acid sequence.
- the HABP of the present invention can be obtained by an ordinary chemical synthesis method such as the fluorenylmethyloxycarbonyl method (Fmoc method) or the t-butyloxycarbonyl method (tBoc method). It can also be chemically synthesized using a commercially available peptide synthesizer.
- hyaluronic acid in a sample is brought into contact with HABP of the present invention to form a hyaluronic acid / HABP complex of the present invention, and then the complex and an anti-HABP antibody are supported.
- HABP of the present invention As a method for measuring hyaluronic acid of the present invention, for example, hyaluronic acid in a sample is brought into contact with HABP of the present invention to form a hyaluronic acid / HABP complex of the present invention, and then the complex and an anti-HABP antibody are supported.
- an optical change due to an aggregate produced by the reaction is measured by reacting with the carrier thus obtained, and the amount of hyaluronic acid is calculated from the measured value.
- the measurement of the optical change referred to here is to measure the optical change resulting from the immunoaggregation, and specifically, such as reverse passive agglutination method, immune ratio wax method, immunoturbidimetric method, etc.
- examples thereof include an immunoagglutination method.
- These measurement methods may be carried out according to methods known per se. For example, when using the reverse passive agglutination method, “Tokyo Kagaku Dojin, Secondary Biochemistry Experiment Course 5, Immunobiochemical Research Methods p.36-37” ”,“ Kanehara Publishing Co., Ltd., Sakai Clinical Laboratory Proposal, 30th Edition, p.844-845 ”, etc.
- the immunoturbidimetric method is used for “853 etc.” etc., it may be performed according to the method described in “Kanehara Publishing Co., Ltd., Clinical Laboratory Law Proposal, 30th Edition, p.853-854” etc.
- the anti-HABP antibody used for the measurement of the hyaluronic acid of the present invention may be either a polyclonal antibody or a monoclonal antibody as long as it has reactivity with the HABP of the present invention, but a polyclonal antibody obtained by affinity purification of a single epitope Alternatively, a monoclonal antibody is preferable, and a monoclonal antibody that can efficiently bind to the HABP of the present invention is particularly preferable. Among them, it is preferable to digest as appropriate using enzymes such as pepsin and papain and use them as Fab, Fab ′, (Fab ′) 2 or the like.
- the antibody can be used in a conventional manner, for example, horses according to the method described in “Introduction to Immunological Experiments, Second Printing, Nao Matsuhashi, Society Publishing Center, Inc., 1981”, etc.
- the HABP of the present invention is immunized to animals such as cattle, sheep, rabbits, goats, rats, mice and the like, and when a monoclonal antibody is used as an anti-HABP antibody, the antibody is prepared by a conventional method, that is, Keller and Milstein. According to the cell fusion method established by (G. Kohler and C.
- milstein nature, 256, 495, 1975
- cells from a tumor line of a mouse and spleen cells of a mouse previously immunized with the HABP of the present invention are fused. It is produced by a hybridoma or the like obtained by the treatment.
- antibodies produced by using ussiagrecan having a known amino acid sequence instead of HABP of the present invention or natural ussiagrecan as an antigen can also be used as the “anti-HABP antibody” in the present invention.
- any carrier can be used as long as it is used in a usual immunoassay.
- natural organic polymer substances such as erythrocytes, bacteria, cell debris, liposomes, etc.
- Molecular aggregates such as polymer micelles, synthetic polymer compounds such as polystyrene, polyacrylic acid, polymethacrylic acid, polyacrylamide, polyglycidyl methacrylate, polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polychlorocarbonate, silicone resin, silicone rubber
- Preferred are those prepared using inorganic materials such as porous glass, ground glass, alumina, silica gel, activated carbon, and metal oxide.
- These carriers can be used in various forms such as tubes, beads, disk-like pieces, fine particles, latex particles, and the like.
- latex particles are artificial carriers, and are particularly preferable from the viewpoints that the surface of the carrier is easily chemically treated according to the purpose and that non-specific reactions are unlikely to occur.
- the material is not particularly limited, for example, styrene latex particles such as polystyrene latex particles, acrylic acid latex particles, and the like are preferable.
- polystyrene latex particles obtained by emulsion polymerization without using an emulsifier have a strong surface hydrophobicity, so that they adsorb proteins or peptides smoothly and are based on repulsion between negative charges on the surface. Particularly preferred is that it has the property of being stably dispersed in a solution without an emulsifier.
- modified latex particles for example, carboxylic acid-modified latex particles having a carboxyl group introduced into the polystyrene
- magnetic latex particles latex particles containing magnetic particles
- latex particles used for the measurement of hyaluronic acid commercially available particles can be used, but those having a small average particle diameter of latex particles, that is, those having a large surface area per unit weight, efficiently carry the antibody. It can be used and is preferable because it has good storage stability (dispersibility in an aqueous solution). More specifically, an average particle diameter of 0.05 to 0.5 ⁇ m, preferably 0.1 to 0.4 ⁇ m is preferable.
- an average particle diameter of 0.05 to 0.5 ⁇ m, preferably 0.1 to 0.4 ⁇ m is preferable.
- the sedimentation of latex particles can be suppressed, and the anti-HABP antibody can be efficiently supported on the latex particles. That is, by using such anti-HABP antibody-supported latex particles, the stability of the measurement reagent is improved, and highly accurate measurement is possible.
- the method for supporting the anti-HABP antibody on the carrier is not particularly limited as long as the anti-HABP antibody and the carrier are brought into contact with each other.
- all of the well-known supporting methods used in this field are listed.
- the so-called physical adsorption method [anti-HABP antibody is physically adsorbed on a carrier and anti-HABP antibody is supported on the carrier] No. 41946, Sumilon Technical Report, SUMILON ELISA Series 1, Introduction of ELISA Measurement Methods, Issued by Sumitomo Bakelite Co., Ltd., Sumilon Technical Report, SUMILON ELISA Series 2, ELISA Product Solid Surface, Issued by Sumitomo Bakelite Co., Ltd.) A typical example.
- the method is usually a synthetic polymer compound such as polystyrene, polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, and polychlorocarbonate, and activated carbon such as porous glass, ground glass, alumina, silica gel, metal oxide, and hydroxyapatite.
- a substance is used as a carrier, it is used as a preferred method.
- glass, polystyrene, polyvinyl chloride, etc. are used as forms, such as a tube, a bead, a disk piece, microparticles
- an anti-HABP antibody may be carried on the carrier according to the loading method recommended in the instruction manual.
- the latex particles are usually contained in a solvent such as a buffer containing 0.05 to 2 mg / ml, preferably 0.1 to 1 mg / ml of anti-HABP antibody. Usually added and suspended at 0.1 to 10% (w / v), preferably 0.2 to 5% (w / v), and usually reacted at 5 to 30 ° C. for 2 to 3 hours. Thereafter, it can be supported by a post-treatment performed in this field, for example, a centrifugal treatment such as a blocking treatment using a solution containing an appropriate protein such as bovine serum albumin (BSA).
- BSA bovine serum albumin
- the method for measuring hyaluronic acid using the HABP of the present invention will be described in more detail below by taking, for example, an immunoturbidimetric method using latex particles as a carrier. That is, a sample containing hyaluronic acid (more specifically, for example, body fluid such as blood, plasma, serum, joint fluid, auxiliary fluid, lymph fluid, bone marrow fluid, urine, etc.) is contacted with the reagent containing HABP of the present invention. Mix to form hyaluronic acid / HABP complex of the invention.
- body fluid such as blood, plasma, serum, joint fluid, auxiliary fluid, lymph fluid, bone marrow fluid, urine, etc.
- a reagent comprising the anti-HABP antibody as described above supported (sensitized) on latex particles having an average particle size of 0.05 to 0.5 ⁇ m, preferably 0.1 to 0.4 ⁇ m, and the above composite
- the amount of hyaluronic acid in the sample is quantified by reacting with the body, measuring the degree of aggregation resulting from it using, for example, absorbance, and determining its concentration from a standard curve obtained in advance.
- the absorbance measurement wavelength is usually 340 to 1000 nm, preferably 500 to 900 nm.
- the degree of aggregation is not limited to the absorbance, and any method known per se may be used.
- the value may be measured by a method such as nephelometry or counting immunoassay.
- a suitable aggregation accelerator may be added.
- the concentration of the HABP used in the HABP reaction of the present invention varies depending on how much the calibration limit of hyaluronic acid is set.
- the concentration is higher than the concentration capable of binding to all the hyaluronic acid corresponding to the calibration limit concentration that is normally set, preferably 5 times the concentration, more preferably 10 times the concentration.
- the upper limit in this case is not particularly limited as long as it is an amount that does not affect the measurement, but considering an economical amount, it is usually 50,000 times or less, preferably 10,000 times or less.
- the calibration limit is usually 10 to 1000 ng / ml. Therefore, the concentration of HABP used in the HABP reaction of the present invention is determined based on this calibration limit. What is necessary is just to set suitably within the range.
- the pH at the time of the reaction is not particularly limited as long as it does not prevent the formation of the complex, and is usually 5 to 10, preferably 6 to 8. There is no particular limitation as long as it does not hinder the formation of the complex, and a range of 5 to 40 ° C. is usually mentioned. Further, the reaction time may be appropriately reacted for several seconds to several hours.
- the concentration of the anti-HABP antibody-supporting carrier used in the reaction of the anti-HABP antibody-supporting carrier with the hyaluronic acid / HABP complex of the present invention is as described above.
- concentration of the HABP of the present invention when latex particles having an anti-HABP antibody loading of 0.01 to 0.1 mg / mg are used, usually 0.2 to 25 mg / ml, preferably 0.5
- concentration is within the range of 12 mg / ml, hyaluronic acid in the sample can be accurately measured.
- reaction conditions and reaction time for reacting the anti-HABP antibody-supporting carrier with the hyaluronic acid / HABP complex of the present invention are the same as those when the HABP of the present invention is reacted with hyaluronic acid. Good.
- the reagent kit for measuring hyaluronic acid of the present invention contains the HABP of the present invention as a constituent component.
- a reagent comprising an anti-HABP antibody-supporting carrier may be included.
- a standard substance may be included, and the standard substance is usually used in this field. For example, potassium hyaluronate (derived from chicken crown: manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), sodium hyaluronate ( And Streptococcus genus: Wako Pure Chemical Industries, Ltd.).
- the HABP in the reagent kit for measuring hyaluronic acid of the present invention may be specifically a reagent containing the HABP of the present invention, and is obtained by dissolving the HABP of the present invention in a suitable buffer solution.
- the buffer used for this purpose include all buffers commonly used in immunoassays such as Tris buffer, phosphate buffer, veronal buffer, borate buffer, and Good's buffer.
- the concentration is usually 5 to 300 mM, preferably 10 to 150 mM, and the pH is appropriately selected from the range of usually 5 to 10, preferably 6 to 8.
- the concentration of the HABP of the present invention in the reagent comprising the HABP of the present invention may be set so that the concentration at the time of reaction is the above concentration, and is usually 0.1 to 500 ⁇ g / ml, preferably 0. It is appropriately selected to be in the range of 0.5 to 100 ⁇ g / ml.
- the reagent comprising the anti-HABP antibody-supporting carrier in the hyaluronic acid measurement reagent kit of the present invention may be any reagent as long as it contains the anti-HABP antibody-supporting carrier, and the anti-HABP antibody-supporting carrier is contained in a suitable buffer. Suspended or freeze-dried.
- the buffer used for this purpose is not particularly limited as long as it does not have the property of preventing the anti-HABP antibody according to the present invention from binding to the HABP of the present invention, and is a reagent comprising the above-mentioned HABP of the present invention.
- the same buffer as used may be mentioned, and the pH and concentration may be set according to the above values.
- a reagent comprising an anti-HABP antibody-supporting carrier is often used for measurement in the form of a suspension suspended in a solution such as a buffer solution.
- the buffer solution used in is not particularly limited as long as it is usually used in this field, but usually has a buffering action around neutral pH 5.0 to 10.0, preferably pH 6.5 to 8.5, for example, Phosphate buffer, Tris buffer, Good buffer and the like are preferable.
- neutral pH 5.0 to 10.0 preferably pH 6.5 to 8.5
- Phosphate buffer, Tris buffer, Good buffer and the like are preferable.
- the buffering agent concentration of these buffer solutions is appropriately selected from the range of usually 10 to 500 mM, preferably 10 to 300 mM.
- the reagents are usually used in this field, for example, stabilizers such as sugars, proteins, surfactants, salts such as NaCl, preservatives, etc., within the range normally used in this field. May be added.
- the concentration of the anti-HABP antibody-supporting carrier varies depending on the type of the carrier used and the anti-HABP antibody, but the concentration during the reaction is different.
- the concentration may be set so as to be the above-mentioned concentration, and is appropriately selected so as to be in the range of usually 1 to 100 mg / ml, preferably 2 to 50 mg / ml.
- an immune reaction accelerator for example, polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, etc.
- an immune reaction accelerator for example, polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, etc.
- the protein component in the measurement reagent can be prevented from being denatured due to some factor and becoming non-specific turbidity. Alternatively, it can be reduced.
- the reagent may contain a monomer or polymer used as an aggregation accelerator described in JP 2002-365296 A as an aggregation accelerator, and the concentration range thereof is disclosed in JP 2002-365296. What is necessary is just to select according to the value of gazette description.
- the monomer or polymer may be prepared according to the method described in the above publication.
- the sample according to the present invention may be a sample containing hyaluronic acid, and specific examples thereof include body fluids such as blood, plasma, serum, joint fluid, auxiliary fluid, lymph fluid, bone marrow fluid, urine, and the like. Among them, serum, urine and the like are preferable.
- RNA Total RNA was recovered from bovine nasal septal cartilage as follows using QIAGEN's RNeasy Lipid Tissue Kit according to the product protocol. First, 1 g of bovine nasal septal cartilage (New Zealand) was put into a tube containing 5 ml of QIAzol Lysis Reagent attached to the kit, and the tissue was crushed using polytron.
- Buffer RW1 4 ml of Buffer RW1 attached to the kit was added to the column, and centrifuged at 25 ° C. and 3000 G for 5 minutes. Thereafter, 2.5 ml of Buffer®RPE was added and centrifuged at 3000 G for 2 minutes at 25 ° C. Furthermore, 2.5 ml of Buffer®RPE was added and centrifuged at 25 ° C. and 3000 G for 5 minutes.
