UA47498U - Method for preincubation treatment of eggs - Google Patents

Abstract

A method for preincubation treatment of eggs of poultry is characterized in that disinfection of eggs is carried out with high-purity solution of sodium hypochlorite in concentration of 600 mg/l in the form of aerosol with exposure for 30 minutes.

Description

передінкубаційної обробки яєць птиці з використанням високочистого розчину НГХ, який заявляється, є недорогим, ефективним, простим у приготуванні. Має бактерицидні, вірулентні, фунгіцидні, дезодоруючі та дезінтоксикуючі властивості. Не містить домішок інших кисневмісних сполук (хлоритів, хлоратів, перхлоратів), які є токсичними для людей та тварин. Його застосування дає можливість забезпечити ефективну дезінфекцію яєць птиці, зберегти природній захисний бар'єр шкаралупи яєць і збереженість виходу здорових курчат.pre-incubation treatment of poultry eggs using a highly pure solution of NHC, which is claimed to be inexpensive, effective, and easy to prepare. It has bactericidal, virulent, fungicidal, deodorizing and detoxifying properties. Does not contain impurities of other oxygen-containing compounds (chlorites, chlorates, perchlorates), which are toxic to humans and animals. Its use makes it possible to ensure effective disinfection of poultry eggs, preserve the natural protective barrier of the eggshell and preserve the hatching of healthy chickens.

Реалізація заявленого технічного рішення здійснюється таким чином. Одержання високочистого стабільного розчину НГХ проводиться за допомогою розробленої нової технології та пристрою у промислових умовах.The implementation of the declared technical solution is carried out as follows. Obtaining a highly pure, stable solution of NHC is carried out using the developed new technology and device in industrial conditions.

Одержання НГХ в сконструйованому електролізері здійснюється у прямій електрохімічній реакції, минаючи процес утворення молекулярного хлору. Розчин, що утворюється не містить домішок інших кисневмісних сполук хлору (хлоритів, хлоратів, перхлоратів). У процесі розкладання молекул гіпохлориту в розчині утворюються хлорит-іони та молекулярний кисень, тобто в процесі зберігання у розчині не акумулюються токсичні речовини.Production of NHC in the designed electrolyzer is carried out in a direct electrochemical reaction, bypassing the process of molecular chlorine formation. The resulting solution does not contain impurities of other oxygen-containing chlorine compounds (chlorites, chlorates, perchlorates). In the process of decomposition of hypochlorite molecules in the solution, chlorite ions and molecular oxygen are formed, that is, toxic substances do not accumulate in the solution during storage.

Високочистий НГХ - доволі стабільний засіб, який при зберіганні у темному місці зберігає свої властивості протягом 120 діб. А за умови зберігання у захищеному від прямої дії світла місці, за температури від (3-5) до (18- 25) "С та рН близьких до нейтрального (втрата активності менше 10 95), НГХ може зберігатись роками, не розкладаючись.Highly pure NHC is a fairly stable agent that retains its properties for 120 days when stored in a dark place. And under the condition of storage in a place protected from direct light, at temperatures from (3-5) to (18-25) "C and pH close to neutral (loss of activity less than 10 95), NHC can be stored for years without decomposing.

Передінкубаційну обробку яєць птиці високочистим розчином НГХ проводять за допомогою аерозольної установки, що перетворює розчин у аерозоль з діаметром частинок 40245 мкм. Компресор повинен забезпечувати тиск 3,5-4 атм, при цьому витрати дезінфікуючого розчину становлять 5 мл/м3. Дезінфекцію проводять у фумігаційній камері за температури не нижче 18 " С при експозиції 30 хв. Аерозольну обробку виконують при виключеному світлі. Після 30 хвилинної експозиції включають вентилятор до повного вивільнення фумігаційної камери від аерозолю.Pre-incubation treatment of poultry eggs with a highly pure NHC solution is carried out with the help of an aerosol unit, which turns the solution into an aerosol with a particle diameter of 40245 μm. The compressor should provide a pressure of 3.5-4 atm, while the consumption of the disinfectant solution is 5 ml/m3. Disinfection is carried out in the fumigation chamber at a temperature not lower than 18 "С during exposure for 30 minutes. Aerosol treatment is performed with the light turned off. After 30 minutes of exposure, turn on the fan until the fumigation chamber is completely freed from the aerosol.

