UA14365U - Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility - Google Patents
Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility Download PDFInfo
- Publication number
- UA14365U UA14365U UAU200510662U UAU200510662U UA14365U UA 14365 U UA14365 U UA 14365U UA U200510662 U UAU200510662 U UA U200510662U UA U200510662 U UAU200510662 U UA U200510662U UA 14365 U UA14365 U UA 14365U
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- stage
- plants
- cultivation
- seed
- low fertility
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 14
- 230000035558 fertility Effects 0.000 title claims abstract description 4
- 240000006365 Vitis vinifera Species 0.000 title claims abstract 3
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims abstract description 20
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 14
- 239000003630 growth substance Substances 0.000 claims abstract description 11
- NWBJYWHLCVSVIJ-UHFFFAOYSA-N N-benzyladenine Chemical compound N=1C=NC=2NC=NC=2C=1NCC1=CC=CC=C1 NWBJYWHLCVSVIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 7
- 206010020649 Hyperkeratosis Diseases 0.000 claims abstract description 4
- 238000011218 seed culture Methods 0.000 claims abstract description 4
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 claims abstract description 3
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 claims abstract description 3
- 230000007226 seed germination Effects 0.000 claims abstract description 3
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 claims description 9
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 7
- 238000012876 topography Methods 0.000 claims 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 abstract 2
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 abstract 1
- 241000219095 Vitis Species 0.000 description 4
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 4
- 230000013020 embryo development Effects 0.000 description 3
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PVNIIMVLHYAWGP-UHFFFAOYSA-N Niacin Chemical compound OC(=O)C1=CC=CN=C1 PVNIIMVLHYAWGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000009754 Vitis X bourquina Nutrition 0.000 description 2
- 235000012333 Vitis X labruscana Nutrition 0.000 description 2
- 235000014787 Vitis vinifera Nutrition 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 229920000298 Cellophane Polymers 0.000 description 1
- 241000206672 Gelidium Species 0.000 description 1
- 244000020551 Helianthus annuus Species 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 241000219094 Vitaceae Species 0.000 description 1
- 230000002159 abnormal effect Effects 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 235000010419 agar Nutrition 0.000 description 1
- 235000021028 berry Nutrition 0.000 description 1
- YVZQFSNXOYLGMJ-UHFFFAOYSA-L chloro(2-hydroxyethyl)mercury;1-hexadecylpyridin-1-ium;bromide Chemical compound [Br-].OCC[Hg]Cl.CCCCCCCCCCCCCCCC[N+]1=CC=CC=C1 YVZQFSNXOYLGMJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 230000007850 degeneration Effects 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 1
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 230000002068 genetic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 235000021021 grapes Nutrition 0.000 description 1
- 230000003054 hormonal effect Effects 0.000 description 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N inositol Chemical compound OC1C(O)C(O)C(O)C(O)C1O CDAISMWEOUEBRE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000366 juvenile effect Effects 0.000 description 1
- 210000003127 knee Anatomy 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000002366 mineral element Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 229960003512 nicotinic acid Drugs 0.000 description 1
- 235000001968 nicotinic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000011664 nicotinic acid Substances 0.000 description 1
- 230000008121 plant development Effects 0.000 description 1
- 239000012286 potassium permanganate Substances 0.000 description 1
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 1
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 230000001629 suppression Effects 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Description
Опис винаходуDescription of the invention
Спосіб відноситься до біотехнології, а саме до способів отримання рослин винограду іп міго.The method refers to biotechnology, namely to the methods of obtaining plants of grape ip migo.
Відомо спосіб вирощування рослин соняшника іп міїго, відповідно до якого із насіння виділяють зародки і культивують їх іп міго на живильному середовищі з додаванням регуляторів росту (А. с. СРСР Мо810160,There is a known method of growing sunflower plants, according to which embryos are isolated from the seeds and cultivated in a nutrient medium with the addition of growth regulators (A. s. USSR Mo810160,
АО1ТНІ/04, 19811.AO1TNI/04, 19811.
Спільні ознаки аналогу і технічного рішення, що заявляється: культивування зародків іп мйго на живильному середовищі з додаванням регуляторів росту. 70 Недоліком способу-аналогу є низький вихід рослин внаслідок того, що зародки одержують механічні ушкодження при вичленовуванні із насіння і стресу в результаті зміни навколишнього середовища, що приводить до пригнічення та уповільнення розвитку зародку.Common features of the analogue and the claimed technical solution: the cultivation of the embryos of ip mygo on a nutrient medium with the addition of growth regulators. 70 The disadvantage of the analogue method is the low yield of plants due to the fact that the embryos receive mechanical damage when they are separated from the seeds and stress as a result of the change in the environment, which leads to suppression and slowing down of the development of the embryo.
