PL190140B1 - Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznejaktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych oraz zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych - Google Patents

Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznejaktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych oraz zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych

Info

Publication number
PL190140B1
PL190140B1 PL97321825A PL32182597A PL190140B1 PL 190140 B1 PL190140 B1 PL 190140B1 PL 97321825 A PL97321825 A PL 97321825A PL 32182597 A PL32182597 A PL 32182597A PL 190140 B1 PL190140 B1 PL 190140B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
pancreatin
lipases
digestive
enzymes
mixtures
Prior art date
Application number
PL97321825A
Other languages
English (en)
Other versions
PL321825A1 (en
Inventor
Manfred Galle
Original Assignee
Solvay Pharm Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Solvay Pharm Gmbh filed Critical Solvay Pharm Gmbh
Publication of PL321825A1 publication Critical patent/PL321825A1/xx
Publication of PL190140B1 publication Critical patent/PL190140B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/66Phosphorus compounds
    • A61K31/683Diesters of a phosphorus acid with two hydroxy compounds, e.g. phosphatidylinositols
    • A61K31/685Diesters of a phosphorus acid with two hydroxy compounds, e.g. phosphatidylinositols one of the hydroxy compounds having nitrogen atoms, e.g. phosphatidylserine, lecithin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/465Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1), e.g. lipases, ribonucleases
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
    • A61K47/24Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing atoms other than carbon, hydrogen, oxygen, halogen, nitrogen or sulfur, e.g. cyclomethicone or phospholipids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/06Antihyperlipidemics

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

1 Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujacych przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywnosci pod wplywem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawierajacych lipazy i proteazy, nadajacych sie do wytwarzania wodnych roztworów do ciaglego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomoca sondy, przy czym jako kompleksowe lipidy stosuje sie fosfolipidy z grupy skladajacej sie z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydy- loseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipi- dów zawierajacych te fosfolipidy. 7. Rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych zawierajacych lipazy i proteazy, które nadaja sie do wytwarzania wodnych roztworów do ciaglego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomoca sondy, znamienne tym, ze w celu stabilizacji przeciw zmniejszaniu aktywnosci lipolitycznej pod wplywem wilgoci zawieraja wystarczajaca ilosc fosfolipidów z grupy skladajacej sie z kwasów fosfatydo- wych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierajacych te fosfolipidy. 14. Zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych, wolnych od zarazków, stabilizowany przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywnosci, nadajacy sie do ciaglego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomoca sond, znamienny tym, ze jako czesci skladowe zawiera............................................................................................................... PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawiera190 140 jących lipazy i proteazy, nadających się do wytwarzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, przy czym jako kompleksowe lipidy stosuje się fosfolipidy z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy.
Przedmiotem wynalazku są również rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, które nadają się do wytwarzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, charakteryzujące się tym, ze w celu stabilizacji przeciw zmniejszaniu aktywności lipolitycznej pod wpływem wilgoci zawierają wystarczającą ilość fosfolipidów z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy.
Przedmiotem wynalazku jest także zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych, wolnych od zarazków, stabilizowany przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, nadający się do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sond.
Kompleksowe lipidy, nadające się jako stabilizujące dodatki według wynalazku, są z reguły nierozpuszczalne w acetonie. Zaliczają się do nich w szczególności fosfolipidy, zawierające fosfor i wolne od węglowodanów jak tez glikolipidy zawierające węglowodany a nie zawierające fosforu oraz ich mieszaniny. Korzystnie stosuje się tylko fosfolipidy lub mieszaniny zawierające fosfolipidy i glikolipidy.
Korzystnie mieszaniny enzymów trawiennych zawierające lipazy i proteazy stanowią mieszaniny enzymów trawiennych zawierające pankreatynę.
Lipidy wprowadza się do pankreatyny wprowadzanej do preparatów farmaceutycznych juz podczas jej uzyskiwania lub przetwórstwa w celu stabilizacji przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności podczas etapów procesu, w których stosuje się wilgoć.
Jako fosfolipidy, które mogą być stosowane według wynalazku jako stabilizujące dodatki do mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, w szczególności mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatyny, nadają się w szczególności sole anionów o ogólnym wzorze 1, w którym:
R1 oznacza wodór lub rodnik alkanoilowy o 10 do 25 atomach węgla, której rodnik węglowodorowy może zawierać w szczególności 1-4 podwójne wiązania;
R2 oznacza wodór lub rodnik alkanoilowy o 10 do 25 atomach węgla, którego rodnik węglowodorowy w szczególności może zawierać 1-4 podwójnych wiązań, lub, jeśli R1 nie oznacza wodoru, może także oznaczać wodór;
R3 oznacza wodór, nizszy rodnik alkilowy, który może być podstawiony grupą aminową, nizszą trójalkiloamoniową, lub grupą w której atom węgla połączony z grupą aminową może być związany z grupą karboksylową lub rodnikiem cykloalkilowym podstawionym grupą hydroksyową;
R4 oznacza wodór lub łańcuch węglowodorowy o 10-25 atomach węgla, który może w szczególności zawierać 1-4 podwójnych wiązań;
A stanowi tlen lub NH z kationem dopuszczalnym fizjologicznie.
Jako kationy dopuszczalne fizjologicznie nadają się jony amoniowe, kationy metali alkalicznych lub metali ziem alkalicznych, korzystnie sód, potas lub wapń, jak też dalsze kationy jedno lub wielowartościowe dopuszczalne fizjologicznie. O ile R3 zawiera atom azotu, może on tworzyć czwartorzędowy jon amoniowy, który może dalej służyć jako kation, tak, ze mogą się utworzyć nienaładowane sole wewnętrzne.
O ile rodnik R1 i/lub R2 w związku o wzorze 1 przedstawiają rodnik alkanoilowy, może on być prostołańcuchowy lub rozgałęziony, lecz z reguły jest nierozgałęziony i zawiera 10-25, korzystnie 16-20 atomów węgla. Ten rodnik alkanoilowy może zawierać do 4 podwójnych wiązań. Jako rodniki alkanoilowe mogą wchodzić w grę w szczególności rodniki długołańcuchowych kwasów tłuszczowych, jak kwasu nerwonowego, lignocerynowego, palmitynowego, kwasu palmitoleinowego, stearynowego, oleinowego, linolowego, linolenowego, arachidynowego lub arachidonowego.
O ile podstawnik r3 oznacza, lub zawiera nizszą grupę alkilową, może być ona o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym i w szczególności może zawierać 1-4, korzystnie 1-2 atomy
190 140 węgla. O ile R3 oznacza grupę cykloalkilową podstawioną grupą hydroksylową, może ona zawierać 3 do 6 atomów węgla i być podstawiona przez jedną lub więcej grup hydroksylowych. Korzystnie grupa cykloalkilową zawiera 5-6 atomów węgla i może być podstawiona każdorazowo przez grupę hydroksylową.
Grupa R3O przedstawia korzystnie hydroksyl lub grupę alkoksylową powstałą przez zestrowanie jedno lub wielowodorotlenowego alkoholu grupą fosforanową, przy czym jedno lub wielowartościowy alkohol wybrany jest z grupy składającej się z aminoetanolu, choliny, seryny, gliceryny i myoinozytolu.
O ile ugrupowanie R4 stanowi łańcuch węglowodorowy, może on być prostołancuchowy lub rozgałęziony, lecz z reguły jest on nierozgałęziony i zawiera 10-25, korzystnie 12-20, w szczególności 15 atomów węgla. Łańcuch węglowodorowy może zawierać do 4, korzystnie 2 a szczególnie korzystnie 1 podwójne wiązanie.
Grupa A może oznaczać tlen lub grupę NH.
Korzystnie, jako fosfolipidy wchodzą w grę kwas fosfatydowy (kwas 1,2-diacylo-sn-glicerylo-3-fosforowy), fosfatydocholina, (1,2-diacylo-sn-glicerylo-3-fosforylocholina), fosfatydyloetanoloamma/(1,2-diacylo-sn-glicerylo-3-fosforyloetanoloamina), fosfatydylo-seryna (1,2-diacylo-sn-glicerylo-3-fosforyloseryna), fosfatydyloinozyt (1,2-diacylo-sn-glicerylo-3-fosforyloinozyt) i w przypadku, gdy fosfolipidy pochodzą ze źródeł zwierzęcych, jak przykładowo z jaja kurzego może to być także sfingomielina, jak tez mieszanina tych związków. Omawiane 1,2-diacyłofosfolipidy mogą w określonych warunkach ulegać częściowej hydrolizie pod enzymatycznym wpływem fosfolipazy. W zależności od charakteru fosfolipazy, mogą przy tym ugrupowania R1 R2, r3 lub także [R3OPO2]’ z 1,2-diacylofosfolipidu zostać zastąpione przez wodór. Jeśli przynajmniej jedno wspomniane ugrupowanie każdej cząsteczki fosfolipidu ulegnie hydrolizie, powstają tak zwane lizofosfolipidy, w szczególności lizofosfatydylocholina, lizofosfatydyloetanoloamina, lizofosfatydyloinozyt, lizofosfatydyloseryna i kwas lizofosfatydylowy. Także i te lizofosfatydylolipidy nadają się jako dodatki stabilizujące do mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, w szczególności mieszanin enzymów trawiennych, zawierających pankreatynę, według wynalazku.
