RU2811996C1 - Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА - Google Patents

Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА Download PDF

Info

Publication number
RU2811996C1
RU2811996C1 RU2023120890A RU2023120890A RU2811996C1 RU 2811996 C1 RU2811996 C1 RU 2811996C1 RU 2023120890 A RU2023120890 A RU 2023120890A RU 2023120890 A RU2023120890 A RU 2023120890A RU 2811996 C1 RU2811996 C1 RU 2811996C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sat
foot
mouth disease
disease virus
genotype
Prior art date
Application number
RU2023120890A
Other languages
English (en)
Inventor
Максим Игоревич Доронин
Дмитрий Валерьевич Михалишин
Наталия Николаевна Луговская
Алексей Валерьевич Борисов
Алексей Владимирович Константинов
Татьяна Владимировна Оковытая
Ольга Ивановна Ручнова
Анастасия Александровна Харитонова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ")
Application granted granted Critical
Publication of RU2811996C1 publication Critical patent/RU2811996C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии. Описана тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА. Технический результат заключается в разработке чувствительной и специфичной против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV тест-системы, предназначенной для определения титра антител против указанного антигена методом жидкофазного ИФА. 1 з.п. ф-лы, 3 ил., 6 табл., 6 пр.

Description

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии, в частности, созданию тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА.
По-прежнему ящур распространен в мире и причиняет значительный экономический ущерб. Возбудителем данного заболевания является РНК(+)-содержащий вирус порядка Picornavirales семейства Picornaviridae рода Aphthovirus с длиной нуклеиновой кислоты около 8500 н.о. [1, 2]. При репродукции вируса ящура в биологических системах формируются 146S компонент (полные частицы, основной иммуногенный компонент), состоящий из одной молекулы вирусной РНК и 60 копий полипептида, каждая из которых представлена комплексом белков VP1-VP2-VP3-VP4 [1].
Существует 7 серотипов ящура: О, А, С, Азия-1, SAT-1, SAT-2 и SAT-3. Каждый серотип генетически разделен на различные топотипы, генетические линии и сублинии. Различия между ними определяют при анализе нуклеотидной последовательности 1D-гена (белок VP1), который характеризуется высокой геномной и антигенной вариабельностью [2]. В пределах семи серотипов были описаны более 60 генетических линий и сублиний. Антитела против одного серотипа не обеспечивают иммунную защиту против другого серотипа и даже многих других генетических линий [3, 4].
В геноме вируса ящура в процессе репродукции и смены хозяина возникают мутации, что приводит к появлению новых генотипов [5, 6]. Одна или несколько аминокислотных замен на поверхности вирусных частиц могут привести к изменению распознавания и использования рецепторов. В результате один и тот же вирус будет приобретать способность проникать в клетки с использованием альтернативных рецепторов [7].
Наиболее вариабельным считается поверхностный протеин VP1 вируса ящура. Его самыми вариабельными областями являются участки 40-60, 130-160 и 190-213 а.о. Участок поверхностного белка VP1 в регионе 130-160 а.о. отличается высокой вариабельностью, поскольку участвует в процессе связывания с рецепторами клетки-хозяина [5, 7]. Изменчивость данного региона дает возможность вирусу ящура взаимодействовать с рецепторами клеток разных типов и облегчает переход от одного вида хозяина к другому [8, 9, 10].
Для вируса ящура серотипа SAT-2 характерна генетическая изменчивость, а именно он включает в себя следующие 14 топотипов (I-XIV), внутри которых нет разделения на генетические группы. Такое высокое генетическое и антигенное разнообразие приводит к проблемам в специфической профилактике ящура при применении культуральных инактивированных противоящурных вакцин, а также затрудняет штаммоспецифическую диагностику выделенных изолятов вируса ящура и проведение ретроспективного анализа. В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики в отношении вируса ящура серотипа SAT-2.
Вспышки ящура серотипа SAT-2 регистрируются на территории Африканского континента. Преимущественно эпизоотическая ситуация связана с генотипами SAT-2/IV/Alx-12 и SAT-2/IV/Lib-12, которые распространены в странах Северной Африки, в частности, в Египте, где вспышки отмечали в период с 2012 по 2022 гг.и Либии (2012 г.). На территории Западной Африки, в частности в Камеруне (2014 г. ), Нигерии (2019-2021 гг.), также преимущественно распространены изоляты вируса ящура генотипов SAT-2/IV/Alx-12 и SAT-2/IV/Lib-12. Соответственно, в указанных странах проводились мероприятия по ликвидации и борьбе с ящуром указанных генотипов.
При этом постепенно с 2012 г. в странах Африканского континента и преимущественно на Востоке материка (Бурунди, Кения, Танзания и другие страны) стали появляться изоляты вируса ящура нового топотипа IV. Так, в Кении уже в 2012 и 2013 гг. выделили представителей генотипа SAT-2/IV, далее в Танзании в 2013 г. была сильная вспышка, вызванная вирусом данного варианта. В 2017 г. сложная эпизоотическая ситуация по ящуру генотипа SAT-2/IV отмечали в Кении, в 2020 г. - в Уганде, в 2022 г. - в Бурунди. Прогнозы экспертов неутешительны в отношении распространения данного варианта вируса ящура. Следует отметить, что имеются риски заноса изолятов данного серотипа на территорию Российской Федерации и других стран.
Степень изменчивости внутри одного топотипа IV высокая, поэтому возникает острая необходимость в изучении свойств появляющихся штаммов вируса ящура и изготовления на его основе вакцинных препаратов и диагностических тест-систем [11, 12, 13].
В настоящее время известны производственные штаммы вируса ящура типа SAT-2, которые используются при производстве средств специфической профилактики ящура и при ретроспективной диагностике:
- штамм («SAT-2/ZIM/14/2002») (генотип SAT-2/I),
- штамм («SAT-2/ZIM/5/81») (генотип SAT-2/II),
- штамм («SAT-2/BOT/P3/98») (генотип SAT-2/III),
- штамм («SAT-2/ETH/1/90») (генотип SAT-2/IV),
- штамм («SAT-2/GHA/2/90») (генотип SAT-2/V),
- штамм («SAT-2/GAM/8/79») (генотип SAT-2/VI),
- штамм («SAT-2/SAU/6/2000») (генотип SAT-2/VII),
- штамм («SAT-2/RWO/1/00») (генотип SAT-2/VIII),
- штамм («SAT-2/KEN/2/84») (генотип SAT-2/IX),
- штамм («SAT-2/UGA/19/98») (генотип SAT-2/X),
- штамм («SAT-2/ANG/4/74») (генотип SAT-2/XI),
- штамм («SAT-2/UGA/51/75») (генотип SAT-2/XII),
- штамм («SAT-2/ETH/2/2007») (генотип SAT-2/XIII),
- штамм («SAT-2/ETH/2/9») (генотип SAT-2/XIV).
Изолят «SAT-2/KEN/19/2017» вируса ящура был выделен от крупного рогатого скота на территории населенного пункта Rongai в регионе Nakuru Республики Кения в 2017 г. и поступил в ФГБУ «ВНИИЗЖ» для проведения научных исследований в 2022 г.
По результатам сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей выделенный изолят принадлежит к топотипу IV серотипа SAT-2 вируса ящура, который значительно отличается от производственных штаммов вируса ящура типа SAT-2, в том числе штамма «SAT-2/ETH/l/90» (генотип SAT-2/IV).
