PL97341B1 - METHOD OF MAKING A NEW ANTIBIOTIC COMPOUND 38295 - Google Patents

METHOD OF MAKING A NEW ANTIBIOTIC COMPOUND 38295 Download PDF

Info

Publication number
PL97341B1
PL97341B1 PL1975182636A PL18263675A PL97341B1 PL 97341 B1 PL97341 B1 PL 97341B1 PL 1975182636 A PL1975182636 A PL 1975182636A PL 18263675 A PL18263675 A PL 18263675A PL 97341 B1 PL97341 B1 PL 97341B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
compound
antibiotic
microns
fermentation broth
sodium
Prior art date
Application number
PL1975182636A
Other languages
Polish (pl)
Original Assignee
Pfizer Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pfizer Inc filed Critical Pfizer Inc
Publication of PL97341B1 publication Critical patent/PL97341B1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D493/00Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system
    • C07D493/02Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system in which the condensed system contains two hetero rings
    • C07D493/10Spiro-condensed systems

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia nowego zwiazku 38 295 o charakterze antybio¬ tyku, nalezacego do grupy kwasowych eterów po- licyklicznych. Te klase zwiazków mozna scharak¬ teryzowac biologicznie ich wplywem na przenosze¬ nie kationów w mitochondriach. Ta rodzina anty¬ biotyków obejmuje monensyne, /J. Amer. Chem.Soc, 89:5737, 1967/, nigerycyne /Biochem. Biophys.Res. Comm., 33:20, 1908/, gryzoryksyne /J. Chem. iSoc. Chem. Commun., 1421 1970/, dianemycyne /J.Antibiotics, 22:161, 1969/, salinomycyne /J. Anti- biotics, 27:814, 1974/ X-537 A /J. Chem. Soc. Chem.Commun., 967, 19712/, X-206 /J. Chem. Soc. Chem.Commun., 927, 1971/ i A204 A /J. Amer. Chem.Soc, 95:3399, 1973/.Wymienione eterowe antybiotyki policykliczne wykazuja aktywnosc przeciwko bakteriom Gram- -dodatnim, grzybom i pierwotniakom. Wykazuja one potencjalna aktywnosc przeciwko kokcydiozie.W opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 3 839 557 opisano sposób lepszego wy¬ korzystania paszy przez zwierzeta przezuwajace i jednozoladkowe, które skarmiano wlóknista sub¬ stancja roslinna, podajac jednoczesnie monensyne, dianemycyne, nigerycyne lub inne eterowe anty¬ biotyki policykliczne.Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia zwiazku 38 295 o charakterze antybiotyku o wzorze przedstawionym na rysunku.Antybiotyk wytwarza sie przez hodowanie Strep- tomyces hygroscopicus ATCC 31 050 w wodnym srodowisku, zawierajacym pozywke, w warunkach aerobowych w zanurzeniu. Antybiotyk i jego ka¬ tionowe sole sa potencjalnymi srodkami niszcza¬ cymi drobnoustroje, a takze sa efektywnymi srod¬ kami przeciw kokcydiozie i srodkami promotuja- cymi wzrost zwierzat.Mikroorganizm, stosowany do wytwarzania an¬ tybiotyku sposobem wedlug wynalazku, wyizolo¬ wano z próbki gleby, pochodzacej z Japonii. Ho¬ dowano go w wielu róznych srodowiskach, sto¬ sowanych do identyfikacji tego gatunku i stwier¬ dzono, ze jest on zupelnie podobny do Streptomy- ces hygroscopicus.Kulture Pfizer F. D. 23 604 porównywano z wielu róznych wzgledów w róznych srodowiskach z kul¬ tura Streptomyces hygroscopicus 48 248, otrzyma¬ na z holenderskiego zbioru szczepów muzealnych, Central bureau voor Schimmelcultures /CBS/. Po¬ równanie i identyfikacje wykonano w oparciu o pojecie gatunku, zgodnie z opisem w Applied Microbiology, 4:243—'250, 1956. Porównanie dwóch wymienionych kultur bylo nastepujace: Morfologia lancucha zarodnikowego — lancuchy kultury Pfizer F. D. 23 604 w postaci spiral o 6—10 zwojach lub mniej w róznych srodowiskach przy¬ pominaly lancuchy Streptomyces hygroscopicus CBS. Zarodniki Pfizer F. D. 23 604 badane za po¬ moca wybiórczej elektroskopii elektronowej wy¬ gladaly dokladnie tak samo, jak zarodniki szczepu 97 34197 341 3 CBS S. hygroscopicus* przedstawione w Applied Microbiology, 18:659—896, 1969, gdzie zarodniki o- pisano jako posiadajace pofaldowana powierzchnie zlozona z licznych wglebien, oddzielonych grzbie¬ tami substancji, stanowiacej scianki zarodnika.Barwione wycinki zarodników obu kultur wygla¬ daly identycznie.Barwa kolonii — grzybnia powietrzna miala bar¬ we szara w wiekszosci srodowisk, jecz dokladny odcien byl nieco rózny dla obu kultur. Pfizer F. D. 23 604 na sacharozowym agarze Czapka tworzyl gruby, nieregularnie pofaldowany szarawo-bialy -nalot,—pedGzas* / byl -plaski, -cienki i szary. Pfizer F. D. 23604 na \ agarze z maczka zoledzi po 4 tygodniach inkuba- l cji wytworzyl zólty nalot na uprzednio szarej * ^y^3P|io^ie1;rznej. Na agarze z ekstraktem droz- : dzewym- i slodowym Pfizer F. D. 23 604 dawal zól¬ te plamy nalotu na szarej substancji grzybni.Tworzenie melaminy — zadna z kultur nie two¬ rzyla melaniny na agarze peptonowo-zelazowym.Wykorzystanie wegla — /metoda Pfidhama i Gotlieba J. Bact., 56:107—114/, szczep Pfizer F. D. 23 604 wykorzystuje glukoze, L-arabinoze, dekstry¬ ne, D-fruktoze D/+/galaktoze, gliceryne, inozytol, inuline, laktoze, maltoze, D-mannitol, salicyne, ra- finoze, ramnoze, octan sodu, D-sorbitol, sorboze, skrobie, sacharoze, trehaloze i D-ksyloze, przy czym dulcitol nie byl wykorzystywany. Wyniki te sa zgodne z wynikami* opisanymi dla szczepu S. hy- groscopius w Applied Microbiology, 15:637—639, 1967 i dla szczepu CBS S. hygroscopicus wedlug Industrial Microbiology, 10:183—221, 1969, z tym wyjatkiem, ze szczep CBS nie wykorzystywal ino¬ zytolu.Wytwarzanie H2S — dla obu kultur uzyskano pozytywne wyniki na skosach agarowych z agaru peptonowozelazowego z pasmami octanu olowiu.Mleko — podobne wyniki uzyskano dla obu kul¬ tur—brak koagulacji, hydroliza pelna lub prawie pelna w ciagu 12 dni, brazowy, rozpuszczalny pig¬ ment.Zelatyna — obie kultury byly podobne we wzros¬ cie, barwie i umiarkowanej szybkosci uplynniania.Charakterystyka specjalna — szczep CBS S. hy¬ groscopicus daje czarne, higroskopijne powierzch¬ nie w ciagu 3 tygodni na agarze glukozowo-aspa- raginowym, agarze z maczki z zoledzi i agarze z ekstraktów drozdzowo-slodowych, natomiast szczep Pfizer F. D. 23 604 wykazuje czarne plamy jedy¬ nie na agarze z ekstraktów slodowo-drozdzowych.Dalsza inkubacja przez tydzien i magazynowanie kultur na szalkach Petriego w temperaturze 4— —10°C przez czwarty tydzien powoduje wzrost zaczerwienienia szczepu Pfizer F. D. 23 604. Na aga¬ rze z maczki z zoledzi, Czapek'a agarze sacharozo¬ wym i na agarze z ekstraktów slodowo-drozdzo- wych szczep Pfizer F. D. 23 604 daje zapach po¬ dobny do zapachu dzikiej cebuli lub czosnku z nieco ziemista wonia dodatkowa* natomiast szczep CBS S. hygroscopicus daje jedynie zapach zie¬ misty, przy czym o gatunku tym nigdzie nie do¬ niesiono, aby posiadal zapach dzikiej cebuli. Szczep Pfizer F. D. 23 604 gatunku S.hygroscopicus daje zwiazek 38 295, nowy eterowy antybiotyk policyk- liczny, natomiast szczep CBS gatunku S.hygrosco¬ picus nie daje go, jak równiez nie doniesiono o wytwarzaniu tego antybiotyku przez inne szczepy S.hygroscopicus.Omawiana kultura F. D. 23 604 zostala zmagazy¬ nowana w The American Type Culture Collection, Rockville, Md., i oznaczona w tym zbiorze jako ATCC 31 050.Hodowla Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050 najkorzystniej przebiega w srodowiskach wodnych, zawierajacych pozywke, w temperaturze 28—36°C, w zanurzeniu, w warunkach aerobowych z mieszaniem. Zawierajace pozywke srodowiska, uzyteczne do takich celów, obejmuja zródla przy¬ swajalnego wegla* takie jak cukry, skrobia i gli¬ ceryna, zródla organicznego azotu, takie jak ka¬ zeina, enzymatyczny wyciag kazeinowy, maczka sojowa, maczka z nasion bawelny, maczka z o- rzeszków ziemnych, gluten pszeniczny, maka so¬ jowa, maczka miesna i maczka rybna. Z powo¬ dzeniem mozna równiez wykorzystac zródla sub¬ stancji wzrostowych, takie jak ekstrakt z wyslod¬ ków i ekstrakt drozdzowy, jak równiez sole, ta¬ kie jak chlorek sodu i weglan wapnia oraz pier¬ wiastki sladowe, takie jak zelazo, magnez* cynk, kobalt i mangan. Jesli w czasie fermentacji poja¬ wia sie nadmiernie pienienie, wówczas