TWI777158B - 製備導電性高分子及移除親蛋白尿毒素的方法、導電性奈米纖維塗層及生物電子介面裝置 - Google Patents

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Abstract

本發明提供一種有機生物電子血液透析裝置系統，其用於有效的移除親蛋白尿毒素(PBUT)，該系統包含：PEDOT：PSS，多壁奈米碳管，聚氧化乙烯(PEO)及(3-環氧丙氧丙基)三甲氧基矽烷(GOPS)。該複合奈米纖維平台展示了：(i)長期耐水性；(ii)在PES膜上的黏附強度；(iii)增進電特性；及(iv)良好的抗凝血能力及可忽略的紅血球細胞溶血作用。本發明非常適用於開發下一代的生物電子醫學於血液透析應用。

Description

製備導電性高分子及移除親蛋白尿毒素的方法、導電性 奈米纖維塗層及生物電子介面裝置
本發明係關於一種製備導電性材料以用於進一步純化血液的技術；更特別的，係關於一種製備導電性高分子及移除血液中親蛋白尿毒素的方法。
申請請求根據35 U.S.C.§119(e)授予2019年9月23日提交的申請號為62/903,954的美國臨時專利申請案的權益，其完整內容在此透過引用結合於此。
腎臟是可以從全血液中過濾掉廢物代謝產物，同時還可以調節血壓和電解質平衡的器官。腎衰竭的症狀是起因於血液中***毒素的累積。在全世界，導致慢性腎臟疾病(chronic kidney disease；CKD)及終末期腎臟疾病(end-stage renal disease；ESRD)的慢性腎臟衰竭的發生率正在迅速增加。當腎臟不再有效運作時，尿毒素的濃度將增加，導致死亡風險增加。持續性非臥床腹膜透析(continuous ambulatory peritoneal dialysis；CAPD)、血液透析(hemodialysis；HD)及腎臟移植是目前用 於保住生命的三種主要醫療方式。儘管高頻率HD治療(每次4小時，每週3次)不便，但它仍然是最可行的臨床治療方法，也是從血液中有效去除水溶性小尿毒素的最流行方法。然而，由於親蛋白的尿毒素(PBUTs)的高蛋白結合能力，使用傳統的血液透析設備它們仍然存在問題，只有少量的游離PBUT可穿過血液透析膜。因此，用於從人血中去除PBUT的新血液透析技術開發應可實質改善透析患者的治療品質。
當直接將電子裝置連接於生物學應用時，生物電子介面(bioelectronic interfaces；BEIs)在交流增進干預(communication enhancement intervention)中起著關鍵作用。它們可以利用電刺激(electrical stimulation；ES)來操縱細胞反應(例如生物表現型及特定基因表達)，同時還可以促進生物反應轉換為電子訊號以進行有效讀出。目前，對BEI的大多數研究都涉及有機π-共軛材料的應用(例如，導電性高分子(conductive polymer；CP)、小分子半導體及碳材料)。相對於無機BEI材料，結合生物學的CP系BEI由於具有非凡的製造靈活性，方便的批量生產，低溫製造，固有的生物相容性，仿生機械強度以及優越的電化學和光學/光電性能，因此具有更大的潛在應用屬性。在CP中，聚(3,4-乙烯基二氧噻吩)(PEDOT)系的材料因其在生物電子學(例如有機電化學電晶體(organic electrochemical transistors；OECT)、有機電子離子泵(organic-electronic ion pumps；OEIP)及生物感測器/生物電極)中的使用而引起了人們的最大關注)，因為它們允許透過電化學摻雜/去摻雜過程來動態控制電荷傳輸現象、蛋白質折疊/構形轉變以及循環腫瘤細胞的捕捉/釋放調節。由於其機械性能、血液相容性及獨特的電子傳導特性，多壁奈米碳管(multiwall carbon nanotube；MWCNT)/混合高分子奈米複合材 料的發展已引起廣泛的應用於生物電子的興趣。據目前所知，以往沒有用於將電刺激功能賦予血液透析治療的有機BEI系統的示範。
在上述背景說明段落中所揭露之內容，僅為增進對本發明之背景技術的瞭解，因此，上述之內容含有不構成阻礙本發明之先前技術，且應為本領域習知技藝者所熟知。
有鑑於此，本發明開發了MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層作為生物電子介面的血液透析裝置，用於有效的ES來減少與PBUT結合的蛋白質百分比，從而提高PBUT於整體透析去除的性能，另外同時維持牛血清白蛋白(BSA)的保留量。使用電紡絲和熱交聯製備的這些MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層具有很高的耐水性，並且對傳統的聚醚碸(polyethersulfone；PES)透析膜具有很強的附著力。本發明已經使用了掃描電子顯微鏡(SEM)，穿透式電子顯微鏡(TEM)，拉曼光譜，X射線光電子光譜(XPS)，四點探針，循環伏安法(CV)和電化學阻抗光譜(EIS)，對這些MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的奈米纖維結構進行化學組成和電特性分析。此外，本發明已經在抗血栓形成性、溶血率、血小板黏附性和細胞活性(cell viability)方面評估了奈米纖維塗層(或裝置設置)的生物相容性。本發明還提供了在ES操作下MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維血液透析裝置在-3至+3V，較佳在-0.8至+0.8V的電位範圍內的長期穩定性，以及電刺激影響PBUT與BSA蛋白結合的研究。
具體而言，本發明提供一種製備導電性高分子的方法，包含：(a)提供包含奈米碳管及(3-環氧丙氧丙基)三甲氧基矽烷的PEDOT：PSS溶液；(b)將PEDOT：PSS溶液與添加劑溶液混合以獲得四元混合溶 液；及(c)將四元混合溶液以電紡絲製程形成該導電性高分子奈米纖維，其中，以四元混合溶液的總重為基礎，添加劑溶液係5~30wt%。
在本發明之具體實施例中，添加劑溶液包含聚氧化乙烯(PEO)溶液。
在本發明之具體實施例中，以PEDOT：PSS溶液總重為基礎，奈米碳管係佔1~3wt%。
在本發明之具體實施例中，以PEDOT：PSS溶液總重為基礎，(3-環氧丙氧丙基)三甲氧基矽烷係佔1~10wt%。
其中，在(c)步驟後，更包含對導電性高分子進行熱處理。
在本發明之具體實施例中，熱處理係以80~150℃進行。
在本發明之具體實施例中，熱處理係進行至少1小時。
在本發明之具體實施例中，奈米碳管為多壁奈米碳管。
在本發明之具體實施例中，PEDOT與PSS之重量比為1：2.5~1：6。
本發明另提供一種導電性奈米纖維塗層，其係由上述方法所製備。
本發明再提供一種生物電子介面裝置，包含：透析膜；輔助電極，其塗佈於該透析膜上；及上述的導電性奈米纖維塗層，其作為工作電極塗佈於該透析膜上。
在本發明之具體實施例中，透析膜包含聚醚碸膜、三醋酸纖維膜、乙烯-乙烯醇膜、聚丙烯腈膜、聚酯聚合物合塑膜(polyester polymer alloy membrane)、聚甲基丙烯酸甲酯膜、聚碸膜、再生纖維膜、或二醋酸纖維膜。