Jako glikolipidy mogą być stosowane występujące przede wszystkim w roślinach, tak zwane fitoglikolipidy o ogólnym wzorze 2, w którym:
R5 i R6 niezależnie od siebie oznaczają grupę alkanoiiowąo 10-25 atomach węgla, których reszta węglowodorowa może w szczególności zawierać 1-4 podwójne wiązania, lub oznaczać wodór, przy czym jednak równocześnie R5 i r6 nie mogą oznaczać wodoru, i
R7 oznacza resztę mono- lub dicukrową, której baza szkieletu cukru wybrana jest z grupy składającej się z d-fruktozylu, d-galaktozylu, d-glukozylu i d-mannozylu, jak też ich mieszanin.
Jeśli w związku o wzorze 2, podstawniki r5 i R6 stanowią rodnik alkanoilowy, może on być rozgałęziony lub nierozgałęziony przy czym zwykle jest nierozgałęziony i zawiera zwykle 10-25, korzystnie 16-20 atomów węgla. W szczególności ten podstawnik alkanoilowy zawiera do 4 podwójnych wiązań. Jako podstawniki karboksylanowe wchodzą w grę szczególnie podstawniki z długołańcuchowych kwasów tłuszczowych, jak palmitynowego, palmitolemowego, stearynowego, olejowego, linolowego, linolenowego lub arachidynowego.
Podstawnik r7 stanowi ugrupowanie mono- lub disacharydowe, które może być oparte na strukturze cząsteczki cukru, d-galaktozy, d-glukozy, d-mannozy lub d-fruktozy. Szczególnie korzystnie podstawnik r7 oznacza d-galaktozę (w tym przypadku chodzi o digliceryd-monogalaktozy, MGDG) lub digalaktozę (chodzi wówczas o digalaktozylo-digliceryd, DGDG; 1,2-diacylo-[a-d-galaktozylo(1->6)-fJ-d-galaktozylo (1->3)]-sn-glicerynę).
Fosfolipidy o ogólnym wzorze 1 oraz gikolipidy o ogólnym wzorze 2 posiadają na środkowym atomie węgla łańcucha podstawowego gliceryny każdorazowo centrum chiralności i mogą być skonfigurowane jako postać R- lub S-. Dla celów niniejszego wynalazku mogą być stosowane poszczególne postaci stereoizomerów związku o wzorze 1 i/lub 2 jak tez i ich odpowiednie mieszaniny.
Do stabilizowania preparatów farmaceutycznych w postaci mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, w szczególności mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę, jako użyteczne okazały się takie mieszaniny lipidów, które mogą być uzyskane ze źródeł naturalnych i które stanowią mieszaninę różnych fosfolipidów
190 140 a w szczególności różnych glikolipidów. Jako szczególnie korzystny przykład takich naturalnych mieszanin lipidów można wymienić lecytynę. Źródła takich naturalnych lecytyn mogą stanowić w szczególności rośliny, jak ziarna soi, słonecznika, rzepaku, kukurydzy lub orzeszków ziemnych, jak tez zwierzęta lub produkty zwierzęce, jak żółtko jaja lub móżdżki, ale także mikroorganizmy. Lecytyny pochodzenia naturalnego są ogólnie dostępne handlowo od różnych oferentów.
Spośród lecytyn uzyskiwanych z roślin dla celów niniejszego wynalazku nadaje się szczególnie lecytyna sojowa, w szczególności lecytyna sojowa wzbogacona fosfolipidami, jak na przykład lecytyna sojowa z zawartością fosfolipidów do około 98%. Nieprzetworzona, mewzbogacona roślinna lecytyna zawiera z reguły pewną ilość fitoglikolipidów. Naturalnie uzyskane lecytyny stanowią mieszaninę różnych fosfolipidów i w przypadku pochodzenia roślinnego także glikolipidów, których skład nie jest jednorodny, lecz może się zmieniać w zalezności od pochodzenia. Tak więc obok wyżej szeroko omawianych części składowych mogą być zawarte jeszcze dalsze fosfolipidy w nieokreślonych ilościach. Tabela 1 służy więc do zilustrowania przeciętnych składów nieprzetworzonych, niewzbogacanych handlowych lecytyn naturalnego pochodzenia.
Tabela 1
Skład lecytyny (%)
lecytyna sojowa lecytyna z rzepaku lecytyna z orzeszków ziemnych lecytyna zjaja
fosfatydylochohna 22 37 23 73
fosfatydyloetanolo amina 23 29 8 17
fosfatydyloseryna 2 - - -
fosfatydyloinozyt 20 14 17 1
kwasy fosfatydowe 5 - 2 -
sfingomielina - - - 3
fitoglikolipidy 13 20 38 0
inne fosfolipidy 12 - 12
Stabilizowane preparaty farmaceutyczne według wynalazku zawierają korzystnie mieszaninę enzymów trawiennych, zawierającą pankreatynę
W ramach niniejszego wynalazku, pod nazwą pankreatyny rozumieć się będzie pankreatynę izolowaną z trzustki ssaków, w których zawartość aktywnych proteaz, jest podwyzszona w szczególności przez autolityczne rozszczepienie występujących w niej pierwotnie proenzymów proteazy.
Korzystnie dla mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę w postaci preparatów farmaceutycznych stabilizowanych według wynalazku, chodzi o pankreatynę uzyskiwaną z trzustki ssaków, w szczególności trzustki świń, która przedstawia sobą mieszaninę różnych enzymów trawiennych. Pankreatyna ssaków, nadająca się jako środek pomocniczy przy trawieniu podczas żywienia ludzi, w szczególności pankreatyna z trzustki świń, nie zawsze zawiera wystarczające ilości lipaz dla potrzeb ludzkich. Dlatego można do takich preparatów pankreatynowych dodawać w dodatkowej ilości lipazy uzyskane z mikroorganizmów. Także i w ten sposób uzyskane mieszaniny pankreatynowo-lipazowe stanowią odpowiednią mieszaninę enzymów
W pankreatynie wyizolowanej ze ssaków, proteazy, jeśli nie podda się pankreatyny żadnej dalszej obróbce, znajdują się w dużej części we wstępnej, nieaktywnej proteolitycznie postaci, proenzymu. Dlatego może być celowe, aby surową pankreatynę dla celów farmaceutycznych, która w znany sposób została uzyskana z trzustki na drodze wytrącania, poddać dal8
190 140 szej obróbce hydrolitycznej (autoliza). Podczas tej obróbki proenzymy przeprowadzone zostaną w aktywne proteazy. W takiej pankreatynie poddanej procesowi autolizy (następnie krótko nazywanej jako F-pankreatyna) znajduje się szczególnie wysoka zawartość aktywnych proteaz, tak, ze ta F-pankreatyna ze względu na swą lipolityczną aktywność jest szczególnie niebezpieczna. Zastosowanie kompleksowych lipidów według wynalazku nadaje się szczególnie dobrze do stabilizacji aktywności lipolitycznej w preparatach farmaceutycznych zawierających F-pankreatynę. Jest przy tym zaskakujące, ze stabilizacje aktywności lipaz osiąga się nie przez dezaktywację aktywnych proteaz zawartych w mieszaninie i ze tego rodzaju stabilizowana mieszanina enzymów wykazuje dzięki temu zarówno amylolityczną i lipolityczną jak tez proteolityczną aktywność.
Te mieszaniny enzymów trawiennych w stabilizowanych preparatach farmaceutycznych według wynalazku mogą, obok pankreatyny dodatkowo zawierać takie lipazy jakie znajdują się w roślinach lub mikroorganizmach. Lipazy z mikroorganizmów mogą stanowić lipazy, które mogą być uzyskiwane z bakterii lub kultur grzybów, jak pleśniaki, przykładowo szczepu Rhizopus.
Jako dodatkowy udział proteaz, można do mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę w stabilizowanych według wynalazku preparatach farmaceutycznych dodawać innych zwierzęcych i roślinnych proteaz, jak tez w szczególności proteaz uzyskiwanych z mikroorganizmów takich jak bakterie lub kultury grzybów, przykładowo szczepu Aspergillus.
Mieszaniny enzymów trawiennych nie zawierające pankreatyny mogą zawierać jako lipazy, lipazy uzyskane z roślin lub mikroorganizmów. Lipazy z mikroorganizmów mogą stanowić lipazy uzyskane z bakterii lub kultury grzybów, jak pleśniaki, przykładowo szczepu Rhizopus Jako proteazy w mieszaninach enzymów trawiennych nie zawierających pankreatyny wchodzą w grę proteazy uzyskiwane ze zwierząt lub roślin, jak też proteazy z mikroorganizmów jak bakterie lub kultury grzybów jak pleśniaki, przykładowo szczepu Aspergillus.
Preparaty farmaceutyczne według wynalazku mogą zawierać obok mieszaniny enzymów trawiennych i kompleksowych lipidów dodatkowe rozpuszczalne w wodzie farmaceutyczne środki pomocnicze i/lub dodatki. Przykładowo mogą zawierać nośniki, takie jak węglowodany, przykładowo mannit, lub rozpuszczalne białka jak też środki konserwujące.
Preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę w znaczeniu wynalazku mogą stanowić proszek rozpuszczalny w wodzie, który obok pankreatyny, w szczególności F-pankreatyny, zawiera kompleksy lipidów w ilości wystarczającej do stabilizowania lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci i w szczególności dodatkowo znane rozpuszczalne w wodzie środki pomocnicze i/lub dodatki.
