NO320145B1 - Fremgangsmate for fremstilling av tagatose - Google Patents
Fremgangsmate for fremstilling av tagatose Download PDFInfo
- Publication number
- NO320145B1 NO320145B1 NO20040149A NO20040149A NO320145B1 NO 320145 B1 NO320145 B1 NO 320145B1 NO 20040149 A NO20040149 A NO 20040149A NO 20040149 A NO20040149 A NO 20040149A NO 320145 B1 NO320145 B1 NO 320145B1
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- galactose
- tagatose
- lactose
- glucose
- temperature
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 48
- BJHIKXHVCXFQLS-PQLUHFTBSA-N keto-D-tagatose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)C(=O)CO BJHIKXHVCXFQLS-PQLUHFTBSA-N 0.000 title claims description 31
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 claims description 40
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 claims description 40
- 239000008101 lactose Substances 0.000 claims description 40
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 28
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 28
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 26
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 26
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims description 26
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 claims description 20
- 108010018080 L-arabinose isomerase Proteins 0.000 claims description 18
- 108010059881 Lactase Proteins 0.000 claims description 18
- 102100026189 Beta-galactosidase Human genes 0.000 claims description 15
- 229940116108 lactase Drugs 0.000 claims description 15
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 claims description 14
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 claims description 13
- 238000006317 isomerization reaction Methods 0.000 claims description 11
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 10
- 241001603561 Thermoanaerobacter mathranii Species 0.000 claims description 9
- WQZGKKKJIJFFOK-SVZMEOIVSA-N (+)-Galactose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-SVZMEOIVSA-N 0.000 claims description 8
- 238000013375 chromatographic separation Methods 0.000 claims description 7
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 claims description 7
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 claims description 6
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 claims description 6
- 238000004064 recycling Methods 0.000 claims description 6
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 claims description 4
- 241000205101 Sulfolobus Species 0.000 claims description 4
- 241000186339 Thermoanaerobacter Species 0.000 claims description 4
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 claims description 4
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 claims description 3
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims description 3
- 241000205160 Pyrococcus Species 0.000 claims description 2
- 241000205091 Sulfolobus solfataricus Species 0.000 claims description 2
- 241000204652 Thermotoga Species 0.000 claims description 2
- 241000589596 Thermus Species 0.000 claims description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 12
- 239000000047 product Substances 0.000 description 12
- LKDRXBCSQODPBY-OEXCPVAWSA-N D-tagatose Chemical compound OCC1(O)OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O LKDRXBCSQODPBY-OEXCPVAWSA-N 0.000 description 10
- 239000006188 syrup Substances 0.000 description 10
- 235000020357 syrup Nutrition 0.000 description 10
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 8
- 108090000769 Isomerases Proteins 0.000 description 7
- 102000004195 Isomerases Human genes 0.000 description 7
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 7
- 230000008025 crystallization Effects 0.000 description 7
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 5
- 239000005862 Whey Substances 0.000 description 5
- 102000007544 Whey Proteins Human genes 0.000 description 5
- 108010046377 Whey Proteins Proteins 0.000 description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 5
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 4
- 108010093096 Immobilized Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 4
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 4
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 4
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 4
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 3
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 3
- 235000021255 galacto-oligosaccharides Nutrition 0.000 description 3
- 150000003271 galactooligosaccharides Chemical class 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 3
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 3
- 240000006439 Aspergillus oryzae Species 0.000 description 2
- 235000002247 Aspergillus oryzae Nutrition 0.000 description 2
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 description 2
- 239000008186 active pharmaceutical agent Substances 0.000 description 2
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 2
- 235000013351 cheese Nutrition 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 2
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 2
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 2