- the RNeasy Midi spin column to which total RNA was bound after the above treatment was transferred to a new collection tube.
- the operation of adding 150 ⁇ l of sterilized water to the membrane of the RNeasy Midi spin column and centrifuging at 25 ° C. and 3000 G for 3 minutes was repeated twice to elute the total RNA from the membrane.
- the absorbance of the obtained eluate was measured to confirm that 500 ⁇ g of total RNA could be recovered from 1 g of bovine nasal septal cartilage.
- a 5 ⁇ l portion of the collected total RNA solution was electrophoresed on a 1% agarose gel.
- mRNA was purified by the following method. First, 250 ⁇ l of Elution Buffer (supplied with the kit) was added to 250 ⁇ l of the total RNA aqueous solution obtained in (1) above, and 500 ⁇ l of Oligotex TM -dT30 was further added. Incubate at 65 ° C. for 5 minutes, then place the reaction on ice for 3 minutes. 0.1 ml of 5M NaCl was added to the reaction solution and incubated at 37 ° C. for 10 minutes.
- Elution Buffer supplied with the kit
- 500 ⁇ l of Oligotex TM -dT30 was further added. Incubate at 65 ° C. for 5 minutes, then place the reaction on ice for 3 minutes.
- 0.1 ml of 5M NaCl was added to the reaction solution and incubated at 37 ° C. for 10 minutes.
- the reaction solution was centrifuged at 15000 rpm for 3 minutes, the supernatant was removed, and the pellet was dissolved in 450 ⁇ l TE (Tris-EDTA buffer, pH 8.0). The solution was then incubated at 65 ° C. for 5 minutes and placed on ice for 3 minutes. Thereafter, the solution was centrifuged at 15000 rpm for 3 minutes, and 400 ⁇ l of the supernatant was collected. After normal ethanol precipitation, the precipitate was dissolved in 10 ⁇ l TE to obtain a purified mRNA solution.
- Tris-EDTA buffer pH 8.0
- Primer The following primer sequence was designed based on the gene sequence of the well-known usa Inc. ( Bos taurus aggrecan) disclosed in the DDBJ (DNA Data Bank of Japan) database, and synthesized by a conventional synthesis method.
- the primer has a sequence corresponding to a part of a known base sequence that encodes the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd position including the hyaluronic acid binding site of the known siaglecan. Further, a restriction enzyme site of Eco RI is inserted into primer F and primer R, and a stop codon is added to primer R.
- Primer sequence primer F atgaattcatgaccactttactcttggtgtttg (SEQ ID NO: 5)
- primer R atgaattctcatggagagggcgccgctgaaacacc (SEQ ID NO: 6)
- PCR was performed under the following reaction conditions, after heating at 98 ° C. for 2 minutes, 95 ° C. for 15 seconds, 63 ° C. for 30 seconds, 68 ° C. for 2 minutes 30 times, and finally at 68 ° C. for 5 minutes. .
- PCR reaction conditions Sterile water 71 ⁇ l 1 ⁇ l of RNA solution primer F 1 ⁇ l primer R 1 ⁇ l MgCl 2 4 ⁇ l dNTP (mixture of dATP, dGTP, dCTP, dTTP) 10 ⁇ l Buffer 10 ⁇ l KOD 2 ⁇ l
- the obtained PCR product contains the sequence of the restriction enzyme Eco RI. Therefore, the obtained PCR product was digested and cleaved at this restriction enzyme site.
- the obtained PCR product fragment was electrophoresed with 1% agarose containing 1 ⁇ g / mL ethidium bromide.
- lane 1 shows a molecular weight marker
- DNA Marker 6 ⁇ / Sty I, manufactured by Nippon Gene Co., Ltd.
- lane 2 shows a result when a PCR product fragment is used as a sample.
- the arrow indicates the fraction of the PCR product fragment.
- a main band was confirmed at about 2100 bp (fraction indicated by the arrow in FIG. 2). This fraction was cut out and the PCR product fragment was purified using GENEPURE (manufactured by Nippon Gene).
- PCR was performed according to the method to obtain a PCR product.
- the base encoding the 129-130th amino acids (Ile-Leu) from the N-terminus is “ATTCTA”, but 388 to 393 at the corresponding position of the obtained cDNA.
- the second base was “ATCTAT”. All other base sequences were identical.
- the base sequence of the cDNA obtained in (3) above is the sequence represented by SEQ ID NO: 3, and the recombinant vector (pVL1392 / cDNA) obtained in (4) above is It was confirmed that the recombinant vector incorporated the cDNA.
- the amino acid sequence encoded by the base sequence of SEQ ID NO: 3 deduced from the base sequence of SEQ ID NO: 3 is an amino acid sequence having a total length of 692 represented by SEQ ID NO: 4.
- the amino acid sequence of the known usa Inc. was the leucine at the 131st amino acid from the N terminus, but the N terminus of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4
- the 131st amino acid was tyrosine.
- the sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue out of the total length of 2327 amino acids of known siaglecan coincided with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4.
- the sf9 cells were cultured in media such as TNM-FH medium 4mL containing 10% FCS, medium was prepared substituting the 2 ⁇ 10 6 / 25cm 2 in Buffer A for 1 ml. Thereto, 1 ml of the DNA solution prepared above was added dropwise, and incubated as it was at 27 ° C. for 4 hours to perform cotransfection. After that, sf9 cells were washed with a new TNM-FH medium, and a new 3 ml TNM-FH was newly added. The medium was added and cultured for 3 days. Since the recombinant virus in which the recombinant vector pVL1392 / cDNA was incorporated into its genomic DNA appeared in the culture solution, the culture solution was collected after culturing sf9 cells for 3 days.
- HABP of the present invention Expression of HABP of the present invention
- the number of recombinant viruses in the culture solution obtained in (6) above was examined by a plaque assay method which is a conventional method.
- the Aggrecan antibody column used was (1) an anti-HABP monoclonal antibody prepared by a conventional method using Aggrecan (manufactured by Seikagaku Corporation) purified from bovine nasal septal cartilage by a modified method of Laurent et al. The antibody was used, and (2) NHS-activated Sepharose 4fast flow (GE Healthcare Bioscience) was used as a carrier, and the antibody was prepared by the recommended method described in the manual attached to the carrier.
- HABP of the present invention was confirmed by Western blotting by the following method. SDS-PAGE was performed using the culture supernatant before affinity purification, the culture supernatant after affinity purification, and the protein obtained by affinity purification, respectively, and then transferred to a PVDF membrane. After blocking the PVDF membrane, peroxidase-labeled anti-Aggrecan antibody was reacted at room temperature for 1 hour. The PVDF membrane was washed 3 times with PBS-T, then light-emitted using ECLplus (GE Healthcare Bioscience), and exposed to UV film.
- ECLplus GE Healthcare Bioscience
- the peroxidase-labeled anti-Aggrecan antibody used above is the same anti-Aggrecan monoclonal antibody labeled with horseradish peroxidase in the usual manner as used in the above-mentioned affinity chromatography Aggrecan antibody column. Separately, the gel after SDS-PAGE was stained with silver by a conventional method.
- FIG. 3 (a) is the result of silver staining of the gel after SDS-PAGE, and (b) is the result of Western blotting using a peroxidase-labeled anti-Aggrecan antibody.
- lane 1 is a protein molecular weight marker Precision Plus protein standard (manufactured by BIO-RAD)
- lane 2 is a culture supernatant before affinity purification
- lane 3 is a culture top after affinity purification.
- Kiyoshi and Lane 4 show the results when the protein obtained by affinity purification was used as a sample.
- the arrow of FIG.3 (b) shows the fraction of HABP of this invention.
- the protein size of the fraction crossed with the Aggrecan antibody confirmed by SDS-PAGE is about 90 kDa, which is larger than the molecular weight estimated from the amino acid sequence of the known usa Inc. disclosed in the database, and added with a sugar chain. It was speculated that. From the above, it was confirmed that the expressed protein was a protein that crossed with the anti-Aggrecan antibody. Therefore, it was confirmed that the target HABP of the present invention could be expressed by the above method.
- Example 2 Measurement of hyaluronic acid 1 (preparation of calibration curve) (1) Preparation of reagent solution 1) Preparation of first reagent solution (containing HABP of the present invention) 100 ⁇ g of HABP of the present invention after affinity chromatography purification obtained in Example 1 (7) was added to 10 ml of 100 mM HEPES buffer solution. Dissolved in (containing 0.1% BSA and 1% NaCl, pH 7.0). This was used as the first test solution.
- Second test solution (anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles)
- 800 ⁇ l of purified water and 100 ⁇ l of latex particle solution (manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd .: E05K29S, 10 wt%, latex particle size) 0.3 ⁇ m)
- 100 ⁇ l of 50 mM ASES buffer containing anti-HABP monoclonal antibody (anti-HABP monoclonal antibody concentration: 4.24 mg / ml, pH 6.5), and stirring.
- the mixture was incubated at room temperature for 100 minutes to obtain a latex particle suspension carrying an anti-HABP monoclonal antibody.
- concentration of the anti-HABP monoclonal antibody at the time of incubation is about 0.385 mg / mL.
- the anti-HABP monoclonal antibody is prepared by a conventional method using hyaluronic acid binding protein (manufactured by Seikagaku Corporation) purified from bovine nasal septal cartilage by a modified method of Laurent et al.
- the obtained latex particle suspension carrying the anti-HABP monoclonal antibody was centrifuged at 15000 rpm for 15 minutes. The supernatant was removed, and 1 ml of 50 mM borate buffer (containing 2.5% BSA, pH 7.3) was added to the pellet at the bottom of the container, followed by sonication for 1 minute with ice cooling to resuspend the pellet. I let you. Furthermore, it incubated at room temperature for 120 minutes, stirring, and coat
- the latex particle suspension was centrifuged at 15000 rpm for 15 minutes. The supernatant was removed, and 1 ml of 50 mM borate buffer (containing 0.5% BSA, pH 7.3) was added to the pellet at the bottom of the container. Thereafter, the pellet was resuspended by sonication for 1 minute with ice cooling, and this was diluted 3.33 times with 50 mM borate buffer (containing 0.5% BSA, pH 7.3). Two reagent solutions were used.
- Comparative Example 1 (1) Preparation of test solution 1) Preparation of first test solution (containing natural product HABP) 20 ⁇ g of hyaluronic acid binding protein (purified from bovine nasal septal cartilage by a modified method of Laurent et al. (Manufactured by Seikagaku Corporation). Hereinafter, “natural product HABP”) was dissolved in 10 ml of 100 mM HEPES buffer (containing 0.1% BSA and 1% NaCl, pH 7.0). This was used as the first test solution. 2) Preparation of second test solution (anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles) The same second test solution as prepared in Example 2 (1) 2) was used. 3) Hyaluronic acid solution The same hyaluronic acid solution prepared in Example 2 (1) 3) was used.
- first test solution containing natural product HABP 20 ⁇ g of hyaluronic acid binding protein (purified from bovine nasal septal cartilage by a modified method of Laurent et al. (
- Example 3 Measurement of hyaluronic acid 2 (effect of prozone phenomenon) (1) Preparation of reagent solution 1) Preparation of first reagent solution (containing HABP of the present invention) 100 ⁇ g of HABP of the present invention after affinity chromatography purification obtained in Example 1 (7) was added to 10 ml of 100 mM HEPES buffer solution ( It was dissolved in 0.1% BSA and 1% NaCl, pH 7.0). This was used as the first test solution. 2) Preparation of second test solution (anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles) The same second test solution as prepared in Example 2 (1) 2) was used.
- Comparative Example 2 (1) Preparation of reagent solution 1) Preparation of first reagent solution (containing natural product HABP) 20 ⁇ g of natural product HABP (manufactured by Seikagaku Corporation)) was added to 10 ml of 100 mM HEPES buffer solution (0.1% BSA and 1%). It was dissolved in NaCl containing, pH 7.0). This was used as the first test solution. 2) Preparation of second reagent (anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles) The same second reagent as prepared in Example 3 (1) 2) was used. 3) High-concentration hyaluronic acid solution The same high-concentration hyaluronic acid solution prepared in Example 3 (1) 3) was used.
- Example 4 Measurement of hyaluronic acid 3
- Preparation of reagent solution 1 Preparation of first reagent solution (containing HABP of the present invention)
- the HABP of the present invention after affinity chromatography purification obtained in Example 1 (7) has a concentration in the first reagent solution. It was dissolved in 100 mM HEPES buffer (containing 0.1% BSA and 1% NaCl, pH 7.0) to a concentration of 2 ⁇ g / ml to 8 ⁇ g / ml. This was used as the first test solution.
- Second test solution anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles
- the same second test solution as prepared in Example 2 (1) 2 was used.
- the nucleotide sequence encoding the 129-130th amino acids (Ile-Leu) from the N-terminal of the known amino acid sequence of siaglecan is “ATTCTA”, which is obtained in Example 1 (5).
- the nucleotide sequence from the 388th to the 393rd positions of the cDNA corresponding to the above-mentioned portion of the known usa Titan was “ATCTAT”. Therefore, using the cDNA obtained in Example 1 (5), a treatment was carried out to change the 388th to 393rd bases of this cDNA from “ATTCTA” to “ATTCTA”.
- the base sequence of the modified cDNA subjected to the above process was decoded using Base ⁇ ⁇ Station (Bio-Rad Laboratories Co., Ltd.).
- the base sequence of the modified cDNA encodes the amino acid sequence from the N-terminal to the 692nd amino acid residue of the known usa Inc. (SEQ ID NO: 8) (that is, the known aggrecan sequence). It was confirmed that the 129-130th amino acid residues from the N-terminus encoded an amino acid sequence of Ile-Leu).
- a recombinant vector pVL1392 was prepared in the same manner as in Example 1 (4) except that the modified cDNA obtained above was used instead of the PCR product fragment prepared in Example 1 (3) as a recombinant vector. / A modified cDNA was prepared.
- the amino acid sequence of a known usa Titan disclosed in the database is expressed by expressing the corrected cDNA in the same manner as in Example 1 (6) to (7) except that the obtained recombinant vector pVL1392 / corrected cDNA is used.