在本發明之具體實施例中，輔助電極材質包含Ag/AgCl電極、銀電極、金電極、鉑電極、銥電極、鉑/銥合金電極、氧化銥電極、鈦電極或氮化鈦電極。
其中，該生物電子介面裝置更包含塗佈於該透析膜上的參考電極；該參考電極包含Ag/AgCl電極、銀電極、金電極、鉑電極、銥電極、鉑/銥合金電極、氧化銥電極、鈦電極或氮化鈦電極。
本發明更提供一種移除親蛋白尿毒素的方法，包含：(a)將生物流體樣品導入上述的生物電子裝置中，以干擾蛋白質與生物電子介面裝置表面的結合；及提供電刺激以降低親蛋白尿毒素與蛋白質的結合率。
在本發明之具體實施例中，電刺激包含一循環伏安法一正負電位轉換的方法。
在本發明之具體實施例中，電刺激所利用之電壓範圍為-3至+3V。
在本發明之具體實施例中，電刺激可增加生物流體中蛋白質的保留。
在本發明之具體實施例中，電刺激可增加親蛋白尿毒素的透析及吸附量。
本發明一個或一個以上實施例的細節將於所附圖式和以下描述中予以闡述。根據這些描述和圖式和申請專利範圍，將可容易地瞭解本發明的技術特徵、目的和優點。同時，為了讓本發明之上述特徵和優點能更明顯易懂，下文特舉實施例，並配合所附圖式作詳細說明。
經由詳細描述和附圖，將僅對本發明的實施例的附圖進行更全面的理解；因此，以下附圖僅用於解釋本發明實施例，並不限制本發明之申請專利範圍；圖1係本發明之(a)在PES膜上製備MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的電紡絲裝置的示意圖；(b)材料的組成分析(MWCNT、PEDOT：PSS、PEO)以及MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層，其中摻入了各種含量的MWCNT(NF、CNF1、CNF2、CNF3)；圖2係本發明之(a-d)摻有各種MWCNT(NF、CNF1、CNF2、CNF3)剛紡絲出(as-spun)的奈米纖維塗層SEM形態；(e-h)各種奈米纖維塗層相對應的直徑分佈柱狀圖；圖3係本發明之(a，b)以(a)薄膜結構及(b)單一奈米纖維結構形式併入各種MWCNTs的退火MWCNT/PEDOT：PSS的導電度；(b)插圖：沉積在叉指電極(IDE)上的電紡絲MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的放大光學影像；(c，d)在ITO玻璃上1 x PBS的各種MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的電特性；(c)NF、CNF1、CNF2及CNF3奈米纖維塗層的CV曲線；以100mV s-1的掃描速率從-0.8到+0.8V掃描；NF、CNF1、CNF2及CNF3的電荷容量密度(CCD)分別為0.23、0.59、1.29和1.88mC cm-2。(d)NF、CNF1、CNF2及CNF3奈米纖維塗層的EIS頻譜的阻抗圖(頻率範圍：10-1-105Hz)；圖4係本發明之(a-d)在PES膜(NF、CNF1、CNF2、CNF3)上摻入各種MWCNT的退火奈米纖維塗層的照片；(e-l)中的(e-h)為退火的奈米纖維塗層(NF、CNF1、CNF2、CNF3)以及(i-l)為退火的奈米纖維塗層(具有交聯結構)的SEM形態，將其浸入1 x PBS緩衝液中24 小時；(m-p)退火奈米纖維塗層(NF、CNF1、CNF2、CNF3)的TEM影像；圖5係本發明之(a-d)樣品NF、CNF1、CNF2、CNF3的橫切膠帶附著力測試後，PES膜上退火的奈米纖維塗層的光學圖像；(e)退火的奈米纖維塗層相對應的附著力水平(ASTM D3359)；圖6係本發明之(a，b)使用(a)APTT及(b)PT測定法測量的PES膜(NF、CNF1、CNF2、CNF3)上的退火奈米纖維塗層的凝結時間；(c)所有奈米纖維塗層的溶血測試結果；(c)的插圖：曝露於(A)去離子水、(B)NF、(C)CNF1及(D)1 x PBS的紅血球(RBCs)的照片；(d)利用電動力學測量(electrokinetic measurements)測定的退火奈米纖維塗層(NF、CNF1、CNF2、CNF3)的界達電位(zeta potential)對pH值的相關性；圖7係本發明之(a-f)用鈣黃綠素-AM染色的血小板附著在(a)組織培養聚苯乙烯(TCPS)培養皿、(b)ITO玻璃、(c)NF、(d)CNF1、(e)CNF2及(f)CNF3上的螢光影像；圖8係本發明之PES膜上退火的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的XPS S2p光譜，樣本為(a)NF、(b)CNF1、(c)CNF2及(d)CNF3；圖9係本發明之(a，b)用於模擬透析治療的CNF1系的血液透析裝置系統的示意圖：(a)用於單一膜CNF1系的HD裝置的裝置架構；(b)用於透析治療的實驗裝置，其中該裝置通過蠕動泵連接，以控制PBUT側和PBS側緩衝液的流速；所有容器均保持在37℃的水浴中；(c)CNF1系的血液透析裝置的概念，用於在電刺激操作下去除PBUT；(d，e)中的(d)為CNF1系的HD裝置及(e)為用於透析治療的實驗裝置的照片；(f)在 使用CNF1系的血液透析裝置進行ES操作的4小時內，THP1細胞的細胞活性(N=3)；圖10係本發明四種之尿毒素(對-甲酚(PC)，硫酸吲哚酚(IS)、馬尿酸(HA)及肌酸酐(CRT))的(a)化學結構和(b)物理化學性質；MW：分子量；PSA：極性表面積；(c)使用以各種電紡絲時間(t=0、5、10、20分鐘)製備的CNF1系的血液透析裝置去除PC尿毒素的去除效率及(d)透析效率；(e)利用各種血液透析裝置去除PC的去除效率及(f)透析效率；利用(g、h)PES系的血液透析裝置及(i、j)CNF1系的血液透析裝置來比較IS，HA及CRT的(g、i)去除效率及(h、j)透析效率；圖11係本發明之(a-c)中的(a)PC溶液、(b)IS溶液、及(c)PBS緩衝溶液中，以100mV s-1的掃描速率從-0.8到+0.8V的重複CV電壓掃描期間，CNF1裝置在電刺激運行4小時後的電流回應；(d)在各種透析溶液中，電刺激操作4小時後CNF1裝置的電流密度變化率與時間的關聯性；(e-i)ES操作期間CNF1裝置的CV曲線；t=0、1、2、3和4小時；圖12係本發明之各種BSA溶液(4g，20g和40g L-1)的蛋白質結合率，該些BSA溶液預裝有50ppm尿毒素(a)PC、(b)IS、(c)HA及(d)CRT；圖13係本發明之(a)使用離心裝置(Vivaspin 2、截留分子量為30kDa，GE Healthcare)收集目標溶液程序，用於檢測BSA保留率和游離PBUT率；(b、c)利用不同的HD裝置(PES，CNF1，CNF1-R)在pH值7.4下測量(b)來自PBUT側的預黏合PC-BSA溶液及(c)來自PBUT側的預黏合IS-BSA溶液的BSA保留率；(d、e)在pH值7.4下，對於(d)來自PBUT側的游離PC及(e)來自PBUT側的游離IS，使用不同的HD裝置(PES、CNF1、CNF1-R)測量的游離PBUT比例；(f、g)在pH值7.4下， 利用不同的血液透析裝置(PES，CNF1，CNF1-R)測量(f)PBS側的PC及(g)PBS側的IS的透析率；及圖14係本發明之使用靜態CNF1和CNF1-R裝置設置測定PC和BSA解離的蛋白質結合率；插圖：兩電極配置中的靜態CNF1-R裝置設置的照片。