W celu wytworzenia proszku rozpuszczalnego w wodzie mieszanina enzymów może w dużym stopniu być uwolniona od nierozpuszczalnych w wodzie części składowych. W tym celu można poddać wodny preparat F-pankreatyny obróbce za pomocą odpowiedniego, znanego sposobu oddzielania części stałych, przykładowo odwirowywaniu lub filtracji, w celu oddzielenia części stałych i otrzymane roztwory, w szczególności po dodaniu dalszych środków pomocniczych i/lub dodatków sterylizować na drodze znanych metod, przykładowo filtracji sterylizującej. Na koniec można zawarte substancje z uzyskanego przezroczystego, w szczególności sterylnego roztworu odzyskać ponownie w postaci ciała stałego na drodze znanych procesów suszenia, przykładowo suszenia przez liofilizację. Tak otrzymane preparaty nadają się do wytwarzania stabilnych przez wiele godzin, na przykład do ośmiu godzin, roztworów, w szczególności wolnych od wzrostu mikroorganizmów, nadających się do ciągłego równomiernego podawania zołądkowo-jelitowego dla pacjentów, na przykład za pomocą sondy.
Pod pojęciem ciągłego podawania rozumie się zasadniczo nieprzerwane aplikowanie, w tym przypadku sterylnych wodnych roztworów otrzymanych z preparatów farmaceutycznych według wynalazku, w przeciągu okresu czasu od jednej godziny do wielu godzin, przykładowo 8 godzin, prawie przez całą noc. Ciągła aplikacja roztworu może odbywać się korzystnie przez sondę wprowadzoną do traktu pokarmowego, przykładowo do żołądka lub jelita cienkiego.
Działanie dodatku lecytyny jest w dużym stopniu niezależne od stosunku zawartości proteaz do lipaz w mieszaninie enzymów. Nadają się przykładowo mieszaniny enzymów, w których stosunek lipaza/proteaza sumaryczna, mierzony kazdorazowo stosunkiem aktywno190 140 ści, dokonywanym według przepisów „Federation Internationale Pharmaceutique” (w skrócie określanym jako FIP), (patrz R. Ruyssen i A. Lauwers, Pharmaceutical Enzymes, Scientific Publishing Company, Gent 1978, strony 74-82, cytowany następnie jako „Lauwers”) i podawany następnie w jednostkach umownych aktywności, w skrócie jako FEP-E/g może wynosić od około 5:1 do około 30:1.
Zasadniczo, dodatek kompleksowych lipidów według wynalazku, do preparatów farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, w szczególności enzymów trawiennych zawierających pankreatynę, działa jako stabilizator przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci. Pod nazwą wilgoć powinno się rozumieć głównie wodną wilgoć, która może się rozciągać od bardzo niewielkiej zawartości wilgoci w proszku mieszaniny enzymów trawiennych az do wodnego preparatu z tego proszku.
Dodatek kompleksowych lipidów według wynalazku okazał się w dużym stopniu pożyteczny podczas uzyskiwania i przetwórstwa do postaci preparatów farmaceutycznych stosowanych mieszanin enzymów trawiennych, zawierających pankreatynę, w celu stabilizacji lipolitycznej aktywności podczas takich etapów procesu wytwarzania i uzyskiwania, w których może zachodzić dezaktywacja lipazy, jak przykładowo nawadnianie mieszaniny enzymów.
W wodnym roztworze preparatu farmaceutycznego zawierającego mieszaninę enzymów trawiennych, stabilizujące działanie dodanego kompleksu lipidu, w szczególności lecytyny, jest miedzy innymi także niezalezne od wartości pH występującej w preparacie. Korzystne okazały się według wynalazku wartości pH w zakresie 3,5-9,0, bardziej korzystne w zakresie 4,0-7,0, a szczególnie korzystne w zakresie 5,0-6,5.
W celu uzyskania zauważalnej stabilizacji aktywności lipolitycznej w preparatach farmaceutycznych mieszaniny enzymów trawiennych, rozpuszczalnych w wodzie i wodnych roztworów wytworzonych z tych preparatów do podawania sondą konieczne jest dodanie określonej minimalnej ilości kompleksowego lipidu. Zwykle, w preparatach farmaceutycznych według wynalazku, stosowane mieszaniny enzymów trawiennych, mogą wykazywać zawartość lipazy wyrażoną w jednostkach aktywności od przykładowo 2.000 do 200.000 FlP-E/g, jeśli zawierają tylko lipazę z wydzieliny trzustki ssaków, oraz od 2.000 do 500.000 FIP-E/g, jeśli zawierają albo samą lipazę z mikroorganizmów lub w zestawie z lipazą z trzustki. Odpowiednia tu do osiągnięcia zauwazalnej stabilizacji jest ilość przynajmniej 1% wagowych kompleksu lipidu w przeliczeniu na zastosowaną ilość stałej mieszaniny enzymów trawiennych, zawierającej pankreatynę, przykładowo ilość od 1 do 10%o wagowych. Dodatek większej ilości kompleksu lipidu jest możliwy, nie powoduje on jednak żadnego dalszego oznaczalnego polepszenia stabilizacji lipolitycznej aktywności Tak więc przykładowo do stabilizacji mieszanin pankreatyny lub mieszanin pankreatyny zawierających dodatkowe lipazy z kompleksami lipidów, w szczególności lecytyną, nadaje się dodatek przynajmniej 1% wagowego, korzystnie 2 do 5% wagowych, szczególnie korzystnie około 3% wagowych lecytyny.
Z pomocą zastosowania kompleksowych lipidów według wynalazku, pozwalają się stabilizować takie wodne roztwory wytworzone z farmaceutycznych preparatów mieszanin enzymów trawiennych, zawierających pankreatynę, które mają skłonność do szybkiego zmniejszania lipolitycznej aktywności, w taki sposób, ze lipolityczną aktywność zawartych w mieszaninie lipaz przez dłuzszy czas zmniejsza się tylko nieznacznie. Tak więc wodny roztwór F-pankreatyny stabilizowanej przez dodatek lecytyny po 8-godzinnej inkubacji w temperaturze pokojowej wykazuje lipolityczną aktywność końcową wynoszącą 85% początkowej aktywności wyjściowej. W jednym z wodnych roztworów F-pankreatyny, stabilizowanym przez dodatek kompleksu lipidu pozwala się oznaczyć po 24-godzinnym czasie inkubacji jeszcze 50% lipolitycznej aktywności wyjściowej. W przeciwieństwie do tego w niestabilizowanym roztworze porównawczym w identycznych warunkach, lipolityczną aktywność po 8 godzinach obniżyła się do poniżej 20% aktywności wyjściowej.
Stabilizacja według wynalazku farmaceutycznych preparatów rozpuszczalnych w wodzie, mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, zapobiegająca zmniejszaniu lipolitycznej aktywności w wodnym medium otwiera możliwość zaopatrywania pacjentów w tego rodzaju mieszaniny enzymów trawiennych w postaci wodnego roztworu przez wprowadzanie w sposób ciągły do traktu pokarmowego. Te wprowadzane tu wodne roztwory powinny naturalnie być wolne od zarazków, korzystnie być nawet sterylne. Roztwory wolne
190 140 od zarazków mogą stanowić przykładowo roztwory, w których namnazanie zarazków, samomnozących się będzie wstrzymywany przez dodatek środków konserwujących.
Przedmiotem wynalazku jest również jak to wyżej wskazano zestaw do wytwarzania, nadającego się do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, wolnego od zarazków wodnego roztworu stabilizowanego przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, z mieszaniny enzymów trawiennych, charakteryzujący się tym, ze zawiera-
a) stały, rozpuszczalny w wodzie, wolny od zarazków preparat farmaceutyczny z mieszaniny enzymów trawiennych, zawierających lipazy i proteazy, który w celu stabilizacji przed zmniejszeniem lipolitycznej aktywności wytwarzanego roztworu może zawierać wystarczającą ilość kompleksowego lipidu i
b) wystarczającą do wytworzenia wodnego roztworu ilość rozpuszczalnika, wolnego od zarazków, który obok wody może zawierać dopuszczalne fizjologicznie sole i środki pomocnicze i w przypadku jeśli stały preparat farmaceutyczny wymieniony w punkcie a) nie zawiera wystarczającej do stabilizacji wodnego roztworu przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, ilości kompleksowego lipidu, dodatkowo zawiera wystarczającą ilość tego kompleksowego lipidu do stabilizacji przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności.
W szczególności można wytwarzać stosowany w zestawie liofilizowany stały preparat
a) mieszaniny enzymów trawiennych, zawierający lipazy i proteazy, który zawiera komleksowe lipidy. Korzystnie chodzi tu o mieszaniny enzymów trawiennych zawierających pankreatynę.
Wodne roztwory, wolne od zarazków, mogą być uzyskane przez dodatek znanego środka konserwującego, przykładowo parabenu. Roztwory sterylne, które przedstawiają sobą roztwory nie wykazujące namnażania się zarazków, mogą być uzyskane znanymi sposobami sterylizacji, przykładowo na drodze filtracji sterylizującej.
