RU2677985C1 - Method for treating hatching eggs - Google Patents
Method for treating hatching eggs Download PDFInfo
- Publication number
- RU2677985C1 RU2677985C1 RU2017140927A RU2017140927A RU2677985C1 RU 2677985 C1 RU2677985 C1 RU 2677985C1 RU 2017140927 A RU2017140927 A RU 2017140927A RU 2017140927 A RU2017140927 A RU 2017140927A RU 2677985 C1 RU2677985 C1 RU 2677985C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- incubation
- eggs
- propolis
- group
- days
- Prior art date
Links
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 title claims abstract description 54
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 11
- 230000012447 hatching Effects 0.000 title abstract description 21
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims abstract description 46
- 241000241413 Propolis Species 0.000 claims abstract description 34
- 229940069949 propolis Drugs 0.000 claims abstract description 34
- 229940098465 tincture Drugs 0.000 claims abstract description 21
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims abstract description 16
- 238000011282 treatment Methods 0.000 claims abstract description 16
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 15
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 claims abstract description 8
- 239000012224 working solution Substances 0.000 claims abstract description 3
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 claims description 15
- 238000012545 processing Methods 0.000 claims description 12
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 239000000243 solution Substances 0.000 abstract description 9
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 3
- 238000009374 poultry farming Methods 0.000 abstract description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 2
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 abstract 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 abstract 1
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 31
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 12
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 10
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 10
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 9
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 9
- 241000194032 Enterococcus faecalis Species 0.000 description 8
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 8
- 229940032049 enterococcus faecalis Drugs 0.000 description 8
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 7
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 7
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 7
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 7
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 7
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 6
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 6
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 6
- 241000588919 Citrobacter freundii Species 0.000 description 5
- 208000009701 Embryo Loss Diseases 0.000 description 5
- 239000007844 bleaching agent Substances 0.000 description 5
- 238000011161 development Methods 0.000 description 5
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 5
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 5
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 5
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 5
- 241000295644 Staphylococcaceae Species 0.000 description 4
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 4
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 4
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 4
- 238000007790 scraping Methods 0.000 description 4
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 4
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 4
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 3
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 3
- 210000000867 larynx Anatomy 0.000 description 3
- 239000012286 potassium permanganate Substances 0.000 description 3
- 210000002345 respiratory system Anatomy 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 241000272525 Anas platyrhynchos Species 0.000 description 2
- 241000194033 Enterococcus Species 0.000 description 2
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000030984 MIRAGE syndrome Diseases 0.000 description 2
- 241000588912 Pantoea agglomerans Species 0.000 description 2
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- 206010057190 Respiratory tract infections Diseases 0.000 description 2
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N methanone Chemical compound O=[14CH2] WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 2
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 2
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 2
- TVLSRXXIMLFWEO-UHFFFAOYSA-N prochloraz Chemical compound C1=CN=CN1C(=O)N(CCC)CCOC1=C(Cl)C=C(Cl)C=C1Cl TVLSRXXIMLFWEO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 2
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 2
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 2
- 235000007173 Abies balsamea Nutrition 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N Chlorine atom Chemical compound [Cl] ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000223760 Cinnamomum zeylanicum Species 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 241000588914 Enterobacter Species 0.000 description 1
- 241000194031 Enterococcus faecium Species 0.000 description 1
- 201000005569 Gout Diseases 0.000 description 1
- 241000257303 Hymenoptera Species 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 244000018716 Impatiens biflora Species 0.000 description 1
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N L-leucine Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 1
- COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N L-phenylalanine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N L-tryptophane Chemical compound C1=CC=C2C(C[C@H](N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N Leucine Natural products CC(C)CC(N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010033078 Otitis media Diseases 0.000 description 1
- CBENFWSGALASAD-UHFFFAOYSA-N Ozone Chemical compound [O-][O+]=O CBENFWSGALASAD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000007100 Pharyngitis Diseases 0.000 description 1
- 206010035664 Pneumonia Diseases 0.000 description 1
- 241000589517 Pseudomonas aeruginosa Species 0.000 description 1
- QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N Tryptophan Natural products C1=CC=C2C(CC(N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 description 1
- 239000006286 aqueous extract Substances 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 235000003704 aspartic acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001510 aspartic acids Chemical class 0.000 description 1
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 1
- 239000003899 bactericide agent Substances 0.000 description 1
- 235000010233 benzoic acid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001559 benzoic acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 1
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000013985 cinnamic acid Nutrition 0.000 description 1
- WBYWAXJHAXSJNI-UHFFFAOYSA-N cinnamic acid group Chemical group C(C=CC1=CC=CC=C1)(=O)O WBYWAXJHAXSJNI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000017803 cinnamon Nutrition 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 230000001934 delay Effects 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000002497 edematous effect Effects 0.000 description 1
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 description 1
- 230000029142 excretion Effects 0.000 description 1
- 230000037406 food intake Effects 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 235000013922 glutamic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000004220 glutamic acid Substances 0.000 description 1
- 150000002307 glutamic acids Chemical class 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 238000010827 pathological analysis Methods 0.000 description 1
- 231100000915 pathological change Toxicity 0.000 description 1
- 230000036285 pathological change Effects 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 208000028169 periodontal disease Diseases 0.000 description 1
- COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N phenylalanine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000007747 plating Methods 0.000 description 1
- 150000008442 polyphenolic compounds Chemical class 0.000 description 1
- 235000013824 polyphenols Nutrition 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 1
- 235000013594 poultry meat Nutrition 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000000069 prophylactic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000384 rearing effect Effects 0.000 description 1
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 1
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 1
- 208000023504 respiratory system disease Diseases 0.000 description 1
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 description 1
- 235000018553 tannin Nutrition 0.000 description 1
- 229920001864 tannin Polymers 0.000 description 1
- 239000001648 tannin Substances 0.000 description 1
- 125000002298 terpene group Chemical group 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 206010044008 tonsillitis Diseases 0.000 description 1
- 239000011573 trace mineral Substances 0.000 description 1
- 235000013619 trace mineral Nutrition 0.000 description 1
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 1
- 210000001835 viscera Anatomy 0.000 description 1
- 235000019155 vitamin A Nutrition 0.000 description 1
- 239000011719 vitamin A Substances 0.000 description 1
- 239000000341 volatile oil Substances 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K45/00—Other aviculture appliances, e.g. devices for determining whether a bird is about to lay
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K41/00—Incubators for poultry
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
- A01K67/02—Breeding vertebrates
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61D—VETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
- A61D7/00—Devices or methods for introducing solid, liquid, or gaseous remedies or other materials into or onto the bodies of animals
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Birds (AREA)
- Fodder In General (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к птицеводству, может быть использовано для обеззараживания инкубационных яиц кур.The invention relates to the field of veterinary medicine, namely to poultry farming, can be used to disinfect hatching chicken eggs.