В ФГБУ «ВНИИЗЖ» данный изолят был адаптирован к различным чувствительным клеточным линиям, в том числе, к монослойной и суспензионной перевиваемой клеточной линии почки новорожденного сирийского хомячка BHK-21/SUSP/ARRIAH и получен штамм «SAT-2/Кения/19/2017» (генотип SAT-2/IV). Данный штамм был депонирован Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вирусов ящура и других патогенов животных (ГКШМ) ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером: №452 - деп / 23-2 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ». Филогенетическая принадлежность штамма «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура представлена на фиг. 3.
Филогенетическое дерево выведено с использованием программы MEGA и алгоритма Neighbor-Joining. Процент повторяющихся ветвей, в которых связанные таксоны сгруппированы вместе в тесте начальной загрузки (1000 повторов), показан рядом с ветвями. Эволюционные расстояния были рассчитаны с использованием метода Maximum Composite Likelihood и выражены в единицах количества замен оснований на сайт. Этот анализ включал 16 нуклеотидных последовательностей. Все позиции, содержащие пробелы и отсутствующие данные, были удалены (вариант полного удаления). В окончательном наборе данных было всего 642 позиции. Эволюционный анализ проводился в MEGA 7.
Учитывая интенсивные торговые связи между Российской Федерацией и странами Африки и Ближнего Востока, вероятность риска заноса ящура на территорию нашей страны является очень высокой. Иммунизация является эффективным инструментом борьбы с болезнью. В связи с распространения в мире генотипа SAT-2/IV вируса ящура и необходимостью защиты животных от него в ФГБУ «ВНИИЗЖ» разработали вакцину, в состав которой входит антиген вируса ящура данного генотипа. В результате возникла необходимость создания диагностической тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА.
Защита от ящура после вакцинации определяется уровнем специфических антител в сыворотке крови животных [14-19]. Уровень гуморального иммунитета вакцинированного поголовья определяется путем выявления антител, специфичных к 146S частицам вируса ящура. В соответствии с рекомендациями МЭБ (OIE) [2], для определения иммунного статуса животных применяют реакцию микронейтрализации (РМН) и иммуноферментный анализ (ИФА). РМН считается чувствительной и специфичной, однако проведение анализа имеет ряд следующих ограничений: 1) большая продолжительность времени постановки реакции (не менее 72 часов), 2) высокая себестоимость процедуры, связанная с применением чувствительной клеточной линии, СО2-инкубатора, 3) использование неинактивированного вируса ящура, который является биологическим агентом II группы опасности и предполагает проведение работ только в лабораториях уровня BSL-3.
В свою очередь, ИФА обладает многими преимуществами, включая экспрессность, высокую специфичность и чувствительность, пригодность для крупномасштабного скрининга полевых образцов и отсутствие требований к специальным лабораторным условиям, например, культуре клеток или среде углекислого газа, а также не предполагает проведение работ с микроорганизмами повышенного уровня опасности [20]. Исходя из этого, ИФА целесообразно применять для исследования уровня гуморального иммунитета у вакцинированных животных.
В зависимости от фазы, в которой находятся иммунные комплексы различают твердофазный и жидкофазные варианты ИФА. Особое внимание уделяют жидкофазному блокирующему непрямому «сэндвич»-варианту ИФА, который характеризуется рядом преимуществ: 1) данный анализ максимально приближен к классической РМН, поскольку формирование иммунного комплекса происходит в жидкой фазе как в наиболее естественных условиях; 2) эпитопы на поверхности вириона наиболее доступны в пространстве для специфичных антител, что позволяет повысить чувствительность и специфичность реакции.
На мировом рынке в настоящее время имеются европейские наборы для детекции антител против вируса ящура типа SAT-2 - IZSLER (Италия) и PrioCHECK (Нидерланды).
Тест-система в наборе IZSLER предназначена для детекции противоящурных антител с помощью твердофазного прямого «сэндвич»-варианта ИФА [21]. Достоинством данного набора является применение моноклональных антител, однако они были получены ранее 2017 года (период, когда появился производственный штамм «SAT-2/Кения/19/2017») и не могут с высокой достоверностью и точностью детектировать специфические антитела в сыворотках крови животных. Специфичность и чувствительность указанной тест-системы для выявления антител против вируса ящура генотипа SAT-2/IV ниже 25%, что подтверждают данные РМН в чувствительной перевиваемой монослойной клеточной линии почки свиньи IB-RS-2. Таким образом, применяемая тест-система не позволяет получать достоверных результатов именно в отношении изолятов и штаммов вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
Наиболее близким прототипом для разработанной нами тест-системы является тест-система PrioCHECK (Prionics Lelystad B.V., Netherlands) для выявления антител к вирусу ящура типа SAT-2 [22].
Комплектующие для соответствующего набора представлены ниже:
Компонент 1 - Планшеты иммунологические.
Компонент 2 - Конъюгат (30х). Разбавленный конъюгат не стабилен, готовят непосредственно перед применением. Компонент 3 - Буфер для разведения (5х). Компонент 4 - Неиммунная сыворотка крови лошади.
Компонент 5 - Деминерализованная вода.
Компонент 6 - Промывочный буфер (200х).
Компонент 7 - Референтная сыворотка 1 (позитивная) (жидкая).
Компонент 8 - Референтная сыворотка 2 (менее позитивная) (жидкая).
Компонент 9 - Референтная сыворотка 3 (еще менее позитивная) (жидкая).
Компонент 10 - Референтная сыворотка 4 (отрицательный контроль) (жидкая).
Компонент 11 - Субстрат хромогена (ТМВ).
Компонент 12 - Стоп-раствор (1 N раствор серной кислоты). Данные отражены в инструкции производителя.
Данная тест-система включает в себя конъюгат, который представляет собой меченые моноклональные антитела против вируса ящура серотипа SAT-2, исходя из этого является типоспецифичной, но без более узкой дифференциации. Прототипная тест-система разработана была еще в конце 90-гг XX в. В ней применяются антитела против антигенов вируса ящура различных генотипов серотипа SAT-2. Изоляты и штаммы генотипа SAT-2/IV имеют существенные отличия от других линий серотипа SAT-2. Исходя из выше отраженного, прототипная тест-система не является высокочувствительной и специфичной по отношению к вирусу ящура генотипа SAT-2/IV. Данная тест-система выявляет антитела к данному генотипу не более, чем на 28%. Исходя из этого, требуется разработать чувствительную, специфичную тест-систему для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА.
Прототипная тест-система основана на твердофазном конкурентном «сэндвич»-варианте ИФА, однако эта форма удалена от РМН относительно возможностей улавливания антигенных сайтов по сравнению с жидкофазным вариантом ИФА.
Учитывая указанные ограничения в применении имеющихся тест-систем, в том числе наиболее близкого прототипа, для точного определения титра антител против вируса ящура генотипа SAT-2/IV, актуальной является разработка тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА с учетом выше приведенных недостатков.
На сегодняшний день с помощью жидкофазного блокирующего «сэндвич»-варианта ИФА с особенностями проведения реакции и определенным составом компонентов реакции разработаны «Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма А №2269/ВНИИЗЖ/2015 генотипа A/ASIA/G-VII в сыворотках крови животных после иммунизации», «Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма О №2047/Саудовская Аравия/2008 генотипа О/МЕ-SA/PanAsia2 в сыворотках крови животных после иммунизации» и «Способ быстрого количественного определения уровня гуморального иммунитета животных к штамму О №2311/Забайкальский/2016 генотипа O/ME-SA/Ind-2001 вируса ящура после вакцинации с помощью жидкофазного «сэндвич»-варианта ИФА» [23-25].