Te lipidy zawarte w zestawie mogą stanowić korzystnie dodatki zawarte na gotowo juz w mieszaninie enzymów trawiennych (część składowa a)). Aby wytworzyć proszek enzymów trawiennych zawierający juz komplekowe lipidy, można przykładowo zmieszać w danym przypadku wolny od zarazków roztwór kompleksowego lipidu z wolnym od zarazków roztworem mieszaniny enzymów trawiennych i w końcu wysuszyć w znany sposób, przykładowo przez liofilizację. Aby z niego otrzymać roztwór nadający się do aplikacji za pomocą sondy, proszek zawierający kompleksowe lipidy jak tez mieszaninę enzymów trawiennych musi być zmieszany z rozpuszczalnikiem, zawartym w zestawie, w danym wypadku w warunkach wolnych od zarazków lub o małej ilości zarazków. Komplekowe lipidy mogą być jednak także juz rozpuszczone w rozpuszczalniku (część składowa b)), przykładowo jako koloid. Aby uzyskać roztwory nadające się do stosowania przez sondę, w tym przypadku wodny roztwór lub koloid, zawierający kompleksowe lipidy musi być w sterylnych warunkach zmieszany z mieszaniną enzymów trawiennych (część składowa a)).
Przykłady wykonania
1. Stabilizacja lipolitycznej aktywności wodnych roztworów pankreatyny za pomocą lecytyny sojowej
Aby określić różne zmiany aktywności lipolitycznej z dodatkiem i bez dodatku kompleksu lipidu w wodnych roztworach preparatów pankreatynowych, przygotowywano odpowiednie próbki i inkubowano w 30°C. Na podstawie inkubowanych próbek określano zmiany aktywności lipaz w zalezności od czasu metodą według „Federation Internationale Pharmaceutiąue/European Pharmakopeia” (w dalszym ciągu skrótowo określaną jako FlP/Ph. Eur., patrz Lauwers, strony 74-82). W tej standardowej metodzie badania pozwala się oddziaływać aktywności lipazy badanych próbek w hydrolitycznych warunkach, na trójglicerydy oleju z oliwek i miareczkuje uwolnione kwasy karboksylowe wodorotlenkiem sodowym do pH wynoszącego 9. Aktywność lipolityczną próbek określana jest przy tym, przez porównanie szybkości, z jaką hydrolizuje próbka emulsji oleju z oliwek, z szybkością z którą hydrolizuje ten sam substrat w tych samych warunkach z suspensją proszku referencyjnego pankreatyny.
1. 1 Badanie stabilności lipazy bez dodatku lecytyny
79,35 mg rozpuszczalnej w wodzie, liofilizowanej F-pankreatyny o aktywności lipolitycznej 50473 FIP-E/g rozpuszczono w 4,0 ml lodowatej wody o najwyzszej czystości (Nanopur® firmy Bamstead), nastawiono pH za pomocą In HC1 na 6,2 i dopełniono wsad do 5,0 ml
190 140 wodą o najwyzszej czystości. Z tego wsadu pobrano natychmiast próbkę do określenia lipolitycznej aktywności wyjściowej (próba „czasu zero-minut”). Pozostały wsad inkubowano w 30°C w kąpieli wodnej. W celu pobierania próbek wsad dobrze mieszano, pobierano próbkę za pomocą odpowiedniej pipety i rozcieńczano lodowatym rozcieńczalnikiem lipazy tak, że do dyspozycji powstawało do określania lipazy między 0,5 a 1,5 ml roztworu badawczego o aktywności lipolitycznej od 8 do 16 FIP/E. Jako rozpuszczalnik lipazy, zgodnie z FIP/Ph.Eur stosowano roztwór 10,0 g NaCl, 6,06 (tris-hydroksymetylo)aminometanu (określanego dalej krótko jako „TRIS”) i 4,9 g bezwodnika kwasu maleinowego w 900 ml wody o najwyzszej czystości, którego pH nastawione było na wartość 7,0 za pomocą 4 n ługu sodowego i w końcu dopełnionego do 1000 ml wodą o najwyzszej czystości.
Aby określić przebieg aktywności lipazy w czasie pobierano po 15, 30, 60, 120 i 180 minutach dalsze próbki z termostatowanego wsadu, i w nich określano kazdorazowo w ciągu 30 minut aktywność lipazy według metody FIP/Ph.Eur. (Lauwers, str. 78).
Określona w „czasie zero-minut” aktywność lipazy w jednostkach FIP-E/ml stanowiła wartość 100% a dalsze wartości aktywności zmierzone podczs dalszego czasu inkubacji przeliczano procentowo w stosunku do tej wartości. Wyniki podano w tabeli 2.
1.2. Badanie stabilności lipazy z dodatkiem lecytyny
W celu sporządzenia roztworu lecytyny, 100 mg lecytyny sojowej (zawartość fosfolipidów około 98%, firmy Roth) w temperaturze pokojowej zanurzono początkowo w niewielkiej ilości wody o najwyższej czystości a następnie dopełniono do 20,0 ml. Mieszaninę napromieniowywano ultradźwiękami, z mieszaniem przez około 2 minuty do osiągnięcia jednorodnego koloidalnego roztworu. Następnie rozpuszczono 80,0 mg wodorozpuszczalnej, liofilizowanej F-pankreatyny o lipolitycznej aktywności 54694 FIP-E/gram w 4,0 ml wody o najwyższej czystości i nastawiono pH roztworu za pomocą 1 n HC1 na 6,2. Dodano 0,4 ml roztworu lecytyny (2,5% lecytyny w przeliczeniu na wprowadzony proszek F-pankreatyny) i dopełniono wsad podczas dobrego mieszania lodowatą wodą o najwyzszej czystości do 5,0 ml. Pobierania próbek i określania lipolitycznej aktywności dla każdorazowego czasu inkubacji dokonywano metodą opisaną w punkcie 1.1. Wyniki przedstawiono w tabeli 2.
Tabela 2
Zmiany aktywności lipolitycznej w wodnych roztworach pankreatyny z dodatkiem i bez dodatku lecytyny
PH Dodatek lecytyny % haohtycaypj aktywności po upływie czasu t (min)
0 15 30 60 120 180
6,2 - 100 69 51 41 26 21
6,2 2,5% 103 93 90 86 80 75
2. Stabilizaajj lipollitOcr^cj aktywności wodnych prepaartów pankrratyny na przceiag godzin
W wodnych preparatach aaykrekónyy, w zalezności od różnych cayyyików, jak temperatura, wartość pH i proteolityczna aktywność zawartych proteaa, występują straty liaolityczyej aktywności. Przez dodatek kompleksowych lipidów jak lecytyna, można wyraźnie stabilizować aktywność llaka w okresie czasu inkubacji ponad 8 godzin. W następującym dalej pizckładzie były więc porównywane w ciągu 8 godzin, llpdlityczye aktywności w wodnych suspensjach i roztworach F-pankreatyny kazdorazowo z dodatkiem i bez dodatku kompleksowych lipidów.
2.1. Sporządzame wsadu do iar<uitajji
W celu porównania, badano przezroczyste roztwory pankreatyny i suspensje pankreatyny z F-pankreatyny kazdorazowo z dodatkiem i bez dodatku lecytyny. Sporządzono następujące wodne preparaty:
190 140
a) Roztwór pankreatyny bez lecytyny
Rozpuszczono 77,5 mg rozpuszczalnego w wodzie, liofilizowanego proszku F-pankreatyny w lodowatej wodzie w sposób opisany w punkcie 1.1, przy czym pH nastawiono na 6,2 za pomocą 1 n HC1.
b) Roztwór pankreatyny z lecytyną
81,0 mg rozpuszczalnego w wodzie, liofilizowanego proszku F-pankreatyny domieszano w sposób opisany w punkcie 1,2, po nastawieniu pH na 6,2, do 0,94 ml roztworu lecytyny i dopełniono do 5,0 ml za pomocą lodowatej wody o najwyzszej czystości.
c) Suspensja pankreatyny bez lecytyny
Mieszano przez 30 minut 2,0 g F-pankreatyny w 100 ml lodowatej wody o najwyzszej czystości. Uzyskano mętną suspensję,
d) Suspensja pankreatyny z lecytyną
2.0 g F-pankreatyny zmieszano ze 100 mg lecytyny sojowej (firmy Roth) i mieszano przez 30 minut w 100 ml lodowatej wody o najwyzszej czystości. Uzyskano mętną suspensję.
2.2 Przebieg doświadczenia
Z wytworzonych według punktu 2.1, lodowatych roztworów lub suspensji natychmiast po wytworzeniu pobierano próbki do określenia wyjściowej aktywności lipolitycznej („próbki zerominut”). Resztę wsadu inkubowano następnie w probówkach przez 8 godzin w 25°C, w tym czasie pobierano dalsze próbki po 30 minutach, a następnie co godzinę. Pobieranie próbek, rozcieńczanie i określanie aktywności lipazy prowadzono zasadniczo jak to opisano w punkcie 1.1, jednak temperatura badania wynosiła tutaj w odróżnieniu od powyzszego przepisu, 25°C.
Aktywność lipaz (wyrażoną w FIP-E/ml) dla próbki „zero minut” dla wsadu do inkubacji ustanowiono jako 100% i zmierzone podczas dalszego czasu inkubacji wartości aktywności odnoszono w procentach w stosunku do tej wielkości. Wyniki są podane w następujących dalej tabelach 3 i 4.