本發明之優點及特徵以及達到其方法將參照例示性實施例及附圖進行更詳細地描述而更容易理解。然而，本發明可以不同形式來實現且不應該被理解僅限於此處所陳述的實施例。相反地，對所屬技術領域具有通常知識者而言，所提供的此些實施例將使本揭露更加透徹與全面且完整地傳達本發明的範疇，且本發明將僅為所附加的申請專利範圍所定義。在圖中，成分的尺寸及相對尺寸為了清晰易懂而以誇示方法表示。如後文中所使用的，術語”及/或”包含任何及所有一或多相關所列物件的組合。
除非另外定義，所有使用於本文的術語(包含科技及科學術語)具有與本發明所屬該領域的技術人士一般所理解相同的意思。將更可理解的是，例如於一般所使用的字典所定義的那些術語應被理解為具有與相關領域的意義一致的意思，且除非明顯地定義於本文，將不以過度正式的意思理解。
除非本文另外清楚地指出，單數形式”一”、”至少一”與”該”用於本文中亦可包含複數個指涉物。如本文中所使用的，術語”及/或”包含任何及所有一或多相關所列物件的組合。
在本文中，對於用以界定本發明範圍的數值與參數，本質上不可避免地含有因個別測試方法所致的標準偏差，因而大多是以約略的數量值來表示，然而於具體實施例中則盡可能精確呈現的相關數值。在本文 中，「約」通常視本發明所屬技術領域中具有通常知識者的考量而定，一般係指代表實際數值落在平均值的可接受標準誤差之內，例如，該實際數值為在一特定數值或範圍的±10%、±5%、±1%、或±0.5%以內。
「重量%」或是「wt%」係指每100份重的高分子/聚合物中的單體重量份數，或是每100份重的組成物或材料中之成份的重量份數，其中成分係形成組成物或材料的一部分。
以下說明將配合圖式詳細敘述例示實施例以闡述本發明製備導電性奈米纖維塗層以用於純化生物流體(血液)的過程及功效，主要目的為充分揭示並使所屬技術領域通常知識者可據以實現。然而，這些實施例可以包含於不同的形式中，且不應被解釋為用以限制本發明之申請專利範圍。這些實施例之提供使得本發明之揭露完整與明暸，熟知此技術之人將能經由該些實施例了解本發明之範疇。
親蛋白尿毒素(PBUTs)會由於抑制蛋白的運輸並誘導其結構修飾而對腎功能衰竭的患者產生有害影響。該毒素很難透過標準的血液透析(HD)治療去除。本文中，本發明提供了一種有機生物電子血液透析裝置系統，可通過電觸發的蛋白質-毒素複合物的分離有效去除PBUT。為了製備該系統，本發明採用電紡絲法製備導電性複合奈米纖維塗層，該塗層包含多壁奈米碳管(MWCNT)，聚(3,4-乙烯基二氧噻吩)：聚苯乙烯磺酸鹽(PEDOT：PSS)，聚氧化乙烯(PEO)及(3-環氧丙氧基丙基)三甲氧基矽烷(GOPS)-於傳統的的聚醚碸(PES)透析膜上。這種複合奈米纖維平台表示出(i)長期耐水性(由於PSS，PEO和GOPS之間的交聯)；(ii)在PES膜上具有很高的黏合強度(由於GOPS起了黏合促進劑的作用)；(iii)增強電特性(由於MWCNT和PEDOT：PSS促進了包含生物電子介面(BEI)裝置中的有效電刺激操作)；(iv)良好的抗凝血能 力和可忽略的紅血球細胞溶血作用。本發明使用該有機BEI電子系統作為新穎的單一膜血液透析裝置來研究四種***毒素PC的移除效率，以及電刺激對降低蛋白質結合率的影響。經過模擬的透析過程4小時後，有機BEI裝置可提供較高的PC去除率及低蛋白損失。它還具有較低的補體活化、較低的接觸活化濃度和較低的血小板吸附功能，這代表它非常適合作為開發用於血液透析的下一代生物電子藥物。
《實驗部分》
以下描述僅代表本發明的例示性實施例，而本發明的專利範圍並不意於限制於此。因此，基於本發明的說明書及專利範圍的各種均等改變，替換或修飾都被視為包含在本發明的範圍內。
《材料與方法》 MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層
導電性MWCNT/PEDOT：PSS的奈米纖維塗層是由MWCNT，PEDOT：PSS水溶液，聚氧化乙烯(PEO)及(3-環氧丙氧基丙基)三甲氧基矽烷(GOPS)的四元混合溶液，並透過針型電紡絲製備(圖1a)。PEDOT：PSS水溶液(Clevios PH1000；PEDOT與PSS之重量比為1：2.5~1：6，較佳為1：2.5)，其係購自H.C.Starck。聚氧化乙烯(PEO；分子量：900,000)，(3-環氧丙氧基丙基)三甲氧基矽烷(GOPS)和多壁奈米碳管(MWCNT；產生的陰極沉積物；O.D.×L：7-15nm×0.5-10μm)，自Sigma-Aldrich購得。本實施例應用了以下電紡絲參數：(a)使用27號一次性針頭作為電紡絲的陽極(取自泰勒錐的高分子溶液)，流速為1mL h-1及22kV的電壓供應；(b)聚醚碸(PES)透析膜(EMD Millipore；截留分子量：30kDa)與針尖之間的距離為11cm；(c)將高分子混合溶液於環境溫度之大氣壓力下在相對濕度小於45%的條件進行電紡絲10分鐘；(d)使用鼓風機以防止奈米纖維在整個靜電紡絲過程中站立。最後，對MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層進行熱交聯處理(80℃~150℃，較佳為130℃至少1小時)，其確保PSS、PEO及GOPS材料的交聯，係應用於增強濕穩定性。摻有0、1、2、3、4及5wt%的MWCNT的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層在本專利中分別命名為NF、CNF1、CNF2、CNF3、CNF4及CNF5。
奈米塗層的性質
利用拉曼光譜儀(HR800，HORIBA，日本)，輸出功率為17mW的氦氖(He-Ne)雷射於633nm的波長下操作，記錄400-3500cm-1範圍的拉曼光譜。將MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層脫水並濺鍍鍍鉑(<3nm)後，獲得場發射掃描電子顯微鏡(FE-SEM，JEOL JSM-6701F，日本)影像；加速電壓為15kV。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的穿透式電子顯微鏡(TEM，JEOL 2010，日本)影像在200kV下獲得。依據ASTM D3359標準，使用橫切測試儀(cross-cut tester；ZCC 2087，Zehntner，瑞士)對PES基材上的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層進行橫切附著力測試。
血液凝固時間，溶血分析和血小板黏附試驗