В инкубаторах при максимальной концентрации яиц и выведенного молодняка происходит накопление большого количества патогенной и условно-патогенной микрофлоры, что способствует возникновению и распространению инфекционных болезней. Еще не окрепший организм птиц становится «мишенью» для возбудителей.In incubators, with a maximum concentration of eggs and hatched young animals, a large amount of pathogenic and conditionally pathogenic microflora accumulates, which contributes to the emergence and spread of infectious diseases. The still not strong bird organism becomes a "target" for pathogens.
В результате увеличения микробного потенциала в период инкубации повышается эмбриональная смертность, снижается выводимость яиц и вывод молодняка, происходит заражение цыплят на выводе, что всегда сопровождается их гибелью в первые сутки жизни.As a result of the increase in microbial potential during the incubation period, embryonic mortality increases, hatchability of eggs and hatching of young animals decreases, and chickens are infected at hatching, which is always accompanied by their death on the first day of life.
Наиболее распространенные методы обработки инкубационных яиц - химические, которые основаны на применении различных дезинфицирующих средств (формальдегид, озон, перекись водорода, дезмол, вироцид, экоцид С, бактерицид и др.) в виде водных растворов, аэрозолей, газа.The most common methods for processing hatching eggs are chemical, which are based on the use of various disinfectants (formaldehyde, ozone, hydrogen peroxide, desmol, virocid, ecocide C, bactericide, etc.) in the form of aqueous solutions, aerosols, gas.
Известен способ обработки яиц, включающий использование паров формальдегида, в расчете на 1 м3: 30 мл формалина (40%), 15 мл воды и 20 г калия перманганата, длительность экспозиции 30 мин (см. Ветеринарное законодательство. Т. 4, М., 1988, с. 411-415; Ветеринарно-санитарные правила для птицеводческих хозяйств (ферм) и требования при их проектировании. Утв. ГУВ МСХ СССР 23.07.1973 г.).A known method of processing eggs, including the use of formaldehyde vapor, per 1 m 3 : 30 ml of formalin (40%), 15 ml of water and 20 g of potassium permanganate, exposure time 30 minutes (see Veterinary law. T. 4, M. , 1988, pp. 411-415; Veterinary and sanitary rules for poultry farms (farms) and requirements for their design. Approved GUV Ministry of Agriculture of the USSR 07.23.1973).
Однако, использование формальдегида приводит к патологическим изменениям внутренних органов и повышению смертности эмбрионов во второй половине инкубации, кроме того, вызывает аллергические реакции у обслуживающего персонала, повышает количество респираторных заболеваний. При использовании формальдегида его пары выбрасываются во внешнюю среду, нарушая экологию.However, the use of formaldehyde leads to pathological changes in internal organs and an increase in mortality of embryos in the second half of incubation, in addition, it causes allergic reactions in staff, increases the number of respiratory diseases. When using formaldehyde, its vapors are released into the environment, violating the environment.
В целях предупреждения появления отходов категории «тумак», был применен 1% водный экстракт прополиса для обработки утиных яиц. Эффективность прополиса в этих опытах сравнивалась с действием антибиотиков (пенициллин и стрептомицин) и раствора хлорной извести. Антибиотики применялись в следующей концентрации: пенициллин 1000 ед и стрептомицин 500 ед на 1 мл воды, хлорная известь в виде 5% раствора (с содержанием 1,4% активного хлора). Для обработки яйца погружались в экстракт прополиса и растворы антибиотиков на 3 минуты, а в раствор хлорной извести на 5 минут. Обработка яиц антибиотиками, раствором хлорной извести и экстрактом прополиса перед закладкой в инкубатор позволила предупредить при первом же мираже, появление отходов инкубации категории «тумак». При втором мираже (на 27-й день) в партиях яиц, обработанных антибиотиками и 1% водным экстрактом прополиса, отходы инкубации категории «тумак» также не обнаруживался. В партиях же, обработанных раствором хлорной извести, количество категории «тумак» составило 20%, а в контрольной - 26%. При бактериологическом исследовании соскобов скорлупы и проб от погибших эмбрионов в 90% случаях выделены плесневые грибки, в 6% - бактерии Sal. typhimurium и в 4% вульгарная микрофлора (Покровский С.Г. Результаты лабораторного и производственного изучения профилактического и лечебного действия прополиса при паратифе уток: автореферат, диссертации к.в.н: - Спб.: Минсельхоз СССР - 1966. - 24 с.).In order to prevent the appearance of wastes of the “cuff” category, a 1% aqueous propolis extract was used to process duck eggs. The effectiveness of propolis in these experiments was compared with the action of antibiotics (penicillin and streptomycin) and a solution of bleach. Antibiotics were used in the following concentrations: penicillin 1000 units and streptomycin 500 units per 1 ml of water, bleach in the form of a 5% solution (containing 1.4% active chlorine). For processing, eggs were immersed in propolis extract and antibiotic solutions for 3 minutes, and in a solution of bleach for 5 minutes. Treatment of eggs with antibiotics, a solution of bleach and propolis extract before laying in the incubator made it possible to prevent, at the very first mirage, the appearance of incubation waste of the “cuff” category. At the second mirage (on the 27th day), in batches of eggs treated with antibiotics and a 1% aqueous extract of propolis, incubation waste of the “tumak” category was also not detected. In batches treated with a solution of bleach, the amount of the “cuff” category was 20%, and in the control — 26%. In bacteriological examination of shell scrapings and samples from dead embryos, mold fungi were isolated in 90% of cases, and Sal bacteria in 6%. typhimurium and in 4% vulgar microflora (Pokrovsky S.G. Results of laboratory and industrial studies of the prophylactic and therapeutic effect of propolis in duck paratyphoid: abstract, dissertation of the candidate of economic sciences: - St. Petersburg: Ministry of Agriculture of the USSR - 1966. - 24 pp.) .