w czasie fermentacji mozna do cieklego srodowiska dodac srodki przeciw pienieniu, takie jak oleje roslinne lub silikony. Szybkosc napowietrzania srodowiska w zbiorniku do hodowli w zanurzeniu wynosi ko¬ rzystnie 1/2—2 objetosci swiezego powietrza na objetosc bulionu na minute. Mieszanie mozna pro¬ wadzic za pomoca mieszadel typu, zwykle stoso¬ wanego w przemysle fermentacyjnym. W czasie przenoszenia organizmu i podczas jego wzrostu nalezy oczywiscie utrzymywac warunki aseptycz- ne.Szczepienie w celu wytworzenia antybiotyku mozna wykonac, stosujac nalot ze skosu kultury.Nalot ten mozna wykorzystac do zaszczepienia za¬ równo wstrzasanych kolb, jak i zbiorników szcze- piennych lub tez alternatywnie zbiorniki szcze- pienne mozna szczepic ze wstrzasanych kolb.Wzrost we wstrzasanych kolbach osiaga zwykle swe maksimum w ciagu 3 do 5 dni, podczas gdy zaszczepienie w zbiorniku szczepiennym w za¬ nurzeniu uzyskuje sie najkorzystniej w okresie 2 do 3 dni. Zasadnicza aktywnosc antybiotyczna u- zyskuje sie w koncowym etapie fermentacji w okresie 3 do 5 dni. Poziom antybiotyczny wynosi zwykle 50—500 mg/l.Proces wytwarzania antybiotyku dogodnie jest kontrolowac w czasie fermentacji za pomoca pró¬ by biologicznej bulionu przy zastosowaniu czulego szczepu Staphylococcus aureus lub Bacillus subtilis.Mozna tu stosowac standardowa metode próby na plytce, której strefa inhibicji wokól tarczy z pa¬ pieru filtracyjnego, nasyconego bulionem, stanowi miare mocy antybiotycznej. 60 Chromatografia cienkowarstwowa przy uzyciu zelu krzemionkowego jest uzyteczna metoda ana¬ lityczna do oznaczania antybiotyku, wytwarzanego w srodowisku fermentacyjnym i okreslenia skladu 65 surowych i oczyszczonych substancji, wyekstraho- 40 45 50 555 97 341 6 wanych z bulionów fermentacyjnych. Chromato- gramy cienkowarstwowe po rozwinieciu ich za pomoca octanu etylu spryskuje sie 3% roztworem waniliny w etanolowym roztworze kwasu siarko¬ wego /98,5—15% obj./obj./, a nastepnie ogrzewa do temperatury 60—80°C w ciagu kilku minut.Antybiotyk obserwuje sie wówczas jako jaskrawa, rózowo-czerwona plame na bialym tle.Antybiotyczny zwiazek 38 295 mozna wydzielic z wyklarowanego bulionu fermentacyjnego na dro¬ dze ekstrakcji rozpuszczalnikami organicznymi, ta¬ kimi jak chloroform, octan etylu lub keton me- tylowoizobutylowy. Zasadnicza czesc antybiotyku zawarta jest w oddzielnej grzybni i mozna ja do¬ godnie ekstrahowac przez wytworzenie zawiesiny grzybni w rozpuszczalnym w wodzie rozpuszczal¬ niku, takim jak metanol.Korzystna metoda wydzielania i wyodrebniania antybiotycznego zwiazku 38 295 jest nastepujaca procedura: Nieprzesaczony bulion fermentacyjny ekstrahuje sie dwukrotnie 1/5—1/2 objetosci metyloizobutylo- ketonu. Ekstrakt w rozpuszczalniku zate,za sie pod obnizonym cisnieniem do oleistej pozostalosci, z której nastepnie wytwarza sie zawiesine w mie¬ szaninie chloroformu i heksanu /l:.l/ i wprowadza do kolumny, wypelnionej zelem krzemionkowym /najkorzystniej zloze zelu krzemionkowego 60, w którego górnej czesci znajduje sie warstwa zelu krzemionkowego PF254, oba zele firmy E. Merck, Darmstad, RFN/. Kolumne z zelem krzemionko¬ wym wymywa sie kolejno heksanem, mieszanina chloroformu i heksanu /1:1/ i chloroformem. Glów¬ na frakcje antybiotyku wymywa sie octanem ety¬ lu. Odciek zateza sie. pod zmniejszonym cisnie¬ niem, przenosi sie do acetonu i miesza przez okres —60 minut z weglem aktywnym /Darco G 60/.Wegiel aktywny usuwa sie na drodze filtracji, roztwór zateza sie do malej objetosci pod obnizo¬ nym cisnieniem i dodaje sie nieco wody po czym pH doprowadza sie za pomoca wodorotlenku sodu do wartosci 8,0—8,5. Nastepnie krystaliczna sub¬ stancje, oddziela sie na drodze filtracji, przemy¬ wa woda i suszy.Wyodrebniony w tym etapie antybiotyk jest mie¬ szanina soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295, u- tworzonych z jonów sodu i potasu, wystepujacych w bulionie fermentacyjnym oraz pochodzacych z doda¬ nego wodorotlenku sodowego. Chromatogramy cien¬ kowarstwowe tej substancji moga wykazywac sla¬ dowe ilosci co najmniej dwóch innych bardziej polarnych antybiotyków, które podobnie jak zwia¬ zek 38 295 daja charakterystyczna rózowo-czerwo¬ na plame po spryskaniu wanilina w etanolowym roztworze kwasu siarkowego.Zwiazek 38 295 mozna otrzymac jako pojedyncze indywiduum metoda chromatografii cienkowar¬ stwowej na zelu krzemionkowym PF254 przy uzy¬ ciu heksanu. Mieszanine soli sodowej i potasowej dodaje sie w postaci roztworu w chloroformie lub octanie etylu i kolumne pod cisnieniem 5,6 atm wymywa sie heksanem, zawierajacym wzrastaja¬ ca ilosc octanu etylu. Postep rozdzialu obserwuje sie metoda chromatografii cienkowarstwowej. Od¬ powiednie frakcje laczy sie, odparowuje pod zmniejszonym cisnieniem i uzyskany antybiotyk krystalizuje z mieszaniny acetonu i wody.Zwiazek 38 295 w postaci wolnego kwasu moz¬ na otrzymac z mieszaniny soli sodowej i potaso- wej przez doprowadzenie pH w roztworze octanu etylu lub chloroformu do wartosci 4,5 za pomoca rozcienczonego kwasu fosforowego. Warstwe orga¬ niczna suszy sie bezwodnym siarczanem sodu, od¬ parowuje pod zmniejszonym cisnieniem, a pozosta¬ lo losc krystalizuje z mieszaniny chloroformu i hek¬ sanu.Sól sodowa zwiazku 38 295 mozna wytworzyc przez doprowadzenie pH roztworu wolnego kwasu w octanie etylu lub w chloroformie do wartosci 8,5 za pomoca roztworu wodorotlenku sodu /In/.Substancje krystalizuje sie z mieszaniny acetonu i wody. Krystaliczna sól potasowa otrzymuje sie analogicznie, stosujac wodorotlenek potasowy za¬ miast NaOH.Krystaliczna sól srebrowa mozna wytworzyc przez dodanie wodnego roztworu azotanu sodu do alkoholowego roztworu mieszaniny soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295. Innymi, dajacymi sie latwo wytworzyc zwiazkami sa sole miedzi* cynku, amonu, wapnia, magnezu i litu zwiazku 38 295.W przypadku zamierzonego stosowania otrzyma¬ nego produktu jako srodka zapobiegajacego i le¬ czacego kokcydioze u drobiu, caly bulion fermen¬ tacyjny, zawierajacy zwiazek 38 295, mozna wysu- szyc calkowicie /korzystnie metoda rozpylowego suszenia /i domieszac do pokarmu dla drobiu w ilosci, dajacej pozadany poziom mocy antybiotycznej Zwiazek 38 295 wykazuje dzialanie inhibitujace przeciwko wzrostowi licznych mikroorganizmów /tablica 1/. Testowe bakterie szczepi sie w szere¬ gu próbek, zawierajacych srodowisko z pozywka i rózne stezenia zwiazku 38 295 celem okreslenia minimalnego stezenia, wyrazonego w mikrogra- mach antybiotyku na mililitr, które inhibituje 40 wzrost organizmu w ciagu 24 godzin.Tablica 1 Organizm Staph. aureus 01A005 01A052 01A109 01A110 01A400 Strep. faecalis Strep. pyogenes Neisseria sicca Bacillus subtilis Lactobacillus casei var casei Lactobacillus catenaforme Clostridium innocuum Clostridium bifermentans Treponema hyodysenterif.e IZwiazek 138295 /mieszanina sól/ NaK ^78 0,78 0,78 0,39 0,39 0,20 <0,10 <0,10 <0,10 1,56 0*78 0,20 0,78 0,39 Zwiazek 33 295 /wolny kwas/ ^39 3,12 0,78 1,56 1,56 1,58 <0,10 <0,10 <0,10 —¦ —1 —{ — —97 341 Zwiazek 38 295 i jego sole wykazuja doskonala aktywnosc przeciwko zakazeniu kokcydioza u dro¬ biu. Przy zmieszaniu z pokarmem dla kurczat w ilosci 15—250 ppm zwiazki te sa efektywne w za¬ pobieganiu zakazeniu tymi organizmami.Dane, dotyczace efektywnosci zwiazku 38 295 i jego soli przeciwko zakazeniu kokcydioza u kur¬ czat, uzyskano w nastepujacy sposób. Grupy 3—5 sztuk 10 dniowych kogutków rasy bialej leghorn karmiono sruta, zawierajaca zwiazek 38 295 lub jedna z jego soli dokladnie wymieszanej z pokar¬ mem. Po 24 godzinach takiej diety kazde kurcze bylo szczepione doustnie za pomoca oocyst poszcze¬ gólnych gatunków badanych organizmów Einieria.Inne grupy kurczat karmionych pozbawiona anty¬ biotyków dieta srutowa byly zakazone w podobny sposób i sluzyly jako zakazone grupy kontrolne.Niezakazone i nieleczone kurczeta sluzyly jako nor- • walne grupy kontrolne. Wyniki leczenia oceniano po 5 dniach w przypadku E.acrevulina i po 6 dniach dla innych gatunków Eimeria.W tablicy 2 przedstawiono wyniki, uzyskane dla mieszaniny soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295.Tablica 2 Zakazenie gatunkiem Eimeria tonella Eimeria acervulina Eimeria necatrix Eimera | maxima Dawka /ppm/ ,250 J125 60 3,0 ;250 125 160 45 ¦ 250 J125 '60 ,250 1215 60 45 Sredni stopien * zakazenia 0,0 0,0 0,7 1.7 2,7 0,0 0,2 0,0 0,4 1,2 2,0 0,0 0,2 ^ 0,2 0,0 0,0 0,4 0,6 0,8 1,8 .Stosunek */ 0,0 0,0 0,211 0,54 0,86 0,0 0,1 0,0 0,2 0,6 1,6 0,0 0,13 0,13 0,0 0,0 i 0,25 0,33 0,44 0,68- */ Kryteria, stosowane do oceny aktywnosci prze¬ ciw kokcydiozie, polegaja na ocenie uszkodzen od 0 do 4 dla E.tenella /J. E. Lynch, Am. J.Vet. Res. 22:324—326, 1961/ i 0 do 3 dla innych gatunków /J. Johnson i W—H, Reid, Exp.Parasit./ 28:30—36, 1970/. W wyniku podzielenia oceny uszkodzen dla kazdej z leczonych grup przez ocene uszkodzen zakazonych zwierzat kon¬ trolnych uzyskuje sie staly stosunek.