- HABP having the same amino acid sequence from the N-terminal to the 693rd amino acid sequence was obtained (hereinafter referred to as “HABP of known amino acid sequence”).
- test solution Preparation of test solution 1) Preparation of first test solution (containing HABP of known amino acid sequence) The concentration of HABP of known amino acid sequence obtained in (1) above in the first test solution is 2 ⁇ g / ml to 8 ⁇ g / ml. In 100 mM HEPES buffer (containing 0.1% BSA and 1% NaCl, pH 7.0). This was used as the first test solution. 2) Preparation of second reagent (anti-HABP monoclonal antibody-sensitized latex particles) The same second reagent as prepared in Example 4 (1) 2) was used. 3) Hyaluronic acid solution The same hyaluronic acid solution prepared in Example 4 (1) 3) was used.
- the absorbance increased as the concentration of the HABP of the present invention was increased. That is, it can be seen that the sensitivity sufficient for the measurement of hyaluronic acid can be obtained by adjusting the concentration of HABP.
- the HABP of the present invention has sufficient reactivity to allow measurement of hyaluronic acid, and therefore, if HABP of the present invention is used, a certain concentration of HABP is used. It can also be seen that the measurement kit for measuring a certain concentration of hyaluronic acid can be supplied.
- the HABP of the present invention is a recombinant product, it has an excellent quality that it can be obtained at a low cost and in a large amount as compared with a natural aggrecan and there is no variation in quality.
- the HABP of the present invention since the HABP of the present invention has the above-described features, it can be used to measure hyaluronic acid at low cost and with high accuracy.
- ⁇ ⁇ ⁇ indicates the results of measurement using the first reagent containing HABP of the present invention
- ⁇ ⁇ ⁇ indicates that the first reagent containing HABP having a known amino acid sequence is used. The results when measurements are made are shown respectively.
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Abstract
配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、且つコードされる蛋白質はヒアルロン酸結合能を有するものである塩基配列からなるポリヌクレオチド、該タンパク質、該タンパク質を用いるヒアルロン酸の測定方法、及び該タンパク質を構成成分として含有するヒアルロン酸測定用試薬キットに関する。
Description
本発明は、安価で且つ品質の安定性に優れた、新規なヒアルロン酸結合能を有するタンパク質(ヒアルロン酸バインディングプロテイン。以下、「HABP」と略す場合がある。)、及びこれを用いた、高精度なヒアルロン酸の測定方法並びにその試薬キットに関する発明である。
ヒアルロン酸はムコ多糖の一種で、主として動物の関節液や眼球ガラス体液、臍帯、真皮表層などの結合組織等に含まれる。その血中濃度は、リウマチ、癌、肝臓疾患時に上昇することが知られ、これら疾患に対する診断に有用なものとされており、種々の測定方法が現在開発されている。
ヒアルロン酸の測定方法としては、HABPを用い、酵素免疫測定法(ELISA)により測定する方法(特許文献1,特許文献2等)や、ラテックス粒子を用いた免疫学的測定方法が知られている。
中でも、ラテックス粒子を用いた免疫学的測定方法は、その簡便さや汎用装置への対応が容易なことから、広く使用されるようになっている。ヒアルロン酸測定用試薬として、ラテックス粒子を用いた測定法としては、HABPを担体粒子に担持させ、試料中のヒアルロン酸と反応させて反応混合物を生成させ、それを検出することによりヒアルロン酸を測定する方法(特許文献3)等が知られている。
一方、HABPとしては、アグレカン等のプロテオグリカン、リンクプロテイン、ヒアルロネクチン等が知られている。その中で、アグレカン(aggrecan)は、軟骨に存在するプロテオグリカンの約90%を占める高分子量のプロテオグリカンで、コンドロイチン硫酸を含み、ヒアルロン酸と結合した形で軟骨組織に存在する。また、ヒアルロン酸の測定にも用いられている。
しかしながら、従来よりヒアルロン酸の測定に用いられているアグレカンは、ウシの軟骨精製品であり、また天然品であるが故にロット差があり、価格も高いという問題点を有していた。
そのため、品質にばらつきのない、安価なHABP、及び該HABPを得る方法の開発が望まれていた。
上記状況に鑑み、本発明は、新規なHABP、及びこれを品質にばらつきがなく、且つ安価に得る方法、及び該HABPを用いた高精度なヒアルロン酸測定方法及び試薬キットの提供を課題とする。
本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、ウシ軟骨mRNAより調製したcDNAライブラリーより、HABPの一つであるウシアグレカンの公知のアミノ酸配列と相同性の高いアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するcDNAが得られることを見出した。更に、該cDNAを含有する組換え発現ベクターによって宿主細胞をトランスフェクションさせ、該宿主細胞を培養することによって、該cDNAを発現させて本発明のHABPを得ることができることを見出した。
更に本発明のHABPを用いてヒアルロン酸の測定を行えば、従来の天然品アグレカンを用いたヒアルロン酸の測定方法と比較して、品質のばらつきがなく、プロゾーン現象を抑えることができ、高精度のヒアルロン酸測定を行うことが出来ることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、下記の構成よりなる。
(1)配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基であり、且つヒアルロン酸結合能を有するタンパク質、のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド。
(2)配列番号2で表されるアミノ酸配列からなり、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基である、ヒアルロン酸結合能を有するタンパク質。
(3)配列番号1で表される塩基配列のポリヌクレオチドを含有する組換え発現ベクターを組み込んだバキュロウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られる形質転換体を培養し、培養液からタンパク質を分離・精製することを特徴とする、上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質の製造方法
(4)試料中のヒアルロン酸と、上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質を接触させてヒアルロン酸と該タンパク質との複合体を形成させ、次いで該複合体と、該タンパク質に特異的な抗体を担持させた担体とを反応させ、該反応により生じた凝集物による光学的変化を測定し、該測定値からヒアルロン酸量を算出することを特徴とする、ヒアルロン酸の測定方法。
(5)上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質を構成成分として含有する、ヒアルロン酸測定用試薬キット。
(1)配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基であり、且つヒアルロン酸結合能を有するタンパク質、のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド。
(2)配列番号2で表されるアミノ酸配列からなり、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基である、ヒアルロン酸結合能を有するタンパク質。
(3)配列番号1で表される塩基配列のポリヌクレオチドを含有する組換え発現ベクターを組み込んだバキュロウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られる形質転換体を培養し、培養液からタンパク質を分離・精製することを特徴とする、上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質の製造方法
(4)試料中のヒアルロン酸と、上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質を接触させてヒアルロン酸と該タンパク質との複合体を形成させ、次いで該複合体と、該タンパク質に特異的な抗体を担持させた担体とを反応させ、該反応により生じた凝集物による光学的変化を測定し、該測定値からヒアルロン酸量を算出することを特徴とする、ヒアルロン酸の測定方法。
(5)上記(2)に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質を構成成分として含有する、ヒアルロン酸測定用試薬キット。
本発明は、製品のばらつきのない、新規で且つ安価なHABPを提供する。本発明のHABPは、リコンビナント品であるため、天然品のアグレカンと比較して、安価に且つ大量に得ることができ、また品質のばらつきもないという、優れた品質を有する。
また、本発明のHABPは、上記の特長を有することから、これを用いれば、安価に且つ高精度なヒアルロン酸の測定を行うことが出来る。
ウシ軟骨のアグレカン(Bos taurus aggrecan)は、ヒアルロン酸結合能を有するタンパク質、すなわちHAPBで、全2327個のアミノ酸からなる。また、その遺伝子配列も解読されており、DDBJ(DNA Data Bank of Japan)データベースに、その遺伝子配列と全アミノ酸配列が開示されている。上記データベースに開示された、ウシアグレカンの公知の全アミノ酸配列を配列番号7に示す。ウシアグレカンのヒアルロン酸結合部位は、該配列のN末端から153番目~352番目のアミノ酸残基の部分にある。
本発明のポリヌクレオチドは、配列番号7で表される、公知のウシアグレカンの全アミノ酸配列のうち、ヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドと類似したものであるが、公知のアグレカンのアミノ酸配列のN末端から131番目のロイシン残基が、それ以外のアミノ酸由来の残基に置き換わったアミノ酸配列(すなわち配列番号2で表されるアミノ酸配列)、をコードする塩基配列からなるものである。
すなわち、本発明のポリヌクレオチドは、「配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基であり、且つヒアルロン酸結合能を有するタンパク質、のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド。」である。
中でも、配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸がイソロイシン残基であり、且つ131番目のアミノ酸残基がチロシン残基であるアミノ酸配列(すなわち、配列番号4で表されるアミノ酸配列)をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチドが好ましい。
また、本発明のポリヌクレオチドは、ウシアグレカンの公知の全アミノ酸配列のうちヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドに類似するものであるが、ウシアグレカンの公知の塩基配列では、ウシアグレカンの公知のアミノ酸配列のN末端から130-131番目のアミノ酸残基(Ile-Leu)をコードする塩基配列は「ATTCTA」であるが、これに対応するアミノ酸配列をコードする、5'末端から388~393番目の塩基配列が、「ATTCTA」から別の塩基配列に置き換わった塩基配列(すなわち配列番号1で表される塩基配列)を有するものである。
すなわち、本発明のポリヌクレオチドは、「配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドが、配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドであり、該ポリヌクレオチドの5'末端から390番目の塩基はT、C、Aから選択される塩基であり、5'末端から391番目~393番目の塩基はTAT、TAC、TCT,TCC、TCA、TCG、ACT、ACC、ACA、ACG、TGT、TGC、AAT、AAC、CAA,CAGから選択される塩基配列であるポリヌクレオチド(尚、Aはアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンをそれぞれ表す。以下同じ。)。」である。
尚、配列番号1で表される塩基配列から明らかな如く、本発明のポリヌクレオチドの塩基配列のうち388~389番目の塩基配列は「AT」である。
上記本発明のポリヌクレオチドの中でも、配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドであり、且つ該ポリヌクレオチドの5'末端から391番目~393番目の塩基がTATであるポリヌクレオチドが好ましい。
更に、5'末端から391番目~393番目の塩基がTATであって、且つ5'末端から390番目の塩基がCである塩基配列(すなわち、配列番号3で表される塩基配列)のポリヌクレオチドが好ましい。
比較のために、ウシアグレカンの公知の全2327アミノ酸のアミノ酸配列のうち、ヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列を配列番号8に示す。また、該塩基配列がコードするアミノ酸配列(ウシアグレカンの公知の全アミノ酸配列のうち、ヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列)を配列番号9に示す。
本発明のHABPは、上記したウシアグレカンの公知の全アミノ酸配列のうち、ヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列からなるタンパク質に類似するものであるが、ウシアグレカンの公知のアミノ酸配列では、そのN末端から131番目のアミノ酸残基はロイシン残基であるが、これがそれ以外のアミノ酸残基に置き換わったアミノ酸配列(すなわち配列番号2で表されるアミノ酸配列)からなるものである。