Однако обработка яиц известным способом трудоемка, требует значительных затрат времени и средств.However, the processing of eggs in a known manner is laborious, requires a significant investment of time and money.
Задача изобретения направлена на повышение эффективности обработки инкубационных яиц, которая обеспечивает высокую жизнеспособность эмбрионов, увеличение выводимости яиц, вывода молодняка, сохранности в эмбриональный и постэмбриональный периоды выращивания. Задача решается путем использования спиртовой настойки прополиса, из которой готовят рабочий раствор в следующем соотношении компонентов: 1 часть настойки прополиса 10 частей воды, используют аэрозольно из расчета 250 мл на 1 м3 инкубатора, первую обработку проводят перед началом инкубации, затем на 11,5, 18,5, 21,5 сутки инкубации.The objective of the invention is to increase the efficiency of processing of hatching eggs, which provides high viability of embryos, increase hatchability of eggs, hatching of young animals, preservation in embryonic and postembryonic periods of growing. The problem is solved by using propolis alcohol tincture, from which a working solution is prepared in the following ratio of components: 1 part propolis tincture 10 parts water, use aerosol at the rate of 250 ml per 1 m 3 of the incubator, the first treatment is carried out before incubation, then at 11.5 , 18.5, 21.5 days of incubation.
Особенности формирования организма в начале его развития имеют значение не только в период инкубации, но и для всей последующей жизнеспособности и продуктивности птицы. При проведении биологического контроля (11,5, 18,5, 21,5 сутки инкубации) происходит охлаждение яиц, сквозь поры скорлупы могут проникать микроорганизмы. Для того чтобы снизить риск их попадания, нами были предложены для обработки инкубационных яиц периоды биологического контроля.Features of the formation of the organism at the beginning of its development are important not only during the incubation period, but also for the entire subsequent viability and productivity of the bird. During biological control (11.5, 18.5, 21.5 days of incubation), eggs are cooled, microorganisms can penetrate through the pores of the shell. In order to reduce the risk of their ingestion, we proposed periods of biological control for the treatment of hatching eggs.
Обработку инкубационных яиц проводят до полного увлажнения их поверхности, что бы не увеличить процент влажности в инкубационном шкафу. Оптимальная относительная влажность в нем должна поддерживаться в пределах 40-60% в инкубационном и 50-80% в выводном шкафах. Постоянная высокая влажность воздуха задерживает испарение влаги, низкая - стимулирует сильное ее испарение из яйца. Известно, что в начальный период инкубации для нормального развития зародыша требуются повышенные температура и влажность, чтобы воспрепятствовать более сильному испарению, усушке яйца. Во второй период инкубации, наоборот, следует способствовать более интенсивному испарению. При повышенной влажности в период инкубации усушка яйца слишком мала так как ограничено испарение влаги из яйца. Об этом говорит размер воздушной камеры, которая не увеличивается во все периоды инкубации, что приводит к затруднительному выводу, а вылупившиеся цыплята остаются отечными и плохо сохраняются при выращивании.Processing of hatching eggs is carried out until their surface is completely moistened, so as not to increase the percentage of moisture in the setter. The optimum relative humidity in it should be maintained within 40-60% in the incubation and 50-80% in the hatcher. Constant high air humidity delays the evaporation of moisture, low - stimulates its strong evaporation from the egg. It is known that in the initial period of incubation, for normal development of the embryo, elevated temperature and humidity are required to prevent more intense evaporation and drying of the egg. In the second incubation period, on the contrary, more intensive evaporation should be promoted. At high humidity during the incubation period, the shrinkage of the egg is too small because the evaporation of moisture from the egg is limited. This is evidenced by the size of the air chamber, which does not increase during all incubation periods, which leads to a difficult conclusion, and the hatched chickens remain edematous and are poorly preserved during rearing.
Эти обстоятельства учитывались при расчете препарата, используемого аэрозольно для обработки 1000 штук инкубационных яиц и было установлено что оптимальным является 250 мл на 1 м3.These circumstances were taken into account when calculating the drug used aerosol to process 1000 pieces of hatching eggs and it was found that 250 ml per 1 m 3 is optimal.