**/ Pierwsza liczba odnosi sie do uszkodzen jelit, a druga do uszkodzen katnicy. 40 45 50 55 Zakazenie gatunkiem Eimera brunetti Zakazenie mieszane /Coccivac D, Sterwine, Labora¬ tories, Opelika, Alabama./ Dawka /ppm/ 250 125 60 45 250 a'25 00 50 40 Sredni Stopien* zakazenia 0,4 0,4 0,8 1,2 1,6 1,6 0,0, 0,0 **/ 0,2, 0,4 0,2, 0,0 1,0, 0,6 1,2, 1,0 2,8, 2,0 Stosunek*/ o,o, 0,08, 0,08, 0,38, 0,48, 0,85, 0,22 0,44 0,22 0,53 0,88 0,88 0,0 0,18 0,0 0,21 0,35 0,71 Podobne wyniki uzyskac mozna z wolnym kwa¬ sem, sola sodowa, sola potasowa lub wysuszonym srodowiskiem fermentacyjnym, zawierajacym zwia¬ zek 38 295 w stosunku, dajacym pozadany poziom aktywnosci antybiotycznej.Promotowanie wzrostu przez zwiazek 38 295 wy¬ kazano w nastepujacych próbach z bydlem.Cieleta rasy Angus Heifer byly w sposób losowy umieszczane w przegrodach po 5 cielat w prze¬ grodzie i podawano im zwiazek 38 295 doustnie, przez wole, w wodzie pitnej itd. Zwiazek dawko¬ wano w oparciu o jego aktywnosc, podajac go w postaci kompozycji paszowej o duzej zawartosci substancji wlóknistych w ilosci 11—33 ppm. Zwia¬ zek 38 295 moze byc w róznych formach, takich jak wolny kwas, sól sodowa, sól potasowa, mie¬ szanina soli sodowej i potasowej lub suszony bulion fermentacyjny, wytworzony przez Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050.Pasze bez leków -i pasze, zawierajaca zwiazek 38 295, podawano badanym zwierzetom do syta.Pasza zawierala 12,5% protein i miala stosunek skladników tresciwych do skladników objetoscio¬ wych 75:25, przy czym zawierala kukurydze, macz¬ ke sojowa, maczke z lucerny, fosforan wapnia, melase,, witaminy i mineraly sladowe. Zwiazek 38 295 zawarty byl w premiksie wraz z mielona kukurydza, mineralami i witaminami.Karma podstawowa /l2,5% protein — 75:25 skladników tresciwych do objetosciowych/ Skladnik Procent Kukurydza mielona 55,6 Maczka sojowa, 48% protein 6,3 Maczka z lucerny, 17*/o protein 25,0 Suszona melasa*/ 10,0 Olej sojowy . 2,0 Fosforan dwuwapniowy /24°/o Ca, 18,5%P/ 0,4097 341 Sól z mineralami sladowymi **/ Premiks witaminowo-mineralny ***/ 0,50 0,20 */ Melasa z trzciny cukrowej na nosniku z ka¬ czanów kukurydzy: nie mniej niz 3% surowych protein, nie wiecej niz 15°/o materialu wlók¬ nistego* nie mniej niz 42% obojetnego cukru i maksimum -S°/o wody.**/ Nadajac nastepujace stezenie mineralów sla¬ dowych /ppm/ mangan-10, zelazo-8,25, miedz- -1,25, jod-0,025, kobalt-0,86, cynk-45.***/ Nadajac nastepujaca zawartosc witamin na 1 kg karmy: witamina A-3327 jedn, witamina D-444 jedn, witamina E-58 jedn.Premiks Skladnik Ilosc /1,8 kg/ Koncentrat witaminy A /30 000 jedn/g/ 0,1 kg Koncentrat witaminy D3/200 000 jedn/g/ 2,00 g Koncentrat witaminy E /278 000 jedn/kg/ 018 kg Tlenek cynku /79,4 Weglan kobaltowy /45°/o Co/ -1,70 g Sruta sojowa lub drobno mielone kaczany kukurydzy 1,47 kg Zwiazek 38295 40,0 g Premiks w ilosci 0,45 kg na 1 t paszy daje osta¬ tecznie stezenie zwiazku 38 295 równe 11 ppm.W tablicy 3 przedstawiono wyniki 28-dniowego testu w odniesieniu do trzech takich samych za¬ gród, z których kazda zawierala 5 cielat. Przybli¬ zona poczatkowa waga kazdego cielecia wynosila 180 kg.Zasadniczo takie same wyniki mozna uzyskac przy zastosowaniu czystego kwasu, soli sodowej, Przyklad I. Przygotowano sterylne wodne srodowisko o nastepujacym skladzie: Gramy/litr Glukoza 10,0 Rozpuszczalna skrobia 20,0 Ekstrakt drozdzowy 5,0 Enzymatyczny wyciag z kazeiny 5,0 Maczka mie,sna 5,0 CaC03 1,0 pH=7,0 Komórki nalotu plesniowego Streptomyces hy- groscopicus ATCC 31 050 przeniesiono do szeregu kolb o pojemnosci 300 ml, z których kazda za¬ wierala 50 ml sterylnego srodowiska. Kolby te wstrzasano na obrotowej wytrzasarce w ciagu 3 dni w temperaturze 28—30°C. Porcje po 5 ml ho¬ dowanego w ten sposób szczepu przeniesiono w warunkach aseptycznych do 300 ml kolb, zawiera¬ jacych 100 ml opisanego wyzej sterylnego srodo¬ wiska. Po wytrzasaniu przez 3—4 dni w tempera¬ turze -28—30°C wzrastajacy szczep przeniesiono do tanków fermentacyjnych o pojemnosci 4 1» za¬ wierajacych 2 1 sterylnego srodowiska o nastepu¬ jacym skladzie: Gramy/litr Glukoza Skrobia kukurydziana Maczka sojowa Ekstrakt z wyslodków gorzelnianych NaCl CaCOg pH=6,6 ,0 ,0 ,0 ,0 ,0 1,0 Tablica 3 Mieszanina soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295 Dawka Kontrolna zwiazek 38 2:95 | /li ppm/ 1 Zwiazek 33 295 /zwiazek 33 ppm/ iSDPW */ kg ; wskaznik 1,03 1,09 100,0 110,6 118,9 SDDP **/ kg 8,39 '8,08 ,58 wskaznik ,0,0 95,1 87,3 Pasza/Przyrost ***/ stosunek 6,95 ,94 ,1.-1 wskaznik 100,0 117,0 1136,0 */ Sredni dzienny przyrost wagi.**/ Srednia dzienna dawka pokarmu.***/ Ilosc paszy /kg/ na 1 kg przyrostu wagi. soli potasowej lub wysuszonego bulionu fermen¬ tacyjnego, zawierajacego zwiazek 38 295.Porównywalne wyniki mozna uzyskac dla innych zwierzat przezuwajacych, takich jak owce, lub zwierzat jednozoladkowych, takich jak konie, swi¬ nie lub króliki.Zwiazek 38 295 mozna podawac w paszy w wo¬ dzie pitnej lub w postaci premiksu, stosowanego do mieszania z pasza lub woda pitna. Ciekly pre¬ miks, zawierajacy antybiotyk w postaci koncen¬ tratu, przeznaczonego do dodawania do wody pit¬ nej, zwieksza wydajnoc paszowa zwierzat. Pre¬ miks taki mozna przygotowac w odpowiednim ste¬ zeniu przez rozpuszczenie zwiazku 38 295 w odpo¬ wiednim rozpuszczalniku, takim jak etanol lub gli¬ kol propylenowy. 50 55 60 Fermentacje prowadzono przez 90—120 godz. w temperaturze 28—30°C, mieszajac z . szybkoscia 1700 obr./min. i napowietrzajac z szybkoscia jed¬ nej objetosci powietrza na objetosc bulionu na mi¬ nute. Duze tanki fermentacyjne, zawierajace 300— —38 000 1 srodowiska, mozna szczepic przy uzyciu okolo 2% tego nalotu. Fermentacje prowadzi sie az do uzyskania mocy antybiotycznej co najmniej 50 mg/l /90—120 godz./. 100 1 calego nieprzefiltrowanego bulionu fermen¬ tacyjnego ekstrahowano dwukrotnie 1/5 objetosci ketonu metylowoizobutylowego. Oddzielony ek¬ strakt rozpuszczalnikowy zatezano pod zmniejszo¬ nym cisnieniem do oleistej pozostalosci /769 g/, która dyspergowano na zelu krzemionkowym przez dodanie pozostalosci rozpuszczonej w 2 1 chloro-97 341 li 12 formu na 1 kg zelu krzemionkowego PF254, a na¬ stepnie usunieto rozpuszczalnik pod zmniejszonym cisnieniem. Otrzymana pozostalosc wymieszano z 2 1 mieszaniny chloroformu z heksanem /1:1/ i dodano do zloza 300 g zelu krzemionkowego 60, na wierzchu którego znajdowala sie warstwa 300 g zelu krzemionkowego PF254.Zel krzemionkowy przemywano nastepnie sukce¬ sywnie 75 1 heksanu, 7,5 1 mieszaniny chlorofor¬ my z heksanem /1:1/ i 7,5 1 chloroformu. Antybio¬ tyk eluowano nastepnie 3,8 1 octanu etylu. Octan etylu usunieto pod zmniejszonym cisnieniem, a pozostalosc /38 g/ rozpuszczono w 400 ml acetonu.Roztwór acetonowy energicznie mieszano w tem¬ peraturze pokojowej przez okolo 45 min z 40 g wegla aktywnego /Darco G 60/. Calosc przesaczo¬ no, a nastepnie zatezono do objetosci okolo 200 ml i rozcienczono 100 ml wody. Zwiazek 38 295 wy¬ dziela sie w postaci soli sodowej i potasowej po doprowadzeniu pH roztworu do wartosci 8,5 za pomoca 1,0 n