Найбільш близьким по технічній сутності до корисної моделі, що заявляється, є, прийнятий як прототип, спосіб вирощування рослин із важкопророщуваного насіння, що включає культивування зародків з частиною 72 оболонки насіння іп уйго та добір стійких генотипів зародків під впливом селективного фактору живильного середовища, для чого недорозвинені зародки з частиною оболонки насіння послідовно пересаджують на живильні середовища з додаванням регуляторів росту, змінюючи їх зміст в залежності від стадії розвитку зародку (Патент України Мо17919 А, АОТНА/00; АОТНІ/04, 1997).The closest in technical essence to the useful model that is claimed is, accepted as a prototype, a method of growing plants from difficult-to-germinate seeds, which includes the cultivation of embryos with part 72 of the seed coat of ip uygo and the selection of resistant genotypes of embryos under the influence of the selective factor of the nutrient medium, for which underdeveloped embryos with part of the seed coat are successively transplanted into nutrient media with the addition of growth regulators, changing their content depending on the stage of embryo development (Patent of Ukraine Mo17919 A, AOTNA/00; AOTNI/04, 1997).
Спільні ознаки способу-прототипу і технічного рішення, що заявляється: культивування зародків разом з частиною оболонки насіння іп міо та висаджування їх на живильні середовища з додаванням регуляторів росту.Common features of the prototype method and the claimed technical solution: cultivation of embryos together with a part of the seed coat of ip myo and planting them on nutrient media with the addition of growth regulators.
Недоліками способу-прототипу є низький вихід рослин через часті пересадження, які можуть призвести до механічного пошкодження або інфікування матеріалу на одному з етапів культивування, а також висока трудомісткість, що пов'язана з ідентифікацією насіння за ступенем розвитку зародку та послідовною зміною змісту різних регуляторів росту в живильному середовищі.The disadvantages of the prototype method are the low yield of plants due to frequent transplants, which can lead to mechanical damage or infection of the material at one of the stages of cultivation, as well as the high labor intensity associated with the identification of seeds by the degree of embryo development and the sequential change in the content of various growth regulators in the nutrient medium.
В основу корисної моделі покладено задачу удосконалити спосіб отримання рослин винограду від вихідних пт) форм з низькою фертильністю та шляхом відбору вихідних форм, визначення стадій культивування на живильному середовищі іп мйго і гормонального стимулювання утворення пагонів збільшити вихід рослин з насіння. Спосіб відрізняється простотою та надійністю у виконанні.The basis of a useful model is the task of improving the method of obtaining grape plants from low-fertility initial forms and, by selecting initial forms, determining the stages of cultivation on a nutrient medium of ip mygo and hormonal stimulation of the formation of shoots, to increase the yield of plants from seeds. The method is simple and reliable in execution.
Поставлена задача вирішується тим, що в способі отримання рослин винограду від вихідних форм з низькою о фертильністю, який включає культивування зародків з частиною оболонки насіння іп міго з висаджуванням їх на Ге) живильне середовище з додаванням регуляторів росту, згідно корисній моделі, спочатку диференціюють вихідні форми за класом безнасінності і категорією експресії в культурі насіння, культивування іп мйго здійснюють в о дві або три стадії: пророщування насіння, формування рослин і регенерація рослин, причому доцільність «І проведення третьої стадії визначають за утворенням калюсу, а як регулятор росту використовуютьThe task is solved by the fact that in the method of obtaining grape plants from low-fertility initial forms, which includes the cultivation of embryos with a part of the seed coat and planting them on a nutrient medium with the addition of growth regulators, according to a useful model, the initial forms are first differentiated according to the class of seedlessness and the category of expression in seed culture, cultivation of ip mygo is carried out in two or three stages: germination of seeds, formation of plants and regeneration of plants, and the expediency of conducting the third stage is determined by the formation of callus, and as a growth regulator is used
Зо б-бензиламінопурин (БАП) в кількості, мг/дм: на першій стадії - 0,5-1,0; на другій стадії - не більше 0,5; - на третій стадії - 0,2-0,25.With b-benzylaminopurine (BAP) in quantity, mg/dm: at the first stage - 0.5-1.0; at the second stage - no more than 0.5; - at the third stage - 0.2-0.25.