Известно, что прополис является продуктом биологической активности пчел и представляет собой твердую массу буро-коричневого цвета с зеленоватым оттенком, хорошо растворимую в спирте и плохо растворимую в воде. В состав прополиса входят: смесь смол и бальзамов (55%), воск (30%), эфирное масло (10%), цветочная пыльца (5%), витамины А, С, группы В и др. микроэлементы. В прополисе содержится коричный спирт, коричная и бензойная кислоты, дубильные вещества и т.д. В его составе обнаружены гликокол, аспарагиновая и глютаминовая кислоты, аланин, триптофан, фенилаланин, лейцин. Из прополиса выделено более 20 соединений, которые представлены тремя группами биологически активных веществ: кислотами, полифенолами и соединениями изопреноидной структуры.It is known that propolis is a product of the biological activity of bees and is a solid mass of brown-brown color with a greenish tint, highly soluble in alcohol and poorly soluble in water. Propolis includes: a mixture of resins and balsams (55%), wax (30%), essential oil (10%), pollen (5%), vitamins A, C, group B, and other trace elements. Propolis contains cinnamon, cinnamic and benzoic acids, tannins, etc. Glycocol, aspartic and glutamic acids, alanine, tryptophan, phenylalanine, leucine were found in its composition. More than 20 compounds are isolated from propolis, which are represented by three groups of biologically active substances: acids, polyphenols and compounds of isoprenoid structure.
Прополис обладает антибактериальным действием (патент Европейского патентного ведомства № ЕР 0109993, МПК А61К 8/02, А61К 8/98, А61К 35/64, опубл. 13.06.1984 г.)Propolis has an antibacterial effect (patent of the European Patent Office No. EP 0109993, IPC A61K 8/02, A61K 8/98, A61K 35/64, published on 06/13/1984)
В опытах использовали настойку прополиса (100 г прополиса настаивают в 80% спирте, полученный раствор, доводят до 1000 мл водой) производства ООО «Гиппократ», Россия, г. Самара.In the experiments, propolis tincture was used (100 g of propolis was infused in 80% alcohol, the resulting solution was adjusted to 1000 ml with water) manufactured by Hippocrates LLC, Russia, Samara.
Показаниями к применению данной настойки являются микротравмы и поверхностные повреждения кожных покровов и слизистых оболочек, отит, фарингит, тонзиллит, заболевания пародонта.Indications for use of this tincture are microtrauma and superficial damage to the skin and mucous membranes, otitis media, pharyngitis, tonsillitis, periodontal disease.
Однако предлагаемый препарат не нашел применения в ветеринарной практике.However, the proposed drug did not find application in veterinary practice.
Предлагаемый способ обработки яиц способствует подавлению роста патогенной и условно-патогенной микрофлоры в период инкубации, не оказывает отрицательного действия на развитие эмбрионов, повышает выводимость яиц на 4-5%, вывод цыплят на 4-5%, сохранность - на 2-3%, обеззараживает слизистые оболочки дыхательных путей выведенного молодняка, и тем самым способствует профилактике респираторных инфекций в инкубатории.The proposed method of processing eggs helps to suppress the growth of pathogenic and conditionally pathogenic microflora during the incubation period, does not adversely affect the development of embryos, increases hatchability of eggs by 4-5%, hatch of chickens by 4-5%, safety - by 2-3%, disinfects the mucous membranes of the respiratory tract of young hatching, and thereby contributes to the prevention of respiratory infections in the hatchery.
Пример 1. Определение бактерицидной активности настойки прополиса и эффективной концентрации in vitro.Example 1. Determination of the bactericidal activity of propolis tincture and effective in vitro concentration.
Сравнивали бактерицидное действие настойки прополиса и спирта, используемого для ее приготовления. Из настойки прополиса и спирта готовили серийные разведения: 1:5, 1:10, 1:15, 1:20, вносили исследуемый тест-штамм, жизнеспособность микроорганизмов определяли через 24 часа взаимодействия путем высева на плотные питательные среды (ГРМ-агар, стафилококкагар). Микробиологический мониторинг в инкубаториях позволил установить, что доминирующими микроорганизмами являются Escherichia coli и Staphylococcus spp.(Лыско С.Б., Макарова О.А. Микробиологический мониторинг в инкубаториях // Птицеводство. 2009. - №8. - С. 43-44).The bactericidal effect of propolis tincture and the alcohol used for its preparation were compared. Serial dilutions were prepared from propolis tincture and alcohol: 1: 5, 1:10, 1:15, 1:20, the test strain was introduced, the viability of microorganisms was determined after 24 hours of interaction by plating on solid nutrient media (timing agar, staphylococcagar ) Microbiological monitoring in hatcheries made it possible to establish that the dominant microorganisms are Escherichia coli and Staphylococcus spp. (Lysko SB, Makarova OA Microbiological monitoring in hatcheries // Poultry farming. 2009. - No. 8. - P. 43-44) .
В качестве тест-штаммов были использованы полевые культуры Escherichia coli, Staphylococcus aureus выделенные в инкубатории.Field cultures of Escherichia coli, Staphylococcus aureus isolated in the hatchery were used as test strains.
Из таблицы 1 видно, что настойка прополиса проявляет высокую антибактериальную активность в отношении исследованных возбудителей, вызывая их гибель при разведениях 1:10 - Escherichia coli и 1:15 - Staphylococcus aureus, по сравнению со спиртом, который не проявляет антибактериальной активности даже в разведении 1:5.From table 1 it is seen that propolis tincture exhibits high antibacterial activity against the studied pathogens, causing their death at dilutions of 1:10 - Escherichia coli and 1:15 - Staphylococcus aureus, compared to alcohol, which does not show antibacterial activity even in breeding 1 :5.
Примечание: «+» - наличие роста культуры; «-» - отсутствие роста культурыNote: "+" - the presence of culture growth; “-” - lack of culture growth
Исходя из проведенного опыта мы предлагаем оптимальное разведение настойки прополиса оказывающее бактерицидное действие и на кишечную палочку и на стафилококк в следующем соотношении компонентов 1 часть настойки прополиса 10 частей воды.Based on our experience, we offer the optimal dilution of propolis tincture, which has a bactericidal effect on E. coli and staphylococcus in the following ratio of components: 1 part propolis tincture 10 parts water.