Приклад 1. Визначення бактеріостатичної та бактерицидної концентрації високо чистого розчину НГХExample 1. Determination of the bacteriostatic and bactericidal concentration of a highly pure NHC solution

Визначення бактеріостатичної концентрації високочистого розчину НГХ проводили методом серійних розведень у рідкому поживному середовищі. Після внесення тест-культур у серійні розведення проводили інкубування у термостаті за температури (370,5) "С впродовж (18-24) годин. Результати досліджень враховували за відсутністю видимого росту мікроорганізмів у пробірках.Determination of the bacteriostatic concentration of a highly pure solution of NHC was carried out by the method of serial dilutions in a liquid nutrient medium. After introducing the test cultures into serial dilutions, incubation was carried out in a thermostat at a temperature of (370.5) C for (18-24) hours. The results of the research were considered based on the absence of visible growth of microorganisms in the test tubes.

Як тест-штами використовували мікроорганізми, що були виділені з поверхні шкаралупи курячих яєць. Зі шкаралупи яєць було виділено таку мікрофлору: Е. соїї, В. з!Ибій5, Р5. аєпідпоза, 5ї. айгеив, С. аїрісапв.Microorganisms isolated from the surface of chicken eggshells were used as test strains. The following microflora was isolated from eggshells: E. soii, V. z!Ibiy5, P5. ayepidpoza, 5th. aigeiv, S. airisapv.

Результати визначення бактеріостатичної концентрації розчину НГХ наведені у таблиці 1.The results of determining the bacteriostatic concentration of the NHC solution are shown in Table 1.

Таблиця 1Table 1

Концентрація, | Тестштами мікроорганамів.///Ї 77/71Concentration, | Test strains of microorganisms.///Y 77/71

Б. сої пт ПОЯВОЮ ПО ООН КО ОНИ ПО 85011111B. soi pt I APPEAR AT UNO KO ONI PO 85011111

ПЕ т ПО НЯ ПОООООО ОН ПО ООН КО ПОН КО неси ПЕ з о ЗО ПО ОХ ПОЛО ЗОЛЯ ОХPE t PO NYA POOOOOO ON PO UNO KO PON KO carry PE z o ZO PO OH POLO ZOLYA OH

Як видно з даних, наведених у таблиці 1, високочистий розчин НГХ проявляє бактеріостатичну дію як на грам позитивні, так і на грам негативні мікроорганізми у концентрації 300 мг/л. Крім цього, високочистий розчин НГХ проявляє також і фунгістатичну дію у концентрації 200 мг/л.As can be seen from the data presented in Table 1, a highly pure solution of NHC exhibits a bacteriostatic effect on both gram-positive and gram-negative microorganisms at a concentration of 300 mg/l. In addition, the highly pure NHC solution also exhibits a fungistatic effect at a concentration of 200 mg/l.

Визначення бактерицидної концентрації високочистого розчину НГХ проводили на тест-об'єктах: дереві та кахельній плитці. Для оцінки бактерицидної дії розчину НГХ використовували кишкову паличку та стафілокок.Determination of the bactericidal concentration of the highly pure NHC solution was carried out on test objects: wood and tiles. Escherichia coli and staphylococcus were used to evaluate the bactericidal effect of NHC solution.

Результати досліджень подано у таблиці 2.The results of the research are presented in Table 2.