NaOH. Krystaliczna substancje /.13,8 g/ rozpuszczono w octanie etylu i poddano chro¬ matografii na kolumnie z zelem krzemionkowym PF254 przy uzyciu heksanu. Chromatogram rozwi¬ jano pod cisnieniem 5,6 atm za pomoca heksanu, zawierajacego stopniowo wzrastajaca ilosc octanu elylu. Postep rozdzialu kontrolowano metoda chro¬ matografii cienkowarstwowej. Odpowiednie frakcje polaczono, odparowano pod zmniejszonym cisnie¬ niem, a czysty zwiazek krystalizowano z miesza¬ niny acetonu z woda.Czysta, krystaliczna mieszanina soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295 ma temperature topnie¬ nia 200°C i aktywnosc optyczna [a]D25=+36° przy stezeniu 1% w metanolu. Analiza elementarna pro¬ duktu po wysuszeniu pod zmniejszonym cisnie¬ niem w ciagu nocy w temperaturze 70°C piecio¬ tlenkiem fosforu wykazala srednia zawartosc wegla 60,58% i wodoru 8,56%.Zwiazek jest rozpuszczalny w metanolu* etanolu, acetonie, chloroformie, chlorku metylenu, eterze etylowym, octanie etylu i ketonie metylowo-izo- butylowym, a czesciowo rozpuszczalny w heksanie i nierozpuszczalny w wodzie.Mieszanina soli sodowej i potasowej zwiazku 38 295 nie posiada charakterystycznego widma ab¬ orcyjnego w nadfioletowym zakresie promienie- wijpia. widmo w podczerwieni mieszaniny soli sodo¬ wej i potasowej zwiazku 38 295 przedstawiono na zalaczonym rysunku, fig. 1. Przy uzyciu plytki KBr stwierdzono obecnosc charakterystycznych pasm absorpcyjnych w podczerwieni przy nastepujacych dlugosciach fal, w mikronach: 2,92; 3,40; 6,27; 6,85; 7,22; 8,40; 9,00; 9,15; 9,25; 9,48; 9,98; 10,45; 10,68 i 11,45.Przyklad II. Powtórzono operacje z przy¬ kladu I, stosujac klarowny bulion fermentacyjny, zamiast calkowicie nieprzesaczanego bulionu fer¬ mentacyjnego.Przyklad III. Grzybnie oddzielona ze skla¬ rowanego bulionu fermentacyjnego z przykladu II rozrabiano wielokrotnie w metanolu, a ekstrakt metanolowy zatezano pod zmniejszonym cisnieniem i pozostalosc przerabiano zgodnie z przykladem I.Przyklad IV. Powtórzono proces fermenta¬ cyjny z przykladu I, stosujac srodowisko fermen¬ tacyjne o nastepujacym skladzie: Gramy/litr Glukoza 20,0 Skrobia kukurydziana 10,0 Maka sojowa 10,0 Ekstrakty z wyslodków gorzelnianych 5,0 Fe2/S04/3 0,2 MnCl2 0,2 CaC03 1.0 NaCl 5,0 Oleinian metylu 2,0 Olej sojowy 2,0 pH=6,6—6,7 Na koniec procesu fermentacyjnego caly, nie- przesaczony bulion fermentacyjny wysuszono me¬ toda rozpylowa.Przyklad V. Mieszanine soli sodowej i po- tasowej zwiazku 38 295 rozpuszczono w octanie etylu i pH roztworu doprowadzono do wartosci 4,5 za pomoca rozcienczonego kwasu fosforowego.Warstwe rozpuszczalnikowa wysuszono bezwodnym siarczanem sodu, odparowano do sucha, a pozo- stalosc krystalizowano z mieszaniny chloroformu z heksanem, otrzymujac krystaliczny kwas o tem¬ peraturze topnienia 135—1380C i aktywnosci otycz- nej [a]25D=+ 38° przy stezeniu l°/o w roztworze metanolowym. Po wysuszeniu w ciagu nocy pod zmniejszonym cisnieniem w temperaturze 70°C pie¬ ciotlenkiem fosforu analiza elementarna zwiazku wykazala zawartosc 61,65% wegla, 8,94% wodoru i 29,41% tlenu /z róznicy bilansowej/. Zwiazek 38 295 w postaci wolnego kwasu nie posiada cha- rakterystycznego widma absorpcyjnego w nadfio¬ lecie.Widmo w podczerwieni zwiazku 38 295 w posta¬ ci wolnego kwasu przedstawiono na rysunku, fig. 2.Przy uzyciu plytki KBr stwierdzono obecnosc cha- 40 rakterystycznych pasm absorpcyjnych w podczer¬ wieni przy nastepujacych dlugosciach fal, w mi¬ kronach: 2,92; 3,43; 5,74; 6,85; 7,25; 8,28; 8,60; 8,80; 9,00; 9,18; 9,80; 10,10; 10,45; 10,68; 10,92; i 11,13.Rentgenowska analiza krystalicznej soli srebro- 45 wej zwiazku 38 295 pozwolila na ustalenie budowy zwiazku, która mozna przedstawic strukturalnym wzorem, przedstawionym na rysunku.Przyklad VI. Sól sodowa zwiazku 38 295 o- trzymano przez dodanie 1 n roztwór NaOH do 50 roztworu wolnego kwasu, otrzymanego w przykla¬ dzie V, w octanie etylu, az do osiagniecia war¬ tosci pH~8,5. Substancja wykrystalizowana z mie¬ szaniny acetonu z woda miala temperature top¬ nienia 197—198°C i aktywnosc optyczna [a]D25 = 55 = + 38° przy stezeniu 1,03% w roztworze metano¬ lowym. Po wysuszeniu pod zmniejszonym cisnie¬ niem w ciagu nocy, w temperaturze 70°C, piecio¬ tlenkiem fosforu, sól sodowa zawierala 60,28% wegla i 8,76% wodoru.Widmo w podczerwieni soli sodowej zwiazku 38 295 przedstawiono na zalaczonym rysunku fig. 3.Przy uzyciu plytki KBr stwierdzono obecnosc cha¬ rakterystycznych pasm absorpcyjnych w podczer- 65 wieni przy nastepujacych dlugosciach fal, w mi- 6013 97 341 14 kronach: 2,94; 3,42; 6,27; 6,84; 7,20; 8,75; 9,00; 9,14; 9,30; 9,45; 10,45; 10,92; 11,15; i 1.1,47.Przyklad VII. Sól potasowa zwiazku 38 295 wytworzono metoda, opisana w przykladzie VI, sto¬ sujac wodorotlenek potasu zamiast wodorotlenku sodu. Substancja wykrystalizowana z mieszaniny acetonu z woda miala temperature topnienia 196— —198°C i aktywnosc optyczna [a]D25=38° przy ste¬ zeniu 1,02% w roztworze metanolowym. Po wy¬ suszeniu pod zmniejszonym cisnieniem w ciagu nocy, w temperaturze 70°C, pieciotlenkiem fosfo¬ ru, zwiazek zawieral 60,58% wegla i 8,0% wodoru.Widmo w podczerwieni soli potasowej zwiazku 33 295 przedstawiono- na zalaczonym rysunku, fig. 4. Przy uzyciu plytki KBr stwierdzono obecnosc charakterystycznych pasm absorpcyjnych w pod¬ czerwieni przy nastepujacych dlugosciach fal, w mikronach: 2,94; 3,42; 6,27; 6,84; 7,20; 8,75; 9,00; 9,14; 9,30; 9,45; 10,45; 10,92; lil,15; i 11,47.Przyklad VIII. Sól srebrowa zwiazku 38295 wytworzono przez dodanie wodnego roztworu azo¬ tanu srebra do etanolowego roztworu mieszaniny soli sodowej i potasowej, otrzymanych w przy¬ kladzie I. Wydzielone cialo stale krystalizowano z metanolu, otrzymujac produkt o temperaturze top¬ nienia 138—200°C i aktywnosci optycznej [a]D25= = +¦27°, przy stezeniu 0,982% w roztworze meta¬ nolowym. Sredni sklad próbki, wysuszonej w cia¬ gu nocy pod zmniejszonym cisnieniem, w tempe¬ raturze 70°C pieciotlenkiem^ fosforu, wynosil 55,95% wegla i 7,82—7,89% wodoru. Ciezar czasteczkowy krystalicznej soli srebrowej zwiazku 38 295, okres¬ lony z danych rentgenowskich wynosi 10'60±4. PLThe subject of the invention is a process for the preparation of a new compound 38,295 of an antibiotic nature, belonging to the group of acidic polycyclic ethers. These class of compounds can be biologically characterized by their influence on cation transfer in the mitochondria. This family of antibiotics includes monensin, / J. Amer. Chem. Soc, 89: 5737, 1967), Nigericine (Biochem. Biophys.Res. Comm., 33:20, 1908 /, gryzoryksyne / J. Chem. iSoc. Chem. Commun., 1421 1970 /, dianemycin / J. Antibiotics, 22: 161, 1969 /, salinomycin / J. Antibiotics, 27: 814,1974 / X-537 A / J. Chem. Soc. Chem. Commun., 967, 19712 /, X-206 / J. Chem. Soc. Chem. Commun., 927, 1971 / and A204 A / J. Amer. Chem. Soc, 95: 3399, 1973). The polycyclic ether antibiotics mentioned are active against gram-positive bacteria, fungi and protozoa. They have a potential activity against coccidiosis. U.S. Patent No. 3,839,557 describes a method of improving the feed utilization of animals that feed on a fibrous plant substance while simultaneously administering monensin, dianemycin, nigericin or other ethereal anticancer agents. Polycyclic biotics. The present invention relates to a method of producing the antibiotic compound 38,295 having the formula shown in the figure. The antibiotic is produced by growing Streptomyces hygroscopicus ATCC 31,050 in an aqueous medium containing a nutrient under aerobic conditions under submerged conditions. The antibiotic and its cationic salts are potential antimicrobial agents as well as effective anti-coccidial agents and animal growth promoting agents. The microorganism used to prepare the antibiotic according to the invention was isolated from a soil sample. , originally from Japan. It has been cultivated in many different environments used to identify this species and has been found to be quite similar to Streptomyces