В настоящее время ветеринарная служба Российской Федерации не располагает современной отечественной тест-системой ИФА, которая позволила бы с высокой достоверностью определять титр антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV в сыворотках крови животных.
Целью изобретения является создание тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА.
Поставленная цель достигается тем, что предлагаемая тест-система содержит следующие иммуноспецифические компоненты с высокой степенью активности:
1) культуральный инактивированный лиофилизированный 146S компонент вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV;
2) сенсибилизирующие антитела - иммуноглобулины G кролика против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV;
3) детекторные антитела - иммуноглобулины G морской свинки против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV;
4) контроль 1 (сильноположительный контроль) - положительная сыворотка крови телят к 146S частицам вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с процентом ингибиции 80-100%;
5) контроль 2 (положительный контроль) - положительная сыворотка крови телят к 146S частицам вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с процентом ингибиции от 50,0% до 79,9%;
6) контроль 3 (отрицательный контроль) - сыворотка крови телят, не содержащая антитела к антигену вируса ящура;
7) блокирующая сыворотка крови;
8) антивидовой конъюгат - иммуноглобулины кролика против Ig G морской свинки, конъюгированные с ферментом (пероксидаза хрена).
Предлагаемая тест-система содержит неспецифические компоненты: буферный раствор на основе карбоната и гидрокарбоната натрия (рН 9,5-9,7), 20-кратный концентрат буферного раствора, хромогенный субстрат - диаммониевая соль 2,2'-азино-бис(3-этилбензотиазолин-6-сульфоната), «стоп»-раствор - 0,5%-ный раствор SDS.
Цель достигается благодаря тому, что метод жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА наиболее приближен к классической реакции микронейтрализации в культуре клеток IB-RS-2, поскольку все антигенные сайты 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV находятся в свободном состоянии в жидкой фазе, открыты для связывания со специфическими сенсибилизирующими и детекторными антителами. Реакция основана на взаимодействии иммуноглобулинов G исследуемой сыворотки крови животного и 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV в жидкой фазе с образованием иммунных комплексов. Проводится сенсибилизация лунок плоскодонного планшета антителами кролика против вируса ящура того же генотипа. Сенсибилизированные лунки обрабатывают с помощью блокирующей сыворотки крови, добавляют полученные иммунные комплексы из круглодонного планшета, инкубируют, вносят восстановленную из лиофильного высушенного состояния суспензию детекторных антител. Образовавшийся сложный иммунный комплекс выявляют с помощью антител против иммуноглобулинов G морской свинки, конъюгированных с пероксидазой хрена и хромогенного субстрата.
Технический результат от изобретения заключается в разработке чувствительной и специфичной против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV тест-системы, предназначенной для определения титра антител против указанного антигена методом жидкофазного ИФА на основе применения 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV и при получении иммуноспецифических компонентов реакции.
В отличии от прототипа в разработанной тест-системе применяется культуральный концентрированный в 600 раз инактивированный 146S компонент вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV, который представлен в виде лиофильно высушенной суспензии. Данный факт дает возможность определять титр антител против вируса ящура указанного генотипа с высокими показателями чувствительности (более 99%) и специфичности (100%), что на 72% выше по сравнению с наиболее близким прототипом. Кроме того, лиофилизированный компонент с протектором (2,4% хлорида натрия) остается стабильным не менее 4 лет по сравнению с антигеном в нативном состоянии, что является преимуществом в использовании данной тест-системы. Активность полученного 146S компонента вируса ящура генотипа SAT-2/IV составляет 1:5000.
В отличии от прототипа применяются сенсибилизирующие и детекторные антитела лабораторных животных, соответственно, высокоспецифичные по отношению к 146S частицам вируса ящура генотипа SAT-2/IV. Указанные в тест-системе ИФА иммуноглобулины G кролика и морской свинки против генотипа SAT-2/IV вируса ящура представлены в виде лиофильного компонента с протектором (2,4% хлорида натрия), что позволяет иммуноглобулинам G находится в стабильном состоянии не менее 4 лет и с активностью не менее 1:10000 и 1:5000, соответственно.
В отличии от прототипа сыворотки крови КРС, сильноположительный и положительный контроли получены против высокоочищенного концентрированного инактивированного 146S компонента вируса ящура генотипа SAT-2/IV, что позволяет достичь высокой специфичности и чувствительности при контроле работы тест-системы. Указанные компоненты представлены в виде лиофильно высушенных суспензий, что позволяет хранить их не менее 4 лет с сохранением высокой активности в ИФА. Для контроля 1 активность составляет не менее 1:6000, для контроля 2 - не менее 1:6000.
В отличии от прототипа для блокирования открытых сайтов связывания применяется очищенная фетальная сыворотка телят, белковые составляющие которой обеспечивают полное закрытие пустых участков на дне иммунологического планшета. Данный компонент также представлен в лиофильном виде с протектором (2,4% хлорида натрия), что позволяет хранить его в данном состоянии не менее 4 лет.
В отличии от прототипного варианта представленная тест-система предусматривает контроль антигена и конъюгата, что дает возможность учитывать фоновые значения и, тем самым, получать достоверные данные по значениям экстинкции и титру антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
В отличии от прототипа в предложенной тест-системе применяются антитела кроличьи к иммуноглобулину G морской свинки H&L (HRP), что позволяет повышать специфичность анализа и получать более достоверные результаты определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV в сыворотках крови животных. Активность конъюгата составляет 1:4000.
Разработанная тест-система основана на специфическом блокировании 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV антителами, содержащимися в исследуемой пробе сыворотки в жидкой фазе. Смесь «исследуемая сыворотка/антиген» переносят в лунки планшета, предварительно иммобилизованного сенсибилизирующими антителами кролика против штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV. Наличие антител к 146S частицам вируса ящура данного генотипа в исследуемой пробе будет выражаться в формировании иммунного комплекса и уменьшении количества свободного антигена, который связывается сенсибилизирующими антителами. Фиксированный в лунках антиген взаимодействует с детекторными антителами морской свинки, которые выявляются в реакции с иммунопероксидазным конъюгатом против иммуноглобулинов G морской свинки и последующим окрашиванием с помощью хромогенного субстрата. Интенсивность окрашивания обратно пропорциональна количественному значению выявленного титра антител животного. Интенсивность цветной реакции учитывают с помощью спектрофотометра.
Сущность изобретения отражена на графических изображениях:
Фиг. 1 - Седиментационный профиль 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV.
Фиг. 2 - Электрофореграмма для 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV в 12% полиакриламидном геле. Примечание: М - маркер белковый, 2-6 - номера фракций, которые соответствуют седиментационному профилю 146S частиц.
Фиг. 3 - Филогенетическая принадлежность штамма «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура генотипу SAT-2/IV.
Сущность изобретения пояснена в перечне последовательностей, в котором:
SEQ ID NO: 1 представляет последовательность нуклеотидов гена, кодирующего белок VP1 штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV вируса ящура;
SEQ ID NO: 2 представляет последовательность аминокислот белка VP1 штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV вируса ящура.
На подготовительном этапе исследования лиофилизированные иммуноспецифические компоненты тест-системы (антиген вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV, иммунопероксидазный конъюгат, положительные и отрицательный контроли, сенсибилизирующие и детекторные антитела) восстанавливают до необходимого объема деионизированной водой.