Таблиця 2Table 2

Експозиція (хв 00 Воомує в ----1--------- РР- 95- о ВЗбашеня/////17777771сяї ЇЇ Ї1- вом р-р - Ж ж 5 - --- 2 - 4-- - оо ббашеив///// ЇЇ 77777111 -111111х томип сеї 77711711 ЇЇ оо ббашенв////Ї 7777-1171 1111Exposition (min 00 Voomue in ----1--------- RR- 95- o VZbashenya/////17777771syayi ІІІІ1- vom y-y - F f f 5 - --- 2 - 4 -- - оо ббашеів///// HER 77777111 -111111x tomyp sei 77711711 HER oo bbashenv////Ж 7777-1171 1111

Примітка: - - відсутність росту мікроорганізмів; -- - ріст мікроорганізмівNote: - - lack of growth of microorganisms; -- - growth of microorganisms

Як видно з даних наведених у таблиці 2, розчин НГХ проявляє бактерицидну дію відносно Е. сої та 5. ашгейв у концентрації 500 мг/л при експозиції 30 хвилин. При експозиції 15 хвилин розчин НГХ концентрацією 600 мг/л проявляє бактерицидну активність відносно Е. соїї та 5і. ашгеиз тільки на кахельній плитці, а при експозиції 30 хвилин - на всіх тест-об'єктах.As can be seen from the data presented in Table 2, the NHC solution has a bactericidal effect against E. soya and 5. ashgave at a concentration of 500 mg/l with exposure for 30 minutes. After exposure for 15 minutes, the NHC solution with a concentration of 600 mg/l shows bactericidal activity against E. soya and 5i. ashgeiz only on tiles, and with an exposure of 30 minutes - on all test objects.

Приклад 2. Вплив розчину НГХ на бактеріальну забрудненість повітря та шкаралупи інкубаційних яєць птиціExample 2. The effect of NHC solution on the bacterial contamination of the air and the shell of hatching poultry eggs

З метою встановлення дезінфікуючих властивостей високочистого розчину НГХ було проведено аерозольну обробку яєць птиці та визначено вплив даного розчину на мікрофлору фумігаційної камери. Аерозольну обробку проводили за допомогою аерозольної установки «САГ», що перетворює розчин НГХ в аерозоль, з діаметром частинок (40 х 5) мкм, при цьому компресор забезпечував тиск (3,5-4) атм.In order to establish the disinfecting properties of the highly pure NHC solution, aerosol treatment of poultry eggs was carried out and the effect of this solution on the microflora of the fumigation chamber was determined. Aerosol treatment was carried out with the help of an aerosol unit "SAG", which converts the NHC solution into an aerosol with a particle diameter of (40 x 5) μm, while the compressor provided a pressure of (3.5-4) atm.

Визначення бактеріальної забрудненості яєць проводили шляхом взяття змивів з поверхні шкаралупи. Проби для дослідження загальної мікробної забрудненості поверхні шкаралупи відбирали безпосередньо перед та після обробки по 10 штук з різних місць. Для дослідження використовували стерильні марлеві серветки (5х5 см), складені у вигляді тампону та широкогорлу колбу на (30-50) поділок з бусинками.Determination of bacterial contamination of eggs was carried out by taking washes from the surface of the shell. Samples for the study of total microbial contamination of the shell surface were taken immediately before and after treatment, 10 pieces each from different places. Sterile gauze napkins (5x5 cm) folded in the form of a tampon and a wide-necked flask with (30-50) divisions with beads were used for the research.

Кожне яйце брали стерильним (профламбованим) пінцетом та протирали марлевим тампоном, змоченим у стерильному фізіологічному розчині. Марлевий тампон за допомогою пінцету промивали в колбі, відтискали і знову протирали ним поверхню шкаралупи. Після повторного протирання тампон опускали в колбу з бусинками, відмивали і через 10 хвилин проводили посіви у поживні середовища (вносили по 0,5 мл у шість чашок Петрі, з яких три заливали розплавленим і охолодженим до (40-45) "С МПА, а три - агаром Сабуро).Each egg was taken with sterile (flambable) tweezers and wiped with a gauze swab dipped in sterile physiological solution. The gauze swab was washed in the flask with tweezers, squeezed and again wiped with it on the surface of the shell. After repeated wiping, the tampon was lowered into a flask with beads, washed, and after 10 minutes, cultures were carried out in nutrient media (0.5 ml was added to six Petri dishes, three of which were filled with melted and cooled to (40-45) C MPA, and three - with Sabouraud agar).