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 2
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 2
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 2
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 2
- PKAUICCNAWQPAU-UHFFFAOYSA-N 2-(4-chloro-2-methylphenoxy)acetic acid;n-methylmethanamine Chemical compound CNC.CC1=CC(Cl)=CC=C1OCC(O)=O PKAUICCNAWQPAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186073 Arthrobacter sp. Species 0.000 description 1
- 241000193744 Bacillus amyloliquefaciens Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 108091026890 Coding region Proteins 0.000 description 1
- ZAQJHHRNXZUBTE-NQXXGFSBSA-N D-ribulose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)C(=O)CO ZAQJHHRNXZUBTE-NQXXGFSBSA-N 0.000 description 1
- ZAQJHHRNXZUBTE-UHFFFAOYSA-N D-threo-2-Pentulose Natural products OCC(O)C(O)C(=O)CO ZAQJHHRNXZUBTE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000007976 Ketosis Diseases 0.000 description 1
- 241000588915 Klebsiella aerogenes Species 0.000 description 1
- 241000186684 Lactobacillus pentosus Species 0.000 description 1
- 241000438227 Sulfolobus solfataricus P2 Species 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012267 brine Substances 0.000 description 1
- 230000001013 cariogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000013611 chromosomal DNA Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 239000013068 control sample Substances 0.000 description 1
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 1
- 235000013365 dairy product Nutrition 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 239000013613 expression plasmid Substances 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 235000003599 food sweetener Nutrition 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000011850 initial investigation Methods 0.000 description 1
- 150000002584 ketoses Chemical class 0.000 description 1
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 description 1
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 description 1
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 238000009928 pasteurization Methods 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 235000013406 prebiotics Nutrition 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- HPALAKNZSZLMCH-UHFFFAOYSA-M sodium;chloride;hydrate Chemical compound O.[Na+].[Cl-] HPALAKNZSZLMCH-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000003381 solubilizing effect Effects 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 239000003765 sweetening agent Substances 0.000 description 1
- 239000003643 water by type Substances 0.000 description 1
- 239000002023 wood Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01108—Lactase (3.2.1.108)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/90—Isomerases (5.)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/02—Monosaccharides
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Radar Systems Or Details Thereof (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Description
Foreliggende oppfinnelse angår enzymatisk fremstilling av tagatose, spesielt D-tagatose. D-tagatose er et lavkalori bulksøtningsstoff med mange anvendelsesområder som har ikke-kariogene og prebiotiske egenskaper. D-tagatose kan anvendes i næringsmidler og funksjonelle næringsmidler så vel som i legemidler, jfr. US 4786722, US 5356879 og US 5447917.
Ifølge US 5002612 og US 5078796 har D-tagatose blitt fremstilt ved å hydrolysere lactose eller et lactose-inneholdende materiale til en blanding av galaktose og glykose ved anvendelse av en lactase, eventuelt ved å fjerne glykose fulgt av kjemisk isomerisering av galaktose til tagatose.
US 6057135 beskriver fremstilling av D-tagatose fra ostemyse eller melk, som hydrolyseres for å fremstille en blanding av galaktose og glukose. Glukose separeres fra galaktosen ved fermentering av glukose og utsettes for isomerisering ved anvendelse av L-arabinoseisomerase.
I et første aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte for fremstilling av tagatose som innbefatter a) hydrolysering av laktose eller et laktoseinneholdende utgangsmateriale for å oppnå galaktose og glukose, b) isomerisering av den oppnådde galaktosen med en L-arabinoseisomerase, og c) kromatografisk separering av produkter og ikke-omdannede forbindelser og resirkulering av ikke-omdannede forbindelser til prosessen.
I et annet aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte hvori trinn a) og b) utføres i en reaktor.
I et ytterligere aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte for fremstilling av D-tagatose.
I enda et ytterligere aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte, hvori L-arabinose isomerasen som anvendes i trinn b) er termofil.
I enda et ytterligere aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte hvori laktasen som anvendes i trinn a) er termofil.
I enda et ytterligere aspekt av oppfinnelsen tilveiebringes en fremgangsmåte hvori temperaturen som anvendes i trinn(ene) a) og/eller b) er 40 - 90°C.
Ytterligere aspekter av oppfinnelsen vises i de etterfølgende krav.
Figur 1 viser fremgangsmåten i eksempel 1 skjematisk,
Figur 2 viser fremgangsmåten i eksempel 2 skjematisk, og
Figur 3 viser fremgangsmåten i eksempel 3 skjematisk.