すなわち、本発明のHABPとは、「配列番号2で表されるアミノ酸配列からなり、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基であるHABP。」である。
好ましくは、配列番号2で表されるアミノ酸配列であって、且つN末端から131番目のアミノ酸残基がチロシン残基であるアミノ酸配列(すなわち、配列番号4で表されるアミノ酸配列)からなるタンパク質が挙げられる。
以下、本発明について詳細に説明する。
I.本発明のポリヌクレオチドの調製
本発明のポリヌクレオチドは、公知のDNA合成法で得ることができる。例えば、DNAの合成に通常行われている、DNAシンセサイザーを用い、通常のホスホアミダイト法にてポリヌクレオチドを合成し、陰イオン交換カラムクロマトグラフィーを用いる常法により精製することにより得ることができる。
本発明のポリヌクレオチドは、公知のDNA合成法で得ることができる。例えば、DNAの合成に通常行われている、DNAシンセサイザーを用い、通常のホスホアミダイト法にてポリヌクレオチドを合成し、陰イオン交換カラムクロマトグラフィーを用いる常法により精製することにより得ることができる。
また、本発明のポリヌクレオチドは、例えば動物組織等からmRNAを抽出し、該mRNAをもとに、既知の方法によって合成したcDNAとして得ることもできる。
本発明のHABPを合成するmRNAは、鼻中隔軟骨、気管軟骨等の動物の軟骨組織等から得ることができる。
以下に、例えばウシ鼻中隔軟骨等の動物の軟骨組織から、本発明のポリヌクレオチドを調製する方法を例示する。
(1)total RNAの回収
まず、ウシの鼻中隔軟骨等の組織を常法により破壊した後、total RNAを常法により抽出する。
例えば、Chirgwinら(Biochemistry, 18, 5294-5299, 1979)の方法に従って、グアニジン・チオシアネート処理後、塩化セシウム密度勾配遠心を行うことによって、total RNAを調製する方法や、グアニジン・チオシアネート-ホット・フェノール法、グアニジン・チオシアネート-グアニジン塩酸法、グアニジン・チオシアネート-フェノール・クロロホルム法等が挙げられる。
また、total RNAを得るためのキットが種々市販されているので、それを用いてもよい。例えば、RNeasy Lipid Tissue Midi Kit、 RNeasy Lipid Tissue Mini Kit(QIAGEN社製)等が挙げられる。
まず、ウシの鼻中隔軟骨等の組織を常法により破壊した後、total RNAを常法により抽出する。
例えば、Chirgwinら(Biochemistry, 18, 5294-5299, 1979)の方法に従って、グアニジン・チオシアネート処理後、塩化セシウム密度勾配遠心を行うことによって、total RNAを調製する方法や、グアニジン・チオシアネート-ホット・フェノール法、グアニジン・チオシアネート-グアニジン塩酸法、グアニジン・チオシアネート-フェノール・クロロホルム法等が挙げられる。
また、total RNAを得るためのキットが種々市販されているので、それを用いてもよい。例えば、RNeasy Lipid Tissue Midi Kit、 RNeasy Lipid Tissue Mini Kit(QIAGEN社製)等が挙げられる。
(2)mRNAの精製
total RNAからmRNAを精製する方法も、常法により行えばよい。例えば、mRNAのpolyAテールにハイブリダイズする担体を利用して、total RNA中のmRNAのみを精製するオリゴdTセルロースカラム法や、塩化リチウム/尿素法、グアニジン・イソチオシアネート法等が挙げられる。
mRNAの精製も、そのためのキットが種々市販されているので、それを用いてもよい。例えば、OligotexTM-dT30<Super>(タカラバイオ社製)等が挙げられる。
total RNAからmRNAを精製する方法も、常法により行えばよい。例えば、mRNAのpolyAテールにハイブリダイズする担体を利用して、total RNA中のmRNAのみを精製するオリゴdTセルロースカラム法や、塩化リチウム/尿素法、グアニジン・イソチオシアネート法等が挙げられる。
mRNAの精製も、そのためのキットが種々市販されているので、それを用いてもよい。例えば、OligotexTM-dT30<Super>(タカラバイオ社製)等が挙げられる。
(3)cDNAの作製及びクローニング
得られたmRNAを鋳型として、逆転写酵素やポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いる常法により、cDNAを合成・増幅する。市販の合成、クローニング用キットを用いてもよい。
例えば、PCRを行う場合には、目的とする本発明のポリヌクレオチドの塩基配列をもとに、その部分を複製するようにプライマー対を設計する。そして、そのプライマー対を用いて常法によりPCRを行えば、目的とする本発明のHABPをコードする本発明のポリヌクレオチドの塩基配列(すなわち本発明の配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチド)を持つcDNAが得られる。
得られたmRNAを鋳型として、逆転写酵素やポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いる常法により、cDNAを合成・増幅する。市販の合成、クローニング用キットを用いてもよい。
例えば、PCRを行う場合には、目的とする本発明のポリヌクレオチドの塩基配列をもとに、その部分を複製するようにプライマー対を設計する。そして、そのプライマー対を用いて常法によりPCRを行えば、目的とする本発明のHABPをコードする本発明のポリヌクレオチドの塩基配列(すなわち本発明の配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチド)を持つcDNAが得られる。
(4)cDNAの塩基配列決定
増幅したcDNAの塩基配列の決定は、サイクルシークエンス法等の常法により行えばよい。
増幅したcDNAの塩基配列の決定は、サイクルシークエンス法等の常法により行えばよい。
II.本発明のHABPの調製
(1)本発明の組換え発現ベクター、トランスフェクションされた宿主細胞及び形質転換体の産生
本発明のHAPBの製造方法は、「配列番号1で表される塩基配列のポリヌクレオチドを含有する組換え発現ベクターを組み込んだバキュロウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られた形質転換体を培養し、培養液からタンパク質を分離・精製することを特徴とする」方法である。
(1)本発明の組換え発現ベクター、トランスフェクションされた宿主細胞及び形質転換体の産生
本発明のHAPBの製造方法は、「配列番号1で表される塩基配列のポリヌクレオチドを含有する組換え発現ベクターを組み込んだバキュロウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られた形質転換体を培養し、培養液からタンパク質を分離・精製することを特徴とする」方法である。
すなわち、本発明のHABPは、本発明のポリヌクレオチドを適当なプラスミドやファージなどの発現ベクターに組み込み、宿主細胞を該組換え発現ベクターを用いてトランスフェクション又は形質転換させ、得られた宿主細胞を増幅させて、細胞内又は細胞外に分泌させる、という遺伝子組み換え技術を用いた周知の方法で、得ることができる。
一般的なのは、大腸菌の様な原核生物を用いた発現系、又は一般的な哺乳動物細胞、酵母菌、昆虫細胞等の真核細胞を用いた発現系を利用する方法である。
中でも、バキュロウイルスを感染させた昆虫細胞を用いた発現系は、簡便で、目的とするタンパク質を大量に得ることができることから、近年良く行われている。即ち、バキュロウイルスは感染細胞の核内に多核体と呼ばれる封入体を多量に作る特徴がある。多核体はポリヘドリンと呼ばれるタンパク質からなり、その発現量は感染後期に全細胞タンパク質の半分近くにも達すると言われている。そこで、このポリヘドリン遺伝子の非常に強力なプロモーターを利用して昆虫細胞内でリコンビナントタンパク質の合成を行わせることが行われている。
本発明でも、バキュロウイルス-昆虫細胞を用いた発現系を利用することができる。
1)バキュロウイルス-昆虫細胞系を利用し、宿主細胞をトランスフェクションする方法
以下に、バキュロウイルスー昆虫細胞の発現系を利用した、本発明のHABPを得る方法を例に挙げて説明するが、これに特に限定されず、通常この分野で用いられているバキュロウイルス、昆虫細胞等を用いて、通常この分野で行われている常法により行えばよい。
以下に、バキュロウイルスー昆虫細胞の発現系を利用した、本発明のHABPを得る方法を例に挙げて説明するが、これに特に限定されず、通常この分野で用いられているバキュロウイルス、昆虫細胞等を用いて、通常この分野で行われている常法により行えばよい。
バキュロウイルス-昆虫細胞を用いた発現系に用いられるバキュロウイルスとしては、夜盗蛾科昆虫に感染するウイルスであるアウトグラファ・カリフォルニカ・ヌクレアー・ポリヘドロシス・ウイルス(Autographa californica nuclear polyhedrosis virus)等が挙げられる。
宿主となる昆虫細胞としては、Spodoptera Frugiperda由来のSf9、Sf20等、Trichoplusia ni由来のHigh 5、BTI-TN-5B1-4(インビトロジェン社製)等が挙げられる。
本発明のポリヌクレオチドをバキュロウイルスに組み込む場合、直接バキュロウイルスに組み込むのではなく、常法のように、一旦トランスファーベクターに組み込んでから、バキュロウイルスゲノムDNAと共に、宿主となる昆虫細胞にコトランスフェクションすることが好ましい。
トランスファーベクター(発現ベクターとして用いられる)としては、pVL1392、pVL1393、pBlueBacIII(以上、インビトロジェン社製)、pBacPAK9、Autographa california NPV由来のAcNPV等の昆虫細胞用ベクターが挙げられる。
トランスファーベクターは、クローニングサイトの前にポリヘドリンプロモーターを持っているので、本発明のポリヌクレオチドをこのポリヘドリンプロモーターの下流に、常法によって挿入する。この操作より、本発明のポリヌクレオチドを組み込んだ、本発明に係る組換え発現ベクターが得られる。
本発明のポリヌクレオチドを組み込んだトランスファーベクター(組換え発現ベクター)とバキュロウイルスゲノムDNAを一緒に、宿主である昆虫細胞に、例えばリン酸カルシウム法(特開平2-227075号公報)、リポフェクション法(Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 84, 7413, 1987)等の常法によりコトランスフェクションさせる。コトランスフェクションにより、ポリヘドリン部位で相同組換えを誘発し、本発明のポリヌクレオチドが導入された組換えバキュロウイルスを高効率で産生させることができる。
コトランスフェクションから3~4日後に培養上清を回収し、培養液中に出現した非組換え体と組換え体バキュロウイルスの中から、限界希釈法、プラーク法等の常法により組換えバキュロウイルスを選択純化する。以上の方法で、本発明に係る組換え発現ベクターを組み込んだ、本発明に係る組換えバキュロウイルスが得られる。
得られた組換えバキュロウイルスを、宿主となる昆虫細胞に感染(トランスフェクション)させる。通常はMOI(Multiphcity of Infection)=5~10程度でトランスフェクションさせる。以上の方法で、本発明に係る組換えバキュロウイルスでトランスフェクションさせた、本発明に係る宿主細胞が得られる。
2)宿主細胞の形質転換体を得る方法
また、上記のバキュロウイルス-昆虫細胞発現系以外にも、下記の方法で本発明のポリヌクレオチドを発現させることができる。
また、上記のバキュロウイルス-昆虫細胞発現系以外にも、下記の方法で本発明のポリヌクレオチドを発現させることができる。
まず、得られたcDNAを、例えば常法に従いベクターDNAに組み込む。
本発明のポリヌクレオチドを発現させ、本発明のHABPを生産させる目的に於いては、発現ベクターが有用である。
発現ベクターとしては、原核細胞及び/または真核細胞の各種の宿主細胞中で複製保持または自己増殖できるものであって、且つ本発明のポリヌクレオチドを発現し、生産する機能を有するものであれば特に制限されない。プラスミドベクター,ファージベクター及びウイルスベクターが包含される。
かかるベクターとして、具体的には、大腸菌(Escherichia coli.)由来のプラスミドとして例えばpUC119(宝酒造社製)、pQE-TRIプラスミド (Qiagen社製)、pBluescript II KS+(Stratagene社製)、pBR322(宝酒造社製)、pGEM、pGEX、pUC、pBS、pET、pGEM-3ZpMALなどが、酵母由来プラスミドとして例えばpB42AD、pESP、pESCなどが、枯草菌由来プラスミドとして例えばpHT926、pTB51、pHY481などが挙げられる。ほ乳動物細胞由来プラスミドとしてはpCAT3、pcDNA3.1、pCMV等が挙げられる。
また、ファージとしては、λENBL3(Stratagene社製),λDASHII(フナコシ社製)、λgt10、λgt11(いずれも東洋紡績(株)製)等のλファージなどのバクテリオファージが、Charomid DNA(和光純薬工業(株)製)、Lorist6(和光純薬工業(株)製)等のコスミドベクター等が挙げられる。
更にレトロウィルス、ワクシニヤウィルス、核多角体ウィルスなどの動物や昆虫のウィルスが例示される。
本発明のポリヌクレオチドを組み込んだ組換え発現ベクターは、上記したベクター等に、本発明のポリヌクレオチドを常法により組み込むことにより調製することができる。
宿主細胞として細菌、特にE.coliを用いる場合、一般に発現ベクターは少なくともプロモーター-オペレーター領域、開始コドン、本発明のポリヌクレオチド、終始コドン、ターミネーター領域及び複製可能単位から構成される。
宿主として酵母または動物細胞を用いる場合、発現ベクターは少なくともプロモーター、開始コドン、本発明のポリヌクレオチド、終止コドンを含んでいることが好ましい。また、シグナルペプチドをコードするDNA、エンハンサー配列、本発明のポリヌクレオチドの5’側及び3’側の非翻訳領域、スプライシング接合部、ポリアデニレーション部位なども発現ベクターに組み込むことが可能である。
細菌中で本発明のポリヌクレオチドを発現させるためのプロモーター-オペレーター領域は、プロモーター、オペレーター及びShine-Dalgarno(SD)配列(例えば、AAGGなど)を含むものである。例えば宿主がEscherichia属菌の場合、好適にはTacプロモーター、Trcプロモーター、Trpプロモーター、lacプロモーター、recAプロモータ、バクテリオファージ由来のT7プロモーター、T3プロモーター、SP6プロモーター、λPLプロモーターなどを含むものが挙げられる。
酵母中で本発明のポリヌクレオチドを発現させるためのプロモーターとしては、ADHプロモーター、GAL1プロモーターなどが挙げられ、宿主がBacillus属菌の場合は、penPプロモーターなどが挙げられる。また、宿主が動物細胞等の真核細胞である場合、SV40由来のプロモーター、CMV由来のプロモーター、レトロウィルスのプロモーター、ヒートショックプロモーター、核多角体ウィルスの有するポリヘドリンプロモーターなどが挙げられる。しかし、特にこれらに限定されるものではない。また、発現にはエンハンサーの利用も効果的な方法である。
好適な開始コドンとしては、メチオニンコドン(ATG)が例示される。
終止コドンとしては常用の終止コドン(例えば、TAA、TAG、TGAなど)が例示される。ターミネーター領域としては、天然または合成のターミネーターが挙げられる。
複製可能単位とは、宿主細胞中でその全DNA配列を複製することが出来る機能を持つDNAをいい、天然のプラスミド、人工的に修飾されたプラスミド(天然のプラスミドから調製されたDNAフラグメント)及び合成プラスミド等が含まれる。
エンハンサー配列としては、CMV、SV40、ポリオーマ、アデノ、パピローマ等のDNA主要ウィルスのエンハンサー配列、レトロウィルスLTR(Long Terminal Repeat)、免疫グロブリンH鎖、L鎖遺伝子のエンハンサー配列などが例示される。
発現ベクターは、プロモーター、開始コドン、本発明のポリヌクレオチド、終止コドン、及びターミネーター領域を連続的且つ環状に適当な複製可能単位に連結することによって調製することが出来る。また、この際、所望により制限酵素での消化やT4 DNAリガーゼを用いるライゲーション等の常法により適当なDNAフラグメント(例えば、リンカー、他のレストリクションサイトなど)を用いることができる。
本発明に係る形質転換体は、上述の組み換え発現ベクター等を宿主細胞に導入することにより調製することが出来る。