При дослідженні змивів зі шкаралупи не дезінфікованих яєць проводили десятикратні розведення змивів 1:10, 1:100, 1:1000 та висівали по 0,5 мл у 6 чашок Петері (три - з МПА, три - з агаром Сабуро). Результати посівів враховували після їх інкубування в термостаті за температури (30-35) "С (для бактерій) та за температури (20-22) "Сб (для грибів) впродовж 24, 48, 72 год. Після інкубування підраховували кількість колоній на МПА до і після дезінфекції та вираховували відсоток знезаражування.In the study of washes from the shells of non-disinfected eggs, tenfold dilutions of washes 1:10, 1:100, 1:1000 were carried out and 0.5 ml were sown in 6 Peteri dishes (three with MPA, three with Sabouraud agar). The results of the crops were taken into account after their incubation in a thermostat at a temperature of (30-35) C (for bacteria) and at a temperature of (20-22) C (for fungi) for 24, 48, 72 hours. After incubation, the number of colonies on MPA before and after disinfection was counted and the percentage of disinfection was calculated.

Перед обробкою визначали бактеріальну забрудненість яєць шляхом взяття змивів з поверхні шкаралупи.Before processing, bacterial contamination of eggs was determined by taking washes from the surface of the shell.

Бактеріальну забрудненість повітря камери визначали седиментаційним методом. Результати досліджень подано у таблиці 3.Bacterial pollution of the chamber air was determined by the sedimentation method. The results of the research are presented in Table 3.

Таблиця ЗTable C

Бактеріальна забрудненість камери до і після обробки високочистим розчином НГУ, М зт, п-10Bacterial contamination of the chamber before and after treatment with a high-purity solution of NSU, M zt, p-10

Деззасоби, концентрація Повітряний басейн Повітряний басейнDisadvantages, concentration Air pool Air pool

Як видно з даних, наведених у таблиці 3, до обробки яєць високочистим розчином НГХ загальна забрудненість шкаралупи була у межах 26 КУО, через 30 хв після обробки високочистим розчином НГХ концентрацією 600 мг/л, загальна забрудненість шкаралупи становила 470 КУО, ефективність дезінфекції становила 98,2 905, а після обробки високочистим розчином НГХ, концентрацією 500 мг/л, загальна забрудненість шкаралупи становила 850 КУС, ефективність дезінфекції - 96,9 Фо.As can be seen from the data presented in Table 3, before the treatment of eggs with a high-purity NHC solution, the total contamination of the shell was within 26 CFU, 30 minutes after treatment with a high-purity NHC solution with a concentration of 600 mg/l, the total contamination of the shell was 470 CFU, the disinfection efficiency was 98 ,2,905, and after treatment with a high-purity NHC solution with a concentration of 500 mg/l, the total contamination of the shell was 850 KUS, the disinfection efficiency was 96.9 Fo.

При визначенні мікробної забрудненості повітряного басейну камери для аерозольної обробки яєць птиці нами було виявлено 122,5 тис. КУО у 1м3 повітря. Через 30 хвилин після обробки високочистим розчином НГХ концентрацією 500 мг/л мікробна забрудненість повітряного басейну камери зменшилась до 4,8 тис. КУО в їм3, ефективність дезінфекції становила 96,0 95, а після обробки високочистим розчином НГХ концентрацією 600 мг/л мікробна забрудненість становила 2,2 тис. КУО уїм, ефективність дезінфекції - 98,195.When determining the microbial contamination of the air pool of the chamber for aerosol processing of poultry eggs, we found 122.5 thousand CFU in 1 m3 of air. 30 minutes after treatment with a high-purity NHC solution with a concentration of 500 mg/l, the microbial contamination of the air pool of the chamber decreased to 4.8 thousand CFU in them3, the disinfection efficiency was 96.0 95, and after treatment with a high-purity NHC solution with a concentration of 600 mg/l, the microbial contamination amounted to 2.2 thousand CFU of UIM, disinfection efficiency - 98.195.