Пример 2. Изучение различных способов обработки инкубационных яиц. Из инкубационных яиц кросса «Росс-308» были скомплектованы контрольная и три опытные группы по 1000 штук в каждой, которые размещены в отдельных, идентичных инкубаторах. Для контроля микробной обсемененности проводили микробиологические исследования: смывов со скорлупы инкубационных яиц (на наличие стафилококков, бактерий группы кишечной палочки) - перед закладкой и на 11,5, 18,5 сутки инкубации; воздуха в инкубаторах (общее микробное число, бактерии группы кишечной палочки, стафилококки, энтерококки, микроскопические грибы) - на 11,5, 18,5 и 21,5 сутки инкубации; соскобов со слизистой оболочки гортани выведенного молодняка. При оценке результатов инкубации учитывали выводимость яиц, причины гибели эмбрионов. С целью изучения жизнеспособности молодняка первые 10 дней выращивания осуществляли ежедневный учет сохранности с регистрацией причин гибели.Example 2. The study of various methods of processing hatching eggs. The control and three experimental groups of 1000 pieces each, which were placed in separate, identical incubators, were composed of hatching eggs of the Ross-308 cross. To control microbial contamination, microbiological studies were carried out: swabs from the shell of the incubation eggs (for the presence of staphylococci, bacteria of the E. coli group) - before laying and on the 11.5, 18.5 days of incubation; air in incubators (total microbial number, bacteria of the Escherichia coli group, staphylococci, enterococci, microscopic fungi) - on the 11.5, 18.5 and 21.5 days of incubation; scrapings from the mucous membrane of the larynx of the removed young. When evaluating the results of incubation, the hatchability of eggs and the causes of death of the embryos were taken into account. In order to study the viability of young animals, the first 10 days of cultivation carried out daily safety records with registration of the causes of death.
В контрольной группе перед началом инкубации проведена обработка парами формальдегида (на 1 м3 камеры 30 мл формалина, 20 г марганцовокислого калия и 15 мл воды), экспозиция 30 мин; при переносе и до момента вывода (18,5-21,5 сутки инкубации) - формалин разбавленный наполовину с водой. В опытных группах обработку осуществляли аэрозольно настойкой прополиса разведенной водой 1 часть прополиса и 10 частей воды из расчета 250 мл на 1 м3. В первой опытной группе обработку осуществляли трехкратно: первую обработку перед началом инкубации, последующие на 18,5 и 21,5 сутки инкубации. Во второй группе аналогично первой, только - четырехкратно: перед началом инкубации, последующие на 11,5, 18,5 и 21,5 сутки инкубации. В третьей группе: первая обработка - перед началом инкубации проведена парами формальдегида, а затем двукратная обработка настойкой прополиса (1:10) на 18,5 и 21,5 сутки инкубации.In the control group, before the start of incubation, formaldehyde vapor was treated (30 ml of formalin, 20 g of potassium permanganate and 15 ml of water per 1 m 3 of the chamber), exposure time 30 min; during transfer and until withdrawal (18.5-21.5 days of incubation) - formalin diluted half with water. In the experimental groups, the processing was carried out by aerosol tincture of propolis diluted with water 1 part propolis and 10 parts water at the rate of 250 ml per 1 m 3 . In the first experimental group, the treatment was carried out three times: the first treatment before the start of incubation, the subsequent on the 18.5 and 21.5 days of incubation. In the second group, it is similar to the first, only four times: before the start of incubation, the subsequent ones on the 11.5, 18.5 and 21.5 days of incubation. In the third group: the first treatment - before the start of the incubation, it was carried out with formaldehyde vapors, and then a double treatment with propolis tincture (1:10) on the 18.5 and 21.5 days of incubation.
Из таблицы 2 видно, что при исследовании смывов с поверхности скорлупы инкубационных яиц к 18,5 суткам инкубации наблюдается снижение частоты выделения стафилококков на 80-90%, бактерий группы кишечной палочки (БГКП) на 20% в 1-й, 2-й, 3-й опытных группах по сравнению с контролем.From table 2 it is seen that in the study of swabs from the surface of the shell of the incubation eggs by 18.5 days of incubation, a decrease in the frequency of isolation of staphylococci by 80-90%, bacteria of the group of Escherichia coli (BHEC) by 20% in the 1st, 2nd, 3rd experimental groups compared with control.
Данные таблицы 3 подтверждают, что настойка прополиса снижает микробную обсемененность воздуха к 21,5 суткам инкубации в 1-й, 2-й и 3-й группах по сравнению с контрольной: общее микробное число - на 83, 94 (Р<0,01) и 30 КОЕ/м3; бактерии группы кишечной палочки - на 78, 85 (Р<0,01) и 57 КОЕ/м3; стафилококки - на 81 (Р<0,01), 81 (Р<0,01) и 79 (Р<0,01) КОЕ/м3; энтерококки - на 20, 26 (Р<0,05) и 12 КОЕ/м3; микроскопические грибы - на 17 (Р<0,05), 21 (Р<0,01) и 11 (Р<0,05) КОЕ/м3. Наименьшая обсемененность наблюдалась во второй опытной группе.The data in table 3 confirm that propolis tincture reduces microbial airborne contamination by 21.5 days of incubation in the 1st, 2nd and 3rd groups compared with the control: the total microbial number - by 83, 94 (P <0.01 ) and 30 CFU / m 3 ; coliform bacteria - at 78, 85 (P <0.01) and 57 CFU / m 3 ; staphylococci - by 81 (P <0.01), 81 (P <0.01) and 79 (P <0.01) CFU / m 3 ; enterococci - at 20, 26 (P <0.05) and 12 CFU / m 3 ; microscopic fungi - by 17 (P <0.05), 21 (P <0.01) and 11 (P <0.05) CFU / m 3 . The smallest contamination was observed in the second experimental group.