Диференціація вихідних форм рослин за класом безнасінності і категорією експресії в культурі насіння дозволяє виявити поліембріонне насіння, зафіксувати формування множинних проростків та гарантувати їх « дю виживаність. При проростанні поліембріонного насіння розвиток рослин може відбуватись кількома шляхами -о (прямий та непрямий ембріогенез, гемогенез, формування одиничної рослини). Змінюючи концентрацію БАП в с живильному середовищі, можна регулювати шлях розвитку множинних проростків. Тим самим, одно насіння :з» може дати від одного до сотень ювенільних рослин, які, можливо, мають генетичну неоднорідність.Differentiation of initial forms of plants according to the class of seedlessness and the category of expression in seed culture allows to identify polyembryonic seeds, record the formation of multiple seedlings and guarantee their survival. When polyembryonic seeds germinate, plant development can occur in several ways (direct and indirect embryogenesis, hemogenesis, formation of a single plant). By changing the concentration of BAP in the nutrient medium, it is possible to regulate the path of development of multiple seedlings. Thus, one seed can give from one to hundreds of juvenile plants, which may have genetic heterogeneity.
Приклад конкретного здійснення способу.An example of a specific implementation of the method.
Виділили стеноспермокарпічні сорти і гібриди винограду, що мають цінні властивості, які вони не можуть - 395 передати потомству при звичайному генеративному розмноженні внаслідок низької фертильності та дегенерації зародку. Склали план гібридизації, з огляду на репродуктивні особливості вихідних форм. Як материнські формиStenospermocarpic grape varieties and hybrids have been singled out, which have valuable properties that they cannot - 395 pass on to the offspring during normal generative reproduction due to low fertility and embryo degeneration. They drew up a hybridization plan, taking into account the reproductive features of the original forms. Like mother forms
ЧК» використано сорти і гібриди, що відносяться до І класу безнасінності. Також були враховані дані вихідних о форм за експресією у культурі. Як запилювачі використано безнасінні сорти і гібриди. При підборі батьківських форм враховували здатність передавати потомству конкретні позитивні якості (урожайність, аромат, стійкість та (о) 50 ін.), в залежності від поставленого завдання. Кожна комбінація схрещування була представлена 5 суцвіттями. сп Зібрали ягоди винограду в період фізіологічної стиглості. Із ягід виділили насіння, промили в дистильованій воді та помістили в бюкси для стерилізації. Зовні щупле, деформоване насіння вибраковували. В умовах ламінованого боксу насіння стерилізували 40 секунд 9095-им етіловим спиртом, потім 8 хвилин 0,195-им діоцидом та промивали стерильною дистильованою водою 3-4 рази на протязі 10 хвилин. Потому зробили розріз 99 насіння. Насіння, яке не мало ендосперму, вибраковували. Для проростання насіння використовували живильне с середовище (середовище Ніча, Ніч, 1969), яке мало наступний склад (концентрація, мг/дм З): мінеральні елементи МНАМО»з - 720, КМОз - 950, Ма5О,.7НЬО - 185, КНоРО, - 68, СасСі» - 166, Реб5О,.7НЬО - 28,ChK" varieties and hybrids belonging to the 1st class of seedlessness were used. Also, the data of the original forms by expression in the culture were taken into account. Seedless varieties and hybrids were used as pollinators. When selecting parental forms, the ability to transmit specific positive qualities to the offspring (yield, aroma, stability and (about) 50 others) was taken into account, depending on the task. Each crossing combination was represented by 5 inflorescences. sp. Grapes were collected during the period of physiological ripeness. The seeds were separated from the berries, washed in distilled water and placed in boxes for sterilization. Externally thin, deformed seeds were discarded. In the conditions of the laminated box, the seeds were sterilized for 40 seconds with 9095% ethyl alcohol, then for 8 minutes with 0.195% diocide and washed with sterile distilled water 3-4 times for 10 minutes. Then 99 seeds were cut. Seeds that did not have endosperm were discarded. For seed germination, a nutrient medium was used (Nicha medium, Nich, 1969), which had the following composition (concentration, mg/dm Z): mineral elements MNAMO»z - 720, KMOz - 950, Ma5O,.7НЭО - 185, KNoRO, - 68, SasSi" - 166, Reb5O,.7NYO - 28,