Ефективність дезінфекції парами формаліну при дегазації шкаралупи яєць становила 76,0 95, повітря камери - 90,8 9.The effectiveness of formalin vapor disinfection during degassing of eggshells was 76.0 95, chamber air - 90.8 9.

Приклад 3. Проведення порівняльної ефективності дезінфекції різними деззасобамиExample 3. Carrying out comparative disinfection efficiency with different disinfectants

На наступному етапі досліджень було встановлено вплив високочистого розчину НГХ у концентрації 600 мг/л на мікрофлору шкаралупи яєць після дезінфекції та на 10 добу після обробки, у порівнянні з дезоксом та формаліном. Результати досліджень подано в таблиці 4.At the next stage of research, the effect of a high-purity NHC solution at a concentration of 600 mg/l on the microflora of eggshells after disinfection and 10 days after treatment was determined, in comparison with deox and formalin. The results of the research are presented in Table 4.

Таблиця 4Table 4

Порівняльна ефективність проведеної дезінфекції (Мет, п-10) ню 1 ен | НОВ пеновннн | НИдетея обробки обробкиComparative effectiveness of the carried out disinfection (Met, p-10) nyu 1 en | NEW penovnnnn | Niteya processing processing

За результатами досліджень передінкубаційної дезінфекції яєць різними засобами (розчин НГХ, дезокс, формалін), наведеними у таблиці 4, можна зробити висновок, що найбільш ефективним є високочистий розчинAccording to the results of studies of pre-incubation disinfection of eggs by various means (NGH solution, deox, formalin), given in Table 4, it can be concluded that the most effective is a highly pure solution

НГХ. Так, після проведеної дезінфекції її ефективність складала 98,6 95, причому дезінфікуючий ефект високочистого розчину НГХ відмічався і на 10 добу після проведеної дезінфекції та становив - 98,2 95 (дезінфікуючий ефект знизився тільки на 0,4 90).NGH. Thus, after the disinfection, its effectiveness was 98.6 95, and the disinfecting effect of the highly pure NHC solution was noted even on the 10th day after the disinfection and was 98.2 95 (the disinfecting effect decreased by only 0.4 90).

Ефективність дезінфекції, після її проведення дезоксом, та на 10 добу складала відповідно 97.9 95 та 97,6 95, що було незначно нижче від високочистого розчину НГХ. Найнижчі дезінфікуючі властивості проявляв формалін, ефективність дезінфекції складала якого 91,2 90, що було на 7,4 95 нижче високочистого розчину НГУ.The effectiveness of disinfection, after it was carried out with deox, and on the 10th day was 97.9 95 and 97.6 95, respectively, which was slightly lower than the high-purity NHC solution. The lowest disinfecting properties were demonstrated by formalin, the disinfection efficiency of which was 91.2 90, which was 7.4 95 lower than the highly pure solution of NGU.

Приклад 4. Передінкубаційна обробка яєць птиці високочистим розчином НГХ У подальшому ми провели передінкубаційну обробку яєць бройлерної птиці кросу Хаббард високочистим розчином НГХ. З цією метою використовували концентрації розчину 500 та 600 мг/л. Аерозольну обробку проводили за допомогою установкуExample 4. Pre-incubation treatment of poultry eggs with a high-purity NHC solution. Subsequently, we carried out pre-incubation treatment of Hubbard cross broiler eggs with a high-purity NHC solution. For this purpose, solution concentrations of 500 and 600 mg/l were used. Aerosol treatment was carried out using an installation

САГ, при цьому витрати розчину НГХ становили 5 мл/м3 фумігаційної камери, при експозиції 30 хвилин.SAG, while the consumption of the NHC solution was 5 ml/m3 of the fumigation chamber, with an exposure of 30 minutes.