Tabela 3
Przebieg stabilności lipazy w ciągu 8 godzin w roztworach pankreatyny z dodatkiem i bez dodatku lecytyny
Wsad % zawartości lecytyny pH % lipolitycznej aktywności po czasie t [h]
0 0,5 1 2 3 4 5 6 7 8
a) 6,2 100 72 64 47 36 30 27 24 21 19
b) 5,8 6,2 100 97 98 96 98 94 92 89 85 85
Tabela 4
Przebieg stabilności lipazy w ciągu 8 godzin w suspensjach pankreatyny z dodatkiem i bez dodatku lecytyny
Wsad % zawartości lecytyny pH % lipolitycznej aktywności po czasie t [h]
0 0,5 1 2 3 4 5 6 7 8
c) 7,1 100 72 56 43 34 29 25 21 18 16
d) 5 7,1 100 97 97 92 84 77 72 69 64 60
190 140
Stabilizacja lipazy pochodzenia mikrobiologicznego w stosunku do proteazy pochodzenia mikrobiologicznego przez dodatek kompleksowego lipidu.
W następującym dalej przykładzie pokazano, ze aktywność mikrobiologicznych lipaz w obecności aktywnych mikrobiologicznych proteaz daje się stabilizować przez dodatek kompleksowego lipidu. Sporządzono tu trzy roztwory badawcze, które zawierały mikrobiologiczną lipazę, mikrobiologiczną lipazę plus mikrobiologiczną proteazę, jak tez mikrobiologiczną lipazę z dodatkiem lecytyny plus mikrobiologiczną proteazę. Na koniec określano lipolityczną aktywność tych roztworów badawczych i zestawiono do wspólnej postaci tabelarycznej.
3.1 Przygotowanie !ovtwo:ó''wlxdl;mc^^\xh
Wytworzono następujące roztwory badawcze:
a) Roztwór lipazy
245 mg lipazy z Rhizopus oryzae (lipaza 7-AP 15, firmy Amano Pharmaceutical Co., LTD, Nagoya, Japonia) o aktywności 170 000 FIP-E/g rozpuszczono w 50 ml lodowatego 1% roztworu chlorku sodowego.
b) Roztwór proteazy
390 mg proteazy z Aspergillus (prozyme 6; Amano Pharmaceutical Co., LTD, Nagoya, Japonia) o aktywności 7.600 FIP-E/g rozpuszczono w 25 ml lodowatego 1%o roztworu chlorku sodowego.
c) Roztwór lecytyny g lecytyny (Soja-Reinlecithin, o zawartości fosfolipidów około 98%, firmy Roth) dodano do 40 ml wody o najwyższej czystości (Nanopure® firmy Bamstead) i podczas wstrząsania za pomocą ultradźwięków przez 2 minuty rozpuszczono do postaci koloidu.
Z tych roztworów wytworzono w kąpieli lodowej następujące roztwory do inkubacji o łącznej objętości 5 ml.
Tabela 5
Roztwory do inkubacji do określania aktywności lipazy z Rhizopus
Roztwór do inkubacji Roztwór lipazy Roztwór proteazy Roztwór lecytyny Roztwór NaCl
I 3 ml - - 2 ml
II 3 ml 1 ml - 1 ml
III 3 ml 1 ml 1 ml -
Wartość pH dla wszystkich roztworów do inkubacji wynosiła po sporządzeniu 6,5 w 37°C.
3.2 PreebiegOośwjadczema
Z lodowatych roztworów do inkubacji I, II i III natychmiast po sporządzeniu pobrano próbki do określenia aktywności wyjściowej („próbka zero-minut”), pozostałość inkubowano w probówkach w kąpieli wodnej w 37°C.
W celu pobrania próbek wsad dobrze zmieszano, pobrano próbkę za pomocą odpowiedniej pipety i natychmiast rozcieńczono lodowatym rozpuszczalnikiem lipazy jak to opisano w punkcie 1.1. Te próbne roztwory pobierano każdorazowo w określonych ilościach ( w tabeli 6 oznaczono je jako „X”) i rozcieńczano 1%-wym roztworem chlorku sodowego do 5 ml. Z tych roztworów badawczych każdorazowo pobierano 0,5 ml do badania aktywności lipazy
Tabela 6
Pobrane ilości próbek do wytworzenia roztworów badawczych
Roztwór badawczy X pl roztworu badawczego pobranego po czasie t=
0 min 30 min 60 mm
I 150 - 160
II 160 500 1000
III 160 250 250
190 140
3.3. Określenie aktywności lipazy z Rhizopus
Katalityczną aktywność lipazy z Rhizopus mierzono przez określenie ilości wolnych kwasów tłuszczowych, które utworzyły się w ciągu określonego czasu przy pH 7,0 w temperaturze 37°C z emulsji oleju z oliwek w obecności 0,025% taurocholanu sodowego. Aby upewnić się, ze wszystkie kwasy tłuszczowe zostały ujęte prowadzi się końcowe miareczkowanie przy pH 9,0. Ślepa próba miareczkowania emulsji substratu służy do określenia substancji podlegających miareczkowaniu, nie powstałych w wyniku aktywności lipazy.
Aktywność lipazy z Rhizopus substancji badanej określano przez porównanie szybkości hydrolizowanej emulsji oleju z oliwek za pomocą suspensji substancji z szybkością hydrolizowania w tych samych warunkach takiej samej emulsji oleju z oliwek za pomocą suspensji ze standardowej referencyjnej lipazy z Rhizopus.
Reagenty
1. Woda
Stosowano wodę o najwyższej czystości „Nanopure®” firmy Bamstead. Oznaczona jest ona dalej jako woda o najwyższej czystości.
2. Roztwór gumy arabskiej
110 g gumy arabskiej i 12,5 g chlorku wapnia rozpuszczono podczas mieszania (około 3 godziny) w wodzie o najwyższej czystości, dopełniono do 1.000 ml i odwirowano. Roztwór był następnie przelewany do 250 ml opakowań z tworzywa sztucznego i składowany w - 20°C. Guma arabska (guma akacjowa, DaB 10/Farmakopea Europejska) Chlorek wapnia cz.d.a.
3. Emulsja substratu
130 ml oleju z oliwek i 400 ml roztworu gumy arabskiej (2) emulgowano przez 15 minut w odpowiednim mieszalniku o wysokiej ilości obrotów. Utrzymywano temperaturę poniżej 30°C Przynajmniej 90% kropelek w emulsji posiadało średnicę poniżej 3 pm i żadna nie była większa niż 10 pm. Każdego dnia sporządzano świeżą emulsję. Olej z oliwek (składowany w lodówce) o jakości DAB.
4. 0,5 % roztwór taurocholanu sodowego (m/V)
0,5 g taurocholanu sodowego (mieszanina aktywująca lipazę, mieszanina skoniugowanych kwasów żółciowych, m.in. taurocholanu sodowego) rozpuszczono wodą o najwyższej czystości do 100 ml. Codziennie sporządzano świeży roztwór. Taurocholan sodowy (mieszanina aktywująca lipazę) FIP.
1% roztwór chlorku sodowego w wodzie o najwyższej czystości
6. Roztwór buforowy o pH 4,5 g chlorku sodowego i 9,2 g dwuwodorofosforanu sodowego rozpuszczono w około 950 ml wody o najwyższej czystości, nastawiono pH na wartość 4,5 za pomocą kwasu solnego i dopełniono do 1000 ml wodą o najwyższej czystości. Chlorek sodowy cz.d.a, dwuwodorofosforan sodowy NaH2PO4 x H2O.
7. 0,1 n ług sodowy.
Suspensja odniesienia
Standardowa referencyjna lipaza z Rhizopus była wymieszana z roztworem buforowym (6) i rozcieńczona za pomocą roztworu chlorku sodowego (5) tak, aż roztwór enzymatyczny posiadał 12 do 18 jednostek aktywności FIP-E/ml lipazy z Rhizopus. Przy standardzie o 55 000 FIP-E na 1 g rozpuszcza się 63 mg w 20 ml roztworu buforowego (6) w ciągu 15 minut w kąpieli lodowej. 10 ml tego roztworu rozcieńczono roztworem chlorku sodowego (5) do 100 ml w kąpieli lodowej. 0,5 ml tego roztworu stosuje się do testu.
Standardowa referencyjna lipaza z Rhizopus FIP (lipaza z grzybów, FlP-standard).
Roztwory badane
Stosowano badane roztwory I, II1 III.
Przebieg doświadczenia
W urządzeniu automatycznym do miareczkowania z systemem miareczkowania „ustalone pH” firmy Radiometer, nastawiono końcowy punkt miareczkowania dla miareczkowania
190 140 przy ustalonym pH na wartość 7,0. Do naczynia reakcyjnego dodano: 12,0 ml emulsji oleju z oliwek, FlP (3), 6,5 ml wody o najwyższej czystości (1), 1,0 ml roztworu taurocholanu sodowego (4). Mieszaninę ogrzano do 37,0°C. Wartość pH nastawiono za pomocą 0,1 n ługu sodowego (7) na 7,0. Następnie biuretę ustawiono na „0”.
Reakcję rozpoczęto przez dodatek 0,5 ml suspensji referencyjnej, jeśli powinno się mierzyć wartość referencyjną, łub 0,5 ml roztworu badanego, jeśli powinno się mierzyć aktywność lipazy w roztworze badanym. Po 10 minutach nastawiano punkt końcowy pH na 9,0.
Gdy osiągnięta została wartość pH 9,0 miareczkowania (ten wstępny etap trwa mniej niż 30 sekund) przerwano miareczkowanie i odczytywano zużycie 0,1n ługu sodowego
Do określenia ślepej próby ustalano od razu końcowy punkt miareczkowania na 9,0 zarówno dla suspensji referencyjnej jak i roztworu badanego.