МагЗДТтТА.НоО - 37, МпзО,.4Н.0О - 22,3, НзВО»з - 6,2, 7п50,.7Н.О - 8,6, Ма»МоО,.2Н.0О - 0,25, Си5О,.5НоО - во 0,025, СосСІ. - 0,025, КО - 0,83; вітаміни нікотинова кислота - 5, піридоксин-НСІ - 0,5, тіамін-НСІ - 0,5, мезо-інозит - 100; сахароза - 20000; агар-агар - 7000. Фрагмент насіння, який містив зародок з прилягаючими тканинами, висадили на живильне середовище з додаванням БАП в концентрації 1мг/дм З таким чином, щоб контакт з середовищем здійснювався у місці зрізу. Культивування проводили у темряві. В міру проростання насіння склянки з проростками переносили на світло та культивували на світлі. Основна маса насіння проросла 65 протягом 3-х місяців після початку культивування. Інше насіння (4095 від загальної кількості) пересадили на свіже середовище після повторного зрізу (перша стадія). Всього в результаті культивування на першій стадії проросло 6395 насіння.MagZDTtTA.NoO - 37, MpzO,.4H.0O - 22.3, NzVO»z - 6.2, 7p50,.7H.O - 8.6, Ma»MoO,.2H.0O - 0.25, Si5O ,.5NoO - in 0.025, SosSi. - 0.025, KO - 0.83; vitamins nicotinic acid - 5, pyridoxine-HCI - 0.5, thiamine-HCI - 0.5, meso-inosit - 100; sucrose - 20000; agar-agar - 7000. A fragment of a seed, which contained an embryo with adjacent tissues, was planted on a nutrient medium with the addition of BAP at a concentration of 1 mg/dm C in such a way that contact with the medium was made at the cut site. Cultivation was carried out in the dark. As the seeds germinated, the glasses with the seedlings were transferred to the light and cultivated in the light. The main mass of seeds germinated 65 within 3 months after the start of cultivation. Other seeds (4095 of the total number) were transplanted to a fresh environment after repeated cutting (first stage). A total of 6,395 seeds germinated as a result of cultivation at the first stage.
Проростки для подальшого розвитку пересадили на живильне середовище (прототип) з додаваннямSeedlings for further development were transplanted to a nutrient medium (prototype) with the addition of
О,омг/дм З БАП, де проростки, які мають виразно сформований гіпокотиль і сім'ядольні листки, розвивають пагін та кореневу систему. Через З5 днів з 4895 проростків сформувались рослини (друга стадія).Oh, omg/dm With BAP, where the seedlings, which have a distinctly formed hypocotyl and cotyledon leaves, develop a shoot and a root system. After 35 days, plants (second stage) were formed from 4895 seedlings.
У 1095 аномальних проростків, які мають відхилення у розвитку сім'ядольних листків та підсім'ядольного коліна, на даному середовищі сформувався калюс, який пересадили на середовище, що містить БАП у концентрації 0,25мг/дму, внаслідок чого розвилося 495 рослин (третя стадія).In 1095 abnormal seedlings, which have deviations in the development of cotyledon leaves and subcotyledon knee, a callus was formed on this medium, which was transplanted to a medium containing BAP at a concentration of 0.25 mg/dmu, as a result of which 495 plants developed (third stage ).
У підсумку 5295 проростків розвилося у рослини, які розмножили мікроживцюванням і отримали по 10-20 70 рослин кожної форми. Адаптацію проводили за відомою технологією з використанням двохетапного підготовчого періоду з наступним висадженням у теплицю. Перший етап - заміна фольги на целофанову плівку, притиснуту кільцем, та культивування рослин в такому стані на протязі 3-4 тижнів; другий етап - культивування рослин у відкритих посудинах з додаванням слабкого розчину перманганату калію протягом 3-х тижнів. У кінці травня рослини пересадили у теплицю, протягом 3-х тижнів притіняли.As a result, 5295 seedlings developed into plants, which were propagated by micrografting and received 10-20 70 plants of each form. Adaptation was carried out according to known technology using a two-stage preparatory period followed by planting in a greenhouse. The first stage is replacing the foil with a cellophane film pressed with a ring, and cultivating plants in this state for 3-4 weeks; the second stage - cultivation of plants in open vessels with the addition of a weak solution of potassium permanganate for 3 weeks. At the end of May, the plants were transplanted into a greenhouse, shaded for 3 weeks.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU200510662U UA14365U (en) | 2005-11-11 | 2005-11-11 | Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU200510662U UA14365U (en) | 2005-11-11 | 2005-11-11 | Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| UA14365U true UA14365U (en) | 2006-05-15 |