Проводят приготовление рабочих растворов.
Раствор №1 (солевой буферный раствор карбоната и гидрокарбоната натрия). Готовят по стандартной методике 50 мл раствора с водородным показателем 9,5-9,7.
Раствор №2 (Wash-раствор). Готовят 2 л стандартного буферного раствора TBS с добавлением 0,1% Tween-20 с водородным показателем 7,5-7,7. Рабочий Wash-раствор готовят разведением концентрата в 20 раз.
Раствор №3 (буфер для восстановления антител и конъюгата). Рабочий буферный раствор для разведения антител и иммунопероксидазного конъюгата готовится непосредственно перед использованием из рабочего Wash-раствора с добавлением 10% фетальной сыворотки телят.
Этапы проведения жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА для количественного определения уровня гуморального иммунитета против антигена вируса ящура штамма SAT-2/Кения/19/2017 генотипа SAT-2/IV представлены ниже.
1. Иммобилизация сенсибилизирующих антител против 146S частиц вируса ящура. Восстановленную суспензию сенсибилизирующих антител против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV готовят в разведении 1:10000 в солевом буферном растворе карбоната и гидрокарбоната натрия (раствор №1). Во все лунки иммунологического 96-луночного планшета вносят по 100 мкл суспензии данных антител, накрывают крышкой и инкубируют в течение 18 ч при температуре (2-4)°С.
2. Промывание лунок планшета осуществляют с использованием Wash-раствора 2 раза.
3. Образование иммунного комплекса в жидкой фазе. Готовят следующие разведения сывороток крови животных: 4,0; 5,0; 5,5; 6,0; 6,5; 7,0; 7,5; 8,0; 8,5;9,0; 10,0; 11,0; 12,0; 13,0 log2 SN50 (1:16-1:8192) в растворе №2. Для этого во все лунки планшета за исключением лунок H1-6, которые оставляют для контроля антигена (КА) и контроля конъюгата (КК), вносят по 0,047 см3 (47 мкл) буферного раствора и 0,003 см3 (3 мкл) пробы. В лунки H1-6 вносят по 0,05 см3 (50 мкл) буферного раствора. Испытуемые и контрольные пробы располагают на планшете согласно таблице 1. Положительной сыворотка считается при уровне гуморального иммунитета ≥5,0 log2SN50 (≥1:32).
В качестве контроля 1 используют сильноположительную сыворотку крови КРС/свиней против вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV - процент ингибиции (PI) 80-100%, контроля 2 - положительную сыворотку крови КРС/свиней против вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV - PI=50,0-79,9%, контроля 3 - нормальную сыворотку КРС/свиней - процент ингибиции <50%.
Во все лунки планшета добавляют по 0,05 см3 рабочего разведения антигена в растворе №2 в соответствии с разведением 1:3000. После перемешивания содержимого лунок планшета проводят в течение 1 часа при температуре (2-4)°С.
4. Улавливание антигена. В промытые сенсибилизированные лунки планшета вносят по 0,05 см3 смеси контрольных и испытуемых проб и 146S частиц, планшет закрывают крышкой и инкубируют в течение 60±2 мин при температуре (37±1)°С.
5. Промывание лунок планшета. Проводят, как представлено выше (п. 2). Процедуру повторяют 3 раза.
6. Внесение детекторных антител. Во все лунки планшета, за исключением лунок с КК (контроль конъюгата), куда добавляют по 0,05 см3 раствора №3, вносят по 0,05 см3 рабочего разведения детекторных антител (1:4000) в растворе №3. Планшет накрывают крышкой и инкубируют в течение 60±2 мин при температуре (37±1)°С.
7. Промывание лунок планшета. Проводят, как представлено выше (п. 2). Процедуру повторяют 3 раза.
8. Внесение конъюгата. Во все лунки планшета вносят по 0,05 см3 рабочего разведения конъюгата (1:4000) в растворе №3. Планшет накрывают крышкой и инкубируют в течение 60±2 мин при температуре (37±1)°С.
9. Промывание лунок планшета. Проводят, как представлено выше (п. 2). Процедуру повторяют 4 раза.
10. Проявление цветной реакции. Во все лунки планшета вносят по 0,05 см3 диаммониевой соли 2,2'-азино-бис(3-этилбензотиазолин-6-сульфоната), закрывают крышкой и выдерживают 15 минут при температуре (20±2)°С.
11. Торможение реакции. Реакцию останавливают добавлением в каждую лунку планшета 0,05 см3 0,5%-ного раствора SDS.
12. Определение значения экстинкции и титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV по данным ИФА. Сразу после остановки реакции измеряют значение декадного коэффициента экстинкции (ε) продуктов реакции в каждой лунке при длине волны 405 нм, используя спектрофотометр для микропланшетов с вертикальным лучом света. Значения г переводят в значение процента ингибиции (PI, %) по формуле:
PI (%)=(1-(εсывороткиКК)(εКАКК))×100,
где, εcыворотки - среднее значение декадного коэффициента экстинкции смеси сыворотки с инактивированным 146S компонентом вируса ящура генотипа SAT-2/IV;
εКА - среднее значение декадного коэффициента экстинкции контроля антигена;
εКК - среднее значение декадного коэффициента экстинкции контроля конъюгата.
Достоверность проводимого анализа с помощью предложенной тест-системы определяется при удовлетворении следующим критериям:
- разница между значениями εКА и εКК не менее 0,45 оптических единиц (о.е.);
- контроль 1 имеет значение PI>80%;
- контроль 2 имеет значение PI в пределах 50,0-79,9%;
- контроль 3 имеет значение PI<50%.
Сыворотки крови, для которых значение PI≥50%, считают положительными, содержащими антитела к 146S частицам вируса ящура генотипа SAT-2/IV. Значение PI<50% в сыворотке крови обследуемых животных является отрицательным. Исходя из полученных данных берут последнее разведение сыворотки, для которого процент ингибиции составляет ≥50%. Данное разведение считают титром антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV и выражают в log2SN50.
В результате проведенных исследований были оттитрованы оригинальные компоненты реакции. Активность детекторных антител в ИФА составила 1:5000, сенсибилизирующих антител - 1:10000, антивидового конъюгата - 1:4000; 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV - 1:5000, контроля 1-1:6000, контроля 2 - 1:6000. С использованием разработанной тест-системы проведено исследование образцов сывороток крови животных с определением титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV и проведен сравнительный анализ с результатами РМН в чувствительной перевиваемой монослойной клеточной линии почки свиньи (IB-RS-2) [2].
Разработанная тест-система дает возможность тестировать одновременно в формате одного 96-луночного планшета 6 проб сывороток в следующих разведениях, выраженных в двоичном логарифме: 4,0; 5,0; 5,5; 6,0; 6,5; 7,0; 7,5; 8,0; 8,5; 9,0; 10,0; 11,0; 12,0; 13,0 log2SN50 (1:16-1:8192).
Контроль суспензий 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV на специфичность.