Po ręcznym nastawieniu pH we wsadzie reakcyjnym na 7,0 i po dodaniu 0,5 ml suspensji referencyjnej lub roztworu badanego prowadzono natychmiast miareczkowanie do pH 9,0.
Z odczytanego zużycia 0,1 n ługu sodowego wyliczano aktywność lipazy z Rhizopus w jednostkach FIP-E/ml dla badanego roztworu.
Określone dla badanych roztworów I, II i III początkowe aktywności lipazy w jednostkach FIP-E/ml, były przyjmowane jako wartości 100%.
Aktywności zmierzone dla dalszych czasów inkubacji w odstępach 1-godzinnych przeliczano następnie każdorazowo w postaci procentowej w stosunku do wartości wyjściowej i zestawiono w poniżej zamieszczonej tabeli 7.
Tabela 7
Stabilizacja aktywności lipazy z Rhizopus za pomocą lecytyny sojowej
Roztwór badany % lipolitycznej aktywności po czasie t=
0 min 30 min 60 min
I roztwór lipazy 100 100 95
11 roztwór lipazy i proteazy 100 17 6
III roztwór lipazy z lecytyną + proteaza 100 94 84
4. Przykład preparatu farmaceutycznego
A) Bierze się 20,0 g F-pankreatyny w 400 ml wody i nastawia wartość pH przez dodatek 1 n HCl szybko na wartość 6,2. W tych, warunkach ekstrahuje się przez 1 godzinę w 4°C. Odwirowywuje się górny przezroczysty ekstrakt pankreatynowy przy 53.000 g i filtruje go w końcu do sterylności przez filtr o rozmiarze porów 2 mm.
B) 1,0 g lecytyny sojowej (98% fosfatydylocholiny) rozpuszcza się w 50 ml wody i sterylizuje przez 45 minut w 140°C w zatopionej ampułce.
C) 400 ml ekstraktu pankreatyny wytworzonego według punktu A) miesza się z 25 ml roztworu lecytyny wytworzonego według punktu B) w zimnie i w sterylnych warunkach. Mieszaninę liofilizuje się, przy czym uzyskuje się 16 g proszku, którym można napełnić w sterylnych warunkach butelki do infiizji 100 ml w porcjach po 2,5 g.
5. Przykład zestawu do zastosowania farmaceutycznego
5.1. Zestaw a
A) Do 400 ml wody dodaje się 40,0 g pankreatyny i szybko nastawia pH na 6,2 przez dodatek 1 n HCl W tych warunkach ekstrahuje się przez 1 godzinę w temperaturze 4°C Odwilowywuje się przezroczystą zawartość zawierającą ekstrakt pankreatynowy przy 53.000 g i filtruje go w końcu przez filtr o rozmiarach porów 2 mm do sterylności. Ekstraktem napełnia się w sterylnych warunkach w porcjach po 25 ml butelki do infuzji o pojemności 100 ml i liofilizuje.
B) 2,0 g lecytyny sojowej (98% zawartości fosfatydylocholiny) rozpuszcza się w 20 ml wody i homogenizuje za pomocą ultradźwięków. Ten koloidalny roztwór sterylizuje się przez 45 minut w 140°C w zatopionej ampułce szklanej. Odbiera się stąd porcję 12,5 ml, którą miesza się z 1600 ml sterylizowanej wody i napełnia butelki do infuzji w porcjach po 100 ml.
190 140
W celu zastosowania, zawartość butelki z materiałem stałym uzyskanym według punktu A) rozpuszcza się w roztworze stanowiącym zawartość butelki według punktu B).
2. Zestaw 2
A) 40 g F-pankreatyny wprowadzono do 800 ml wody i szybko nastawiono pH na wartość 6,2 przez dodatek 1 n HCl. W tych warunkach ekstrahuje się przez 1 godzinę w 4°C. Odwirowuje się przezroczystą zawartość zawierającą ekstrakt pankreatyny przy 53.000 g i odrzuca osad.
B) 32,0 g mannitu rozpuszcza się w 200 ml wody, miesza się z 800 ml ekstraktu pankreatyny uzyskanego według punktu A) i filtruje połączone roztwory do sterylności.
C) 5,0 g lecytyny sojowej (98% zawartości fosfatydocholiny) rozpuszcza się w 50 ml wody i homogenizuje za pomocą ultradźwięków. Ten koloidalny roztwór sterylizuje w zatopionej ampułce szklanej przez 45 minut w l40°C.
D) 1000 ml ekstraktu pankreatyny otrzymanego według punktu B) miesza się w sterylnych warunkach z 16 ml roztworu lecytyny otrzymanego według punktu C) i liofilizuje. Otrzymanym proszkiem napełnia się sterylnie porcjami 10,0 g butelki o pojemności 200 ml.
E) Dejonizowaną i sterylnie przefiltrowaną wodą napełnia się butelki do 200 ml w warunkach sterylnych.
W celu zastosowania zawartość butelki z proszkiem otrzymanym według punktu D) rozpuszcza się w zawartości butelki napełnionej wodą według punktu E).
R1 i
O i
H —C ©
O
R2 O=P-OR3 i i
A O i i
C-C —H
R^ Η H
WZÓR 1
R5 R6 R7 i i i O O O
I I I
H-C-C-C-H
Η Η H WZÓR 2
Departament Wydawnictw UP RP Nakład 50 egz Cena 4,00 zł

Claims (16)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, nadających się do wytwarzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, przy czym jako kompleksowe lipidy stosuje się fosfolipidy z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy.
  2. 2 Zastosowanie kompleksowych lipidów według zastrz. 1, znamienne tym, ze mieszaniny enzymów trawiennych zawierające lipazy i proteazy stanowią mieszaniny enzymów trawiennych zawierające pankreatynę.
  3. 3. Zastosowanie kompleksowych lipidów według zastrz. 2, znamienne tym, ze wprowadza się je jako stabilizujące dodatki do preparatów farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę, które obok pankreatyny zawierają dodatkowe lipazy wybrane z grupy składającej się z lipaz pochodzenia roślinnego, lipaz pochodzenia bakteryjnego i lipaz z kultur grzybów.
  4. 4. Zastosowanie kompleksowych lipidów według zastrz. 1, znamienne tym, ze jako kompleksowe lipidy stosuje się lecytynę z ziaren soi, rzepaku, kukurydzy, słonecznika, orzeszków ziemnych, jaja kurzego lub mikroorganizmów·'.
  5. 5 Zastosowanie kompleksowych lipidów według zastrz. 4, znamienne tym, ze jako kompleksowe lipidy stosuje się lecytynę z ziaren soi.
  6. 6. Zastosowanie kompleksowych lipidów według zastrz. 2 albo 3, albo 4, albo 5, znamienne tym, ze wprowadza się lipidy do pankreatyny wprowadzanej do preparatów farmaceutycznych juz podczas jej uzyskiwania lub przetwórstwa w celu stabilizacji przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności podczas etapów procesu w których stosuje się wilgoć.
  7. 7. Rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, które nadają się do wytwarzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, znamienne tym, ze w celu stabilizacji przeciw zmniejszaniu aktywności lipolitycznej pod wpływem wilgoci zawierają wystarczającą ilość fosfolipidów z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholmy, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy.
  8. 8 Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 7, znamienne tym, że jako mieszaniny enzymów trawiennych zawierające lipazy i proteazy zawierają mieszaniny enzymów trawiennych zawierające pankreatynę.
  9. 9 Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 8, znamienne tym, że mieszaniny enzymów trawiennych obok pankreatyny zawierają dodatkowe lipazy wybrane z grupy składającej się z lipaz pochodzących z roślin, lipaz pochodzących z bakterii i lipaz z kultur grzybów.
  10. 10. Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 7, znamienne t^m, ze zawierają taką ilość kompleksowego lipidu, aby zapewnić stabilizację lipolitycznej aktywności wodnych roztworów preparatów w taki sposób, aby wyjściowa lipolityczna aktywność wodnego roztworu w przeciągu 8 godzin spadła najwyżej o 20%.
    190 140
  11. 11 Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 7, znamienne tym, ze zawierają taką ilość kompleksowego lipidu, ze wyjściowa lipolityczna aktywność wodnych roztworów preparatów w przeciągu 24 obniża się najwyżej o 50%.
  12. 12. Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 7, znamienne tym, ze zawierają kompleksowe lipidy w celu stabilizacji przeciw obniżeniu lipolitycznej aktywności w stężeniu 1 do 10% wagowych, korzystnie 2 do 5% wagowych w przeliczeniu na mieszaninę enzymów.
  13. 13. Preparaty farmaceutyczne według zastrz. 7 albo 8, albo 9, albo 10, albo 11, albo 12, znamienne tym, ze jako pankreatynę zawierają autolitycznie przetworzoną pankreatynę.