宿主細胞としては、例えば微生物〔細菌(例えば、Escherichia属菌、Bacillus属菌)、酵母(例えばサッカロマイセス属など)、動物細胞及び昆虫細胞など〕が挙げられる。具体的には、Escherichia属菌では、Escherichia coli.(Escherichia coli. BL21, BL21(DE3), DH1, DH5, DH5α, M15,HB101, C600, XL-1 Blue, JM109, JM105, JM127, XL1-Blue)などが、Bacillus属菌では、B. subtilis, B. brevis, B. borstelenisなどが挙げられる。酵母としてはS. cerevisiae, Scizo. pombe, A. nidulans, Pichia pastoriaなど、或いはAsperigillus nidulansなどのAspergillus属糸状菌も挙げられる。動物細胞としては、サル細胞COS-7、Vero、チャイニーズハムスター細胞CHO、マウスL細胞、ヒトHeLa細胞, FL細胞などが挙げられる。昆虫細胞としてはBmN4,Sf9などが挙げられるが、特にこれらに限定されるものではない。
宿主細胞の形質転換や形質導入は、従来公知の方法を用いて行うことが出来る。例えば、形質転換は、例えば塩化カルシウム法、エレクトロポレーション法、塩化ルビジウム法、リポフェクション法、DEAE-デキストラン法、リチウム法、スフェロプラスト法、ウイルスを用いる方法等により行うことができ、又、形質導入は、例えば、B.Hohnの方法(Method in Enzymology,68,299-309,1979)や、Meyerowitz,E.M., Gvild,G.H., Prestidge,L.S. and Honess,S.S., Gene, 11, 271 (1980)に記載のパッケージング法等により行うことができる。
(2)宿主細胞の培養
本発明のHABPは、上記の方法で得られた本発明のポリヌクレオチドを組み込んだ組換え発現ベクターを含むウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞、又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られた形質転換体を、その宿主細胞に応じた適切な培地中で培養し、培養物中に本発明のHABPを産生させ、該培養物から分離・精製することによって製造することが出来る。
本発明のHABPは、上記の方法で得られた本発明のポリヌクレオチドを組み込んだ組換え発現ベクターを含むウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞、又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られた形質転換体を、その宿主細胞に応じた適切な培地中で培養し、培養物中に本発明のHABPを産生させ、該培養物から分離・精製することによって製造することが出来る。
培地は、宿主細胞(形質転換体)の生育に必要な炭素源、無機窒素源若しくは有機窒素源を含んでいることが好ましい。炭素源としては、例えばグルコース、デキストラン、可溶性デンプン、ショ糖などが、無機窒素源若しくは有機窒素源としては、例えばアンモニウム塩類、硝酸塩類、アミノ酸、コーンスチープ・リカー、ペプトン、カゼイン、肉エキス、大豆粕、バレイショ抽出液などが挙げられる。また所望により他の栄養素〔例えば塩化カルシウム、リン酸二水素ナトリウム、塩化マグネシウム〕、ビタミン類、抗生物質を含んでいても良い。
培養は当業界に於いて知られている方法により行われる。培養条件、例えば温度、培地のpH及び発酵時間は、本発明のHAPBの最高力価が得られるように選択される。
尚、下記に宿主細胞に応じて用いられる具体的な培地及び培養条件を例示するが、本発明は何らこれらに限定されるものではない。
宿主が昆虫細胞の場合、培地としては、例えばTNM-FH培地、Grace's InsectMedium培地〔Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A., (1985) 82,8404〕、Sf-100 II SFM培地(ライフ・テクノロジーズ社製)、ExCell400、ExCell405(いずれもJRHバイオサイエンシーズ社製)等が挙げられる。またはこれら培地にウシ胎児血清(FCS)等を添加した培地等を用いることができる、そのpHは5~8であることが望ましい。
上記で得られた、組換えバキュロウイルスでトランスフェクションさせた宿主細胞の培養は、通常20~40℃、好ましくは25~30℃、約12時間~10日間行われ、必要により通気、攪拌を行うこともできる。
宿主が細菌、放線菌、酵母、糸状菌である場合、例えば上記栄養源を含有する液体培地が適当である。その際、pHが5~8であることが望ましい。
宿主がE.coliの場合、好ましい培地としてLB培地、2YT培地、Terrific Broth、M9培地〔Molecular Cloning, 3rd ed., appendix 2.2 (2001) Cold Spring Harbor Laboratory, New York〕が例示される。かかる場合、培養は、必要により通気、攪拌をしながら、通常14~42℃、好ましくは28~39℃、約3~24時間行うことができる。
宿主がBacillus属菌の場合、必要により通気、攪拌をしながら、通常14~42℃、好ましくは28~39℃、約3~96時間行うことが出来る。
宿主が酵母である場合、培地としては、例えばYPD培地 (Molecular Cloning, 3rd ed., appendix 2.2(2001) Cold Spring Harbor Laboratory, New York)が挙げられ、pHは5~8であることが望ましい。培養は通常14~42℃、好ましくは20~35℃、約12時間~10日間行われ、必要により通気、攪拌を行うこともできる。
宿主が動物細胞の場合、培地として例えば約5~20%のFCSを含むMEM培地〔Science, (1952) 122,501〕、DMEM培地〔Virology, (1959)8,396〕、RPMI1640培地〔J.Am.Med.Assoc., (1967) 199,519〕、199培地〔proc.SSoc. Exp.Biol.Med., (1950) 73,1〕、ダイゴT2培地(和光純薬工業(株)製)等を用いることが出来る。培地のpHは約6~8であるのが好ましく、培養は通常約30~40℃、好ましくは34~38℃で約12~72時間行われ、必要に応じて通気や攪拌を行うこともできる。
(3)本発明のHABPの調製
上記(2)で得られた培養物を、濾過または遠心分離等の方法を行って細胞を除き、回収し、培養濾液または培養上清を得る。次いで当該培養濾液または培養上清から、天然または合成タンパク質を分離並びに精製するために一般に用いられる常法に従って本発明のHABPを分離・精製する。
上記(2)で得られた培養物を、濾過または遠心分離等の方法を行って細胞を除き、回収し、培養濾液または培養上清を得る。次いで当該培養濾液または培養上清から、天然または合成タンパク質を分離並びに精製するために一般に用いられる常法に従って本発明のHABPを分離・精製する。
本発明のHABPの分離・精製方法としては、公知の塩析、溶媒沈殿法等の溶解度を利用する方法、透析、限外濾過、ゲル濾過クロマトグラフィー、ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動など分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィーなどの荷電を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィーなどの特異的親和性を利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動などの等電点の差を利用する方法などが挙げられる。
一方、本発明のHABPが、培養された形質転換体のペリプラズムまたは細胞質内に存在する場合は、培養物を濾過または遠心分離などの常法に付して菌体或いは細胞を集め、適当な緩衝液に懸濁し、例えば超音波やリゾチーム及び凍結融解などの方法で細胞等の細胞壁及び/または細胞膜を破壊した後、遠心分離や濾過などの方法で本発明のHABPを含有する粗抽出液を得る。そして、当該粗抽出液を、先に例示したような常法を用いることにより、単離、精製することができる。
本発明のHABPの精製指標又はその確認には、本発明のHAPBに対する反応性を有する抗体をプローブとして用いたウエスタンブロット法や、ELISA法等を用いることができる。
このようにして取得されるタンパク質としては、例えば、配列番号2、又は4に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質を挙げることができる。
また、本発明のHABPは、そのアミノ酸配列に従って、一般的な化学法製法により製造することができる。例えば、ルオレニルメチルオキシカルボニル法(Fmoc法)、t-ブチルオキシカルボニル法(tBoc法)等の通常の化学合成法により、本発明のHABPを得ることができる。また、市販のペプチド合成機を用いて化学合成することもできる。
本発明のヒアルロン酸測定方法としては、例えば、試料中のヒアルロン酸と本発明のHABPを接触させてヒアルロン酸/本発明のHABP複合体を形成させ、次いで該複合体と、抗HABP抗体を担持させた担体とを反応させ、該反応により生じた凝集物による光学的変化を測定し、該測定値からヒアルロン酸量を算出する方法が挙げられる。
尚、ここでいう光学的変化の測定とは、免疫凝集の結果生じる光学的変化を測定することであり、具体的には、逆受身凝集反応法、免疫比ろう法、免疫比濁法等の免疫凝集法等が挙げられる。これら測定方法は、自体公知の方法に準じて行えばよいが、例えば、逆受身凝集反応法を用いる場合には、「東京化学同人 続生化学実験講座5 免疫生化学研究法 p.36-37」、「金原出版株式会社 臨床検査法提要 第30版 p.844-845」等に、例えば、免疫比ろう法を用いる場合には「金原出版株式会社 臨床検査法提要 第30版 p.851-853等」等に、免疫比濁法を用いる場合には、「金原出版株式会社 臨床検査法提要 第30版 p.853-854」等に記載の方法に準じて行えばよい。
本発明のヒアルロン酸の測定に用いられる抗HABP抗体としては、本発明のHABPに対する反応性を有する抗体であればポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でも何れでもよいが、単一エピトープのアフィニティー精製をしたポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体が好ましく、効率よく本発明のHABPと結合できるモノクローナル抗体が特に好ましい。中でもペプシン、パパイン等の酵素を用いて適宜消化し、Fab、Fab’、(Fab')2等として用いることが好ましい。抗HABP抗体としてポリクローナル抗体を用いる場合、該抗体は、常法、例えば「免疫学実験入門、第2刷、松橋直ら、(株)学会出版センター、1981」等に記載の方法に準じて馬、牛、羊、兎、山羊、ラット、マウス等の動物に本発明のHABPを免疫して調製され、また、抗HABP抗体としてモノクローナル抗体を用いる場合、該抗体は、常法、即ちケラーとミルスタイン(G.Kohler and C.milstein;nature,256,495,1975)により確立された細胞融合法に従い、例えばマウスの腫瘍ラインからの細胞と、本発明のHABPで予め免疫されたマウスの脾細胞とを融合させて得られるハイブリドーマ等により産生される。尚、本発明のHABPの代わりに公知のアミノ酸配列を有するウシアグレカンや、天然のウシアグレカンを抗原として用いて作製された抗体も、本発明における「抗HABP抗体」として用いることが出来る。
ヒアルロン酸の測定に用いられる担体としては、通常の免疫学的測定法で用いられる担体であれば何れも使用可能であるが、例えば、赤血球、バクテリア、細胞片等の天然有機高分子物質、リポソーム、高分子ミセル等の分子会合体、ポリスチレン、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸、ポリアクリルアミド、ポリグリシジルメタクリレート、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニール、ポリエチレン、ポリクロロカーボネート、シリコーン樹脂、シリコーンラバー等の合成高分子化合物、多孔性ガラス、スリガラス、アルミナ、シリカゲル、活性炭、金属酸化物等の無機物質等を材料として調製されたものが好ましいものとして挙げられる。また、これら担体は、チューブ、ビーズ、ディスク状片、微粒子、ラテックス粒子等多種多様の形態で使用し得る。中でも、ラテックス粒子は、人工担体であり、目的に応じて担体表面を化学的処理し易いこと、また非特異反応が起こりにくいこと等の点から特に好ましい。その材質は特に限定されないが、例えばポリスチレンラテックス粒子等のスチレン系ラテックス粒子、アクリル酸系ラテックス粒子等が好ましいものとして挙げられる。
尚、これらラテックス粒子のうち、乳化剤を用いない乳化重合によって得られるポリスチレンラテックス粒子等は、表面の疎水性が強いため、タンパク質或いはペプチドをスムースに吸着し、且つ表面の負電荷同士の反発に基づき、乳化剤なしでも溶液中で安定に分散するという性質を有しているので、特に好ましい。また、種々の変性ラテックス粒子(例えば、上記ポリスチレン中にカルボキシル基を導入したカルボン酸変性ラテックス粒子)、磁性ラテックス粒子(磁性粒子を内包させたラテックス粒子)等も使用できる。
また、ヒアルロン酸の測定に用いられるラテックス粒子としては、市販のものが使用できるが、ラテックス粒子の平均粒径が小さいもの、即ち、単位重量あたりの表面積が大きいものが、抗体を効率良く担持させることができ且つ保存時の安定性(水溶液中での分散性)も良好であるので好ましいものとして用いられる。より具体的には、通常0.05~0.5μm、好ましくは0.1~0.4μmの平均粒径のものが好ましい。このような平均粒径の小さいものを用いることにより、ラテックス粒子の沈降を抑えることができ、また、抗HABP抗体をラテックス粒子に効率よく担持させることが可能となる。即ち、このような抗HABP抗体担持ラテックス粒子を用いることにより測定用試薬の安定性を向上させ、精度の高い測定が可能となる。
上記担体に上記抗HABP抗体を担持させる方法は、抗HABP抗体と担体とを接触させることによってなされればよく、特に限定されない。通常この分野で利用される自体公知の担持方法は全て挙げられ、例えば、抗HABP抗体を担体に物理的に吸着させて抗HABP抗体を担体に担持させる、所謂物理的吸着法〔特公平5-41946号公報、スミロン テクニカルレポート,SUMILON ELISAシリーズ 1 ELISA測定法の紹介,住友ベークライト(株)発行、スミロン テクニカルレポート,SUMILON ELISAシリーズ 2 ELISA製品の固相表面,住友ベークライト(株)発行等〕が、代表的なものとして挙げられる。該方法は、通常、例えば、ポリスチレン,ポリプロピレン,ポリ塩化ビニール,ポリエチレン,ポリクロロカーボネート等の合成高分子化合物、活性炭、例えば多孔性ガラス,スリガラス,アルミナ,シリカゲル,金属酸化物,ヒドロキシアパタイト等の無機物質を担体として用いた場合に、好ましい方法として用いられる。なかでも、ガラス、ポリスチレン、ポリ塩化ビニール等を、例えばチューブ、ビーズ、ディスク片、微粒子、ラテックス粒子等の形態として用いた場合が、特に好ましい。
また、市販の担体を用いる場合には、その取扱説明書で推奨されている担持方法に従って、抗HABP抗体を担体に担持させればよい。
例えばラテックス粒子に抗HABP抗体を担持させる場合を例に取ると、抗HABP抗体を通常0.05~2mg/ml、好ましくは0.1~1mg/ml含む緩衝液等の溶媒中にラテックス粒子を通常0.1~10%(w/v)、好ましくは0.2~5%(w/v)となるように添加、懸濁させ、通常5~30℃で通常2~3時間反応させた後、この分野で行われる後処理、例えば遠心分離、例えば牛血清アルブミン(BSA)等の適当なタンパク質を含有する溶液を用いるブロッキング処理等の処理を行うことにより担持させることができる。尚、この分野で用いられる化学結合を用いる方法を用いても抗HABP抗体を担体に担持させることができる。
本発明のHABPを用いたヒアルロン酸の測定方法を、例えば担体としてラテックス粒子を用いた免疫比濁法を例にとって、より具体的に以下に説明する。即ち、ヒアルロン酸を含む試料(より具体的には、例えば血液、血漿、血清、関節液、助膜液、リンパ液、骨髄液等の体液や尿等)と本発明のHABPを含む試薬とを接触混合させてヒアルロン酸/本発明のHABP複合体を形成させる。次いで、例えば上記の如き抗HABP抗体を例えば平均粒径0.05~0.5μm、好ましくは0.1~0.4μmのラテックス粒子に担持(感作)させたものからなる試薬と、上記複合体とを反応させ、その結果生じた凝集の度合いを例えば吸光度を用いて測定し、予め求めてあった標準品の検量線からその濃度を求めることによって試料中のヒアルロン酸量を定量する。