Примечание.**Р<0,01; *Р<0,05; ***Р<0,001Note. ** P <0.01; * P <0.05; *** P <0.001
Прижизненным исследованием соскобов со слизистой оболочки гортани у выведенного молодняка установлено, что наибольший спектр микроорганизмов выделен у цыплят контрольной группы, наименьший у цыплят второй группы (таблица 4).By a lifetime study of scrapings from the mucous membrane of the larynx in hatched young animals, it was found that the largest spectrum of microorganisms was isolated in chickens of the control group, the smallest in chickens of the second group (table 4).
При этом 80% микроорганизмов выделено в ассоциациях. Наибольшее количество ассоциаций микроорганизмов выделено в контрольной группе: Enterococcus faecalis+Pseudomonas aeruginosa+Citrobacter freundii, Staphylococcus spp+Enterococcus faecalis+Citrobacter freundii и Staphylococcus spp+Enterobacter cloacea+Citrobacter freundii. В первой группе выделены следующие две ассоциации: Staphylococcus spp+Enterococcus faecium и Staphylococcus spp+Enterococcus faecalis. Во второй группе выявлена одна ассоциация - Staphylococcus spp+Enterococcus faecalis+Escherichia coli, а в третьей две - Staphylococcus spp+Citrobacter freundii и Enterococcus faecalis+Escherichia coli.At the same time, 80% of microorganisms are isolated in associations. The largest number of associations of microorganisms was isolated in the control group: Enterococcus faecalis + Pseudomonas aeruginosa + Citrobacter freundii, Staphylococcus spp + Enterococcus faecalis + Citrobacter freundii and Staphylococcus spp + Enterobacter cloacea + Citrobacter freundii. The following two associations were distinguished in the first group: Staphylococcus spp + Enterococcus faecium and Staphylococcus spp + Enterococcus faecalis. In the second group, one association was identified - Staphylococcus spp + Enterococcus faecalis + Escherichia coli, and in the third two - Staphylococcus spp + Citrobacter freundii and Enterococcus faecalis + Escherichia coli.
Примечание: «+» - наличие роста культуры; «-» - отсутствие роста культурыNote: "+" - the presence of culture growth; “-” - lack of culture growth
Из таблицы 5 наблюдаем, что наибольшее количество яиц категории «гибель эмбрионов до 48 часов инкубации» в контрольной и третьей группах, которые обработаны парами формальдегида перед закладкой, связана с негативным влиянием формалина на развитие эмбриона в первые сутки инкубации. Наибольший отход категории яиц «задохлики» также отмечали в контрольной группе, в которой на 18,5 сутки инкубации была проведена обработка формальдегидом. Снижение данной категории в опытных группах можно связать с уменьшением микробного фона и отсутствием отрицательного влияния настойки прополиса на эмбрион при многократных обработках. Наибольшую выводимость яиц при наименьших значениях категории яиц «гибель эмбрионов до 48 часов» и «задохлики» отмечали во второй группе.From table 5 we observe that the largest number of eggs of the category “embryo death up to 48 hours of incubation” in the control and third groups, which were treated with formaldehyde vapor before laying, is associated with the negative effect of formalin on embryo development on the first day of incubation. The largest waste of the suffocated egg category was also noted in the control group, in which formaldehyde treatment was carried out on the 18.5 day of incubation. A decrease in this category in the experimental groups can be associated with a decrease in the microbial background and the absence of a negative effect of propolis tincture on the embryo during repeated treatments. The highest hatchability of eggs with the lowest values of the category of eggs “embryo death up to 48 hours” and “suffocates” was noted in the second group.
В первой группе выводимость на 0,6% выше, чем в контрольной, за счет уменьшения категории яиц «гибель эмбрионов до 48 часов» - 0,4% и «задохлики» - 1,4%. Во второй группе выводимость яиц на 3,3% превышала контроль за счет уменьшения категории яиц «гибель эмбрионов до 48 часов» на 1,4%, «задохлики» - на 3,4%. В третьей группе выводимость яиц на 0,7% выше по сравнению с контрольной за счет уменьшения категорий яиц «задохлики» - 2,6%. Самая высокая выводимость яиц была во второй группе, разница с первой составила 2,7%, с третьей 2,6%.In the first group, hatchability was 0.6% higher than in the control, due to a decrease in the category of eggs “embryo death up to 48 hours” - 0.4% and “suffocates” - 1.4%. In the second group, the hatchability of eggs was 3.3% higher than the control due to a decrease in the category of eggs “embryo death up to 48 hours” by 1.4%, and “suffocates” - by 3.4%. In the third group, the hatchability of eggs is 0.7% higher compared to the control due to a decrease in the category of eggs of "suffocated" - 2.6%. The highest hatchability of eggs was in the second group, the difference from the first was 2.7%, from the third 2.6%.
У цыплят опытных групп, сохранность в первые 10 дней выращивания была на 1-3% выше по сравнению с контролем, при этом лучший результат отмечен во второй группе. Основными причинами гибели цыплят контрольной группы были пневмонии, амфолиты и подагра, опытных - травма. У цыплят опытных групп при патологоанатомическом вскрытии патологий органов респираторного тракта не обнаружено, в отличии от контрольной.In the chickens of the experimental groups, the safety in the first 10 days of growing was 1-3% higher compared to the control, while the best result was noted in the second group. The main causes of death of chickens in the control group were pneumonia, ampholytes and gout, experienced - trauma. In chickens of the experimental groups with pathoanatomical autopsy, pathologies of the respiratory tract were not found, in contrast to the control.