Family
ID=37458094
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| UAU200510662U UA14365U (en) | 2005-11-11 | 2005-11-11 | Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| UA (1) | UA14365U (en) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102763593A (en) * | 2012-07-16 | 2012-11-07 | 福建省农业科学院农业工程技术研究所 | Method for rapidly obtaining loose calluses of grapes and for long-term succeeding maintenance of grapes |
| CN102835316A (en) * | 2012-09-26 | 2012-12-26 | 中法合营王朝葡萄酿酒有限公司 | Method for removing grape virus disease and rapidly propagating seedling for cabernet gernischet grape variety |
| CN105198616A (en) * | 2015-10-10 | 2015-12-30 | 河北农业大学 | Fresh grape overall-process combination drip irrigation fertilizer |
| CN113207686A (en) * | 2021-04-22 | 2021-08-06 | 湖北师范大学 | Cedrela sinensis regeneration technology based on seed coat callus differentiation |
-
2005
- 2005-11-11 UA UAU200510662U patent/UA14365U/en unknown
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102763593A (en) * | 2012-07-16 | 2012-11-07 | 福建省农业科学院农业工程技术研究所 | Method for rapidly obtaining loose calluses of grapes and for long-term succeeding maintenance of grapes |
| CN102835316A (en) * | 2012-09-26 | 2012-12-26 | 中法合营王朝葡萄酿酒有限公司 | Method for removing grape virus disease and rapidly propagating seedling for cabernet gernischet grape variety |
| CN105198616A (en) * | 2015-10-10 | 2015-12-30 | 河北农业大学 | Fresh grape overall-process combination drip irrigation fertilizer |
| CN113207686A (en) * | 2021-04-22 | 2021-08-06 | 湖北师范大学 | Cedrela sinensis regeneration technology based on seed coat callus differentiation |
| CN113207686B (en) * | 2021-04-22 | 2022-02-08 | 湖北师范大学 | Cedrela sinensis regeneration technology based on seed coat callus differentiation |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Raghavan | One hundred years of zygotic embryo culture investigations | |
| Lelu-Walter et al. | Clonal plant production from self-and cross-pollinated seed families of Pinus sylvestris (L.) through somatic embryogenesis | |
| Bermejo et al. | In vitro embryo culture to shorten the breeding cycle in lentil (Lens culinaris Medik) | |
| Martínez-Estrada et al. | Temporary immersion improves in vitro multiplication and acclimatization of Anthurium andreanum Lind. | |
| Shen et al. | Immature embryo rescue and culture | |
| Taji et al. | Plant tissue culture practice | |
| Marcelis-van Acker et al. | Development of axillary buds of rose in vitro | |
| Deb et al. | In vitro plant regeneration of wild eggplant (Solanum sisymbriifolium) to produce large number of rootstocks for tomato grafting | |
| UA14365U (en) | Method of obtaining grape plants from parent forms with low fertility | |
| Kanchanapoom et al. | The Effect of Chitosan on Organogenesis of Oil Palm Embryo-Derived Callus | |
| Abul-Soad et al. | Date palm somatic embryogenesis from inflorescence explant | |
| Al-Busaidi et al. | In vitro regeneration of Mango (Mangifera indica L.) cv. Baramasi through nucellar embryogenesis | |
| Caser et al. | Shortening of selection time of Rosa hybrida by in vitro culture of isolated embryos and immature seeds | |
| Valliath et al. | Micropropagation of Strawberry Crop (Fragaria ananassa): A Review | |
| Onay et al. | Somatic embryogenesis of pistachio from female flowers | |
| Maulida et al. | Induction of kopyor coconut embryogenic callus using 2.4-D and TDZ | |
| CN100362096C (en) | Method for obtaining amphihaploid plant of pumpkin ovule and its special culture medium | |
| Peña-Ramírez et al. | Tissue culture methods for the clonal propagation and genetic improvement of Spanish red cedar (Cedrela odorata) | |
| Sarker et al. | Establishment of a standard protocol for in vitro meristem culture and plant regeneration of Citrus aurantifollia | |
| HU183433B (en) | Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture | |
| Singh et al. | Plant tissue culture | |
| RU2113111C1 (en) | Method of plant growing from difficultly germinating seeds | |
| Maheswari et al. | In vitro micropropagation of rosa damascena mill l | |
| Mangal et al. | Haploid induction through microspore embryogenesis in Bell pepper genotypes | |
| Lizawati et al. | The effect of 2, 4-D and 2-iP on callus proliferation and development on immature leaf explants of Liberica coffee (Coffea liberica L.) |