尚、吸光度の測定波長は、通常340~1000nm、好ましくは500~900nmで測定すればよい。また、凝集の度合いは、吸光度に限定されるものではなく、自体公知の方法であればいずれでもよく、例えばネフェロメトリー、カウンティングイムノアッセイ等の方法により値を測定してもよい。また、ヒアルロン酸/本発明のHABP複合体と、抗HABP抗体をラテックス粒子等の担体に担持させたもの(以下、抗HABP抗体担持担体と略記する場合がある)からなる試薬を反応させる際、適当な凝集促進剤を添加してもよい。
本発明のHABPを用いたヒアルロン酸の測定方法に於ける、本発明のHABP反応時の本発明のHABPの使用濃度としては、ヒアルロン酸の検量限界をどの程度に設定するかによって変動はあるが、通常設定された検量限界濃度に相当するヒアルロン酸全てと結合し得る濃度以上、好ましくはその5倍濃度以上、より好ましくは10倍濃度以上である。尚、この際の上限としては測定に影響を与えない量であれば特に限定はされないが、経済的な量を考慮すると、通常その5万倍以下、好ましくはその1万倍以下である。具体的には、通常0.1~1000μg/ml、好ましくは0.5~1000μg/ml、より好ましくは0.5~100μg/mlである。例えば、血清中のヒアルロン酸濃度を測定する場合、その検量限界は通常10~1000ng/mlであるので、本発明のHABP反応時の本発明のHABPの使用濃度は、この検量限界に基づいて上記範囲内で適宜設定すればよい。
また、該反応時のpHとしては、複合体が形成されるのを妨げない範囲であれば特に限定はされず、通常5~10、好ましくは6~8の範囲が挙げられ、反応時の温度も複合体が形成されるのを妨げない範囲であれば特に限定されず、通常5~40℃の範囲が挙げられる。また、その反応時間は、数秒間乃至数時間適宜反応させればよい。
本発明のHABPを用いたヒアルロン酸の測定方法に於ける、抗HABP抗体担持担体とヒアルロン酸/本発明のHABP複合体を反応させる際の抗HABP抗体担持担体の使用濃度としては、上記で用いられる本発明のHABPの濃度により異なるが、抗HABP抗体の担持量が0.01~0.1mg/mgのラテックス粒子を用いる場合には、通常0.2~25mg/ml、好ましくは0.5~12mg/mlであり、該濃度範囲内であれば、試料中のヒアルロン酸を精度よく測定することができる。尚、抗HABP抗体担持担体とヒアルロン酸/本発明のHABP複合体を反応させる際の反応条件及び反応時間は、上記の本発明のHABPとヒアルロン酸とを反応させる時のそれに準じて行われればよい。
本発明のヒアルロン酸測定用試薬キットとしては、本発明のHABPを構成成分として含有するものである。
また、抗HABP抗体担持担体を含んでなる試薬を含んでいてもよい。さらに、標準物質を含んでいてもよく、該標準物質としては、通常この分野で用いられているもので、例えばヒアルロン酸カリウム(鶏冠由来:和光純薬工業(株)製)、ヒアルロン酸ナトリウム(ストレプトコッカス属由来:和光純薬工業(株)製)等が挙げられる。
本発明のヒアルロン酸測定用試薬キットに於けるHABPは、具体的には本発明のHABPを含む試薬であればよく、適当な緩衝液中に本発明のHABPを溶解させたものである。この目的に使用される緩衝剤としては、例えばトリス緩衝剤、リン酸緩衝剤、ベロナール緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、グッド緩衝剤等通常免疫学的測定法において用いられている緩衝剤は全て挙げられ、その濃度としては通常5~300mM、好ましくは10~150mMであり、そのpHは、通常5~10、好ましくは6~8の範囲から適宜選択される。
上記本発明のHABPを含んでなる試薬中の、本発明のHABPの濃度としては、反応時の濃度が上記濃度となるように設定されればよく、通常0.1~500μg/ml好ましくは0.5~100μg/mlの範囲になるように適宜選択される。
本発明のヒアルロン酸測定用試薬キットに於ける抗HABP抗体担持担体を含んでなる試薬は、上記抗HABP抗体担持担体を含むものであればよく、適当な緩衝液中に抗HABP抗体担持担体を懸濁させたもの若しくはこれを凍結乾燥したものである。この目的に用いられる緩衝剤としては、本発明に係る抗HABP抗体が本発明のHABPに結合するのを妨げる性質を有さないものであればよく、上記本発明のHABPを含んでなる試薬で用いられる緩衝剤と同じものが挙げられ、そのpH及び濃度も同様に上記の値に準じて設定すればよい。
また、抗HABP抗体担持担体を含んでなる試薬は、緩衝液等の溶液に懸濁させた懸濁液の形態で測定に供される場合が多いが、このような懸濁液を調製するために用いられる緩衝液としては、通常この分野で使用されるものであれば特に限定されないが、通常pH5.0~10.0、好ましくはpH6.5~8.5の中性付近に緩衝作用を有するもの、例えば、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等が好ましい。尚、使用する不溶性微粒子の性質によっては、懸濁液の状態で放置しておくと自然凝集を起こしやすいものもあるが、このような場合には、弱アルカリ性のグリシン緩衝液、ホウ酸緩衝液等を使用して懸濁液を調製する方が保存安定性の面から好ましい。また、これらの緩衝液の緩衝剤濃度としては、通常10~500mM、好ましくは10 ~300mMの範囲から適宜選択される。尚、該試薬には、通常この分野で使用されている、例えば、糖類,タンパク質,界面活性剤等の安定化剤、NaCl等の塩類、防腐剤等を、通常この分野で使用される範囲内で添加してもよい。
上記のような緩衝液に、本発明に係る抗HABP抗体担持担体を懸濁させる場合、抗HABP抗体担持担体の濃度は、使用する担体及び抗HABP抗体の種類により異なるが、反応時の濃度が上記濃度となるように設定されればよく、通常1~100mg/ml、好ましくは2~50mg/mlの範囲になるように適宜選択される。
更に、本発明に係る抗HABP抗体担持担体を含んでなる試薬中には、免疫反応促進剤(凝集反応促進剤)(例えばポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール等)が通常この分野で用いられる濃度範囲で共存していてもよく、これら凝集反応促進剤共存下であっても本発明の方法によれば、測定用試薬中の蛋白成分が、何らかの要因により変性されて非特異的濁りとなることを、抑制或いは低減することができる。また、上記試薬中には、特開2002-365296号公開公報記載の凝集促進剤として用いられるモノマーやポリマーを、凝集促進剤として含んでいてもよく、その濃度範囲は特開2002-365296号公開公報記載の値に準じて選択されればよい。尚、該モノマーやポリマーは、上記公開公報記載の方法に準じて調製されればよい。
本発明に係る試料としては、ヒアルロン酸を含む試料であればよいが、具体的には、例えば血液、血漿、血清、関節液、助膜液、リンパ液、骨髄液等の体液や尿等が挙げられ、中でも血清、尿等が好ましいものとして挙げられる。
以下に実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらにより何等限定されるものではない。
実施例1
(1)RNAの回収
QIAGEN社製、RNeasy Lipid Tissue Kitを用い、その製品プロトコルに従って、下記の通り、ウシ鼻中隔軟骨よりtotal RNAの回収を行った。
まず、キットに付属のQIAzol Lysis Reagent 5mlを入れたチューブにウシ鼻中隔軟骨(ニュージーランド産)を1g入れ、ポリトロンを用いて組織を破砕した。
(1)RNAの回収
QIAGEN社製、RNeasy Lipid Tissue Kitを用い、その製品プロトコルに従って、下記の通り、ウシ鼻中隔軟骨よりtotal RNAの回収を行った。
まず、キットに付属のQIAzol Lysis Reagent 5mlを入れたチューブにウシ鼻中隔軟骨(ニュージーランド産)を1g入れ、ポリトロンを用いて組織を破砕した。
得られたホモジネートを室温で5分間インキュベートした後、1mlのクロロホルムを添加し、15秒間攪拌し、更に室温で3分間インキュベートした。その後ホモジネートを、4℃、5000Gで15分間遠心分離した後、水相を新しいチューブに移し、等量の70%エタノールを添加した。攪拌後、得られた溶液の3mLを、キットに付属のコレクションチューブ(15mL)にセットしたRNeasy Midi Spin Columnに移し、25℃、3000Gで5分間遠心を行った。この操作により、total RNAは、RNeasy Midi Spin Columnの膜に結合した。次いで、キットに付属のBuffer RW1 4mlをカラムに添加して、25℃、3000Gで5分間遠心分離を行った。その後、Buffer RPEを2.5ml入れて25℃、3000Gで2分間遠心分離を行った。さらに、Buffer RPEを2.5ml入れて25℃、3000Gで5分間遠心分離を行った。
以上の処理を行った、totalRNAの結合したRNeasy Midi Spin Columnを新しいコレクションチューブに移した。150μl滅菌水をRNeasy Midi Spin Columnの膜に加えて、25℃、3000Gで3分間遠心分離する操作を2回繰り返して、total RNAを膜から溶出させた。得られた溶出液の吸光度を測定して、ウシ鼻中隔軟骨1gから、500μgのtotal RNAが回収できたことを確認した。
回収したtotal RNA溶液 の5μl分を1% アガロースゲルで電気泳動した。
回収したtotal RNA溶液 の5μl分を1% アガロースゲルで電気泳動した。
得られた結果を図1に示す。
図1から明らかな如く、18S rRNAと28S rRNAの明確なバンドが確認できたので、以上の方法で、total RNAが分解されずに回収できたことが確認された。
図1から明らかな如く、18S rRNAと28S rRNAの明確なバンドが確認できたので、以上の方法で、total RNAが分解されずに回収できたことが確認された。
(2)mRNAの精製
OligotexTM-dT30<Super>(タカラバイオ社製)を用い、下記の方法で、mRNAを精製した。
まず、上記(1)で得られた250μlのtotal RNA水溶液に、250μlのElution Buffer(キットに付属)を添加し、更にOligotexTM-dT30を500μl添加した。65℃で5分間インキュベートし、その後反応液を氷上に3分間置いた。反応液に5M NaClを0.1ml添加し、37℃で10分間インキュベートした。反応液を15000rpmで3分間遠心分離し、上清を除いてペレットを450μl TE(Tris-EDTA buffer、pH8.0)に溶解させた。その後、溶液を65℃で5分間インキュベートし、氷上に3分間置いた。その後、溶液を15000rpmで3分間遠心分離し、400μl分の上清を回収した。通常のエタノール沈殿処理した後、沈殿物を10μl TEに溶解して、精製mRNAの溶液を得た。
OligotexTM-dT30<Super>(タカラバイオ社製)を用い、下記の方法で、mRNAを精製した。
まず、上記(1)で得られた250μlのtotal RNA水溶液に、250μlのElution Buffer(キットに付属)を添加し、更にOligotexTM-dT30を500μl添加した。65℃で5分間インキュベートし、その後反応液を氷上に3分間置いた。反応液に5M NaClを0.1ml添加し、37℃で10分間インキュベートした。反応液を15000rpmで3分間遠心分離し、上清を除いてペレットを450μl TE(Tris-EDTA buffer、pH8.0)に溶解させた。その後、溶液を65℃で5分間インキュベートし、氷上に3分間置いた。その後、溶液を15000rpmで3分間遠心分離し、400μl分の上清を回収した。通常のエタノール沈殿処理した後、沈殿物を10μl TEに溶解して、精製mRNAの溶液を得た。
(3)cDNAの作製及びPCRクローニング
上記(2)で得られた精製mRNAを用い、以下の通り、PCRによりcDNAの合成を行った。
上記(2)で得られた精製mRNAを用い、以下の通り、PCRによりcDNAの合成を行った。
1)プライマー
DDBJ(DNA Data Bank of Japan)データベースに開示された、公知のウシアグレカン(Bos taurus aggrecan)の遺伝子配列をもとに、下記のプライマー配列を設計し、常法の合成法により合成した。該プライマーは、上記公知のウシアグレカンのヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列の一部に対応する配列を有する。また、primer Fとprimer RにはEcoRIの制限酵素部位が挿入してあり、さらにprimer Rには、終止コドンが付加されている。
DDBJ(DNA Data Bank of Japan)データベースに開示された、公知のウシアグレカン(Bos taurus aggrecan)の遺伝子配列をもとに、下記のプライマー配列を設計し、常法の合成法により合成した。該プライマーは、上記公知のウシアグレカンのヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列の一部に対応する配列を有する。また、primer Fとprimer RにはEcoRIの制限酵素部位が挿入してあり、さらにprimer Rには、終止コドンが付加されている。
プライマー配列
primer F atgaattcatgaccactttactcttggtgtttg (配列番号5)
primer R atgaattctcatggagagggcgccgctgaaacacc (配列番号6)
primer F atgaattcatgaccactttactcttggtgtttg (配列番号5)
primer R atgaattctcatggagagggcgccgctgaaacacc (配列番号6)
2)PCR
上記プライマーの組合せと、上記(2)で得られた精製mRNAを鋳型として用い、mRNAからcDNAをPCRによって複製する常法により、公知のウシアグレカンのヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列に類似する配列を持つcDNAを増幅させた。
上記プライマーの組合せと、上記(2)で得られた精製mRNAを鋳型として用い、mRNAからcDNAをPCRによって複製する常法により、公知のウシアグレカンのヒアルロン酸結合部位を含むN末端から692番目までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列に類似する配列を持つcDNAを増幅させた。
PCRは、下記の反応条件で、98℃で2分間加熱の後、95℃ 15秒、63℃ 30秒、68℃ 2分を30回繰り返して行い、最後に68℃ 5分の条件で行った。
PCR反応条件
滅菌水 71μl
RNA溶液 1μl
primer F 1μl
primer R 1μl
MgCl2 4μl
dNTP(dATP, dGTP, dCTP, dTTPの混合物) 10μl
Buffer 10μl
KOD 2μl
得られたPCR産物は、制限酵素EcoRIの配列を含む。そこで、この制限酵素サイトで、得られたPCR産物を消化・切断した。
PCR反応条件
滅菌水 71μl
RNA溶液 1μl
primer F 1μl
primer R 1μl
MgCl2 4μl
dNTP(dATP, dGTP, dCTP, dTTPの混合物) 10μl
Buffer 10μl
KOD 2μl
得られたPCR産物は、制限酵素EcoRIの配列を含む。そこで、この制限酵素サイトで、得られたPCR産物を消化・切断した。
得られたPCR産物断片を、エチジウムブロミド1μg/mLを含む1%アガロースで電気泳動した。
結果を図2に示す。図2において、レーン1は分子量マーカーである、DNA Marker6(λ/Sty I、(株)ニッポンジーン製)を、レーン2はPCR産物断片を試料として用いた場合の結果をそれぞれ示す。また、矢印はPCR産物断片の画分を示す。
図2から明らかな如く、およそ2100bpのところに、主要バンドが確認された(図2の矢印で示した画分。)。
この画分を切り出し、GENEPURE((株)ニッポンジーン製)を用いて、PCR産物断片を精製した。
図2から明らかな如く、およそ2100bpのところに、主要バンドが確認された(図2の矢印で示した画分。)。
この画分を切り出し、GENEPURE((株)ニッポンジーン製)を用いて、PCR産物断片を精製した。
(4)組換えベクターの調製と塩基配列の決定
次いで、バキュロゴールドスターターキット(べクトンデッキンソン社製)を用い、キットに付属の昆虫細胞用トランスファーベクター(transfer bector)pVL1392のポリへドリンプロモーターの下流にあるEcoRIサイトに、上記(3)で調製したPCR産物断片をつないで、組換えベクターを調製した。得られた組換えベクターは、上記(3)2)で得られたcDNAと同じ塩基配列が挿入されているので、得られた組換えベクターを、以下「pVL1392/cDNA」と記載する。
組換えベクターpVL1392/cDNA 200ngを鋳型として用い、上記(3)1)で用いたプライマーの組合せを用いて、DYEnamic ET Terminator Cycle Sequencing Kit ( GE ヘルスケア社製 )を使用し、添付のマニュアル記載の方法に準じて、PCRを行い、PCR産物を得た。