Пример 3. Испытание способов обработки инкубационных яицExample 3. Testing methods for processing hatching eggs
Из инкубационных яиц птицы кросса «Росс-308» скомплектованы контрольная и опытная группы по 1000 яиц в каждой, которые размещены в отдельных, идентичных инкубаторах. Для обработки инкубационных яиц в инкубаторе с контрольной группой перед закладкой была проведена дезинфекция парами формальдегида (на 1 м3 камеры 30 мл формалина, 20 г марганцовокислого калия и 15 мл воды), экспозиция 30 мин; при переносе и до момента вывода - формалин разбавленный наполовину с водой. В инкубаторе с опытной группой обработку инкубационных яиц осуществляли аэрозольно настойкой прополиса разведенной водой 1:10 из расчета 250 мл раствора на 1 м3 камеры перед началом инкубации и на 11,5, 18,5, 21,5 сутки инкубации.The control and experimental groups of 1000 eggs each, which are placed in separate, identical incubators, are composed of hatching eggs of Ross-308 cross-country birds. To process hatching eggs in an incubator with a control group, they were disinfected with formaldehyde vapors (30 ml formalin, 20 g potassium permanganate and 15 ml water) per 1 m 3 of chamber; during transfer and until withdrawal - formalin diluted half with water. In an incubator with an experimental group, the treatment of hatching eggs was carried out by aerosol tincture of propolis diluted with water 1:10 at the rate of 250 ml of solution in 1 m 3 of the chamber before the start of incubation and on the 11.5, 18.5, 21.5 days of incubation.
При оценке эффективности обработок учитывали развитие эмбрионов в процессе инкубации, выводимость яиц, вывод молодняка, осуществляли патологоанатомический анализ погибших эмбрионов и причины их гибели в каждой группе. Проводили бактериологические исследования смывов со скорлупы инкубационных яиц (бактерии группы кишечной палочки, стафилококки), исследование воздуха (общее микробное число, бактерии группы кишечной палочки, стафилококки, энтерококки, микроскопические грибы), наличие патогенной и условно-патогенной микрофлоры в отходах инкубации.When evaluating the effectiveness of the treatments, the development of embryos during the incubation process, the hatchability of eggs, the withdrawal of young animals were taken into account, pathological analysis of the dead embryos and the causes of their death in each group were carried out. Bacteriological studies were carried out of the washings from the shell of incubation eggs (bacteria of the Escherichia coli group, Staphylococcus aureus), air (total microbial count, bacteria of the Escherichia coli group, Staphylococcus aureus, Enterococci, microscopic fungi), the presence of pathogenic and conditionally pathogenic microflora in the incubation waste.
Из таблицы 6 видим, при исследовании смывов с поверхности скорлупы установлено, что обработка инкубационных яиц настойкой прополиса позволила снизить частоту выделения стафилококков на 20-70%), БГКП - на 50-70% с поверхности скорлупы и препятствовала их размножению на протяжении всей инкубации.From table 6 we see that when studying the swabs from the shell surface, it was found that treatment of the hatching eggs with propolis tincture reduced the rate of staphylococcus excretion by 20-70%), BGKP - by 50-70% from the shell surface and prevented their reproduction throughout the incubation.
Результаты микробиологических исследований воздуха в инкубаторах свидетельствуют о бактерицидном действии препарата прополиса на патогенную, условно-патогенную микрофлору и микроскопические грибы в период инкубации (таблица 7). Аэрозольная обработка воздуха настойкой прополиса к 21,5 суткам способствовала снижению ОМЧ на 341 КОЕ/м3, БГКП - на 48 КОЕ/м3, стафилококков - на 129 КОЕ/м3, энтерококков - на 79 КОЕ/м3, микроскопических грибов - на 51 КОЕ/м3 по сравнению с контрольной группой.The results of microbiological studies of air in incubators indicate the bactericidal effect of the propolis preparation on pathogenic, conditionally pathogenic microflora and microscopic fungi during the incubation period (table 7). Aerosol treatment of air with tincture of propolis by 21.5 days contributed to a decrease in TBC by 341 CFU / m 3 , BGKP by 48 CFU / m 3 , staphylococcus by 129 CFU / m 3 , enterococcus by 79 CFU / m 3 , and microscopic fungi 51 CFU / m 3 compared with the control group.
Примечание. **Р<0,01; *Р<0,05; ***Р<0,001Note. ** P <0.01; * P <0.05; *** P <0.001
При бактериологическом исследовании соскобов со слизистой оболочки гортани наиболее широкий спектр микроорганизмов был выделен у цыплят контрольной группы (таблица 8).During bacteriological examination of scrapings from the mucous membrane of the larynx, the widest spectrum of microorganisms was isolated in chickens of the control group (table 8).
Наибольшее количество видов ассоциаций выделено в контрольной группе: Enterococcus faecalis+Citrobacter freundii+Staphylococcus aureus+Enterobacter agglomerans, Enterococcus faecalis+Enterobacter agglomerans+Escherichia coli, Staphylococcus aureus+Enterococcus faecalis+Enterobacter agglomerans, Escherichia coli+Enterococcus faecalis+Enterobacter agglomerans+Staphylococcus aureus. В опытной выделена одна ассоциация - Enterococcus faecalis+Staphylococcus aureus.The largest number of types of associations was identified in the control group: Enterococcus faecalis + Citrobacter freundii + Staphylococcus aureus + Enterobacter agglomerans, Enterococcus faecalis + Enterobacter agglomerans + Escherichia coli, Staphylococcus aureus + Enterococcus faecalisococerocerocerocerocerocericobecerociferocobecerociferocobius faecalis . In the experimental one association was identified - Enterococcus faecalis + Staphylococcus aureus.
Примечание: «+» - наличие роста; «-» - отсутствие ростаNote: "+" - the presence of growth; “-” - lack of growth
Из таблицы 9 видим сравнительные результаты инкубации по группам: выводимость яиц в опытной группе была на 4,8% выше по сравнению с контрольной за счет уменьшения количества яиц категории «гибель эмбрионов до 48 часов» - 0,9%, «кровяное кольцо» - 2,6%, «замершие эмбрионы птицы» - 0,9%, «задохлики» - 1,3%, вывод цыплят в опытной группе выше на 4,2%. Сохранность цыплят в первые 10 дней выращивания в опытной группе на 2% превышала ее в контрольной.From table 9 we see the comparative incubation results for the groups: the hatchability of eggs in the experimental group was 4.8% higher compared to the control due to the decrease in the number of eggs in the category “embryo death up to 48 hours” - 0.9%, “blood ring” - 2.6%, “frozen bird embryos” - 0.9%, “suffocates” - 1.3%, the chickens in the experimental group were 4.2% higher. The safety of chickens in the first 10 days of growing in the experimental group was 2% higher than in the control group.