Figur 4 viser resultatet av eksempel 4.
Det har overraskende blitt funnet at det er mulig å anvende kromatografisk separering og gjenvinning i en enzymatisk fremgangsmåte for fremstilling av tagatose. På denne måten oppnås høyere utbytter og en renere fremgangsmåte. Det totale utbyttet så vel som utbyttet for hver syklus, er høyere.
Ved anvendelsen av denne prosessen er det mulig å gjenvinne og anvende hvilken som helst ikke-omdannet laktose og galaktose. Det er også mulig å separere produktene, tagatose og hvilke som helst biprodukter, spesielt glukose fra galaktose og anvendelsen av glukose for andre formål.
Utgangsmaterialet kan være hvilken som helst laktose eller laktoseinneholdende materiale.
Laktose er et biprodukt fra ostefremstilling. Denne fremgangsmåten gir mulighet for å omdanne laktose, et produkt med lav verdi som er produsert i overflod, til et produkt med høy verdi med egenskaper som er nyttige for mennesker. Dette er en måte å anvende laktose. Man har lenge prøvd å finne muligheter for anvendelse av laktose.
Fremgangsmåten involverer enzymatisk hydrolyse av laktose, enzymatisk omdannelse av galaktose til tagatose og eventuelt kromatografisk separering med gjenvinning av ikke-omdannede produkter.
Konsumeringen av kjemikalier etc. er lav.
Produksjonen av biprodukter er lav. Kun ett biprodukt produseres, nemlig glukose som en glukosesirup/-pulver, som kan anvendes som næringsmiddel.
Det er mulig å utføre hele reaksjonen i en reaktor som inneholder enzymer for hydrolyse av laktose så vel som isomerisering av galaktose. På denne måten kombineres trinn a) og trinn b).
Ved å gjøre dette forbedres hele prosessen med hensyn til utbytte pr. enhetstime. Galaktose fjernes kontinuerlig fra reaktoren ved dens isomerisering til tagatose som på denne måten reduserer konsentrasjonen av galaktose som ellers ville redusere effekten av laktasen og resultere i en reduksjon av omdannelsen av laktose til galaktose og glukose. Det er mulig å utføre prosessen ved en høy konsentrasjon (Brix) på grunn av den høye prosesstemperaturen. Evaporeringskapasiteten ville bli spart, noe. som igjen vil resultere i forbedret økonomi med hensyn til investering og arbeid. Den økte sukkerkonsentrasjonen har dessuten den effekten at anvendelsen av konserveringsmidler kan reduseres. Også første kromatografiske separeringen vil bli overflødig, som igjen betyr forbedret økonomi med hensyn til investering og løpetid.
Spesielt er en enzymatisk omdanning av laktose til glukose og galaktose med etterfølgende isomerisering av galaktosen til tagatose i samme enzymreaktor blitt vist. De innledende undersøkelser bekreftet at LacS laktase-enzym og L-arabinose isomerase fra T. mathranii kunne fungere under identiske metallion-, buffer- og temperatur-betingelser. Prinsippet ble deretter undersøkt ved inkubering av en 800 mM laktoseoppløsning (28%) med immobilisert laktase og immobilisert isomerase. Prøver ble analysert med hensyn til deres innhold av laktose, glukose, galaktose og tagatose ved hjelp av HPLC. I løpet av 24 timers inkubering økte konsentrasjonen av glukose til ca. 800 mM hvilket indikerer at all laktose ble spaltet. Konsentrasjonene av galaktose og tagatose økte begge lineært til ca. 300 mM. Følgelig var omdanningsgraden (300/800) x 100% = 38%.
Ytterligere enzym kan overføres i den samme reaktoren, en såkalt kombireaktor.
Tagatosen er spesielt D-tagatose, og det er stor etterspørsel etter den i næringsmiddelindustrien.
Alle laktaser kan anvendes i trinn a). Eksempler er enzymer avledet fra gruppen som består av Bacillus, Sulfolobus, Thermoanaerobacter, Thermus og Pyrococcus.