hygroscopicus. The Pfizer FD 23 604 culture has been compared on many different ways in different environments from the Streptomyces culture. hygroscopicus 48,248, obtained from the Dutch museum strain collection, Central bureau voor Schimmelcultures (CBS). The comparison and identification were made based on the species concept as described in Applied Microbiology, 4: 243-250, 1956. The comparison of the two cultures mentioned was as follows: Spore chain morphology - Pfizer FD 23 604 culture chains in spiral form -10 coils or less in different environments resembled Streptomyces hygroscopicus CBS chains. Spores of Pfizer FD 23 604 when examined by selective electron electroscopy looked exactly the same as the spores of S. hygroscopicus strain 97 34197 341 3 CBS * presented in Applied Microbiology, 18: 659-896, 1969, where the spores are described as having a corrugated surface composed of numerous dens, separated by the backs of the substance constituting the spore wall. The colored spore sections of both cultures looked identical. The colony color - aerial mycelium was gray in most environments, but the exact shade was slightly different for both cultures. Pfizer F. D. 23,604 on sucrose agar The cap formed a thick, irregularly wavy greyish-white bloom, -pedGzas * / was-flat, -thin and gray. Pfizer F. D. 23604 on the acorn flour agar after 4 weeks of incubation developed a yellow coating on the previously gray * ^ y ^ 3P | and ^ ie1; On yeast and malt extract agar Pfizer FD 23 604 gave a yellow tarnish on the gray matter of mycelium. Formation of melamine - none of the cultures formed melanin on peptone-iron agar. Use of carbon - / Pfidham method and Gotlieba J. Bact., 56: 107-114), strain Pfizer FD 23 604 uses glucose, L-arabinose, dextrins, D-fructose D (+) galactose, glycerin, inositol, inulin, lactose, maltose, D- mannitol, salicin, raffinose, rhamnose, sodium acetate, D-sorbitol, sorbose, starches, sucrose, trehalose and D-xylose, with dulcitol not being used. These results are consistent with the results * reported for S. hygroscopius strain in Applied Microbiology, 15: 637-639, 1967 and for S. hygroscopicus strain CBS according to Industrial Microbiology, 10: 183-221, 1969, except that the CBS strain did not use inositol. H2S production - both cultures showed positive results on peptone iron agar slants with lead acetate streaks. Milk - similar results were obtained for both cultures - no coagulation, full or nearly complete hydrolysis within 12 days, brown, soluble pigment Gelatin - both cultures were similar in growth, color and moderate flow rate Special characteristics - strain CBS S. hygroscopicus gives black, hygroscopic surfaces within 3 weeks on glucose agar Asparaginium agar, acorn flour agar and yeast-malt extract agar, while Pfizer strain FD 23 604 only shows black spots on malt-yeast extract agar. n storing the cultures in Petri dishes at 4-10 ° C for the fourth week increases the redness of the Pfizer FD 23 604 strain. On agar made of wheat flour, Czapek, sucrose agar and sweet-yeast extract agar - of the strains Pfizer FD 23 604 gives an odor similar to that of wild onion or garlic with a slightly earthy extra odor, while the strain CBS S. hygroscopicus produces only a earthy odor, and this species has not been found anywhere to have an odor. the smell of wild onions. The Pfizer strain FD 23,604 of the species S. hygroscopicus produces the compound 38,295, a new polycyclic ether antibiotic, while the CBS strain of the species S. hygroscopicus does not, and no production of this antibiotic by other strains of S. hygroscopicus has been reported. culture FD 23 604 was stored in The American Type Culture Collection, Rockville, Md., and is designated ATCC 31 050 in this collection. Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050 is most preferably grown in an aqueous nutrient medium at 28-36 ° C, immersed, aerobic with agitation. Environmental media useful for such purposes include digestible carbon sources such as sugars, starch and glycerin, organic nitrogen sources such as casein, enzyme casein extract, soybean flour, cottonseed flour, peanuts, wheat gluten, soybean flour, meat meal and fish meal. Sources of growth substances such as sucrose extract and yeast extract, as well as salts such as sodium chloride and calcium carbonate, and trace elements such as iron, magnesium, and zinc can also be successfully used. , cobalt and manganese. If excessive foaming occurs during fermentation, anti-foaming agents, such as vegetable oils or silicones, may be added to the liquid environment during fermentation. The aeration rate of the environment in the immersion tank is preferably 1/2 to 2 times the volume of fresh air per volume of broth per minute. Mixing may be carried out with the aid of mixers of the type conventionally used in the fermentation industry. During the transfer of the organism and its growth, it is of course necessary to maintain aseptic conditions. Inoculation to produce the antibiotic can be done by using a slanting culture. This raid can be used to inoculate both shaken flasks and reservoirs or also alternatively, shake flasks may be inoculated from shake flasks. Growth in shake flasks is usually maximal within 3 to 5 days, while inoculation in an immersion inoculation is most preferably achieved within 2 to 3 days. The essential antibiotic activity is gained in the final stage of fermentation over a period of 3 to 5 days. The antibiotic level is usually 50-500 mg / l. The production of the antibiotic is conveniently controlled during fermentation by biological broth test with a sensitive strain of Staphylococcus aureus or Bacillus subtilis. The standard method of the plate test with the inhibition zone around A disc of filter paper impregnated with broth is a measure of the antibiotic potency. Thin layer chromatography using silica gel is a useful analytical method for the determination of antibiotic produced in a fermentation medium and for the composition of 65 crude and purified substances extracted from fermentation broths. Thin-layer chromatograms, after decomposing them with ethyl acetate, are sprinkled with a 3% solution of vanillin in ethanolic sulfuric acid (98.5-15% v / v), and then heated to 60-80 ° C during several minutes. The antibiotic is then observed as a bright pink-red spot against a white background. Antibiotic compound 38,295 can be separated from the clarified fermentation broth by extraction with organic solvents such as chloroform, ethyl acetate or methyl isobutyl ketone. The major part of the antibiotic is contained in a separate mycelium and can be conveniently extracted by suspending the mycelium in a water-soluble solvent such as methanol. A preferred method of isolating and isolating the antibiotic compound 38 295 is as follows: The uncontaminated fermentation broth is extracted twice. 