收集穩定人類血液的乙二胺四乙酸(EDTA)，然後進行離心以獲得目標液體活檢(lipid biopsy)。以4000rpm離心15分鐘，以獲得乏小板血漿(platelet-poor plasma；PPP)；以1000rpm離心15分鐘獲得 富血小板血漿(platelet-rich plasma；PRP)。透過在2000rpm下離心10分鐘，去除上層血漿溶液，並用1×磷酸鹽緩衝液(PBS)洗滌五次來獲得紅血球細胞(RBC)。為了評估MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層塗佈的PES膜的抗血栓形成性，將測試樣品切成片(1 x 1cm2)，在PPP(0.5mL)中於37℃培養1小時，然後透過凝固測定法確定抗凝特性，其中根據活化部分凝血活酶時間(activated partial thromboplastin time；APTT，與內在及常見的凝血途徑有關)的因子XII以及凝血酶原時間(prothrombin time；PT，與凝血的外在途徑有關)的VII因子監測凝血途徑，使用自動凝血分析儀(CA-50，Sysmex，日本)進行測量。在未添加任何樣品的情況下，用於凝血時間測量的陽性和陰性對照係分別針對未經處理的組織培養聚苯乙烯(TCPS)培養皿和PPP測試。對於溶血測定，透過用PBS稀釋(1：10)RBC懸浮液來製備稀釋的RBC。然後將稀釋的RBC懸浮液的一部分(0.2mL)用0.8mL的去離子水(作為陽性對照)或PBS緩衝液(作為陰性對照)處理。將NF和CNF1(2mg)在陰性對照RBC懸浮液(1.0mL)中於37℃培養2小時，然後以10,000rpm離心2分鐘。最後，基於上清液在540nm處的吸光度，對上清液進行UV-Vis光譜分析(V570，日本Jasco，日本)以計算溶血百分比。透過將血液中的游離血紅素濃度除以每個單獨樣品的總血紅素濃度來計算溶血百分比。對於血小板黏附力測試，將樣品(1×1cm2)在PBS緩衝液中於37℃預培養1小時，然後轉移至預先準備好的PRP(1mL；將PRP中的血小板計數調整為3×108mL)且在37℃下培養2小時。吸出PRP，且樣品用PBS緩衝液洗滌3次。最後，為進行螢光成像(fluorescence imaging)，將樣品用鈣黃綠素乙醯氧基甲酯(calcein-AM，4μM)在37℃下染色10分鐘。在對PES膜上的血小板黏附進行SEM成像之 前，將PRP黏附的樣品用4%多聚甲醛固定20分鐘，然後以濃度漸升的EtOH(25%，50%，75%及100%；每次脫水時間：20分鐘)脫水凍乾。
MWCNT/PEDOT：PSS薄膜和奈米纖維的電學表徵
MWCNT/PEDOT：PSS薄膜的導電度是使用Keithley 2400量測器和四點探針測量的。為了測量單一電紡絲纖維的導電度，首先將MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維電紡到在玻璃基板上製備的Au叉指電極(IDE)(Dropsens：DRP-G-IDEAU10)。恆電位儀/恆電流儀(PGSTAT320N，Autolab，荷蘭)和頻率響答分析(frequency response analysis；FRA)模組用於確定雙電極配置中IDE的兩個指狀電極之間的電阻。根據現有技術，從總電阻中減去接觸電阻，以確定MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維的導電度。使用帶有FRA模組的恆電位儀/恆電流儀，在玻璃電池中以三電極配置進行CV和EIS。將Pt線及Ag/AgCl電極分別用作輔助電極(counter electrode；CE)和參考電極(reference electrodes；RE)。在PBS範圍從-0.8至+0.8V的電位範圍內，以100mV s-1的掃描速率進行CV測量。EIS測量是在PBS中通過施加10-1至105Hz頻率範圍內的AC電壓(振幅：5mV)進行的。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維的電動力學分析(zeta potential)使用SurPASS電動分析儀(Anton Paar，澳大利亞)，帶有兩個Ag/AgCl電極進行；使用流動電流法以0.001M KCl作為電解質溶液進行測量(pH範圍為2至9)。透過添加0.05M HCl或0.05M NaOH將pH調節至7.4。
XPS測量
XPS光譜是使用PHI 5000 VersaProbe系統(日本ULVAC-PHI)和微聚焦(100μm，25W)AlKαX射線記錄的，光電子發射角為45度。將奈米纖維塗層電紡絲在PES膜上，以轉移到系統中進行直接分析。在頻譜採集期間，使用雙束電荷中和器(7-V Ar+束和1-V泛電子束)來補償充電效應。
模擬透析實驗
在透析裝置中，設計了有效面積為3.3cm2的透析膜，用於在兩個分開的內部循環隔室之間進行分隔。一種內部循環流使用50mL PBUT溶液，另一種使用50mL PBS緩衝液。溶液容器(含尿毒素)和PBS緩衝液的流速分別為50mL min-1。使用水浴將循環流的溫度維持在37℃。於4小時內，每隔1小時從溶液和PBS容器中收集1mL樣品；實驗至少重複三遍。在進行透析實驗之前，使用PBS緩衝液在37℃下進行3小時洗滌程序。分別在277、278、229，和232nm，測量了四種尿毒素的濃度的變化(對-甲酚(PC)、硫酸吲哚酚(IS)、馬尿酸(HA)及肌酸酐(CRT))。使用以下方程式計算這四種***毒素的去除效率：
Figure 109114735-A0305-02-0017-1
 其中C0和Ct分別是最初和在時間t(1、2、3或4小時)溶液容器中的尿毒素濃度。BSA的濃度透過使用紫外-可見分光光度計在595nm進行監測以布拉德福蛋白質定量法(Bradford protein assay)確定。使用下列方程式計算BSA保留百分比：
Figure 109114735-A0305-02-0017-2
 其中C0和Ct分別是最初和在時間t(1、2、3或4小時)溶液容器中BSA的濃度。對於PBUT預結合的BSA溶液的透析實驗，將50ppm的目標尿毒素與 各種含量的BSA(4、20及40g L-1)混合，並在37℃振搖24小時。使用Vivaspin離心機(Vivaspin 2，截留分子量為30kDa，GE Healthcare)透過離心(12,000μg，25℃，5分鐘)純化收集的樣品(1mL)；PBUT被分離到底部裝置中，從而從頂部裝置中收集BSA蛋白。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維裝置在兩電極設置下運行，該電極由工作電極(WE；塗有PEDOT奈米纖維的ITO玻璃)及與RE連接的CE(Ag/AgCl電極)組成。CV掃描電位範圍選用-3至+3V，較佳為-0.8至+0.8V(掃描速率：100mV s-1)作為電刺激用，以消除PBUT和BSA之間的靜電結合。
細胞活性測試
人類單核球白血病細胞系THP1係購自生物資源收集和研究中心(BCRC，台灣)。胎牛血清(FBS)購自HyClone。RPMI 1640生長培養基購自Invitrogen。在補充有10%FBS的RPMI 1640培養基中培養THP1細胞，並保持在5×105細胞/mL。製備在細胞培養基(2×106細胞/mL)中的THP1細胞懸浮液(50mL)，並填充到溶液容器中；使用LunaTM自動細胞計數器(Logos Biosystems，南韓)在透析治療4小時期間監測細胞活性和細胞計數。
《結果與討論》