Специфичность суспензий 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV определена с помощью ОТ-ПЦР с последующим секвенированием 1D-гена, соответствующего белку VP1, в котором наиболее часто возникают мутации. По результатам исследования нуклеотидной последовательности указанного гена была выявлена принадлежность штамма «SAT-2/Кения/19/2017» к генотипу SAT-2/IV. Расчет проводился в соответствии с Байесовской теорией вероятности. Специфичность подтверждена также в реакции связывания комплемента со штаммоспецифической сывороткой. Концентрация общего вирусного белка в исследуемом антигене вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» составила 2,25 мкг/мл, концентрация 146S компонента - 1,49 мкг/мл (66%). Данное содержание полных вирусных частиц (146S компонент) достаточно для проведения дальнейших работ по концентрированию и получению готового лиофильно высушенного антигена для изготовления тест-системы.
Штамм «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура серотипа SAT-2 относится к семейству Picornaviridae, роду Aphthovirus, виду Foot-and-Mouth Disease virus и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона иксаэдрическая, размер 24-25 нм. Вирион состоит из молекулы одноцепочечной молекулы РНК с позитивным смыслом, заключенной в белковую оболочку. Она состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.
Антигенные свойства
По антигенным свойствам штамм «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура относится к серотипу SAT-2. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой и не проявляет гемагглютинирующей активности. У переболевших животных в сыворотке крови образуются типоспецифические антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе (ИФА) и реакции микронейтрализации (РМН).
Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура ID-гена, кодирующего белок VP1, штамма «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура принадлежит к генотипу SAT-1/IV (Фиг. 1).
Антигенное родство (r1) штамма «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура изучено в РМН в перекрестном исследовании штамма со специфическими сыворотками, полученными на производственные штаммы вируса ящура.
Титр референтных сывороток крови КРС, полученных путем иммунизации животных моновалентными вакцинами из производственных штаммов вируса ящура серотипа SAT-2, против 102 ТЦД50 гомологичного и гетерологичного вируса определяли в РМН при перекрестном титровании, рассчитывая значения с использованием уравнения линейной регрессии, и выражали в lg. Значение r1 определяли, как антилогарифм разности lg титров сыворотки против гетерологичного и гомологичного вируса [7, 8, 9].
Значение r1 в РМН интерпретировали следующим образом:
при ≥0,3 - исследуемый и производственный штаммы вируса ящура являются близкородственными;
при <0,3 - исследуемый образец штамма вируса ящура отличается от производственного штамма.
Показатели антигенного родства при изучении штамма «SAT-2/Кения/19/2017» составили r1 от 0,02 до 0,25, а именно для штамма «SAT-2/ZIM/14/2002» (генотип SAT-2/I) - 0,23, для «SAT-2/ZIM/5/81» (генотип SAT-2/II) - 0,21, для «SAT-2/BOT/P3/98» (генотип SAT-2/III) - 0,22, для «SAT-2/ЕТН/1/90» (генотип SAT-2/IV) - 0,25, для «SAT-2/GHA/2/90» (генотип SAT-2/V) - 0,19, для «SAT-2/GAM/8/79» (генотип SAT-2/VI) - 0,15, для «SAT-2/SAU/6/2000» (генотип SAT-2/VII) - 0,10, для «SAT-2/RWO/1/00» (генотип SAT-2/VIII) - 0,14, для «SAT-2/KEN/2/84» (генотип SAT-2/IX) - 0,09, для «SAT-2/UGA/19/98» (генотип SAT-2/X) - 0,06, для «SAT-2/ANG/4/74» (генотип SAT-2/XI) - 0,18, для «SAT-2/UGA/51/75» (генотип SAT-2/XII) - 0,02, для «SAT-2/ЕТН/2/2007» (генотип SAT-2/XIII) - 0,13, для «SAT-2/ETH/2/9»1 (генотип SAT-2/XIV)-0,12.
Полученные данные свидетельствуют об отсутствии антигенного родства с производственными штаммами вируса ящура серотипа SAT-2. Гено- и хемотаксономическая характеристики
Штамм «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура является РНК(+) - содержащим вирусом с молекулярной массой 8,08×106 Д. Нуклеиновая кислота представлена одноцепочной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×106 Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP1, VP2, VP3 и VP4. Липопротеидная оболочка отсутствует.
Основным антигенным белком является VP1. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирусная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, выделяют РНК-зависимую РНК-полимеразу (3D-ген), участвующую в репликации РНК для сборки вирионов.
Физические свойства
Масса вириона составляет 8,4×10-18 г. Плавучая плотность 1,44 г/см3. Устойчивость к внешним факторам
Штамм «SAT-2/Кения/19/2017» вируса ящура устойчив к детергентам и органическим растворителям, таким как эфир, хлороформ, фреон, ацетон. Наиболее стабилен при рН 7,4-7,6. Сдвиги рН как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам (выше 38,3°С).
Дополнительные признаки и свойства инактивированной суспензии 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV
Иммуногенная активность - иммуногенен в составе инактивированной вакцины.
Антигенная активность - введение инактивированного вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» морским свинкам, кроликам, свиньям, овцам, КРС индуцирует образование вирусоспецифических антител.
Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.
Патогенность - инактивированный вируса ящура указанного штамма не патогенен для парнокопытных животных, новорожденных мышат, морских свинок.
Вирулентность - инактивированный вируса ящура указанного штамма не вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.
Стабильность неинактивированного вируса ящура - сохраняет исходные биологические свойства при культивировании в чувствительных биологических системах в течение 5 пассажей (срок наблюдения).
Сущность изобретения пояснена примерами его использования, которые не ограничивают объем изобретения.
Пример 1. Получение суспензии 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
Для получения суспензии 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV для изготовления тест-системы проводили суспензионное культивирование вируса в клеточной линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH в течение 13-14 ч с получением вирусной суспензии с титром инфекционной активности не ниже 6,5 lg ТЦД50/см3. Полученную вирусную суспензию инактивировали с помощью аминоэтилэтиленимина и осветляли полигексаметиленгуанидином.
Инактивированную культуральную суспензию, содержащую антиген вирус ящура, осветляли в течение 30 мин. при 6000 об/мин и 2-4°С. Надосадочную жидкость отбирали и добавляли в нее ПЭГ-6000 до конечной концентрации 8,5% и хлорид натри (сухой) до конечной концентрации 0,85%, интенсивно перемешивали и выдерживали при температуре 4±2°С в течение 24 часов. Вирусную суспензию осаждали при 6000 об/мин в течение 60 мин., осадок растворяли в 1/15 М фосфатном буферном растворе, концентрируя в 600 раз (1/600 от первоначального объема).
К полученному преципитату добавляли 50% хлороформа, интенсивно перемешивали и фракционировали с помощью центрифуги в течение 30 мин. при 3000 об/мин. Отбирали верхнюю водную фракцию, содержащую антиген вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017». Отбирали 100 мкл образца для последующего электрофоретического анализа в 12% полиакриламидном геле в денатурирующих условиях.
На следующем этапе проводили получение 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017», необходимого для иммунизации животных и получения антигена как одного из важнейших специфических компонентов ИФА.
Для выделения полных частиц с коэффициентом седиментации 146S готовили линейный градиент сахарозы с концентрациями 40 и 30%. Опалесцирующий слой, содержащий 146S компонент, располагается приблизительно в 40-30%-м слое сахарозы, которые отбирали и переосаждали с помощью ультрацентрифугирования в течение 4 часов при скорости 25000 об/мин. и температуре 4±2°С и ресуспендировали осадок в 1/15 М фосфатно-солевом буферном растворе.
Результаты спектрометрического исследования полученных фракций 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV в виде антигенного профиля представлены на фиг.1. Проведен электрофорез 146S частиц в 12% полиакриламидном геле в денатурирующих условиях (фиг.2), который подтвердил, что для исследований подходят по степени чистоты фракции №№2-6.