Alle L-arabinoseisomeraser kan anvendes i trinn b). Eksempler er enzymer avledet fra gruppen som består av Bacillus, Sulfolobus, Thermoanaerobacter og Thermotoga. Enzymene kan anvendes i en hvilken som helst form. For eksempel er det mulig å anvende immobiliserte enzymer.
Biotechnologisk Institute, Danmark, kan levere anvendbare laktaser og L-arabinoseisomeraser.
Biotechnologisk Institute, Danmark har funnet og undersøkt et enzym avledet fra Thermoanaerobacter mathranii, Thermoanaerobacter mathranii DSM 11426. De har innlevert en US patentsøknad nr. 09/905,108 som dekker oppfinnelsen.
Km verdier for T. mathranii enzym på D-galaktose er lavere enn verdier for enzymer fra vanlige organismer som produserer L-arabinose isomerase, slik som Aerobacter aerogenes, Bacillus amyloliquefaciens, Arthrobacter sp og Lactobacillus pentosus. Derfor har T. mathranii en bedre affinitet.
Det sistnevnte enzymet er termofilt.
En ytterligere fordel ved å anvende termofile enzymer er muligheten av å anvende høy prosesstemperatur hvor oppløseligheten av laktose og glukose er høyere. Dette betyr at mer konsentrerte produkter kan anvendes for den enzymatiske prosessen av oppfinnelsen. Dette betyr igjen mindre vannforbruk og mindre vann for evaporering. Dette vil gi tekniske fordeler og mindre behov for vann og energi med hensyn til oppvarming og kjøling av prosesstrømmer.
Anvendelsen av termofile enzymer har ytterligere gjort det mulig å arbeide ved en høyere temperatur. Dette fører til en bedre hygiene på grunn av redusert risiko for kontaminering med skadelige mikroorganismer. Ytterligere oppnås en økt omdannelse av galaktose til tagatose med høyere temperaturer sammenlignet med omdannelsen av arabinose til ribulose. I tillegg kan det også være tekniske fordeler som lettere flyt og raskere filtrering.
Det er således foretrukket å anvende enzymer som har optimale utbytter ved høye temperaturer i trinnene a) og/eller i trinn b). Dette vil vanligvis gi en raskere reaksjon. Videre er det mulig å rense systemet ved anvendelse av høye temperaturer, for eksempel pasteuriseringstemperaturer, som vanligvis anvendes i meieriindustrien eller temperaturer over 100°C, hvis enzymene er termofile eller til og med ekstremofile.
Hvis det ikke er noen eller kun liten temperaturforskjell mellom temperaturtrinn a) og
b), reduseres energien for kjøling og oppvarming. Produksjonsprosessen kan således kjøres ved temperaturer over 60°C. Dette har brede implikasjoner for mikrobiologien
og forbruket av damp og saltoppløsning for oppvarming og kjøling.
Temperaturen som anvendes i trinn(ene) a) og/eller b) er 40 - 90°C. Vanligvis er den 60 - 90°C. Fortrinnsvis er temperaturen 60 - 80°C, mer foretrukket 65 - 70°C, og mest foretrukket er temperaturen 65°C. Likevel vil temperaturen være avhengig av de valgte enzymer og den kan være forskjellig i trinn a) og b). Som nevnt over, oppnås noen fordeler ved å anvende samme temperatur i begge trinn, hvilket inkluderer utforming av begge trinn simultant i en reaktor.
I motsetning til kjemisk omdannelse av galaktose til tagatose, kan prosessen kjøres ved en pH-verdi som er optimal for sukkere. Det reduserer produksjonen av sukkernedbrytningsproduktet betydelig. Som et resultat forbedres gjenvinning og økonomien. En typisk pH-verdi er ca. 7,0. Anvendbare pH-verdier og andre reaksjonsparametere finnes for eksempel US 6057135. Yamanaka, K and Wood, W.A.
(1966) Methods in Enzymology 9: 596-602, som har en liste med et antall melkesyrebakterier som danner et L-arabinose isomeraseenzym som er i stand til å produsere ketoser fra blant annet D-galaktose.