1 / 5-1 / 2 of the volume of methylisobutylketone. The extract in the solvent is molten, under reduced pressure, to an oily residue, which is then suspended in a mixture of chloroform and hexane (l: l) and placed on a column filled with silica gel (preferably a bed of silica gel 60, in which on the upper part there is a layer of PF254 silica gel, both gels by E. Merck, Darmstad, Germany /. The silica gel columns are washed successively with hexane, a 1: 1 mixture of chloroform and hexane, and chloroform. The main antibiotic fractions are eluted with ethyl acetate. The leak is choked. under reduced pressure, poured into acetone and mixed for -60 minutes with activated carbon (Darco G 60). The activated carbon is removed by filtration, the solution is concentrated to a low volume under reduced pressure and some water is added. the pH is then adjusted to 8.0-8.5 with sodium hydroxide. The crystalline substance is then separated by filtration, washed with water and dried. The antibiotic isolated in this step is a mixture of sodium and potassium compounds 38,295, formed from sodium and potassium ions present in the fermentation broth and derived from added sodium hydroxide. Thin-layer chromatograms of this substance may reveal inferior amounts of at least two other more polar antibiotics which, like compound 38295, give the characteristic pink-red stain when sprayed with vanillin in ethanolic sulfuric acid. Compound 38,295 can be obtained. as a single individual by thin layer chromatography on silica gel PF254 using hexane. The sodium and potassium salt mixture is added as a solution in chloroform or ethyl acetate, and the column is eluted at 5.6 atm. With hexane, containing increasing amounts of ethyl acetate. The separation progress is monitored by thin layer chromatography. The appropriate fractions are combined, evaporated under reduced pressure and the resulting antibiotic is crystallized from a mixture of acetone and water. Compound 38295 as free acid can be obtained from a mixture of sodium and potassium salts by adjusting the pH in a solution of ethyl acetate or chloroform to value 4.5 with dilute phosphoric acid. The organic layer is dried over anhydrous sodium sulfate, evaporated under reduced pressure and the residue crystallized from a mixture of chloroform and hexane. The sodium salt of compound 38295 can be prepared by adjusting the pH of a solution of the free acid in ethyl acetate or chloroform. to 8.5 with sodium hydroxide solution (In). The substance is crystallized from a mixture of acetone and water. Crystalline potassium salt is prepared analogously by using potassium hydroxide in place of NaOH. Crystalline silver salt can be prepared by adding an aqueous solution of sodium nitrate to an alcoholic solution of a sodium / potassium salt mixture of 38 295. Other compounds that can be easily formed are the copper and zinc salts , ammonium, calcium, magnesium and lithium compound 38,295. In the case of the intended use of the product obtained as an agent for the prevention and treatment of coccidiosis in poultry, the whole fermentation broth containing the compound 38,295 can be completely dried (preferably by the method spray-drying / and admix to poultry feed in an amount that gives the desired level of antibiotic potency. Compound 38,295 has an inhibitory effect against the growth of numerous microorganisms (Table 1). The test bacteria are inoculated into a series of samples containing the nutrient medium and various concentrations of compound 38,295 to determine the minimum concentration, expressed in micrograms of antibiotic per milliliter, which inhibits organism growth within 24 hours. Table 1 Organism Staph. aureus 01A005 01A052 01A109 01A110 01A400 Strep. faecalis Strep. pyogenes Neisseria sicca Bacillus subtilis Lactobacillus casei var casei Lactobacillus catenaforme Clostridium innocuum Clostridium bifermentans Treponema hyodysenterif.e I Compound 138295 / salt / NaK ^ 78 0.78 0.78 0.39 0.39 0.20 <0.10 <0, 10 <0.10 1.56 0 * 78 0.20 0.78 0.39 Compound 33 295 / free acid / ^ 39 3.12 0.78 1.56 1.56 1.58 <0.10 <0 . 10 <0.10-0,1 -1 - {- 97,341 Compound 38,295 and its salts exhibit excellent activity against coccidiosis infection in poultry. When mixed with chick feed at 15-250 ppm, these compounds are effective in preventing contamination with these organisms. Data on the effectiveness of compound 38295 and its salts against infection with coccidiosis in chickens were obtained as follows. Groups of 3-5 10-day-old white leghorn roosters were fed meal containing compound 38,295 or one of its salts thoroughly mixed with the food. After 24 hours of this diet, each of the cramps was vaccinated orally with the oocysts of the different species of the Einieria test organisms. Other groups of chickens fed the non-antibiotic-free broiler diet were similarly infected and served as infected controls. Uninfected and untreated chickens served as burrows. - • general control groups. Treatment outcomes were evaluated after 5 days for E. acrevulina and 6 days for other Eimeria species. Table 2 shows the results for the mixture of sodium and potassium salt of compound 38 295. Table 2 Infection with Eimeria tonella species Eimeria acervulina Eimeria necatrix Eimera | maxima Dose / ppm /, 250 J125 60 3.0; 250 125 160 45 ¦ 250 J125 '60, 250 1215 60 45 Average degree * of contamination 0.0 0.0 0.7 1.7 2.7 0.0 0.2 0.0 0.4 1.2 2.0 0.0 0.2 ^ 0.2 0.0 0.0 0.4 0.6 0.8 1.8 * / 0.0 0.0 ratio 0.211 0.54 0.86 0.0 0.1 0.0 0.2 0.6 1.6 0.0 0.13 0.13 0.0 0.0 and 0.25 0.33 0.44 0.68 *). The criteria used to evaluate anti-coccidiosis activity are lesions from 0 to 4 for E. tenella / J. E. Lynch, Am. J.Vet. Res. 22: 324—326, 1961 / and 0 to 3 for other species / J. Johnson and W.H, Reid, Exp. Parasit. (28: 30-36, 1970). By dividing the lesion score for each treatment group by the lesion score of the infected control animals, a constant ratio is obtained. ** / The first number relates to intestinal injuries, and the second number relates to catheter lesions. 40 45 50 55 Infection with Eimera brunetti infection Mixed infection / Coccivac D, Sterwine, Laboratories, Opelika, Alabama./ Dose / ppm / 250 125 60 45 250 a'25 00 50 40 Moderate Degree * of infection 0.4 0.4 0.8 1.2 1.6 1.6 0.0, 0.0 ** / 0.2, 0.4 0.2, 0.0 1.0, 0.6 1.2, 1.0 2.8, 2.0 Ratio * / o, o, 0.08, 0.08, 0.38, 0.48, 0.85, 0.22 0.44 0.22 0.53 0.88 0 , 88 0.0 0.18 0.0 0.21 0.35 0.71 Similar results can be obtained with free acid, sodium salt, potassium salt or a dried fermentation medium containing the compound 38 295 in a ratio that gives The desired level of antibiotic activity. Growth promotion by Compound 38,295 was demonstrated in the following cattle trials. Angus Heifer calves were randomly placed in stalls of 5 calves in the stalls and administered compound 38,295 orally, via the goiter, in the drinking water, etc. The compound was dosed based on its activity, administered in the form of a fibrous feed composition of 11-33 ppm. . Compound 38,295 may be in various forms, such as free acid, sodium salt, potassium salt, a mixture of sodium and potassium salts, or dried fermentation broth produced by Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050. compound 38 295, fed to the test animals to satiety. The feed contained 12.5% protein and had a content to volume ratio of 75:25, corn, soybean meal, alfalfa flour, calcium phosphate, molasses, , vitamins and trace minerals. Compound 38 295 was included in the premix along with ground corn, minerals and vitamins. Basic food / l2.5% protein - 75:25 nutrients for volumetric / Ingredient Percent Ground corn 55.6 Soy flour, 48% protein 6.3 Flour from alfalfa, 17 * / o protein 25.0 Dried molasses * / 10.0 Soybean oil. 2.0 Dicalcium phosphate / 24 ° / o Ca, 18.5% P / 0.4097 341 Salt with trace minerals ** / Vitamin and mineral premix *** / 0.50 0.20 * / Sugar cane molasses on corn maize medium: not less than 3% crude protein, not more than 15% fiber material *, not less than 42% inert sugar and a maximum of -S% water. ** / Giving the following mineral concentration Nutrients / ppm / manganese-10, iron-8.25, copper--1.25, iodine-0.025, cobalt-0.86, zinc-45. *** / Giving the following vitamin content per 1 kg of feed: vitamin A-3327 unit, vitamin D-444 unit, vitamin E-58 unit Premix Ingredient Amount / 1.8 kg / Vitamin A concentrate / 30,000 units / g / 0.1 kg Vitamin D3 concentrate / 200,000 units / g / 2.00 g Vitamin E concentrate / 278,000 units / kg / 018 kg Zinc oxide / 79.4 Cobalt carbonate / 45 ° / o Co / -1.70 g Soybean meal or finely ground corn cob 1.47 kg Compound 38295 40.0 g of the premix in the amount of 0.45 kg per 1 t of feed gives the final concentration of the compound 38 295 equal to 11 ppm. The results of a 28-day test were reported on three of the same pen, each containing 5 calves. Approximate initial weight of each calf was 180 kg. Substantially the same results can be obtained with the use of pure acid, sodium salt, Example I. A sterile aqueous medium was