次いで、バキュロゴールドスターターキット(べクトンデッキンソン社製)を用い、キットに付属の昆虫細胞用トランスファーベクター(transfer bector)pVL1392のポリへドリンプロモーターの下流にあるEcoRIサイトに、上記(3)で調製したPCR産物断片をつないで、組換えベクターを調製した。得られた組換えベクターは、上記(3)2)で得られたcDNAと同じ塩基配列が挿入されているので、得られた組換えベクターを、以下「pVL1392/cDNA」と記載する。
組換えベクターpVL1392/cDNA 200ngを鋳型として用い、上記(3)1)で用いたプライマーの組合せを用いて、DYEnamic ET Terminator Cycle Sequencing Kit ( GE ヘルスケア社製 )を使用し、添付のマニュアル記載の方法に準じて、PCRを行い、PCR産物を得た。
(5)塩基配列の相同性検索
得られたPCR産物(上記(3)で得られたcDNAと同じ塩基配列を持つ。)の塩基配列の解読を、BaseStation(バイオラッドラボラトリーズ(株))を用いて行った。
得られたPCR産物(上記(3)で得られたcDNAと同じ塩基配列を持つ。)の塩基配列の解読を、BaseStation(バイオラッドラボラトリーズ(株))を用いて行った。
次いで、DDBJ(DNA Data Bank of Japan)データベースを用いて、得られたPCR産物の塩基配列の相同性検索(BLAST)を行った。その結果、得られたPCR産物の塩基配列、すなわちcDNAの塩基配列は公知のウシアグレカン(Bos taurus aggrecan)の遺伝子配列と、高い相同性を示すことが明らかとなった。
すなわち、公知のウシアグレカンの遺伝子配列では、N末端から129-130番目のアミノ酸(Ile-Leu)をコードする塩基は「ATTCTA」であるが、得られたcDNAの、それに対応する位置の388~393番目の塩基は「ATCTAT」であった。それ以外の塩基配列は両方とも一致した。
以上のことから、上記(3)で得られたcDNAの塩基配列は、配列番号3で表される配列であり、また、上記(4)で得られた組換えベクター(pVL1392/cDNA)は、該cDNAを組み込んだ組換えベクターであることが確認された。
また、配列番号3の塩基配列から推定される、配列番号3の塩基配列がコードするアミノ酸配列は、配列番号4で表される、全長692個のアミノ酸配列である。このアミノ酸配列を公知のウシアグレカンの全2327アミノ酸配列と比較したところ、公知のウシアグレカンのアミノ酸配列では、N末端から131番目のアミノ酸がロイシンであるが、配列番号4ので表されるアミノ酸配列のN末端から131番目のアミノ酸はチロシンであった。それ以外のアミノ酸配列は、公知のウシアグレカンの全長2327アミノ酸のうち、N末端から692番目のアミノ酸残基までの配列と、配列番号4で表されるアミノ酸配列は一致した。
(6)バキュロウイルスの作製
バキュロゴールドスターターキット(ベクトンーディッキンソン社製)を用い、以下の方法でcDNAを組み込んだバキュロウイルスの作製を行った。
バキュロゴールドスターターキット(ベクトンーディッキンソン社製)を用い、以下の方法でcDNAを組み込んだバキュロウイルスの作製を行った。
まず、キットに付属の直鎖状化したバキュロウイルスDNA(modified Autographa californica nuclear polyhedrosis virus:AcNPV) 0.5μg分と、上記(4)で得られた組換えベクター pVL1392/cDNAを混ぜて、室温に5分間置き、1mlのBuffer Bと混合しDNA溶液とした。
sf9細胞を、10% FCSを含むTNM-FH培地 4mLで培養した後、培地を1mlのBuffer Aに置換し2×106/25cm2に調製した。そこに、上記で調製したDNA溶液1mlを滴下し、そのまま27℃で4時間インキュベートして、コトランスフェクションを行った、その後、sf9細胞を新しいTNM-FH培地で洗浄し、新たに3mlTNM-FH培地を加え3日間培養を行った。
組換えベクター pVL1392/cDNAをそのゲノムDNAに組み込んだ組換えウイルスは培養液中に出てくるので、3日間sf9細胞を培養後、培養液を回収した。
組換えベクター pVL1392/cDNAをそのゲノムDNAに組み込んだ組換えウイルスは培養液中に出てくるので、3日間sf9細胞を培養後、培養液を回収した。
(7)本発明のHABPの発現
上記(6)で得られた培養液中の組換えウイルスの数を、常法であるプラークアッセイ法で調べた。
次いで、該組換えウイルスを、sf9細胞にMOI=5で感染(トランスフェクション)させた後、10%FCSを含むGrace's Insect Mediumで4日間、27℃で培養した。
培養後、培養液を遠心分離し、得られた培養上清を回収した。次いで培養上清をAggrecanの抗体カラムを用いたアフィニティークロマトグラフィーにかけて、タンパク質の精製を行った。
上記(6)で得られた培養液中の組換えウイルスの数を、常法であるプラークアッセイ法で調べた。
次いで、該組換えウイルスを、sf9細胞にMOI=5で感染(トランスフェクション)させた後、10%FCSを含むGrace's Insect Mediumで4日間、27℃で培養した。
培養後、培養液を遠心分離し、得られた培養上清を回収した。次いで培養上清をAggrecanの抗体カラムを用いたアフィニティークロマトグラフィーにかけて、タンパク質の精製を行った。
尚、用いたAggrecanの抗体カラムは、(1)ウシ鼻中隔軟骨よりLaurentらの変法で精製されたAggrecan(生化学工業(株)製)を抗原として用いて常法により作製された抗HABPモノクローナル抗体を用い、(2)担体としてNHS-activated Sepharose 4fast Flow(GEヘルスケアバイオサイエンス)を用い、該担体に添付のマニュアルに記載された推奨法により作製した。
本発明のHABPの産生は、ウエスタンブロットにより、以下の方法で確認した。
アフィニティー精製前の培養上清、アフィニティー精製後の培養上清、アフィニティー精製で得られたタンパク質を試料として用いて、それぞれSDS-PAGEを行った後、PVDF膜に転写した。PVDF膜をブロッキング処理後、ペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体を室温で1時間反応させた。PVDF膜をPBS-Tで3回洗浄後、ECLplus(GEヘルスケアバイオサイエンス)を用いて発光させ、UVフイルムに感光させた。
アフィニティー精製前の培養上清、アフィニティー精製後の培養上清、アフィニティー精製で得られたタンパク質を試料として用いて、それぞれSDS-PAGEを行った後、PVDF膜に転写した。PVDF膜をブロッキング処理後、ペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体を室温で1時間反応させた。PVDF膜をPBS-Tで3回洗浄後、ECLplus(GEヘルスケアバイオサイエンス)を用いて発光させ、UVフイルムに感光させた。
尚、上記で用いたペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体は、上記アフィニティークロマトグラフィーのAggrecan抗体カラムに用いたと同じ、抗Aggrecanモノクローナル抗体を、常法によりワサビペルオキシダーゼで標識したものである。
別に、SDS-PAGE後のゲルを、常法により銀染色した。
別に、SDS-PAGE後のゲルを、常法により銀染色した。
結果を図3に示す。図3において、(a)はSDS-PAGE後のゲルを銀染色した結果、(b)はペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体を用いてウエスタンブロッティングを行った結果をそれぞれ示す。
また、図3(a)及び(b)において、レーン1は蛋白質分子量マーカー プレシジョンプラス プロテインスタンダード(BIO-RAD製)、レーン2はアフィニティー精製前の培養上清、レーン3はアフィニティー精製後の培養上清、レーン4はアフィニティー精製で得られたタンパク質を試料とした場合の結果をそれぞれ示す。また、図3(b)の矢印は、本発明のHABPの画分を示す。
図3(a)と(b)の結果を比較すると明らかな如く、アフィニティー精製前の培養上清(レーン2)には、ペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体と交叉した画分が検出されたが、アフィニティー精製後の培養上清(レーン3)にはペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体と交叉した画分が検出されなかった。また、アフィニティー担体を溶出緩衝液で溶出した後の精製タンパク分画(レーン4)には、ペルオキシダーゼ標識抗Aggrecan抗体と交叉した画分が検出された。
また、SDS-PAGEで確認された、Aggrecan抗体と交叉した画分のタンパク質の大きさは約90kDaで、データベースに開示された公知のウシアグレカンのアミノ酸配列から推測させる分子量よりも大きく、糖鎖が付加されていることが推測された。
以上のことから、発現したタンパク質は、抗Aggrecan抗体と交叉するタンパク質であることが確認された。
よって、以上の方法により目的の本発明のHABPを発現させることができたことが確認された。
また、SDS-PAGEで確認された、Aggrecan抗体と交叉した画分のタンパク質の大きさは約90kDaで、データベースに開示された公知のウシアグレカンのアミノ酸配列から推測させる分子量よりも大きく、糖鎖が付加されていることが推測された。
以上のことから、発現したタンパク質は、抗Aggrecan抗体と交叉するタンパク質であることが確認された。
よって、以上の方法により目的の本発明のHABPを発現させることができたことが確認された。
実施例2.ヒアルロン酸の測定1(検量線の作成)
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られた、アフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABP100μg分を、10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られた、アフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABP100μg分を、10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
2mlのポリカーボネート製遠心チューブに、精製水800μl、ラテックス粒子溶液100μl(積水化学工業(株)製:E05K29S、10wt%、ラテックス粒径0.3μm)、500mMホウ酸緩衝液(pH7.3)100μl、抗HABPモノクローナル抗体含有50mMASES緩衝液100μl(抗HABPモノクローナル抗体濃度:4.24mg/ml,pH6.5)を添加し、攪拌しながら室温で100分間インキュベートし、抗HABPモノクローナル抗体が担持されたラテックス粒子浮遊液を得た。インキュベート時の抗HABPモノクローナル抗体の濃度は約0.385mg/mLである。
2mlのポリカーボネート製遠心チューブに、精製水800μl、ラテックス粒子溶液100μl(積水化学工業(株)製:E05K29S、10wt%、ラテックス粒径0.3μm)、500mMホウ酸緩衝液(pH7.3)100μl、抗HABPモノクローナル抗体含有50mMASES緩衝液100μl(抗HABPモノクローナル抗体濃度:4.24mg/ml,pH6.5)を添加し、攪拌しながら室温で100分間インキュベートし、抗HABPモノクローナル抗体が担持されたラテックス粒子浮遊液を得た。インキュベート時の抗HABPモノクローナル抗体の濃度は約0.385mg/mLである。
尚、上記抗HABPモノクローナル抗体は、ウシ鼻中隔軟骨よりLaurentらの変法で精製されたヒアルロン酸バインディングプロテイン(生化学工業(株)製)を抗原として、常法により作製されたものである。
次いで、得られた抗HABPモノクローナル抗体が担持されたラテックス粒子浮遊液を15000rpmで15分間遠心分離した。その上清を除去し、容器底部のペレットに50mMホウ酸緩衝液(2.5%BSA含む、pH7.3)1mlを添加した後、氷冷しながら1分間超音波処理し、ペレットを再浮遊させた。更に、攪拌しながら室温で120分間インキュベートし、ラテックス粒子表面上に抗体が担持されていない領域をBSAで被覆した。
次いで、該ラテックス粒子の懸濁液を15000rpmで15分間遠心分離した。その上清を除去し、容器底部のペレットに50mMホウ酸緩衝液(0.5%BSA含む、pH7.3)1mlを添加した。その後、氷冷しながら1分間超音波処理してペレットを再浮遊させ、これを50mMホウ酸緩衝液(0.5%BSA含む、pH7.3)で3.33倍に希釈したものを、第2試液とした。
3)ヒアルロン酸溶液の調製
ヒアルロン酸ナトリウム((株)紀文フードケミファ製)を、ヒアルロン酸溶液中の濃度が50、100、200、500、1000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、ヒアルロン酸溶液とした。
ヒアルロン酸ナトリウム((株)紀文フードケミファ製)を、ヒアルロン酸溶液中の濃度が50、100、200、500、1000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、ヒアルロン酸溶液とした。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
測定時の本発明のHABPの濃度は、約7.35μg/mLである。
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
測定時の本発明のHABPの濃度は、約7.35μg/mLである。
(3)結果
得られた結果を、図4に(―○―)で示す。
尚、図4中の縦軸の値は、測定で得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
得られた結果を、図4に(―○―)で示す。
尚、図4中の縦軸の値は、測定で得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
比較例1
(1)試液の調製
1)第1試液(天然品HABP含有)の調製
20μgのヒアルロン酸バインディングプロテイン(ウシ鼻中隔軟骨よりLaurentらの変法で精製されたもの(生化学工業(株)製)。以下、「天然品HABP」とする。)を10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液
実施例2(1)3)で調製したと同じヒアルロン酸溶液を用いた。
(1)試液の調製
1)第1試液(天然品HABP含有)の調製
20μgのヒアルロン酸バインディングプロテイン(ウシ鼻中隔軟骨よりLaurentらの変法で精製されたもの(生化学工業(株)製)。以下、「天然品HABP」とする。)を10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液
実施例2(1)3)で調製したと同じヒアルロン酸溶液を用いた。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例2(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
測定時の天然品HABPの濃度は、約1.47μg/mLである。
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例2(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
測定時の天然品HABPの濃度は、約1.47μg/mLである。
(3)結果
得られた結果を、図4に(―◆―)で、実施例2の結果と併せて示す。
得られた結果を、図4に(―◆―)で、実施例2の結果と併せて示す。
図4の結果から明らかな如く、本発明のHABPを用いてヒアルロン酸の測定を行った結果、従来の天然品HABPを用いた場合と同様、良好な検量線が得られた。このことから、本発明のHABPを用いて、ヒアルロン酸の測定を行えることが判る。
実施例3.ヒアルロン酸の測定2(プロゾーン現象の影響)
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られたアフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABP100μg分を、10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)高濃度ヒアルロン酸溶液調製
ヒアルロン酸ナトリウム(紀文フードケミファ製)を、高濃度ヒアルロン酸溶液中の濃度が5000、10000、20000、50000、100000、200000、500000、1000000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、高濃度ヒアルロン酸溶液とした。