Produktet av oppfinnelsen i form av sirup er så ren at det er mulig å anvende direkte tagatosesiruper. Hittil har det vært nødvendig å rense produktet, for eksempel ved krystallisering av den urene sirupen og oppløse eller solubilisere den igjen.
Som nevnt over, kan D-tagatose bli fremstilt fra en laktoseinneholdende kilde (for eksempel ostemyse, kaseinmyse eller melk). Laktose hydrolyseres til like mengder av galaktose og glukose ved hjelp av laktasen som kan være immobilisert laktase.
Galaktose separeres fortrinnsvis fra glukose ved kromatografi. Ikke-hydrolysert laktose kan separeres og gjenvinnes i enzymkolonnen. Galaktosen isomeriseres til tagatose ved hjelp av valgfritt L-arabinoseisomerase. Ikke-isomerisert galaktose kan separeres ved hjelp av kromatografi og gjenvinnes. Fraksjonen som inneholder D-tagatose krystalliseres. Krystallene separeres fra moderniten og tørkes. Moderniten som har en stor andel av tagatose, kan gjenvinnes/gjenkrystalliseres. Det er også mulig å anvende tagatosen direkte som er fremstilt som sirup i næringsmiddelprodukter for mennesker eller andre formål.
Således har man funnet en effektiv enzymatisk prosedyre kombinert med kromatografi for fremstilling av tagatose i høye utbytter og i en meget ren form i en eller to reaktorer. Fremgangsmåten har spesielle fordeler hvis den utføres med termofile/ekstremofile enzymer.
Den nye fremgangsmåten for fremstilling av tagatose er meget effektiv og ren på grunn av en spesifikk enzymatisk omdanning kombinert med gjenvinning av ikke-omdannede produkter. Prosessen er ekstremt effektiv og miljøvennlig.
EKSEMPLER
Eksempel 1
Hydrolyse av laktose med resirkulering
Isomerisering av galaktose med resirkulering
1. Laktose fremstilles fra mye ved ultrafilrrering fulgt av krystallisering.
2. En oppløsning av laktose i vann (8-40% DS) hydrolyseres ved hjelp av immobilisert laktase ved høy eller lav temperatur (enten ved hjelp av et enzym fra Aspergillus oryzae eller en termofil organisme). 3. Glykose og galaktose separeres ved hjelp av kromatografi. Avhengig av konsentrasjonen av foringsmengden kan det være nødvendig å kjøre et konsentreringstrinn for eksempel ved evaporering. 4. Laktose og mulige galaktooligosakkarider gjenvinnes i kolonnen som inneholder immobilisert enzym. 5. Hvis konsentrasjonen av oligosakkarider i gjenvinningsloopen er for høy (hydrolysen påvirkes på uønsket måte), spyles systemet. 6. Fraksjonen som inneholder glukose og galaktose isomeriseres ved hjelp av immobilisert galaktoseisomerase (fra en termofil organisme)
7. Blandingen konsentreres for eksempel ved hjelp av evaporering.
8. Tagatose separeres ved hjelp av kromatografi.
9. Tagatosefraksjon konsentreres og muligens krystalliseres.
10. Glukosefraksjonen kan konsentreres for salg som en sirup eller den kan ytterligere bearbeides.
11. Galaktosefraksj onen resirkuleres til isomerasekolonnen.
Eksempel 2
Hydrolyse av laktose uten resirkulering
med følgende isomerisering
1. Laktose fremstilles fra myse ved ultrafiltrering fulgt av krystallisering. 2. En oppløsning av laktose i vann (8 - 40% DS) hydrolyseres ved hjelp av immobilisert laktase (enzymet stammer fra Aspergillus oryzae). 3. Blandingen som inneholder ca. 46% glukose, 46% galaktose føres gjennom en kolonne som inneholder immobilisert galaktoseisomerase (fra en termofil organisme). Ca. 30% av galaktosen omdannes til tagatose. 4. Produktet separeres i 3 fraksjoner ved konsentrering og kromatografisk separering: • Fraksjon 1 inneholder hovedsakelig ikke-omdannet galaktose. Denne fraksjonen resirkuleres i galaktoseisomerasekolonnen • Fraksjon 2 inneholder hovedsakelig tagatose. Denne fraksjonen konsentreres for krystallisering eller den selges som sirup. • Fraksjon 3 inneholder hovedsakelig glukose, men også galaktooligosakkarider fremstilt av laktaseenzymet så vel som ikke-omdannet laktose. Denne fraksjonen konsentreres for salg som sirup eller for ytterligere prosessering, som krystallisering eller tørking.