prepared with the following composition: Grams / liter Glucose 10.0 Soluble starch 20.0 Yeast extract 5.0 Enzymatic Casein Extract 5.0 Mocha, Sleeps 5.0 CaCO3 1.0 pH = 7.0 Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050 moldy cells were transferred to a series of 300 ml flasks, each of which in 50 ml of a sterile environment. The flasks were shaken on a rotary shaker for 3 days at 28-30 ° C. 5 ml aliquots of the strain thus cultivated were aseptically transferred to 300 ml flasks containing 100 ml of the sterile environment described above. After shaking for 3-4 days at -28-30 ° C, the growing strain was transferred to fermentation tanks with a capacity of 4 L containing 2 liters of sterile environment with the following composition: Grams / liter Glucose Corn starch Soy flour Extract from stillages NaCl CaCOg pH = 6.6, 0, 0, 0, 0, 0 1.0 Table 3 Mixture of sodium and potassium salt of compound 38 295 Control dose of compound 38 2:95 | / l and ppm / 1 Compound 33 295 / Compound 33 ppm / iSDPW * / kg; ratio 1.03 1.09 100.0 110.6 118.9 SDDP ** / kg 8.39 '8.08, 58 ratio, 0.0 95.1 87.3 Feed / Gain *** / ratio 6 , 95, 94, 1st-1 ratio 100.0 117.0 1136.0 * / Average daily weight gain. ** / Average daily food intake. *** / Feed quantity / kg / per 1 kg of weight gain. potassium salt or a dried fermentation broth containing the compound 38,295. Comparable results can be obtained with other animals that feed, such as sheep, or in monoderms such as horses, pigs or rabbits. Compound 38,295 can be administered in the feed in beef ¬ potable or premixed for mixing with feed or drinking water. A liquid premix containing an antibiotic concentrate to be added to the drinking water increases the feed efficiency of the animals. Such a pre-mix can be prepared at a suitable concentration by dissolving Compound 38,295 in a suitable solvent such as ethanol or propylene glycol. 50 55 60 The fermentation was carried out for 90-120 hours. at a temperature of 28-30 ° C while stirring with. speed 1700 rpm. and aerating at a rate of one volume of air per volume of broth per minute. Large fermentation tanks, containing 300—38,000 l of medium, can be vaccinated with about 2% of this bloom. Fermentations are carried out until an antibiotic power of at least 50 mg / l (90-120 hours) is obtained. 100 liters of all unfiltered fermentation broth were extracted twice with 1/5 volume of methyl isobutyl ketone. The separated solvent extract was concentrated under reduced pressure to an oily residue (769 g) which was dispersed on silica gel by adding the residue dissolved in 2 liters of chloro-97.341 liters and 12 forms per 1 kg of PF254 silica gel, and then completely removed. solvent under reduced pressure. The obtained residue was mixed with 2 liters of a chloroform / hexane mixture (1: 1) and 300 g of silica gel 60 with a layer of 300 g of PF254 silica gel on top of it was added to the bed. The silica gel was then washed successively with 75 liters of hexane, 7 5 liters of a mixture of chloroform and hexane (1: 1) and 7.5 liters of chloroform. The antibiotic was then eluted with 3.8 liters of ethyl acetate. The ethyl acetate was removed under reduced pressure and the residue (38 g) was dissolved in 400 ml of acetone. The acetone solution was vigorously stirred at room temperature for about 45 minutes with 40 g of activated carbon (Darco G 60). The whole was filtered and then concentrated to a volume of about 200 ml and diluted with 100 ml of water. Compound 38,295 is precipitated as the sodium and potassium salts when the pH of the solution is adjusted to 8.5 with 1.0 N NaOH. The crystalline material (13.8 g) was dissolved in ethyl acetate and chromatographed on a PF254 silica gel column with hexane. The chromatogram was developed at a pressure of 5.6 atm with hexane containing gradually increasing amounts of ethyl acetate. The separation progress was monitored by the method of thin-layer chromatography. The appropriate fractions were combined, evaporated under reduced pressure and the pure compound was crystallized from a mixture of acetone and water. A pure, crystalline mixture of sodium and potassium salts of compound 38,295 has a melting point of 200 ° C and an optical activity [α] D25 = + 36 ° at a concentration of 1% in methanol. Elemental analysis of the product after drying under reduced pressure overnight at 70 ° C with phosphorus pentoxide showed an average carbon content of 60.58% and hydrogen 8.56%. The compound is soluble in methanol, ethanol, acetone, chloroform. , methylene chloride, diethyl ether, ethyl acetate and methyl isobutyl ketone, and partially soluble in hexane and insoluble in water. The mixture of sodium and potassium salts of compound 38295 does not have a characteristic abortion spectrum in the ultraviolet range of the ray of light. the infrared spectrum of the mixture of sodium and potassium salts of compound 38,295 is shown in the accompanying drawing, Fig. 1. Using a KBr plate, the presence of characteristic infrared absorption bands was found at the following wavelengths, in microns: 2.92; 3.40; 6.27; 6.85; 7.22; 8.40; 9.00; 9.15; 9.25; 9.48; 9.98; 10.45; 10.68 and 11.45. Example II. The operations of Example 1 were repeated, using a clear fermentation broth instead of a completely unfiltered fermentation broth. Example III. The mycelia separated from the clarified fermentation broth of Example 2 were digested several times in methanol, and the methanol extract was concentrated under reduced pressure, and the residue was processed in accordance with Example 1. The fermentation process of Example 1 was repeated using a fermentation medium having the following composition: Grams / liter Glucose 20.0 Corn starch 10.0 Soybean flour 10.0 Pulp extracts 5.0 Fe2 / SO4 / 3 0.2 MnCl2 0.2 CaCO3 1.0 NaCl 5.0 Methyl oleate 2.0 Soybean oil 2.0 pH = 6.6-6.7 At the end of the fermentation process, the entire, unfiltered fermentation broth was spray dried. The sodium and potassium salts of compound 38,295 were dissolved in ethyl acetate and the pH of the solution was adjusted to 4.5 with dilute phosphoric acid. The solvent layer was dried over anhydrous sodium sulfate, evaporated to dryness and the residue was crystallized from a mixture of chloroform and hexane. to obtain a crystalline acid with a melting point of 135-1380 ° C and an abnormal activity of [a] 25 D = + 38 ° at a concentration of 10% in methanol solution. After drying overnight in vacuo at 70 ° C. with phosphorus peroxide, elemental analysis of the compound showed 61.65% carbon, 8.94% hydrogen and 29.41% oxygen (balance difference). Compound 38 295 in free acid form does not have a characteristic ultraviolet absorption spectrum. The infrared spectrum of compound 38 295 in free acid form is shown in Figure 2. Characteristic bands were found using a KBr plate. infrared absorption at the following wavelengths in microns: 2.92; 3.43; 5.74; 6.85; 7.25; 8.28; 8.60; 8.80; 9.00; 9.18; 9.80; 10.10; 10.45; 10.68; 10.92; and 11,13. X-ray analysis of the crystalline silver salt of compound 38,295 allowed to establish the structure of the compound, which can be represented by the structural formula shown in the figure. Example VI. The sodium salt of compound 38,295 was prepared by adding 1 N NaOH to a 50% solution of the free acid obtained in Example V in ethyl acetate until the pH was ~ 8.5. The substance crystallized from a mixture of acetone and water had a melting point of 197-198 ° C and an optical activity [α] D 25 = 55 = + 38 ° at a concentration of 1.03% in the methanol solution. After drying in vacuo overnight at 70 ° C with phosphorus pentoxide, the sodium salt contained 60.28% carbon and 8.76% hydrogen. The infrared spectrum of the sodium salt of compound 38,295 is shown in the accompanying figure. 