Пример 2. Получение гипериммунной сыворотки крови кроликов (сенсибилизирующие антитела) против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
Для получения специфических сывороток крови против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV использовали клинически здоровых кроликов средней упитанности массой 2,5-3,0 кг.
Для гипериммунизации животных применяли инактивированную суспензию 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV, полученную как описано в примере 1, из которой готовили эмульсию с использованием масляного адъюванта Montanide ISA-61 VG (в соотношении адъювант/антиген=60/40 по массе). Полученную вакцину вводили в мышцу задних конечностей кролика на 0, 14 и 28 дни в объеме 0,5 см3. Через 7 дней после последней иммунизации у кроликов отбирали кровь, содержащую сенсибилизирующие антитела, которую лиофильно высушивали и хранили при температуре (2-4)°С.
Пример 3. Получение гипериммунной сыворотки крови морских свинок (детекторные антитела) против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
Для гипериммунизации морских свинок использовали эмульсию из 146S частиц вируса ящура генотипа, полученного как описано в примере 1. Приготовление вакцины и схема иммунизации такая, как в примере 2.
Пример 4. Определение активности в ИФА суспензии 146S частиц вируса ящура генотипа, сенсибилизирующих и детекторных антител к нему.
Полученные образцы сывороток крови животных проверяли на активность и специфичность в жидкофазном варианте ИФА. Проведен подбор оптимальных рабочих разведений указанных компонентов для получения достоверных результатов в ИФА. Полученные данные анализа представлены в таблицах 2, 3, 4.
Для анализа исследовали следующие разведения сенсибилизирующих антител: 1:8000, 1:9000, 1:10000, 1:11000. Разведения остальных компонентов были постоянны: для антигена - 1:5000, для детекторных антител - 1:5000, конъюгата - 1:4000. В качестве контрольных сывороток для анализа применяли сыворотки, специфичные к определенным штаммам вируса ящура с активностью 8,0 log2SN50. Их таблицы 2 следует, что при разведении сенсибилизирующих антител 1:10000 достигалось получение достоверного результата (1:256 или 8,0 log2SN50). При меньших разведений антител наблюдали высокие фоновые значения, что не позволяло получить корректный результат. При большем разведении отмечали снижение детектируемых значений уровня гуморального иммунитета в сыворотках крови животных. При исследовании неспецифических и отрицательных сывороток получали отрицательные результаты, что свидетельствовало о высокой специфичности разработанной тест-системы.
Для анализа исследовали следующие разведения детекторных антител: 1:3000, 1:4000, 1:5000, 1:6000. Разведения остальных компонентов были постоянны: для антигена - 1:5000, для сенсибилизирующих антител - 1:10000, конъюгата - 1:4000. В качестве контрольных сывороток для анализа применяли сыворотки, специфичные к определенным штаммам вируса ящура с активностью 8,0 log2SN50. Их таблицы 3 следует, что при разведении детекторных антител 1:5000 достигалось получение достоверного результата (1:256 или 8,0 log2SN50). При меньших разведений антител наблюдали высокие фоновые значения, что не позволяло получить корректный результат. При большем разведении наблюдали снижение детектируемого значения титра антител в сыворотках крови животных. При исследовании неспецифических и отрицательных сывороток отмечали отрицательные результаты, что свидетельствовало о высокой специфичности разработанной тест-системы.
Для анализа исследовали следующие разведения 146S частиц: 1:3000, 1:4000, 1:5000, 1:6000. Разведения остальных компонентов были постоянны: для детекторных антител - 1:5000, для сенсибилизирующих антител - 1:10000, конъюгата - 1:4000. В качестве контрольных сывороток для анализа применяли сыворотки, специфичные к определенным штаммам вируса ящура с активностью 8,0 log2SN50. Их таблицы 4 следует, что при разведении антигена 1:5000 достигалось получение достоверного результата (1:256 или 8,0 log2SN50). При меньших разведениях наблюдали высокие фоновые значения, что не позволяло получить корректный результат. При большем разведении наблюдали снижение детектируемого значения титра антител в сыворотках крови животных.
При исследовании неспецифических и отрицательных сывороток отмечали отрицательные результаты, что свидетельствовало о высокой специфичности разработанной тест-системы.
Таким образом, в ходе лабораторных испытаний определено, что рабочие разведения 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV, сенсибилизирующих и детекторных антител составили 1:5000, 1:10000, 1:5000, соответственно.
Пример 5. Применение тест-системы жидкофазного варианта ИФА для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV (предлагаемое изобретение).
Исследовали 12 сывороток крови животных, полученных после иммунизации инактивированными сорбированными моновалентными вакцинами против ящура, содержащими 146S частицы вируса ящура генотипа SAT-2/IV. Определены значения титра антител против 146S частиц с применением разработанной тест-системы ИФА, а также данные сыворотки были исследованы в РМН в чувствительной перевиваемой монослойной клеточной линии IB-RS-2, рекомендованной МЭБ (OIE) [2]. Полученные результаты отражены в таблице 5, из которой следует, что степень корреляции результатов разработанной тест-системы ИФА (предлагаемое изобретение) и классического метода РМН высокая (приближено к 100%).
Пример 6. Определение диагностических показателей разработанной тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА (предлагаемое изобретение).
Для исследования представленной тест-системы для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА исследовали стандартные диагностические показатели. Для определения чувствительности предложенной тест-системы анализировали 410 сывороток крови животных, которые являлись заведомо положительными по данным РМН в чувствительной перевиваемой монослойной клеточной линии почки свиньи IB-RS-2. Титр антител для данных сывороток крови находился в диапазоне 5,5-13,0 log2SN50. Постановку ИФА проводили, как отражено выше. Разработанной тест-системой (предлагаемое изобретение) определили, что из 410 образцов сывороток крови 407 определены в качестве положительных, а 3 - в качестве отрицательных (титр антител по данным ИФА составил 1:16). Для исследования специфичности метода тестировали 205 отрицательных сывороток крови животных. В результате исследования с помощью ИФА (предлагаемое изобретение) определили, что из 205 отрицательных проб - 205 определены в качестве отрицательных. Определили, что в 95%-ном доверительном интервале диагностическая чувствительность (DSe) составила 97,89-99,85%, диагностическая специфичность (DSp) - 98,22-100,0%, k-критерий - 0,989; прогностичность отрицательного результата (NPV) - 95,84-99,70%, общая точность (DAc) - 98,59-99,90% (таблица 6).
Таким образом предлагаемая «Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА» является специфичной и чувствительной, позволяющей в течение 4 часов провести анализ сывороток крови животных с определением титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV. Данный генотип является актуальным и быстро распространяющимся на территории Африканского континента. Разработанная тест-система направлена на подтверждение высокой эффективности производимых в РФ противоящурных инактивированных вакцин, содержащих антиген данного генотипа, и, тем самым, на защиту территории России и граничащих с ней на юге стран от распространения вируса ящура генотипа SAT-2/IV.
Источники информации, принятые во внимание при составлении описания изобретения к заявке на выдачу патента РФ на изобретение «Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА»:
1. Diagnostic assays developed for the control of foot-and-mouth disease in India / Sharma G.K., Mahajan S., Matura R. [et al.] // World J Virology. - 2015. - V. 4(3). - P. 295-302.