Eksempel 3
Hydrolyse og isomerisering i en reaktor
1. Laktose produseres fra myse ved ultrafiltrering fulgt av krystallisering. 2. En oppløsning av laktose i vann føres gjennom en kolonne som inneholder immobilisert laktase og L-arabinoseisomerase (begge enzymer stammer fra termofile organismer). 3. Produktet separeres i 3 fraksjoner ved konsentrering og kromatografisk separering: • Fraksjon 1 inneholder hovedsakelig ikke-omdannet galaktose. Denne fraksjonen resirkuleres i kolonnen for enzymatisk omdanning. • Fraksjon 2 inneholder hovedsakelig tagatose. Denne fraksjonen konsentreres for krystallisering eller den selges som en sirup.
Fraksjon 3 inneholder hovedsakelig glukose, men også
galaktooligosakkarider fremstilt av laktaseenzymet så vel som ikke-omdannet laktose. Denne fraksjonen konsentreres for salg som en sirup eller for ytterligere prosessering som krystallisering eller tørking.
Eksempel 4
En- reaktoromdanning av laktose til tagatose med immobilisert laktase og immobilisert isomerase
P-glykosidasen som koder for genet fra Sulfolobus solfataricus (Moracci M, Ciaramella M, and Rossi M. [2001] Methods in Enzymology vol. 330, s. 201 - 15) ble klonet og uttrykt i E. coli. Genet ble isolert ved hjelp av polymerasekjedereaksjon (PCR) ved anvendelse av renset kromosomalt DNA fra Sulfolobus solfataricus stamme P2. Primere som inneholder ytterligere restriksjonsseter for Ndelog BamHl ble laget for å gi den hele kodesekvens på et fragment som i det følgende ble klonet i et standard ekspresjonsplasmid pET3a (Novagen).
E. coli celler som uttrykker enzymet ble kultivert, høstet ved sentrifugering, lysert i en French trykkcelle og kryssbundet med glutaraldehyd og polyetylenimin som beskrevet i US 5.354.105. Det immobiliserte enzymet ble gjenvunnet ved sentrifugering og lyofilisering av pellet. Aktiviteten til den immobiliserte laktasen var 1500 enheter/g tørrvekt. En enhet ble definert som mengden enzym som frigir ett mikromol glykose pr. min. ved 65°C, pH 7, i en 30% (vekt/volum) oppløsning av laktose. L-arabinoseisomerasegenet fra Thermoanaerobacter mathranii ble klonet og uttrykt i E. coli som beskrevet i US patentsøknad nr. US 09/905.108 (Biotechnological Institute, Danmark).
E. coli celler som uttrykker enzymet ble kultivert, høstet ved hjelp av sentrifugering, lysert i en French trykkcelle og kryssbundet med glutaraldehyd og polyetylenimin som beskrevet i US 4.354.105. Det immobiliserte enzymet ble gjenvunnet ved hjelp av sentrifugering og lyofilisering av pelleten. Aktiviteten til den immobiliserte L-arabinoseisomerasen var 50 enheter/g tørrvekt. En enhet ble definert som mengden av enzym som produserer en mikromol D-tagatose pr. min. ved 65°C, pH 7, i en 30% (w/v) oppløsning av D-galaktose.