理想情況下，透過血液透析去除PBUT是有用的，但是由於它們與溶質及蛋白質發生靜電作用，因此在標準HD治療中它們很難穿透透析膜。本發明已經開發了與導電性MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層整合在一起的新型生物電子裝置，用於先進的血液純化。根據電紡絲方法，將四元混合物(MWCNT、PEDOT：PSS、PEO及GOPS的水溶液)以奈米 纖維的形式沉積在PES透析膜上。在將PEDOT：PSS(PH1000)分散在PEDOT：PSS水溶液中並施加高功率超音波探針處理(20kHz，700W)後，其容易覆蓋在MWCNT的表面，從而穩定了高達10wt%的MWCNT分散液。此外，在PEO、PEDOT：PSS及GOPS的三元混合物中發生的交聯反應也改善了PEO/PEDOT：PSS系的奈米纖維的長期耐水性。本發明發現，在四元混合溶液中使用5~30wt%，較佳為15wt%的PEO溶液作為添加劑，且PEDOT：PSS溶液包括1~10wt%，較佳為3wt%的GOPS，不僅在電紡絲期間導致優異的可紡性，該方法還提供了一種可行的方法來增強纖維的機械穩定性和對基材的黏附性。因此，在本發明中，基於以上在PEDOT：PSS懸浮液中PEO及GOPS的配方比例，測試了摻入各種含量(0、1、2、3、4、5wt%)MWCNT的效果，其目標是開發適用於PES透析膜的BEI系血液透析裝置。因為在MWCNT/PEDOT：PSS溶液中添加1wt%的二甲基亞碸(DMSO)導致可紡性差，所以本發明在此研究了製備的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的電紡絲參數、形貌以及尺寸與沒有摻雜DMSO製備MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的黏附特性(表一)。奈米纖維塗層應用於血液透析的的優先性是低程度的分層(delamination)及二維(2D)薄膜形態。本發明在這一系列實踐中發現，MWCNT/PEDOT：PSS溶液中的MWCNT含量小於3wt%可從而將形態從三維(3D)纖維堆疊轉變為2D塗層。因此，本發明製備了四個不同的樣品(NF、CNF1、CNF2、CNF3)，以探索在本發明中將奈米纖維塗層作為BEI，以用於開發下一代血液透析裝置的所有可能性。
表一、MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維在PES膜上的電紡絲參數、形態、尺寸及黏附性能
Figure 109114735-A0305-02-0020-3
為了檢測電紡絲的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的組成，在633nm的波長下記錄了雷射激發後NF，CNF1，CNF2和CNF3的拉曼光譜(圖1b)。MWCNT的拉曼訊號分別對應於D、G及2D波段(用圓圈表示)出現在1336、1567和2683cm-1。PEDOT：PSS的拉曼訊號對應於PEDOT的環Cα=Cβ伸縮振動(由三角形表示)出現在1425cm-1處；PEO的拉曼信號在2892cm-1處出現，代表C-H伸縮(由菱形表示)。如預期的，NF、CNF1、CNF2及CNF3光譜中的這些特徵訊號與其在電紡絲的奈米纖維塗層中的PEDOT、PEO及MWCNT的組成一致。接下來，使用SEM觀察血液透析膜上所有MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的形態。使用ImageJ軟體透過影像分析計算出相對應的直徑分佈(圖2)。樣品NF及CNF1中的奈米纖維具有相對相似的直徑分佈(約150nm)，而CNF1中的奈米纖維結構由纏結的MWCNT組成(圖2a和2b)。當MWCNTs的含量從CNF1增加到CNF2及CNF3時，奈米纖維群體轉移到較小的直徑，分別從157±65 nm移至121±60nm及106±49nm，這表明由於更大的電荷排斥力作用於固體含量較高的PEDOT：PSS包裹的MWCNT上，較強的伸展力被施加到噴流上，從而導致纖維直徑更小(圖2b-d及2f-h)。
本發明所使用的四點探針法已用於測量所有2D薄膜電極的導電率，這些導電率是相對於PEO/PEDOT：PSS溶液中的MWCNT含量呈現的(圖3a)。透過旋轉塗佈在玻璃基板上係製備厚度為100nm的BEI薄膜(NF、CNF1、CNF、CNF3)；相對應的導電率分別為3.09×10-5、0.16、1.12和6.10S cm-1。由於摻入了11.6、20.8及28.3wt%的MWCNT於PEO/PEDOT：PSS膜中，CNF1、CNF2及CNF3薄膜的導電率分別比原始PEO/PEDOT：PSS膜(NF)的膜要高出約四個、五個及六個數量級(Order of magnitude)。除了在2D薄膜上使用四點探針的線性排列進行導電率測量外，透過使用指叉電極(IDE)的二指電極，亦將恆電位儀/恆電流儀與FRA模組一起使用以測量一維(1D)PEDOT系的電紡奈米纖維的導電率(圖3b)；IDE測量顯示，隨著MWCNT含量的增加，MWCNT/PEDOT：PSS的一維奈米纖維結構導致導電率線性增加，但比起相同組成的2D薄膜的導電率仍低了一個數量級(Order of magnitude)。
為了展示利用在電刺激環境下操作的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的單一膜裝置概念，利用標準的三電極系統及1×PBS緩衝液檢查了各種MWCNT/PEDOT：PSS的CV和EIS曲線ITO上的奈米纖維塗層(圖3c和3d)。如圖3c所示，透過CV分析(CV掃描電壓可從-3V至+3V，較佳從-0.8至+0.8V)，所獲得的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層NF、CNF1、CNF2及CNF3的電荷容量密度(CCD)差分別為0.23、0.59、1.29及1.88mC cm-2；此外，本發明發現，相對於ITO電極的CCD(0.06mC cm-2)，它們在形成還原態和氧化態時更有效地電性消除PBUT 和BSA之間的靜電結合。此外，圖3d呈現了在10-1到105Hz頻率範圍內所有BEI電極的EIS分析結果。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的EIS阻抗在100Hz頻率以下隨著MWCNT含量的增加而降低，其指出PEO/PEDOT：PSS基材中的高MWCNT含量很容易經歷摻雜/去摻雜過程及/或在電刺激操作的低頻率範圍內引起離子交換。
本發明利用熱退火技術於沉積在PES膜(NF、CNF1，CNF2、CNF3)上的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層，在130℃下放置6小時，然後用PBS緩衝液處理24小時(圖4)。所有樣品於圖4a-d中的照片中顯示，熱處理後，PES膜上均勻塗佈了奈米纖維塗層，沒有明顯的捲曲。此外，SEM影像顯示，經PBS溶液長期處理後，經退火的PEDOT系奈米纖維保持完好無損，從而證實了奈米纖維的卓越尺寸穩定性及其耐水性(圖4e-1)。圖4m-p所展示的TEM影像顯示了包含各種MWCNT含量的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的不同形態。在奈米纖維塗層(NF)中不存有MWCNT的情況下，PEO/PEDOT：PSS形成了具有幾何形狀的核/殼奈米纖維結構(包含粗、較暗、富含PEDOT的奈米纖維核，其包裹在薄、明亮且富含PSS的層中)。隨著MWCNT含量的增加，奈米纖維結構的特徵是更多的MWCNT纏繞在電紡絲奈米纖維中，並且具有更多的MWCNT彈出結構。