  14. 14. Zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych, wolnych od zarazków, stabilizowany przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, nadający się do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sond, znamienny tym, ze jako części składowe zawiera:
    a) stały, rozpuszczalny w wodzie, wolny od zarazków preparat farmaceutyczny mieszaniny enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, który w szczególności w celu stabilizacji przeciw obniżaniu lipolitycznej aktywności wytworzonego wodnego roztworu może zawierać wystarczającą ilość fosfolipidów z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy i
    b) wystarczającą do sporządzenia wodnego roztworu ilość wodnego, wolnego od zarazków rozpuszczalnika, który obok wody może zawierać fizjologicznie dopuszczalne sole i środki pomocnicze i w przypadku gdy wymieniony w punkcie a) stały preparat farmaceutyczny nie zawiera wystarczającej ilości fosfolipidów do stabilizacji wytworzonego roztworu przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, dodatkowo zawiera wystarczającą ilość fosfolipidów z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy do stabilizacji wytworzonego wodnego roztworu przed zmniejszaniem lipolitycznej aktywności.
  15. 15. Zestaw według zastrz. 14, znamienny tym, ze stały preparat a) stanowi liofilizowaną mieszaninę enzymów trawiennych, zawierająca lipazy i proteazy, która w szczególności zawiera fosfolipidy z grupy składającej się z kwasów fosfatydowych, fosfatydylocholiny, fosfatydyloseryny, fosfatydyloetanoloaminy, fosfatydyloinozytu i sfingomieliny lub mieszaniny lipidów zawierających te fosfolipidy.
  16. 16. Zestaw według zastrz. 15, znamienny tym, że liofilizowana mieszanina enzymów trawiennych zawiera pankreatynę.
    Niniejszy wynalazek dotyczy zastosowania kompleksowych lipidów, jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych, mieszanin enzymów trawiennych, zawierających mieszaniny lipazy i proteazy, w szczególności zawierających pankreatynę, nadających się do sporządzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sond. Wynalazek dotyczy następnie rozpuszczalnych w wodzie preparatów farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych zawierających lipazy i proteazy, w szczególności mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatynę, stabilizowanych przez dodatek kompleksowego lipidu przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności pod wpływem wilgoci i nadających się do sporządzania wodnych roztworów wprowadzanych do traktu pokarmowego ssaków i ludzi za pomocą sond. Wynalazek dotyczy również zestawu do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych, wolnych od zarazków, stabilizowanego przeciw zmniejszaniu lipolitycznej aktywności, nadającego się do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sond.
    U ssaków, a w szczególności u ludzi, może wystąpić brak enzymów trawiennych, przykładowo wywołany przez chorobliwą zmianę trzustki w następstwie chronicznego zapalenia trzustki, niewydolnością trawienia po operacjach żołądka, chorobami wątroby lub pęcherzyka żółciowego. Znane jest szeroko, ze tego rodzaju objawy negatywne można leczyć za pomocą
    190 140 podawania mieszanin enzymów trawiennych pochodzących spoza własnego organizmu, na przykład enzymów trzustki, w szczególności pankreatyny, które mogą dodatkowo zawierać dodatek lipaz. Enzymy trzustki przyjmowane są zwykle doustnie w postaci stałych preparatów. Ponieważ podczas doustnego przyjmowania, aplikowana mieszanina enzymów ulega niepożądanie, w znacznym stopniu, już w żołądku, pod działaniem znajdujących się tam kwasów żołądkowych i enzymów proteolitycznych, takich jak pepsyna, nieodwracalnej denaturacji, należy mieszaninę enzymów powlekać powłoką odporną na działanie soku żołądkowego. Tego rodzaju powłoka umożliwia przedostanie się nienaruszonej mieszaniny enzymów przez żołądek do miejsca jej działania, do dwunastnicy, gdzie w panujących tam neutralnych do lekko alkalicznych, warunkach, usuwana jest warstwa ochronna a enzymy mogą zostać uwolnione Tak jak dla enzymów trzustki z własnego organizmu u ludzi zdrowych, enzymy przyjmowane doustnie mogą tam rozwinąć swoje działanie enzymatyczne, w szczególności aktywność amylolityczną, lipolityczną oraz proteolityczną
    Takie stałe receptury pankreatynowe w postaci mikrogranulek powlekanych powłoką odporną na soki żołądkowe opisane zostały w opisie niemieckim DOS 42,27,385.4.
    Dla pacjentów z niewydolnością trawienia, w szczególności pacjentów lezących z dłużej trwającą niewydolnością, przykładowo z chroniczną niewydolnością trzustki, pożądane byłoby podawanie enzymów trawiennych nie pochodzących z własnego organizmu także w postaci ciekłej przez dłuzszy okres czasu, przykładowo na drodze ciągłego podawania za pomocą sond, zamiast w postaci stałej mieszanki wspomagającej.
    Ciekłe postaci wspomagające mieszanin enzymów trawiennych zawierających pankreatyny, w szczególności pankreatynę, dotychczas nie mogły być oddane do dyspozycji, ponieważ ciekłe wodne środki tego rodzaju mieszanin enzymów nie są stabilne w ciągu dłuzszego czasu Okazało się, ze szczególnie aktywność lipaz zawartych w mieszaninie, obniża się szybko pod wpływem proteolitycznego ataku zawartych w mieszaninie proteaz, jak trypsyny lub chemotrypsyny w obecności wody. Tak więc może dojść w ciągu krótkiego czasu, w przypadku wodnych dawek pankreatyny, w zalezności od zewnętrznych warunków (temperatura, wartość pH) do znacznej utraty aktywności lipazy.
    Aby wodne roztwory mieszanin enzymów trawiących, zawierające lipazy i proteazy, a w szczególności mieszaniny enzymów trawiących zawierające pankreatynę nadawały się do ciągłego podawania do traktu pokarmowego drogą wprowadzania za pomocą sondy, muszą być stabilne w przeciągu większej ilości godzin, przykładowo 8 godzin. W szczególności nie mogą w roztworach powstawać lub znajdować się żadne cząstki zatykające sondę. Istotnym wymaganiem dla tego rodzaju roztworów jest, aby podawana aktywność wszystkich zawartych enzymów trawiących pozostawała możliwie na wysokim i równomiernym poziomie przez cały czas podawania. Jest następnie konieczne, aby roztwory nadające się do ciągłego podawania zołądkowo-jelitowego, mogły być w dużym zakresie przygotowane na gotowo, jako wolne od mikroorganizmów, tak więc przykładowo, aby zabezpieczone były od wzrostu mikroorganizmów, korzystnie sterylizowane.
    Z opisu patentowego JP 591 69491 znana jest możliwość stabilizacji różnych, w danym wypadku oddzielonych od siebie pojedynczych enzymów (proteazy lub lipazy) przeciw utlenianiu poprzez powlekanie fosfolipidami pojedynczych rodzajów enzymów, przy czym wytworzone warstwy powlekające zapobiegają dostępowi tlenu z powietrza.
    W opisie tym nie ma informacji na temat problemu stabilizacji lipaz w mieszaninach enzymów (proteazy i lipazy) do wytwarzania wodnych roztworów do ciągłego wprowadzania do traktu pokarmowego za pomocą sondy, bowiem problem ten w ogóle nie występuje w przypadku pojedynczych enzymów (proteazy lub lipazy) niezaleznie od tego czy są powleczone czy niepowleczone.
    Zadaniem wynalazku było oddanie do dyspozycji farmaceutycznych preparatów mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalnych w wodzie, zawierających lipazy i proteazy, stabilizowane przeciw utracie aktywności lipolitycznej pod wpływem wilgoci, które znajdowałyby się w postaci wodnego roztworu i pozostawały stabilne w ciągu dłuzszego okresu czasu.