2. OIE. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. - Paris, 2018. - Chapter 2.1.8.
3. Гуленкин, B.M. Экономическая эффективность проведения профилактической вакцинации животных против ящура на территории Российской Федерации / В.М. Гуленкин // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. - Владимир, 2012. - Т. 10. - С. 31-41.
4. Brooksby, J.В. 1982. Portraits of viruses: foot-and-mouth disease virus. Intervirology 18:1-23.
5. Rueckert, R.R., and E. Wimmer. 1984. Systematic nomenclature of picornavirus proteins. J. Virol. 50:957-959,
6. Grubman, M. J. 1980. The 5' end of foot-and-mouth disease virion RNA contains a protein covalently linked to the nucleotide pUp.Arch. Virol. 63:311-315.
7. Domingo, E., C. Escarmis, E. Baranowski, С.M. Ruiz-Jarabo, E. Carrillo, J.I. Nunez, and F. Sobrino. 2003. Evolution of foot-and-mouth disease virus. Virus Res. 91:47-63.
8. Sobrino, F., M. Davila, J. Ortin, and E. Domingo. 1983. Multiple genetic variants arise in the course of replication of foot-and-mouth disease virus in cell culture. Virology 128:310-318.
9. Динамика развития противоящурного гуморального иммунитета у крупного рогатого скота, иммунизированного трехвалентной сорбированной вакциной типов А, О, Азия-1 / Д.В. Михалишин, Т.Н. Лезова // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. - Владимир, 2007. - Т. 5. - С. 75-82.
10. Wong C.L., Yong C.Y., Ong Н.K., Но K.L., Tan W.S. Advances in the Diagnosis of Foot-and-Mouth Disease // Front Vet Sci. - 2020 Aug 21. - V.7. - P. 477.
11. Curry S., Abu-Ghazaleh R., Blakemore W., Fry E., Jackson Т., King A., Lea S., Logan D., Newman J., Stuart D. Crystallization and preliminary X-ray analysis of three serotypes of foot-and-mouth disease virus // J. Mol Biol. - 1992. - V. 228(4). - P. 1263-1268.
12. King, A.M., D. McCahon, K. Saunders, J.W. Newman, and W.R. Slade. 1985. Multiple sites of recombination within the RNA genome of foot-and-mouth disease virus. Virus Res. 3:373-384.
13. Tosh, C., D. Hemadri, and A. Sanyal. 2002. Evidence of recombination in the capsid-coding region of type A foot-and-mouth disease virus. J. Gen. Virol. 83:2455-2460.
14. Fry E.E., Stuart D.I., Rowlands D.J. The structure of foot-and-mouth disease virus // Curr Top Microbiol Immunol - 2005. - V. 288. - P. 71-101/
15. Palmenberg A.C. Proteolytic processing of picornaviral polyprotein // Annu Rev Microbiol. - 1990. - V. 44. - P. 603-623.
16. Curry S., Fry E., Blakemore W., Abu-Ghazaleh R., Jackson Т., King A., Lea S., Newman J., Stuart D. Dissecting the roles of VP0 cleavage and RNA packaging in picornavirus capsid stabilization: the structure of empty capsids of foot-and-mouth disease virus // J. Virol. - 1997. - V. 71(12). - P. 9743-9752.
17. Anon N. Global Strategy for control of foot-and-mouth disease. - In, Bangkok, Thailand, - 2012. - P. 27-29.
18. Saitou N. and Nei M. (1987). The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution 4:406-425.
19. Felsenstein J. (1985). Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap.Evolution 39:783-791.
20. Tamura K., Nei M., and Kumar S. (2004). Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method. Proceedings of the National Academy of Sciences (USA) 101:11030-11035.
21. IZSLER ELISA. URL: https://www.fao.org/fileadmin/user_uploaod/eufmd/docs/Open_Session2012/Appendices/75_New_Elisa_for_diagnosis_Brocchi_.pdf (Дата обращения: 05.04.2023).
22. Наборы для определения антител к антигену вируса ящура (FMDV) PrioCHECK. URL: vetprofilab.ru/f/rus_priochek_fmdv.pdf (Дата обращения: 24.03.2023).
23. Патент РФ №2787714, 11.01.2023. Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма А №2269/ВНИИЗЖ/2015 генотипа A/ASIA/G-VII в сыворотках крови животных после иммунизации // Заявка №2022108324.
24. Патент РФ №2791614, 13.03.2023. Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого «сэндвич»-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма О №2047/Саудовская Аравия/2008 генотипа O/ME-SA/PanAsia2 в сыворотках крови животных после иммунизации // Заявка №2022119118.
25. Патент РФ №2796393, 23.05.2023. Способ быстрого количественного определения уровня гуморального иммунитета животных к штамму О №2311/Забайкальский/2016 генотипа O/ME-SA/Ind-2001 вируса ящура после вакцинации с помощью жидкофазного «сэндвич»-варианта ИФА // Заявка №2022113420.
--->
<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing
1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">
<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="ELISA FMDV SAT-2
IV.xmp.xml" softwareName="WIPO Sequence" softwareVersion="2.1.2"
productionDate="2023-06-19">
<ApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>0</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2023-06-19</FilingDate>
</ApplicationIdentification>
<ApplicantFileReference>515</ApplicantFileReference>
<EarliestPriorityApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>0</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2023-06-19</FilingDate>
</EarliestPriorityApplicationIdentification>
<ApplicantName languageCode="ru">ФГБУ &quot;Федеральный центр охраны
здоровья животных&quot; (ФГБУ &quot;ВНИИЗЖ&quot;)</ApplicantName>
<ApplicantNameLatin>FGBI &quot;ARRIAH&quot;</ApplicantNameLatin>
<InventorName languageCode="ru">Доронин Максим
Игоревич</InventorName>
<InventorNameLatin>Doronin Maksim Igorevich </InventorNameLatin>
<InventionTitle languageCode="ru">Тест-система для определения титра
антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью
жидкофазного ИФА</InventionTitle>
<SequenceTotalQuantity>2</SequenceTotalQuantity>
<SequenceData sequenceIDNumber="1">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>642</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..642</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>genomic DNA</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q1">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>FMDV</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>accactagtgctggagagggagcagacgtcgtcacgactgacccctcaa
cacacggtgggagtgtagtggagaagagacggatgcacacagacgttgcattcgtgctggacaggttcac
tcacgtacacaccaacaaaaccacatttaacgtggacctactggacaccaaacaacaaaccttagtgggt
gctcttctcagagcgtcaacctactacttctgtgacttggagattgcctgtgtgggcaaccacaaacgcg
tctactggcagcccaacggcgcgccacgtacgacgcaactgggagacaaccccatggtgttcgcccacaa
cagcgtcactaggtttgccataccttacaccgcaccgcaccggttgcttgcaaccgtgtacaacggcgag
tgtaagtacacagaacgagttcccgcaatccgcggtgaccgtgctgtgttggcagccaagtacgccaact
ccagacacacgcttccatccacgttcaactttggacacgtgaccgccgacgagccagtcgacgtttacta
caggatgaagcgggcagagttgtattgtccaaggccactcctcccggcttaccaacacaacgaccgggac
aggttcgacgcacccattggcgtcgagaaacaa</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
<SequenceData sequenceIDNumber="2">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>214</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>AA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..214</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>protein</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q2">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>FMDV</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>TTSAGEGADVVTTDPSTHGGSVVEKRRMHTDVAFVLDRFTHVHTNKTTF
NVDLLDTKQQTLVGALLRASTYYFCDLEIACVGNHKRVYWQPNGAPRTTQLGDNPMVFAHNSVTRFAIPY
TAPHRLLATVYNGECKYTERVPAIRGDRAVLAAKYANSRHTLPSTFNFGHVTADEPVDVYYRMKRAELYC
PRPLLPAYQHNDRDRFDAPIGVEKQ</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
</ST26SequenceListing>
<---

Claims (4)

1. Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА, содержащая:
- иммуноспецифические лиофилизированные составляющие: инактивированные 146S частицы вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с активностью в ИФА 1:5000; сенсибилизирующие антитела - иммуноглобулины G кролика против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с активностью в ИФА 1:10000; детекторные антитела - иммуноглобулины G морской свинки против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с активностью в ИФА 1:5000; контроль 1 - сильноположительная сыворотка крови телят против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с процентом ингибиции 80-100%; контроль 2 - положительная сыворотка крови телят против 146S частиц вируса ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV с процентом ингибиции от 50% до 79,9%; контроль 3 - отрицательная сыворотка крови телят, не содержащая антител к антигену вирусу ящура; блокирующая сыворотка крови крупного рогатого скота; антивидовой конъюгат - иммуноглобулины кролика против Ig G морской свинки, конъюгированные с пероксидазой хрена, с активностью в ИФА 1:4000;
- неспецифические компоненты: буферный раствор на основе карбоната и гидрокарбоната натрия с рН 9,5-9,7, 20-кратный концентрат буферного раствора, хромогенный субстрат - диаммониевая соль 2,2'-азино-бис(3-этилбензотиазолин-6-сульфоната), «стоп»-раствор - 0,5%-ный раствор SDS, отличающаяся тем, что в качестве антигена вируса ящура содержит инактивированные 146S частицы вирус ящура штамма «SAT-2/Кения/19/2017» генотипа SAT-2/IV; и для определения процента ингибиции используются значения декадного коэффициента экстинкции и математическая формула: PI, % =(1-(εсывороткиКК)/(εКАКК))×100, при этом титр антител против 146S частиц вируса ящура определяется как максимальное разведение сыворотки крови, для которой значение процента ингибиции составляет ≥50%.