為了評估MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層在PES膜上的黏附強度，本發明依據ASTM D3359(圖5)採用了標準的美國標準測試方法(ASTM)，對奈米纖維塗層表面進行了橫切膠帶測試。在光學顯微鏡下，沒有發現NF塗層從PES表面剝落，證明其附著力達到5B。然而，隨著MWCNT含量的增加，電紡絲的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的附著力惡化：從CNF1塗層的4B指數，下降至CNF2塗層的3B指數，及CNF3 塗層的1B指數。實際上，本發明發現，PEDOT：PSS基材中較高的MWCNT含量導致奈米纖維塗層與PES膜之間的結合明顯較弱，從而顯著降低了黏合強度並降低了在連續流動條件下進行血液透析處理的可能性。
本發明的材料設計概念，其可作為開發用於進階血液透析裝置的抗凝血膜，如圖6a及6b所示，本發明分別使用APTT和PT在內在及外在途徑中的凝血時間來評估NF、CNF1、CNF2及CNF3的抗血栓形成性，相對於未經TCPS培養皿處理該些樣品的陽性反應對照及未添加任何樣品的PPP陰性對照。正如預期的那樣，所有經PEDOT系的奈米纖維塗層所塗佈的膜都增加了APTT及TT的凝血時間，這可能是由於PSS的磺酸基團或奈米纖維表面上PEO域的防附著(antifouling)性能，從而增強抗凝活性，避免血栓形成。與PPP陰性對照相比(APTT為36.0s；TT為10.1s)，CNF1提供的最大APTT和TT凝血時間分別為49.8秒及17.0秒。本發明發現奈米纖維塗層中高程度的MWCNT摻雜對凝結時間沒有強烈的影響，這暗示大多數MWCNT被PEDOT：PSS薄層很好地覆蓋。此外，本發明透過使用UV-Vis光譜法定量(圖6c)曝露於RBC懸浮液之後在540nm處上清液的吸收度差異，從而證實了NF和CNF1纖維樣品的血液相容性，其與陽性對照(曝露於去離子水以達到100%溶血)有關。當與圖6c插圖中的觀察結果進行比較時，與陰性對照(曝露於PBS)相比，RBC懸浮液中不存在CNF1不會導致任何明顯的溶血作用(溶血百分比約為3%)，NF纖維樣品引起輕微溶血，溶血百分比低於9%。在調查使用MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的血液凝結及溶血作用時，表面電位測量(streaming potential measurement)可以提供有關表面電荷(界達電位(zeta potential))及所製備樣品的等電點的信息。如圖6d所示，所有奈米纖維塗層(NF、CNF1、CNF2、CNF3)在pH2至9的寬廣範圍內均具有負的界達電位。這些結果表 明，MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層的界達電位接近於現有技術所知的抗凝肝素(-39mV)和帶負電荷的RBC(-17mV)，從而提供了預期的良好抗凝性能和血液相容性。
除了使用PPP測試評估血液凝結時間外，黏附血小板的數量是另一個與PRP黏附樣品的抗凝性能有關的指標。為了更能看見不透明的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層上的小血小板(1.5-3μm)，本發明進行了鈣黃綠素-AM染色以研究血小板代謝活性的綠色螢光影像。如圖7所示，所有奈米纖維塗層(NF、CNF1、CNF2、CNF3)上黏附的代謝活性血小板的數量均遠低於氧化銦錫(ITO)玻璃和TCPS上的數量，這指出較低量的黏附的血小板將直接降低釋放在一系列複雜的化學反應中共同起作用的多種凝血因子的可能性，從而降低因凝結而導致透析膜衰竭的風險。
為了進一步研究表面化學對PEDOT：PSS奈米纖維塗層頂部的血小板形態的影響，利用XPS獲得了NF、CNF1、CNF2及CNF3的高解析度核心能譜(S2p)，然後確定了當在PEO/PEDOT：PSS基材中混合不同重量百分比的MWCNT時，表面組成中PSS/PEDOT比例的變化，同時還獲得了MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維上的PEDOT及PSS鏈的相分離於分子能階(molecular level)的相關訊息(圖8，表二)。使用與PEDOT：PSS材料相同的分析方法，XPS S2p核心能譜的反捲積使本發明能夠測量這些四元複合奈米纖維系統中PSS/PEDOT組成比的變化。透過對PSS及PEDOT鏈的綜合評估(具有相應的S 2p3/2和S 2p1/2波峰)，NF的PSS/PEDOT比例1.71急劇增加至CNF1、CNF2、及CNF3分別為2.23、2.03和2.70，表示某些類肝素的PSS聚合物已經相分離到奈米纖維的表面，從而導致血小板黏附程度的顯著降低。
Figure 109114735-A0305-02-0025-4
綜合電特性、黏合強度、抗凝血能力和血液相容性，本發明得出以下結論，PES膜上的CNF1塗層表現出優化的性能，可隨後應用於血液透析。在這個概念驗證的實施例中，本發明首先將CNF1塗層和Ag/AgCl電極(Ag/AgCl墨水，ALS)沉積在PES膜上(分子量截斷值：30kDa)形成CNF1系的血液透析，然後將該膜過濾器組裝到實驗室規模的單膜透析系統中(圖9a)，其中有效面積為3.3cm2的透析膜被設計為分隔成兩個獨立的內部循環隔室。如圖9b所示，從包含50mL特定PBUT溶液(表示為PBUT側緩衝液)的容器中抽出一內部循環流，並使其通過膜過濾器的左側(左側線)；從另一個盛有50mL PBS緩衝溶液的容器(稱為PBS側緩衝液)中抽出另一個內部循環流，並使其通過膜過濾器的右側(右側線)；透過在透析膜上使用交替的相反流向，所有溶液的流速保持在50mL min-1。PEDOT：PSS導電性高分子具有作為偽電容器(pseudocapacitor)材料的良好性能，這意味著在電解質中PEDOT：PSS奈米纖維表面附近可以促進電荷轉移，增進吸附，pH值變化及氧化還原反應。由於PBUT與蛋 白質之間可能存在靜電作用，因此本發明希望利用CNF1使如此的PEDOT：PSS行為發揮重要功效，以增進BSA的排斥率並降低在電刺激操作下PBUT的蛋白質結合片段，其可具有四個連續步驟：第1步-與BSA結合的PBUT在pH 7.4顯示負電荷，並分散在PBUT側。步驟2-CNF1裝置提供靜電吸引力，以促進在電刺激操作下(0至3V之間，較佳為0至+0.8V之間)在塗層表面上吸附淨負電荷的BSA蛋白；步驟3-CNF1裝置在CV掃描時(-3至+3V，較佳於-0.8至+0.8V之間)電性消除PBUT與BSA之間的靜電結合，從而提高PBUT的清除率；步驟4-CNF1裝置提供靜電排斥力，以在電刺激操作期間(在-3至0V之間，較佳於-0.8至0V之間)增加PBUT側中的BSA保留度(圖9c)。圖9d和9e呈現了有機生物電子血液透析裝置(具有兩電極裝置系統)的實驗裝置的照片，其通過蠕動泵連接，蠕動泵控制PBUT側和PBS側緩衝液的流速。所有容器均保持在37℃的水浴中。為了證實電刺激電位不會導致細胞活性的急劇下降，本發明進行了台盼藍(trypan blue)染料排斥試驗，以評估系統在模擬透析治療的4小時內對THP1白血病細胞(一種白血球細胞株)的生物相容性。細胞活性測試結果證實，示範CNF1系的血液透析裝置在電刺激操作4小時(掃描速度為100mV s-1時，CV掃描在-3至+3V之間，較佳於-0.8至+0.8V之間)，可以保持良好的生物相容性，細胞活性大於90%(圖9f)。