PL97321825A 1996-08-28 1997-08-27 Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznejaktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych oraz zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych PL190140B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19634752 1996-08-28
DE19724845A DE19724845A1 (de) 1996-08-28 1997-06-12 Verwendung von komplexen Lipiden als stabilisierende Zusätze zu pharmazeutischen Zubereitungen von Verdauungsenzymgemischen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL321825A1 PL321825A1 (en) 1998-03-02
PL190140B1 true PL190140B1 (pl) 2005-11-30

Family

ID=26028823

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL97321825A PL190140B1 (pl) 1996-08-28 1997-08-27 Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznejaktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych oraz zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych

Country Status (22)

Country Link
US (1) US5993806A (pl)
EP (1) EP0826375B1 (pl)
JP (1) JP4593697B2 (pl)
CN (1) CN1199694C (pl)
AR (1) AR008807A1 (pl)
AT (1) ATE284225T1 (pl)
AU (1) AU722151B2 (pl)
BR (1) BR9704554B1 (pl)
CA (1) CA2213151C (pl)
CZ (1) CZ295329B6 (pl)
DE (2) DE19724845A1 (pl)
DK (1) DK0826375T3 (pl)
EE (1) EE04179B1 (pl)
ES (1) ES2235206T3 (pl)
HK (1) HK1005224A1 (pl)
HU (1) HUP9701437A3 (pl)
NO (1) NO973940L (pl)
NZ (1) NZ328616A (pl)
PL (1) PL190140B1 (pl)
PT (1) PT826375E (pl)
SK (1) SK284639B6 (pl)
TR (1) TR199700872A3 (pl)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6074689A (en) * 1998-03-10 2000-06-13 Immucell Corporation Colonic delivery of protein or peptide compositions
KR100367659B1 (ko) * 2000-05-08 2003-01-14 주식회사 바이넥스 선택적 안정화제의 첨가에 따른 자가분해(autolysis)를 통한 고역가 판크레아틴의 제조방법
GB0019118D0 (en) * 2000-08-03 2000-09-27 Danisco Solid phase glycerolysis
RU2299074C2 (ru) * 2000-11-02 2007-05-20 Цилиан Аг Применение полученных из инфузорий ферментов в качестве способствующих пищеварению лекарственных средств
US20030099626A1 (en) * 2001-11-20 2003-05-29 Health Education Corporation Nutrient absorption enhancing compositions and methods
PT1729797E (pt) 2004-03-22 2008-12-17 Solvay Pharm Gmbh Composições farmacêuticas orais de produtos contendo lipase, em particular de pancreatina, contendo tensioactivos
US7153504B2 (en) * 2004-07-30 2006-12-26 Can Technologies, Inc. Stabilized pancreas product
WO2007012069A2 (en) * 2005-07-20 2007-01-25 Brophy James S Modification of particle morphology to improve product functionality
CA2616943C (en) 2005-07-29 2016-04-12 Solvay Pharmaceuticals Gmbh Processes for the manufacture of sterilized pancreatin powder
US9198871B2 (en) 2005-08-15 2015-12-01 Abbott Products Gmbh Delayed release pancreatin compositions
US11266607B2 (en) 2005-08-15 2022-03-08 AbbVie Pharmaceuticals GmbH Process for the manufacture and use of pancreatin micropellet cores
US10072256B2 (en) 2006-05-22 2018-09-11 Abbott Products Gmbh Process for separating and determining the viral load in a pancreatin sample
US20110183050A1 (en) * 2006-07-20 2011-07-28 Brophy James S Modification of particle morphology to improve product functionality
US8444967B2 (en) 2010-07-09 2013-05-21 Master Supplements, Inc. Treatment including prebiotic composition for use with probiotics
US20090130063A1 (en) * 2007-11-15 2009-05-21 Solvay Pharmaceuticals Gmbh Process for separating and determining the viral load in a pancreatin sample
PL2391382T3 (pl) 2009-01-29 2014-11-28 Nordmark Arzneimittel Gmbh & Co Kg Preparat farmaceutyczny zawierający lipazę pochodzenia bakteryjnego
DE102009006594A1 (de) 2009-01-29 2010-08-05 Nordmark Arzneimittel Gmbh & Co. Kg Pharmazeutisches Präparat
CN103221036A (zh) 2010-10-01 2013-07-24 阿普塔利斯制药有限公司 肠溶包衣的低强度胰脂肪酶制剂
CA2920844A1 (en) 2013-08-09 2015-02-12 Allergan Pharmaceuticals International Limited Digestive enzyme composition suitable for enteral administration
EP3613429A1 (en) * 2013-11-05 2020-02-26 Allergan Pharmaceuticals International Limited High potency pancreatin pharmaceutical compositions
JP2014193909A (ja) * 2014-06-04 2014-10-09 Nordmark Arzneimittel Gmbh & Co Kg 医薬調製物
RU2712142C2 (ru) * 2014-11-05 2020-01-24 Эбботт Лабораторис Гмбх Способы получения композиций с улучшенным профилем безопасности, содержащих панкреатин, и композиции, пригодные для фармацевтического применения
US20180028454A1 (en) 2015-02-04 2018-02-01 Abbvie Inc. Pharmaceutical compositions and methods of use thereof to treat pancreatic enzyme insufficiency
DE102015114862A1 (de) * 2015-09-04 2017-03-09 Nordmark Arzneimittel Gmbh & Co. Kg Pharmazeutische Zusammensetzung, enthaltend eine bakterielle Lipase
DE102015114857A1 (de) 2015-09-04 2017-03-09 Nordmark Arzneimittel Gmbh & Co. Kg Getränk, enthaltend eine pharmazeutische Zusammensetzung

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3956483A (en) * 1968-10-24 1976-05-11 Wilson Pharmaceutical & Chemical Corporation Preparing pancreatin
US3991180A (en) * 1972-03-06 1976-11-09 Rohm And Haas Company Stabilization of internally administered pancreatic lipase
DE2512746C3 (de) * 1975-03-22 1980-04-24 Kali-Chemie Pharma Gmbh, 3000 Hannover Verfahren zur Herstellung von keimarmem, faserfreiem Pankreatin
GB1603640A (en) * 1977-07-20 1981-11-25 Gist Brocades Nv Enzyme particles
JPS58148814A (ja) * 1982-03-01 1983-09-05 Fujimoto Seiyaku Kk 消化酵素軟カプセル剤
JPS59169491A (ja) * 1983-03-15 1984-09-25 Duskin Franchise Co Ltd 酵素の安定化法
JPH0229950A (ja) * 1988-07-18 1990-01-31 Nec Corp 光ディスク
JP2679852B2 (ja) * 1989-11-29 1997-11-19 株式会社サム研究所 経口及び局所投与用生物活性蛋白組成物
GB9007052D0 (en) * 1990-03-29 1990-05-30 Skua Investments Ltd Pharmaceutical formulations
NZ241359A (en) * 1991-01-24 1994-08-26 Martek Corp Supplementation of infant formula by the addition of at least two different polyunsaturated fatty acids obtained from at least two different microbial sources; compositions comprising such oils
DE4200002A1 (de) * 1992-01-02 1993-07-08 Rudolf V Dipl Chem Dr Noronha Reinigungstablette fuer die zahnprothesen
WO1995007688A1 (en) * 1993-09-15 1995-03-23 Unilever Plc Skin care method and composition
JPH09125096A (ja) * 1995-10-30 1997-05-13 Koei Sangyo:Kk 液状天然油脂洗剤

Also Published As

Publication number Publication date
ES2235206T3 (es) 2005-07-01
DE59712108D1 (de) 2005-01-13
EE04179B1 (et) 2003-12-15
JPH1077236A (ja) 1998-03-24
HU9701437D0 (en) 1997-10-28
EP0826375A2 (de) 1998-03-04
US5993806A (en) 1999-11-30
HUP9701437A3 (en) 2001-03-28
BR9704554A (pt) 1998-09-15
EE9700249A (et) 1998-04-15
SK284639B6 (sk) 2005-08-04
SK115997A3 (en) 1998-07-08
EP0826375A3 (de) 2002-08-14
DE19724845A1 (de) 1998-03-05
BR9704554B1 (pt) 2011-12-27
EP0826375B1 (de) 2004-12-08
CN1174743A (zh) 1998-03-04
ATE284225T1 (de) 2004-12-15
TR199700872A2 (xx) 1999-04-21
NO973940L (no) 1998-03-02
PL321825A1 (en) 1998-03-02
NZ328616A (en) 1999-01-28
PT826375E (pt) 2005-02-28
TR199700872A3 (tr) 1999-04-21
NO973940D0 (no) 1997-08-27
HUP9701437A2 (hu) 1998-03-30
HK1005224A1 (en) 1998-12-31
JP4593697B2 (ja) 2010-12-08
AR008807A1 (es) 2000-02-23
CA2213151A1 (en) 1998-02-28
CZ218497A3 (cs) 1998-03-18
AU3530997A (en) 1998-03-05
CA2213151C (en) 2008-04-01
DK0826375T3 (da) 2005-01-24
CZ295329B6 (cs) 2005-07-13
AU722151B2 (en) 2000-07-20
CN1199694C (zh) 2005-05-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL190140B1 (pl) Zastosowanie kompleksowych lipidów jako dodatków stabilizujących przeciw zmniejszaniu lipolitycznejaktywności pod wpływem wilgoci w rozpuszczalnych w wodzie preparatach farmaceutycznych mieszanin enzymów trawiennych, rozpuszczalne w wodzie preparaty farmaceutyczne mieszanin enzymów trawiennych oraz zestaw do wytwarzania wodnych roztworów enzymów trawiennych
ES2180541T5 (es) Nueva fosfolipasa a1, procedimiento para su preparacion y uso de la misma.
KR101226787B1 (ko) 포스파티딜세린의 안정화된 제제
Fink et al. Fat digestion in the stomach: stability of lingual lipase in the gastric environment
Panaiotov Enzymatic reactions at interfaces: interfacial and temporal organization of enzymatic lipolysis
SI9620013A (en) Application of phospholipases in animal feed.
EP0422241B1 (en) Use of lysophospholipids as surfactants
JP6025143B2 (ja) 2−アシル−リゾホスファチジルセリン含有組成物及びその製造方法
AU727469B2 (en) Specific pancreatic lipase inhibitors and their applications
HIRANO et al. Role of alkaline phosphatase in phosphate uptake into brush border membrane vesicles from human intestinal mucosa
Marinetti In vitro lipid transformations in serum
Miller et al. Specificity of lipoprotein lipase and hepatic lipase toward monoacylglycerols varying in the acyl composition
Groen et al. An appraisal of the role of biliary phospholipases in the pathogenesis of gallstone disease
Wells et al. 4 Glyceride Digestion
EP0375785B1 (en) Lipid composition having enough safety and strong surface activity
JPH03280880A (ja) 非水系高活性酵素
JP2007106679A (ja) 血液凝固反応促進剤
JP2007091625A (ja) 血液凝固反応促進剤
Triantafyllou et al. Lipolytic and esterolytic activities in posterior lingual glands of rat: a histochemical study
Patelski Enzyme-substrate-product interac tions in the metabolism and accumulation of lipids in the arterial wall
JPH04131082A (ja) 非水系高活性酵素の製造方法
Patelski Arterial Metabolism of Cholesteryl Esters: Mechanism of Action of Polyunsaturated Phosphatidylcholine
Lopez-Amaya et al. Phospholipases: University of Guelph, Guelph, Ontario, Canada