Результати визначення впливу різних концентрацій високочистого розчину НГХ подано у таблиці 5.The results of determining the influence of different concentrations of high-purity NHC solution are presented in Table 5.

Таблиця 5Table 5

Передінкубаційна обробка яєць птиці високочистим розчином НГХPre-incubation treatment of poultry eggs with high-purity NHC solution

Деззасоби, концентрація Кількість яєць, шт - головиDisinfectants, concentration Number of eggs, pcs - heads

Як видно з даних, наведених у таблиці 5, при аерозольній обробці, високочистим розчином НГХ у концентрації 500 мг/л із оброблених 3696 штук яєць вихід курчат становив 2600 голів (70,3 905), а при застосуванні розчину НГХ у концентрації 600 мг/л вихід курчат становив 72,4 95, тоді як при застосуванні формаліну -- 70,7 Фо.As can be seen from the data presented in Table 5, during aerosol treatment with a high-purity NHC solution at a concentration of 500 mg/l, from the processed 3,696 pieces of eggs, the yield of chickens was 2,600 heads (70.3,905), and when using a NHC solution at a concentration of 600 mg/l l yield of chickens was 72.4 95, while when using formalin - 70.7 Fo.

Таким чаном, найбільш оптимальною концентрацією високочистоїо розчину НГХ, для передінкубаційної обробки яєць птиці становить 600 мг/л при експозиції 30 хвилин (норми витрати дезінфікуючого засобу - 5 мл/м 3).Thus, the most optimal concentration of high-purity NHC solution for the pre-incubation treatment of poultry eggs is 600 mg/l with exposure for 30 minutes (disinfectant consumption rate - 5 ml/m 3).

Джерела інформації. 1. Дезинфектанть! для санации обьектов ветеринарного надзора / Кабардиев С. Ш., Амаеєв К. Г., Клищенко Е. 10., Рашидов А. А./ Ветеринария.-2001.-Вьп.10.-С.43-46. 2. Шандала М. Г. // Дезинфекционное дел о. -2002. -Мо 3. 3. Шандала М. Г., Ваеєва Г. Н., Мальцева М. М., Панкратова Г.П. // Гигиена и санитария.-2002.-Ме3. 4. Косенко М. В., Ковальчик Л.М., Гаврилець Є. С, Козенко 0. В., Демчук М. В. Ефективність застосування хплорантоїну для вологої та аерозольної дезинфекції. Ветеринарна медицина України.- 1997.-Ме7.-С. 36-37. 5. Бреславец В., Стегний Б., Кальн П. Дезинфекция яиц перед закладкой на инкубацию и в период инкубации. Применение зкологически безопасньїх адаптогенов и естественньїх метаболитов - путь к снижению змбриональной смертности и улучшению качества молодняка птиць. // Вісник аграрної науки 2008. - Спеціальний випуск Ме9. - С. 54-59. 6. Байдевлятов А., Белоус А., Самталов В., Богосьян А., Вольінская С. Препарат для дезинфекции яйиц //Sources. 1. Disinfectant! for the rehabilitation of objects of veterinary supervision / Kabardiev S. Sh., Amaeev K. G., Klyshchenko E. 10., Rashidov A. A. / Veterinaria.-2001.-Vp.10.-S.43-46. 2. Shandala M. G. // Disinfecting del o. -2002. -Mo 3. 3. Shandala M.G., Vaeeva G.N., Maltseva M.M., Pankratova G.P. // Hygiene and sanitation.-2002.-Me3. 4. Kosenko M.V., Kovalchyk L.M., Havrilets E.S., Kozenko O.V., Demchuk M.V. Effectiveness of using xplorantoin for wet and aerosol disinfection. Veterinary medicine of Ukraine.- 1997.-Me7.-S. 36-37. 5. Breslavets V., Stegniy B., Kaln P. Disinfection of eggs before laying for incubation and during the incubation period. The use of ecologically safe adaptogens and natural metabolites is a way to reduce embryonic mortality and improve the quality of young birds. // Herald of Agrarian Science 2008. - Special issue Me9. - P. 54-59. 6. Baidevlyatov A., Belous A., Samtalov V., Bogosyan A., Volinskaya S. Preparation for disinfection of eggs //