應注意的是，透析膜可為傳統的透析膜，除了聚醚碸膜，可另包含三醋酸纖維膜、乙烯-乙烯醇膜、聚丙烯腈膜、聚酯聚合物合塑膜(polyester polymer alloy membrane)、聚甲基丙烯酸甲酯膜、聚碸膜、再生纖維膜、或二醋酸纖維膜。
應注意的是，輔助電極及參考電極可為傳統使用的輔助電極及參考電極，除了Ag/AgCl電極外，可另包含銀電極、金電極、鉑電極、銥電極、鉑/銥合金電極、氧化銥電極、鈦電極或氮化鈦電極。
為了檢驗使用CNF1塗層對血液透析應用的真正影響，本發明開發了一種新穎的有機BEI電子系統作為單膜血液透析裝置，以進一步研究四種不同尿毒素的清除率：三種PBUT(PC、IS、HA)及一種非PBUT(CRT)的小分子；這些尿毒素的化學結構和理化性質總結在圖10a和10b中。使用MarvinSketch 6.2.2(ChemAxon Kft，布達佩斯，匈牙利)計算PC、IS、HA及CRT的物化性質。反映***毒素分子量的極性表面積(PSA)，其依IS(79.39Å2)，HA(66.40Å2)，CRT(56.19Å2)及PC(20.23Å2)的順序減小；在pH 7.4的淨電荷，反映***毒素不同化學結構，按CRT(+0.03)>PC(-0.01)>IS(-0.89)>HA(-0.99)的順序降低-CRT的淨電荷和PC幾乎為零，暗示最小的靜電相互作用。為了優化用於血液透析治療的CNF1系的裝置，本發明首先探索了CNF1的電紡絲時間(0、5、10、20分鐘)對用於去除PC的透析性能(清除率和透析率)的影響，其中尿毒素的“清除率”和“相對比率”之和為100%。在圖10c和10d中，雖然PES膜(電紡絲時間為0分鐘)相較於所有CNF1樣品表現出較高的PC去除率(PBUT側的相對比例(48.8%)；PBUT側的清除率(51.2%)，在PBS側的透析率(3.4%))，但導電的CNF1可能還具有其他功能：由於消除了電刺激操作過程中的PBUT和蛋白質之間的靜電作用，使得PBUT與蛋白質片段的結合率最小化。因此，在考慮使用BEI系的血液透析裝置的可能性時，透析4小時後，CNF1的電紡絲10分鐘可以提供最佳的PC去除效率(PBUT側的相對比率(47.8%)；PBUT側的清除率(52.2%)；在PBS側的透析率(1.7%))。如圖10e-g所示，由於PC本質上具有更強的吸附 能力(例如，更強的π-π反應，較弱的負-負靜電排斥作用)，PES膜及CNF1提供的PC清除率比IS，HA及CRT高得多(***溶質含量更低)。然而，由於3.3cm2的有效透析面積是小的，因此本發明對所有溶質觀察到相似的透析率(約1.2%-4.4%)。
在研究電刺激減弱PBUT與蛋白質結合的作用之前，本發明首先進行了4小時的CV掃描，以研究CNF1系的血液透析裝置的長期穩定性。這種穩定性取決於透析過程中CNF1氧化還原行為的可逆性(圖11)。圖11a-c顯示了在準備好的PC溶液(50ppm)、IS溶液(50ppm)及PBS緩衝液中，電刺激操作期間(100mV s-1的掃描速率下，CV掃描在-3至+3V之間，較佳在-0.8至+0.8V之間進行掃描)的電流密度，分別用於有效面積為3.3cm2的CNF1系的血液透析裝置。在圖11a和11e-i中，CV曲線在從0到1，2，3，4小時的電刺激操作期間，電流密度範圍(△J)從0.080到0.071、0.069、0.065和0.057mA cm-2逐漸衰減。長期電刺激操作後PBS緩衝液中△J值呈下降趨勢，這暗示電流密度的變化率似乎有所降低(PC處理-28.5%；PBS處理-26.4%)，這是因為CNF1內的捕獲離子抑制了離子遷移(圖11a，11c和11d)；然而，圖11b和11d顯示，用IS溶液處理導致DJ值的增加趨勢，這暗示CNF1的電流密度變化率似乎從0增加到+69.4%，這可能是由於以IS溶液處理時選擇性去除絕緣PSS或摻雜水平的提高。
結果表明，CNF1系的血液透析裝置可以在透析4小時內提供電刺激操作的長期穩定性。考慮到血清白蛋白(serum albumin)的正常濃度範圍(1-50g L-1)，本發明透過離心超濾(具有截留分子量為30kDa的膜)在各種含量的BSA存在下使用50ppm的PC、IS、HA及CRT尿毒素進行了全面的蛋白質結合率研究(4、20和40g L-1)。圖12顯示大多數CRT尿毒素是游離的，這意味著極低的蛋白質結合率(1.0%-2.1%)，這可歸 因於回收率大於97.9%的Vivaspin 2裝置。然而，在BSA濃度範圍內(PBS緩衝液中4-40g L-1)，PC與BSA的結合強度(估計的蛋白質結合率：89.4%-94.4%)較PC與IS(估計的蛋白質結合率：31.3%-74.1%)及PC與HA更為牢固(估計的蛋白質結合率：18.3%-36.9%)。因為4g L-1的BSA接近模擬血液中的正常含量(1.5g L-1尿素，0.04g L-1溶菌酶及1g L-1 BSA)，所以具有濃度為4g L-1的BSA溶液被選為進行後續的透析實驗。
最後，準備了BSA(4g L-1)和50ppm PBUT(例如PC或IS)的預結合溶液，然後進行約900 CV循環(在-3至+3V之間，較佳在-0.8和+0.8V之間；掃描速率：100mV s-1)的電刺激，透過利用CNF1系的血液透析裝置(稱為“CNF1裝置”)透析處理4小時，以得到BSA保留值(在PBUT側)，游離PBUT的變化(在PBUT側)及透析率(在PBS側)，並與利用PES膜裝置(表示為“PES裝置”)及利用帶有電刺激的CNF1(表示為“CNF1-R”裝置)測量上述的結果相比較。如圖13a所示，在每個時間點(t=0、1、2、3及4小時)，在透析處理的4小時內，從PBUT側容器中收集了PBUT-BSA溶液。將樣品填充到離心管柱裝置(帶有30kDa截留分子量過濾器)中，以從所收集的PC-BSA溶液(或IS-BSA溶液)中獲得游離PC(或游離IS)溶液，其中游離PC(或游離IS)的比例是根據管柱底部中的溶液估算的；透過從管柱頂部回收並收集目標溶液來估算相對應的BSA保留值。在圖13b和13c中，CNF1裝置的BSA吸附量比PES裝置高，因此PBUT側的BSA保留量相對較低(PC-BSA溶液為79.3%；IS-BSA溶液為88.4%)，但PES膜的BSA保留量較高(PC-BSA溶液為82.7%；IS-BSA溶液為91.0%)；然而，無論在本實施例中使用哪種PC-BSA溶液或IS-BSA預結合溶液，CNF1-R裝置都會提供額外的靜電排斥力、或在BSA及奈米纖維表面之間產生外部電荷干擾。因此，BSA的吸附度會隨著電刺激處理 時間的增加而增加，然後會被PBUT側的軸向流同時去除，從而保留了更大的BSA在PBUT側的保留值(PC-BSA溶液為97.6%；IS-BSA溶液為99.3%)。