3.With a KBr plate, the presence of characteristic infrared absorption bands was found at the following wavelengths, in microns 6013 97 341 14: 2.94; 3.42; 6.27; 6.84; 7.20; 8.75; 9.00; 9.14; 9.30; 9.45; 10.45; 10.92; 11.15; and 1: 1, 47. Example VII. The potassium salt of compound 38,295 was prepared according to the method of Example 6 using potassium hydroxide in place of sodium hydroxide. The substance crystallized from a mixture of acetone and water had a melting point of 196 ° -198 ° C. and an optical activity [α] D25 = 38 ° at a concentration of 1.02% in a methanol solution. After drying in vacuo overnight at 70 ° C with phosphorus pentoxide, the compound contained 60.58% carbon and 8.0% hydrogen. The infrared spectrum of the potassium salt of compound 33,295 is shown in the attached figure, Fig. 4. Using a KBr plate, the presence of characteristic infrared absorption bands was found at the following wavelengths, in microns: 2.94; 3.42; 6.27; 6.84; 7.20; 8.75; 9.00; 9.14; 9.30; 9.45; 10.45; 10.92; lil, 15; and 11.47. Example VIII. The silver salt of compound 38295 was prepared by adding an aqueous solution of silver nitrate to the ethanolic solution of the sodium and potassium salt mixture obtained in Example I. The separated body was crystallized from methanol to give a product having a melting point of 138-200 ° C and activity [α] D25 = + 27 °, at a concentration of 0.982% in methanol solution. The average composition of the sample, dried overnight in vacuo at 70 ° C. with phosphorus pentoxide, was 55.95% carbon and 7.82-7.89% hydrogen. The molecular weight of the crystalline silver salt of compound 38,295, determined from X-ray data, is 1060 ± 4. PL

Claims (4)

Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania nowego zwiazku 38 295 o charakterze antybiotyku i o wzorze przedstawio¬ nym na rysunku, znamienny tym, ze mikroorga¬ nizm Streptomyces hygroscopicus ATCC 3'1 050 ho¬ duje sie w temperaturze 28—36°C, w wodnym sro¬ dowisku hodowlanym, zawierajacym przyswajalne zródlo wegla, azotu i soli nieorganicznych, w wa¬ runkach aerobowych w zanurzeniu, az do uzyska¬ nia zawartosci antybiotyku co najmniej 50 mg na litr, po czym zwiazek 38 295 wydziela sie z bulio¬ nu fermentacyjnego. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze zwiazek 38 295 wydziela sie z bulionu fermenta¬ cyjnego przez ekstrakcje bulionu bez regulacji war¬ tosci pH nie mieszajacym sie z woda rozpuszczal¬ nikiem organicznym, zateza sie ekstrakt organicz¬ ny i wyodrebnia sie zwiazek 38 295 metoda chro¬ matografii kolumnowej na zelu krzemionkowym. 3. Sposób wytwarzania nowego zwiazku 38 295 o charakterze antybiotyku i o wzorze przedstawio¬ nym na rysunku, znamienny tym, ze mikroorga¬ nizm Streptomyces hygroscopicus ATCC 31 050 ho¬ duje sie w temperaturze 28—38°C, w wodnym sro¬ dowisku hodowlanym, zawierajacym przyswajalne zródlo wegla, azotu i soli nieorganicznych, w wa¬ runkach aerobowych w zanurzeniu, az do uzyska¬ nia zawartosci antybiotyku co najmniej 50 mg na litr, po czym bulion fermentacyjny, zawierajacy antybiotyk, suszy sie calkowicie bez regulacji war¬ tosci pH. CH3 I .OCH, (Ty OH A^ H3C ]Hfrff h H'' H0C {OH hTq CHj _ H3Cd CH3 3 CH3 0CH3 OH CH3 Wzór97 341 Ffr.l. lO II 12 13 14 Dlugosc foli *v mikrort&ch ficr.Claims 1. A method for the production of the novel antibiotic compound 38,295 having the formula shown in the drawing, characterized in that the microorganism Streptomyces hygroscopicus ATCC 3,1,050 is grown at a temperature of 28-36 ° C in a water A cultivation vessel containing an available source of carbon, nitrogen and inorganic salts under immersion aerobic conditions until an antibiotic content of at least 50 mg per liter is obtained, after which the compound 38,295 is released from the fermentation broth. 2. The method according to claim The method of claim 1, wherein the compound 38,295 is separated from the fermentation broth by extracting the broth without adjusting the pH value with a water-immiscible organic solvent, the organic extract is concentrated and the compound 38,295 is isolated by a chroma method. column matography on silica gel. 3. A method for the production of a novel antibiotic compound 38,295 having the formula shown in the drawing, characterized in that the microorganism Streptomyces hygroscopicus ATCC 31,050 is grown at a temperature of 28-38 ° C in an aqueous culture environment, with an available source of carbon, nitrogen and inorganic salts under immersion aerobic conditions until an antibiotic content of at least 50 mg per liter is obtained, then the fermentation broth containing the antibiotic is dried completely without adjusting the pH value. CH3 I .OCH, (Ty OH A ^ H3C] Hfrff h H '' H0C {OH hTq CHj _ H3Cd CH3 3 CH3 0CH3 OH CH3 Formula 97 341 Ffr.l. 10 II 12 13 14 Film length * v microns & ch ficr. 2. W lO U J2 J3 J4 Dlugosc foli w mikronach97 341 JFfr.2. W 10 U J2 J3 J4 Length of foil in microns 97 341 JFfr. 3. ID M J2 13 14 Dlugosc foli n mikronach J%r:3. ID M J2 13 14 Length of foil n microns J% r: 4. 7 8 9 JO If IZ J3 J4 Dlugosc foli *v mikronach PL4. 7 8 9 JO If IZ J3 J4 Film length * in microns PL
PL1975182636A 1974-08-09 1975-08-08 METHOD OF MAKING A NEW ANTIBIOTIC COMPOUND 38295 PL97341B1 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US49628974A 1974-08-09 1974-08-09

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL97341B1 true PL97341B1 (en) 1978-02-28

Family

ID=23972000

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1975182636A PL97341B1 (en) 1974-08-09 1975-08-08 METHOD OF MAKING A NEW ANTIBIOTIC COMPOUND 38295

Country Status (6)

Country Link
AT (1) AT342765B (en)
BE (1) BE831947A (en)
CS (1) CS195709B2 (en)
HU (1) HU174820B (en)
PL (1) PL97341B1 (en)
ZA (1) ZA754572B (en)

Also Published As

Publication number Publication date
BE831947A (en) 1976-02-02
ATA602975A (en) 1977-08-15
ZA754572B (en) 1976-06-30
AT342765B (en) 1978-04-25
HU174820B (en) 1980-03-28
CS195709B2 (en) 1980-02-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1160972A (en) Polyether compounds
US4582822A (en) Antibiotic A80190, pharmaceutical compositions containing same and method of use
FI58791B (en) REFERENCE TO A FRAME EXTERNAL ACCOUNTING AGAINST DEXINARASINANTIBIOTIKUMBLANDNING VILKEN AER ANTIBAKTERIELL OCH COCCI MOTORBETANDE OCH BIDRAR TILL TILLGODOGOERANDE AV FODER HOS IDISSLARE
US4129578A (en) Polycyclic ether antibiotic
US4683201A (en) Antibiotic A80190-producing Actinomadura oligospora and process
US4229535A (en) Method for preparing multhiomycin
JPH08835B2 (en) New antibiotic
US4279894A (en) Streptomyces metabolite
FI76836B (en) FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV ETT NYTT ANTIBIOTIKUM X-14934A.
SU509246A3 (en) The method of obtaining antibiotic
US4670260A (en) Antibiotic for animal feeds
US4517178A (en) Novel antibiotic 76-11, process for the production thereof, anticoccidiosis agent and domestic animals growth accelerator comprising the same as an effective ingredient
PL97341B1 (en) METHOD OF MAKING A NEW ANTIBIOTIC COMPOUND 38295
US3932619A (en) Metabolite A-27106 and processes for its preparation and use
US4582853A (en) Treatment of coccidiosis with antibiotic X-14934A
GB2027013A (en) Compound M.139603 from Streptomyces longisporoflavus, and its use in ruminants
US3968204A (en) Antibiotic A-2315
EP0293787B1 (en) Antibiotic 6270B, processes for its production, and its use as an anticoccidiosis agent and a feed additive
SE437917B (en) ANIMAL FEEDS INCLUDING A NEW CHEMICAL SOCIETY THAT PROMOTES GROWTH AND IMPROVES ANIMAL FEEDING APPROPRIATE
IL44065A (en) Metabolite a-27106 and process for its preparation and its use as coccidiostatic agent and feed additive
KR800001240B1 (en) Process for producing the polycyclic ether antibiotics
PL87266B1 (en)
EP0158179A2 (en) Antibiotic 6270, process for its production, and its use as an anticoccidiosis agent and a feed additive
PL99573B1 (en) METHOD OF MAKING ANTIBIOTIC MIXTURE 35763,36926,37277 AND 37,932
NO166800B (en) PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF ANTIBIOTICS X-14868A, X-14868B, X-14868C, AND X-14868D BY PROCESSING NOCARDIA X-14868.