Птицеводство.-1991.-Ме9,.-С5. 7. Байдевлятов А., Бордукова О., Байдевлятов Ю., Бессарабов Б. Вьісокозффективное средство для дезинфекции яийиц // Птицеводство. - 1996. - Ме2. - б. 26-27. 8. Кожемяка Н. Дезинфекция инкубационньх яийц // Птицеводство.-1996. -Ме1. - С.26. 9. Якубчако О.М. Чим краще обробити?// Сучасне птахівництво. - 2006. - Мо 6. -С. 14-15. 10. Марков Ю., Свириденко В., Зайка С. Динамика накопления микрофлорь! в инкубационньїх шкафах //Poultry breeding.-1991.-Me9,.-S5. 7. Baidevlyatov A., Bordukova O., Baidevlyatov Yu., Bessarabov B. Highly effective means for egg disinfection // Poultry. - 1996. - Me2. - b. 26-27. 8. Kozhemiaka N. Disinfection of incubation eggs // Poultry production.-1996. -Me1. - P.26. 9. Yakubchako O.M. What is better to process?// Modern poultry farming. - 2006. - Mo. 6. -S. 14-15. 10. Markov Yu., Svyridenko V., Zaika S. Dynamics of accumulation of microflora! in incubation cabinets //

Птицеводство.-1984.-Моб. - 32 с. 11. М/пізйег Р.Е., Зпеідоп В.М. Васіегісіда! асімпу, еддзспеї! сопаисіапсе апа Наїспарійу еНесів ої о20пе мег5ив5 тюгтаї!денуає аївіп'есіоп// Рошкну 5с.-1989.-Мої. 68, Ме 8.-Р. 1074-1077. 12. Бессарабов Б.Ф. Ветеринарно-санитарнье мероприятия по профилактике болезней птиц. - М.Poultry breeding.-1984.-Mob. - 32 p. 11. M/pizyeg R.E., Zpeidop V.M. Wasiegisida! asimpu, eddzspei! sopaisiapse apa Naispariyu eNesiv oi o20pe meg5iv5 tyugtai!denuae aivip'esiop// Roshknu 5p.-1989.-Moi. 68, Me 8.-R. 1074-1077. 12. Bessarabov B.F. Veterinary and sanitary measures for the prevention of bird diseases. - M.

Россельхозиздат, 1983. - С. 62-64. 13. Байдевлятов А.Б., Герман В.В., Киприч В.В. и др. Система ветеринарно-санитарньх мероприятий в промьішленном птицеводстве.-К.: Урожай, 1987.-1536. 14. Истомина Т. И., Крученок Т. Б., Арутюнова З. А. Гипохлорить! - перспективнье вирулицидьі Проблемьї! дезинфекции и стерилизации. Сборник научньх трудов. Вьіпуск 25, Москва.-1976.-С.119-121. 15. Виноградова Л. И., Колесников М. В., Михайлов Л. А., Смородинова Т. В. О расширенийий использования гипохлорита натрия как дезинфектанта // Гигиена и санитария.-1989.-Ме9.-С.66-68.Rosselkhozizdat, 1983. - P. 62-64. 13. Baidevlyatov A.B., Herman V.V., Kiprich V.V. etc. System of veterinary and sanitary measures in industrial poultry farming.-K.: Urozhai, 1987.-1536. 14. Istomina T. I., Kruchenok T. B., Arutyunova Z. A. Hypochlorite! - promising vyrulicidi Problemya! disinfection and sterilization. Collection of scientific works. Vyipusk 25, Moscow.-1976.-P.119-121. 15. Vinogradova L. I., Kolesnikov M. V., Mykhaylov L. A., Smorodinova T. V. On the extended use of sodium hypochlorite as a disinfectant // Hygiene and sanitation.-1989.-Me9.-S.66-68 .