值得注意的是，使用靜態CNF1和CNF1-R裝置設置來研究電刺激對PBUT的蛋白質結合百分比的影響，本發明證實了CNF1-R裝置具有將蛋白質結合率從CNF1的89.5%降低至87.2%的能力(圖14)。對於透過動態透析測量游離PBUT比例，如果在電刺激操作過程中游離PC與膜表面之間出現排斥現象，則會導致游離PC比例改變為正值；相對地，改變的游離PC比率為負值將意味著某些吸附或透析現象可能起著主導作用，同時降低該系統中新近的游離PBUT。如果PC-BSA結合的分離速率(dissociated rate)小於PC的清除速率，則本發明還觀察到改變的游離PC比率呈負值的下降趨勢。例如，CNF1-R裝置的游離PC比率下降趨勢(-9.1%)較CNF1和PES裝置(分別約為-6.8%及-8.5%)展現出更大的下降趨勢，這是由於游離態PC在MWCNT/PEDOT：PSS過濾器表面的吸附現象更大或在PBS側的透析率更高(圖13d)。與之形成鮮明對比的是，CNF1-R裝置顯示出比其他裝置(CNF1約為-4.2%；PES約為-7.4%)更小的游離IS變化率(-3.5%)，這是由於在電刺激操作過程中過濾器表面發生了更大的靜電排斥作用(圖13e)。這些發現與尿毒素的清除率和物化特性一致(分別為圖10e-g及圖10b)，表示CNF1裝置對PC的清除率(42.4%)較其對IS的清除率高(3.4%)，這是由於PC與表面之間更強的π-π作用和較弱的負-負靜電排斥作用所致。如圖13f及13g所示，當透過各種透析裝置分析PBUT的透析率時，儘管PES裝置表現出比其他所有裝置更高的透析率(PC為2.4%；IS為3.7%)，但結果暗示透析率提高的可能性(PC透析率從0.6%增至0.9%；IS透析率從1.2%增至1.8%)是由於當利用CNF-1 R裝置(僅具有3.3 cm2的小有效面積)於電刺激操作下，使用CNF1-R裝置時PBUTs游離片段的有效增加所致。該結果是高度可重製的。值得注意的是，CNF1系的血液透析裝置的一個優點是，它可以串聯連接(PBUT側)到傳統人造腎臟的前端，並提供電觸發使已結合的蛋白質與PBUT的分離，從而彌補了兩者之間的表現不足。
《結論》
本發明已經開發了在PES透析膜上導電的MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層，其作為BEI系的血液透析裝置用於自透析流體有效的移除PBUTs且透過電觸發使已結合的蛋白質與PBUT的分離。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層是由一系列具有不同組成分的混合物(MWCNT、PEDOT：PSS，PEO、GOPS)的四元共混溶液製備而成，然後透過針式電紡絲製成，並且深入研究材料設計及設備工程。這些MWCNT/PEDOT：PSS複合奈米纖維是由於GOPS分別作為熱交聯劑和黏合促進劑，故可在PES透析膜上具有長期耐水性和高黏附強度。在PEDOT：PSS奈米纖維中添加MWCNT導致了MWCNT/PEDOT：PSS複合奈米纖維具有增強的導電率和電化學特性，從而促進了BEI裝置中有效的電刺激操作。MWCNT/PEDOT：PSS奈米纖維塗層具有很高的血液相容性，其特點是具有良好的抗凝血能力、較低的血小板黏附/樹突形成、以及對RBC的溶血作用可忽略不計。經過優化的CNF1奈米纖維塗層可用於新型單膜血液透析裝置，並研究三種PBUT(PC、IS及HA)和一種非PBUT(CRT)的去除效率，並且還可以利用電刺激的效果研究其與蛋白質BSA的結合效果。最重要的是，這些結果證實，在電刺激操作下，CNF1-R裝置不僅可以提供具有長期穩定性的高PC去除率，而且在模擬透析4小時後仍具有較高 的BSA保留率。因此，在開發下一代生物電子藥物時，它們具有用於血液透析應用的潛力。為了獲得更強大的血液透析治療平台以提供更高的整體透析性能，在未來的應用中，可以將這種CNF1-R裝置設計為與傳統人造腎臟裝置串聯連接的設置，從而提高血液再生性能，以去除大多數的尿毒素。
所有揭露於本發明書之特徵係可使用任何方式結合。本說明書所揭露之特徵可使用相同、相等或相似目的的特徵取代。因此，除了特別陳述強調處之外，本說明書所揭露之特徵係為一系列相等或相似特徵中的一個實施例。
此外，依據本說明書揭露之內容，熟悉本技術領域者係可輕易依據本發明之基本特徵，在不脫離本發明之精神與範圍內，針對不同使用方法與情況作適當改變與修飾，因此，其它實施態樣亦包含於申請專利範圍中。

Claims (19)

  1. 一種製備導電性高分子的方法，包含：(a)提供一包含奈米碳管及(3-環氧丙氧丙基)三甲氧基矽烷的PEDOT：PSS溶液；(b)將該PEDOT：PSS溶液與一添加劑溶液混合以獲得一四元混合溶液；及(c)將該四元混合溶液以電紡絲製程形成該導電性高分子，其中，以該四元混合溶液的總重為基礎，該添加劑溶液係佔5~30wt%，其中，該添加劑溶液包含聚氧化乙烯溶液。
  2. 如請求項1所記載之方法，其中以該PEDOT：PSS溶液總重為基礎，該奈米碳管係佔1~3wt%。
  3. 如請求項1所記載之方法，其中以該PEDOT：PSS溶液總重為基礎，該(3-環氧丙氧丙基)三甲氧基矽烷係佔1~10wt%。
  4. 如請求項1所記載之方法，在該(c)步驟後，更包含對該導電性高分子進行熱處理。
  5. 如請求項4所記載之方法，其中該熱處理係以80~150℃進行。
  6. 如請求項4所記載之方法，其中該熱處理係進行至少1小時。
  7. 如請求項1所記載之方法，其中該奈米碳管為多壁奈米碳管。
  8. 如請求項1所記載之方法，其中該PEDOT與該PSS之重量比為1：2.5~1：6。
  9. 一種導電性奈米纖維塗層，其係由請求項1~8之任一項所製備。
  10. 一種生物電子介面裝置，包含：透析膜；輔助電極，其塗佈於該透析膜上；及請求項9之導電性奈米纖維塗層，其作為工作電極塗佈於該透析膜上。
  11. 如請求項10所記載之裝置，其中該透析膜包含聚醚碸膜、三醋酸纖維膜、乙烯-乙烯醇膜、聚丙烯腈膜、聚酯聚合物合塑膜(polyester polymer alloy membrane)、聚甲基丙烯酸甲酯膜、聚碸膜、再生纖維膜、或二醋酸纖維膜。
  12. 如請求項10所記載之裝置，其中該輔助電極包含Ag/AgCl電極、銀電極、金電極、鉑電極、銥電極、鉑/銥合金電極、氧化銥電極、鈦電極或氮化鈦電極。
  13. 如請求項10所記載之裝置，更包含塗佈於該透析膜上的參考電極。
  14. 如請求項13所記載之裝置，其中該參考電極包含Ag/AgCl電極、銀電極、金電極、鉑電極、銥電極、鉑/銥合金電極、氧化銥電極、鈦電極或氮化鈦電極。
  15. 一種移除親蛋白尿毒素的方法，包含：(a)將一生物流體樣品導入如請求項10~14任一項方法所獲得的生物電子裝置中，以干擾蛋白質與生物電子介面裝置表面的結合；及提供一電刺激以降低該親蛋白尿毒素與該蛋白質之結合率。
  16. 如請求項15所記載之方法，其中該電刺激包含一循環伏安法或一正負電位轉換的方法。
  17. 如請求項16所記載之方法，其中該電刺激所利用之電壓範圍為-3至+3V。
  18. 如請求項15所記載之方法，其中該電刺激增加該生物流體中蛋白質的保留。
  19. 如請求項15所記載之方法，其中該電刺激增加該親蛋白尿毒素的透析及吸附量。
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