2. Тест-система по п. 1, являющаяся специфичной и чувствительной, позволяющей быстро в течение 4 часов определить титр антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV в широком диапазоне 1:16-1:8192, или 4,0-13,0 log2SN50.
RU2023120890A 2023-08-08 Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА RU2811996C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2811996C1 true RU2811996C1 (ru) 2024-01-22

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105807052B (zh) * 2016-05-13 2017-12-15 郑州中道生物技术有限公司 O型fmdv抗体直接竞争elisa检测试剂盒
RU2791614C1 (ru) * 2022-07-12 2023-03-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого "сэндвич"-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма О N2047/Саудовская Аравия/2008 генотипа O/ME-SA/PanAsia2 в сыворотках крови животных

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105807052B (zh) * 2016-05-13 2017-12-15 郑州中道生物技术有限公司 O型fmdv抗体直接竞争elisa检测试剂盒
RU2791614C1 (ru) * 2022-07-12 2023-03-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого "сэндвич"-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма О N2047/Саудовская Аравия/2008 генотипа O/ME-SA/PanAsia2 в сыворотках крови животных

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Maree FF, Blignaut B, de Beer TA, Rieder E. Analysis of SAT type foot-and-mouth disease virus capsid proteins and the identification of putative amino acid residues affecting virus stability. PLoS One. 2013 May 22; 8(5): e61612. doi: 10.1371/journal.pone.0061612. PMID: 23717387; PMCID: PMC3661562. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Harrington et al. Norovirus capture with histo-blood group antigens reveals novel virus-ligand interactions
CN102731615A (zh) Prrsv的检测试剂和检测方法
Yang et al. Generation of monoclonal antibodies against foot‐and‐mouth disease virus SAT 2 and the development of a lateral flow strip test for virus detection
CN105348386B (zh) 抗***o型病毒的单克隆抗体组合及检测试剂盒
CN105296434B (zh) 杂交瘤细胞株及其分泌的抗***o型病毒的单克隆抗体与应用
RU2811996C1 (ru) Тест-система для определения титра антител против 146S частиц вируса ящура генотипа SAT-2/IV с помощью жидкофазного ИФА
Srivastava et al. Antigenicity of Japanese encephalitis virus envelope glycoprotein V 3 (E) and its cyanogen bromide cleaved fragments examined by monoclonal antibodies and Western blotting
RU2815531C1 (ru) Тест-система для количественного определения антител к структурным белкам вируса ящура генотипа SAT-2/VII с помощью жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2821044C1 (ru) Тест-система для выявления антител к структурным белкам вируса ящура штамма &#34;SAT-1/Кения/2017&#34; с помощью жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2804845C1 (ru) Тест-система для определения уровня антител против антигена вируса ящура генотипа A/ASIA/SEA-97 с помощью жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2818811C1 (ru) Тест-система для определения титра антител против структурных белков вируса ящура штамма &#34;А/Танзания/2013&#34; с помощью жидкофазного иммуноферментного анализа
RU2812211C1 (ru) Тест-система для определения титра антител против структурных белков вируса ящура штамма &#34;Азия-1 N 2356/14/2018&#34; с помощью жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
Tolf et al. Characterization of polyclonal antibodies against the capsid proteins of Ljungan virus
RU2798510C1 (ru) Тест-система для количественного определения уровня гуморального иммунитета животных против антигена вируса ящура A N 2205/G-IV генотипа A/AFRICA/G-IV с помощью жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2815540C1 (ru) Тест-система для определения титра антител против структурных белков вируса ящура штамма &#34;О N2212/Приморский/2014&#34; генотипа O/SEA/Mya-98 в сыворотках крови животных на основе жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2817382C1 (ru) Тест-система для количественной детекции антител против 146S компонента вируса ящура генотипа O/EA-3 в сыворотках крови животных на основе жидкофазного иммуноферментного анализа
RU2812210C1 (ru) Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма &#34;О-N2356/Пакистан/2018&#34; генотипа O/ME-SA/PanAsia2 ANT-10 в сыворотках крови животных
RU2821894C1 (ru) Тест-система для определения титра антител против полных вирусных частиц штамма &#34;О/Кения/2017&#34; вируса ящура с применением жидкофазного &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА
RU2791614C1 (ru) Тест-система на основе жидкофазного блокирующего непрямого &#34;сэндвич&#34;-варианта ИФА для определения титра антител против вируса ящура штамма О N2047/Саудовская Аравия/2008 генотипа O/ME-SA/PanAsia2 в сыворотках крови животных
AU649473B2 (en) Enterovirus peptides
RU2817257C1 (ru) Штамм &#34;SAT-2/XIV/2023&#34; вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа SAT-2/XIV для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура
RU2816943C1 (ru) Штамм &#34;Азия-1/G-V/2006&#34; вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа Азия-1/G-V для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура
CN105254724A (zh) 截短型丙型肝炎病毒hcv ns3抗原及其制备与应用
RU2809223C1 (ru) Штамм &#34;O N 2241/Эфиопия/2011&#34; вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа О/ЕА-3 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура
RU2817256C1 (ru) Штамм А/Египет/EURO-SA/2022 вируса ящура Aphtae epizooticae для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа A/EURO-SA