Таким образом предлагаемый способ обработки инкубационных яиц позволяет снизить рост патогенной и условно-патогенной микрофлоры в период инкубации, не оказывает отрицательного действия на развитие эмбрионов, повышает выводимость яиц на 4-5%, вывод цыплят на 4-5%, сохранность цыплят в первые 10 дней выращивания на 2-3%, обеззараживает слизистые оболочки дыхательных путей выведенного молодняка, и тем самым способствует профилактике респираторных инфекций в инкубатории.Thus, the proposed method for processing hatching eggs allows to reduce the growth of pathogenic and conditionally pathogenic microflora during the incubation period, does not adversely affect the development of embryos, increases hatchability of eggs by 4-5%, hatch of chickens by 4-5%, and the safety of chickens in the first 10 days of cultivation by 2-3%, disinfects the mucous membranes of the respiratory tract of hatched young animals, and thereby contributes to the prevention of respiratory infections in the hatchery.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017140927A RU2677985C1 (en) | 2017-11-23 | 2017-11-23 | Method for treating hatching eggs |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017140927A RU2677985C1 (en) | 2017-11-23 | 2017-11-23 | Method for treating hatching eggs |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2677985C1 true RU2677985C1 (en) | 2019-01-22 |
Family
ID=65085182
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2017140927A RU2677985C1 (en) | 2017-11-23 | 2017-11-23 | Method for treating hatching eggs |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2677985C1 (en) |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1947500A (en) * | 2006-08-16 | 2007-04-18 | 周定延 | Method for raising chickens |
| CN106359291A (en) * | 2016-09-24 | 2017-02-01 | 王德 | Fast hatching method of local chicken |
-
2017
- 2017-11-23 RU RU2017140927A patent/RU2677985C1/en active
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1947500A (en) * | 2006-08-16 | 2007-04-18 | 周定延 | Method for raising chickens |
| CN106359291A (en) * | 2016-09-24 | 2017-02-01 | 王德 | Fast hatching method of local chicken |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| ПОКРОВСКИЙ С.Г. Результаты лабораторного и производственного изучения профилактического и лечебного действия прополиса при паратифе уток//авто дисс. на соискание ученой степени к.в.н., СПб.: Минсельхоз СССР, 1966. * |
| ПОКРОВСКИЙ С.Г. Результаты лабораторного и производственного изучения профилактического и лечебного действия прополиса при паратифе уток//автореферат дисс. на соискание ученой степени к.в.н., СПб.: Минсельхоз СССР, 1966. * |
| ТЕТЕРЕВ И.И. Прополис в животноводстве и ветеринарии. Киров: КОГУП "Кировская областная типография", 1998. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Aygun et al. | Effects of propolis on eggshell microbial activity, hatchability, and chick performance in Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) eggs | |
| RU2336885C1 (en) | Method of goose eggs hatchability | |
| Kebede | Pseudomonas infection in chickens | |
| KR100365151B1 (en) | Novel use of delta-aminolevulinic acid for the prevention and treatment of infection by pathogenic microorganism | |
| Yeasmin et al. | Identification of causative agent for fungal infection and effect of disinfectants on hatching and survival rate of common carp (C. carpio) larvae | |
| Batkowska et al. | Evaluation of propolis extract as a disinfectant of Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) hatching eggs | |
| Yildirim et al. | The use of oregano (Origanum vulgare L) essential oil as alternative hatching egg disinfectant versus formaldehyde fumigation in quails (Cotumix coturnix japonica) eggs | |
| Gholami-Ahangaran et al. | Comparison of virkon S (r) and formaldehyde on hatchability and survival rate of chicks in disinfection of fertile eggs | |
| Al-Shammari et al. | The use of selected herbal preparations for the disinfection of Japanese quail hatching eggs | |
| RU2677985C1 (en) | Method for treating hatching eggs | |
| Durmus | Determining effects of use of various disinfecting materials on hatching results and total bacterial count | |
| RU2392005C2 (en) | Sanitation method of hatchery's veterinary supervision liable objects and hatching eggs | |
| Jantrakajorn et al. | Egg surface decontamination with bronopol increases larval survival of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. | |
| RU2426556C1 (en) | Method of dysinfecting objects of zootechnical control of incubator and incubation poultry eggs | |
| RU2581198C1 (en) | Method transovarial supply of embryos egg hens on stage of egg incubation with "selenium-active" preparation | |
| Taşdemir et al. | Effects of oregano juice on eggshell microbial load, layer embryo development, hatching results, and growth at the first 2 weeks after hatch | |
| Nowaczewski et al. | Microbiological response of Japanese quail eggs to disinfection and location in the setter during incubation | |
| RU2736327C1 (en) | Method for disinfection of hatching eggs | |
| RU2240829C1 (en) | Method for sanitation of veterinary inspection objects in hatchery and that of hatchable eggs | |
| RU2601593C1 (en) | Method of treating hatchable eggs | |
| RU2709138C1 (en) | Method for preventing respiratory infections of broiler chickens | |
| Metawea et al. | Epidemiological studies on the bacterial contamination of an Ostrich hatchery and the application of control measures | |
| RU2571689C1 (en) | Method of prevention and treatment of infectious diseases of birds | |
| Korowiecka et al. | Assessment of the effect of selected substances used for disinfection of hatching eggs on hatching results in chickens | |
| Mousa-Balabel et al. | Coliform Bacteria and Hatching Egg Disinfectants |