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られたアフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABP100μg分を、10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)高濃度ヒアルロン酸溶液調製
ヒアルロン酸ナトリウム(紀文フードケミファ製)を、高濃度ヒアルロン酸溶液中の濃度が5000、10000、20000、50000、100000、200000、500000、1000000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、高濃度ヒアルロン酸溶液とした。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製した高濃度ヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
測定時の本発明のHABPの濃度は、約7.35μg/mLである。
上記(1)3)で調製した高濃度ヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
測定時の本発明のHABPの濃度は、約7.35μg/mLである。
(3)結果
得られた結果を、図5に(―○―)で示す。
また、実施例2で得られた、ヒアルロン酸溶液中のヒアルロン酸濃度が50、100、200、500、1000ng/mlの試料を用いて測定を行った場合の結果も、図5に(―○―)で併せて示す。
尚、図5中の縦軸の値は、得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
得られた結果を、図5に(―○―)で示す。
また、実施例2で得られた、ヒアルロン酸溶液中のヒアルロン酸濃度が50、100、200、500、1000ng/mlの試料を用いて測定を行った場合の結果も、図5に(―○―)で併せて示す。
尚、図5中の縦軸の値は、得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
比較例2
(1)試液の調製
1)第1試液(天然品HABP含有)の調製
20μgの天然品HABP(生化学工業(株)製))を10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例3(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)高濃度ヒアルロン酸溶液
実施例3(1)3)で調製したと同じ高濃度ヒアルロン酸溶液を用いた。
(1)試液の調製
1)第1試液(天然品HABP含有)の調製
20μgの天然品HABP(生化学工業(株)製))を10mlの100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例3(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)高濃度ヒアルロン酸溶液
実施例3(1)3)で調製したと同じ高濃度ヒアルロン酸溶液を用いた。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製した高濃度ヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例3(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
測定時の天然品HABPの濃度は約1.47μg/mLである。
上記(1)3)で調製した高濃度ヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例3(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
測定時の天然品HABPの濃度は約1.47μg/mLである。
(3)結果
得られた結果を、図5に(―◆―)で、実施例3の結果と併せて示す。
図5から明らかな如く、抗原過剰域のヒアルロン酸濃度を測定した場合、本発明のHABPを用いた方が、従来の天然品HABPを用いるよりもプロゾーン現象による吸光度の減少が少なかった。
以上のことから、本発明のHABPを用いてヒアルロン酸濃度の測定を行えば、抗原過剰域においてもより高濃度まで、高精度なヒアルロン酸濃度の測定が行えることが判る。
得られた結果を、図5に(―◆―)で、実施例3の結果と併せて示す。
図5から明らかな如く、抗原過剰域のヒアルロン酸濃度を測定した場合、本発明のHABPを用いた方が、従来の天然品HABPを用いるよりもプロゾーン現象による吸光度の減少が少なかった。
以上のことから、本発明のHABPを用いてヒアルロン酸濃度の測定を行えば、抗原過剰域においてもより高濃度まで、高精度なヒアルロン酸濃度の測定が行えることが判る。
実施例4.ヒアルロン酸の測定3
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られた、アフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABPを、第1試液中の濃度が2μg/ml~8μg/mlの濃度になるように、100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液の調製
ヒアルロン酸ナトリウム((株)紀文フードケミファ製)を、ヒアルロン酸溶液中の濃度が1000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、ヒアルロン酸溶液とした。
(1)試液の調製
1)第1試液(本発明のHABP含有)の調製
実施例1(7)で得られた、アフィニティークロマトグラフィー精製後の本発明のHABPを、第1試液中の濃度が2μg/ml~8μg/mlの濃度になるように、100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例2(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液の調製
ヒアルロン酸ナトリウム((株)紀文フードケミファ製)を、ヒアルロン酸溶液中の濃度が1000ng/mlとなるように50mMリン酸緩衝液(pH7.0)で希釈し、ヒアルロン酸溶液とした。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、以下の測定条件で、全自動測定装置システム(日本電子:BM-8形)を用いて、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
試 料:2.4μl
第1試液:90μl
第2試液:30μl
測定方法:2ポイントエンド法
主波長 :805nm
得られた結果を、図6に(―◇―)で示す。
尚、図6中の縦軸の値は、測定で得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
尚、図6中の縦軸の値は、測定で得られた吸光度からブランク値(ヒアルロン酸濃度が0の時に得られた値)を減算し、10000倍にした値である。
比較例3
(1)公知アミノ酸配列のHAPBの調製
実施例1(1)RNAの回収~(5)塩基配列の相同製検索までの操作を行い、得られたcDNAについて、Mutan-K(タカラバイオ社製)を用い、製品プロトコールに従って、塩基配列の修正を行った。
(1)公知アミノ酸配列のHAPBの調製
実施例1(1)RNAの回収~(5)塩基配列の相同製検索までの操作を行い、得られたcDNAについて、Mutan-K(タカラバイオ社製)を用い、製品プロトコールに従って、塩基配列の修正を行った。
すなわち、上記した通り、ウシアグレカンの公知のアミノ酸配列の、N末端から129-130番目のアミノ酸(Ile-Leu)をコードする塩基配列は「ATTCTA」であるが、実施例1(5)で得られたcDNAの、公知のウシアグレカンの上記部分に対応する位置の388~393番目の塩基配列は「ATCTAT」であった。そこで、実施例1(5)で得られたcDNAを用い、このcDNAの塩基配列の、388番目~393番目の塩基を「ATCTAT」から「ATTCTA」に変える処理を行った。
次いで、Base Station(バイオラッドラボラトリーズ(株))を用い、以上の処理を行った修正cDNAの塩基配列の解読を行った。そして、該修正cDNAの塩基配列が、公知のウシアグレカンのN末端から692番目のアミノ酸残基までのアミノ酸配列をコードする、公知の塩基配列と同じ塩基配列(配列番号8)(すなわち公知のアグレカンのN末端から129-130番目のアミノ酸残基がIle-Leuであるアミノ酸配列をコードしている)であることを確認した。
次いで、組換えベクターとして、実施例1(3)で調製したPCR産物断片の代わりに、上記で得られた修正cDNAを用いる以外は実施例1(4)と同様の方法で、組換えベクターpVL1392/修正cDNAを調製した。
得られた組換えベクターpVL1392/修正cDNAを用いる以外は、実施例1(6)~(7)と同様の方法で、修正cDNAを発現させることにより、データベースに開示された公知のウシアグレカンのアミノ酸配列のN末端から693番目までのアミノ酸配列(配列番号9で表される配列)と同じ配列持つ、HABPを得た(以下、「公知アミノ酸配列のHABP」と記載する。)。
(2)試液の調製
1)第1試液(公知アミノ酸配列のHABP含有)の調製
上記(1)で得られた公知アミノ酸配列のHABPを、第1試液中の濃度が2μg/ml~8μg/mlの濃度になるように、100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例4(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液
実施例4(1)3)で調製したと同じヒアルロン酸溶液を用いた。
1)第1試液(公知アミノ酸配列のHABP含有)の調製
上記(1)で得られた公知アミノ酸配列のHABPを、第1試液中の濃度が2μg/ml~8μg/mlの濃度になるように、100mM HEPES緩衝液(0.1%BSA及び1%NaCl含む、pH7.0)に溶解した。これを第1試液とした。
2)第2試液(抗HABPモノクローナル抗体感作ラテックス粒子)の調製
実施例4(1)2)で調製したと同じ第2試液を用いた。
3)ヒアルロン酸溶液
実施例4(1)3)で調製したと同じヒアルロン酸溶液を用いた。
(2)ヒアルロン酸の測定
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例4(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
上記(1)3)で調製したヒアルロン酸溶液を試料として用い、実施例4(2)と同じ機器を用い、同じ方法で、試料の805nmにおける吸光度を測定した。
(3)結果
得られた結果を、図6に(―■―)で、実施例4の結果と併せて示す。
図6の結果から明らかな如く、「データベースに開示された公知のウシアグレカンの塩基配列に基づいて調製したcDNAを発現させることによって得られた公知アミノ酸配列のHABP」を用いてヒアルロン酸の測定を行った場合には、公知アミノ酸配列のHABPの濃度を高くしても吸光度の上り方が少なく、すなわち、感度が低く、そのため、血清中のヒアルロン酸濃度が低い場合には、測定が行えないことが判る。
得られた結果を、図6に(―■―)で、実施例4の結果と併せて示す。
図6の結果から明らかな如く、「データベースに開示された公知のウシアグレカンの塩基配列に基づいて調製したcDNAを発現させることによって得られた公知アミノ酸配列のHABP」を用いてヒアルロン酸の測定を行った場合には、公知アミノ酸配列のHABPの濃度を高くしても吸光度の上り方が少なく、すなわち、感度が低く、そのため、血清中のヒアルロン酸濃度が低い場合には、測定が行えないことが判る。
一方、本発明のHABPを用いてヒアルロン酸の測定を行った場合には、本発明のHABPの濃度を上げるに従い吸光度が増加した。すなわち、HABPの濃度を調製することにより、ヒアルロン酸の測定に十分な感度が得られることが判る。
また、以上のことから明らかな通り、本発明のHABPは、ヒアルロン酸の測定を実施し得るだけの反応性を有するものであるため、本発明のHABPを用いれば、一定濃度のHABPを用いて、一定濃度のヒアルロン酸を測定する測定キットを供給できるようになる、という効果も有することが判る。
本発明のHABPは、リコンビナント品であるため、天然品のアグレカンと比較して、安価に且つ大量に得ることができ、また品質のばらつきもないという、優れた品質を有する。
また、本発明のHABPは、上記の特長を有することから、これを用いれば、安価に且つ高精度なヒアルロン酸の測定を行うことが出来る。
また、本発明のHABPは、上記の特長を有することから、これを用いれば、安価に且つ高精度なヒアルロン酸の測定を行うことが出来る。
図4において、―○―は、本発明のHABPを含有する第1試液を用いて測定を行った場合の結果を、―◆―は、天然品HABPを含有する第1試液を用いて測定を行った場合の結果をそれぞれ示す。
図5において、―○―は、本発明のHABPを含有する第1試液を用いて測定を行った場合の結果を、―◆―は、天然品HABPを含有する第1試液を用いて測定を行った結果をそれぞれ示す。
図6において、-◇-は、本発明のHABPを含有する第1試液を用いて測定を行った場合の結果を、―■―は、公知アミノ酸配列のHABPを含有する第1試液を用いて測定を行った場合の結果をそれぞれ示す。
Claims (12)
- 配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドであって、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基であり、且つヒアルロン酸結合能を有するタンパク質、のアミノ酸配列をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド。
- アミノ酸配列が、配列番号4で表されるものである、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- 配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチドが配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドであり、該ポリヌクレオチドの5'末端から390番目の塩基はT、C、Aから選択される塩基であり、5'末端から391番目~393番目の塩基はTAT、TAC、TCT,TCC、TCA、TCG、ACT、ACC、ACA、ACG、TGT、TGC、AAT、AAC、CAA、CAGから選択される塩基配列である、請求項1記載のポリヌクレオチド(尚、Aはアデニン、Cはシトシン、Gはグアニン、Tはチミンをそれぞれ表す。以下同じ。)。
- 391番目から393番目の塩基配列がTATである、請求項3記載のポリヌクレオチド。
- 390番目の塩基がCである、請求項3記載のポリヌクレオチド。
- 配列番号3で表される、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- 配列番号2で表されるアミノ酸配列からなり、該アミノ酸配列のN末端から130番目のアミノ酸残基がイソロイシン残基であり、131番目のアミノ酸残基は、チロシン,セリン,トレオニン,システイン,アスパラギン及びグルタミンからなる群より選択されるアミノ酸由来の残基である、ヒアルロン酸結合能を有するタンパク質。
- アミノ酸配列が、配列番号4で表されるものである、請求項7に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質。
- 配列番号1で表される塩基配列のポリヌクレオチドを含有する組換え発現ベクターを組み込んだバキュロウイルスでトランスフェクションされた宿主細胞又は該組換え発現ベクターで宿主細胞を形質転換して得られた形質転換体を培養し、培養液からタンパク質を分離・精製することを特徴とする、請求項7に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質の製造方法
- 試料中のヒアルロン酸と、請求項7に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパク質を接触させてヒアルロン酸と該タンパク質との複合体を形成させ、次いで該複合体と、該タンパク質に特異的な抗体を担持させた担体とを反応させ、該反応により生じた凝集物による光学的変化を測定し、該測定値からヒアルロン酸量を算出することを特徴とする、ヒアルロン酸の測定方法。
- 該担体がラテックスである、請求項10に記載の測定方法。
- 請求項7に記載のヒアルロン酸結合能を有するタンパクを構成成分として含有する、ヒアルロン酸測定用試薬キット。
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