En-milliliter prøveblandinger som inneholder 20 mg immobilisert laktase, 80 mg immobilisert isomerase, 0,30 g laktose (30%, 875 mM), 25 mM K-maleatbuffer, pH 6,9 og 5 mM MnCb ble inkubert ved 65°C. En kontrollprøve uten enzymer ble behandlet på samme måte. Periodisk ble prøver tatt og konsentrasjonene av glukose, galaktose og tagatose ble bestemt ved høyt trykk flytende kromatografi ved anvendelse av en Aminex HPX-87C kolonne (Bio-Rad) og en refraksjonsindeks detektor (Waters 410). Den mobile fasen var avionisert, avgasset vann, kolonnetemperaturen var 85°C, og strømningshastigheten var 0,6 ml/min..
Som vist i figur 4, økte konsentrasjonen av glukose til ca. 800 mM i løpet av 24 timer, som indikerer at nesten all laktose ble hydrolysert til galaktose og glukose. Konsentrasjonen av tagatose økte lineært til ca. 300 mM i løpet av 24 timer, som indikerer en bioomdannelse på 300 mM/800 mM = 38%.
Claims (18)
1.
Fremgangsmåte for fremstilling av tagatose, karakterisert ved at den innbefatter a) hydrolysering av laktose eller et laktoseinneholdende utgangsmateriale for å oppnå galaktose og glukose b) isomerisering av den oppnådde galaktosen med en L-arabinoseisomerase, og c) kromatografisk separering av produkter og ikke-omdannede forbindelser og resirkulering av ikke-omdannede forbindelser i prosessen.
2.
Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at ikke-omdannet laktose separeres ved hjelp av kromatografi og resirkuleres i trinn a) for hydrolyse.
3.
Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 2, karakterisert v e d at ikke-omdannet galaktose separeres ved hjelp av kromatografi og resirkuleres i trinn b) for isomerisering.
4.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at trinn a) og trinn b) utføres i en reaktor.
5.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at galaktosen er et D-galaktose og tagatosen er D-tagatose.
6.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at L-arabinoseisomerasen som anvendes i trinn b) er termofil.
7.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at laktasen som anvendes i trinn a) er termofil.
8.
Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 2, karakterisert v e d at L-arabinoseisomerasen som anvendes i trinn b) er avledet fra gruppen som består av, men ikke er begrenset til Bacillus, Sulfolobus, Thermoanaerobacter og Thermotoga.
9.
Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert ved at L-arabinoseisomerasen er avledet fra Thermoanaerobacter mathranii.
10.
Fremgangsmåte ifølge krav 9, karakterisert ved at L-arabinoseisomerasen er avledet fra Thermoanaerobacter mathranii DSM 11426.
11.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at laktasen som anvendes i trinn a) er avledet fra gruppen som består av, men er ikke begrenset til, Bacillus, Sulfolobus, Thermoanaerobacter, Thermus og Pyrococcus.
12.
Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at ett eller flere av de anvendte enzymer er immobilisert.
13.
Fremgangsmåte ifølge hvilket som helst av de foregående krav, karakterisert ved at den anvendte temperaturen i trinn(ene) a) og/eller b) er 40 - 90°C.
14.
Fremgangsmåte ifølge krav 13, karakterisert ved at temperaturen er 60 - 90°C.
15.
Fremgangsmåte ifølge krav 14, karakterisert ved at temperaturen er 60 - 80°C.
16.
Fremgangsmåte ifølge krav 15, karakterisert ved at temperaturen er 65 - 70°C.
17.
Fremgangsmåte ifølge krav 16, karakterisert ved at temperaturen er 65°C.
18.
Fremgangsmåte ifølge krav 4, karakterisert ved at L-arabinoseisomerasen som anvendes er avledet fra Thermoanaerobacter mathranii og laktasen som anvendes er avledet fra Sulfolobus solfataricus.
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US90510801A | 2001-07-16 | 2001-07-16 | |
US30515501P | 2001-07-16 | 2001-07-16 | |
DKPA200101114 | 2001-07-16 | ||
PCT/DK2002/000497 WO2003008617A1 (en) | 2001-07-16 | 2002-07-15 | Process for manufacturing of tagatose |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO20040149L NO20040149L (no) | 2004-01-13 |
NO320145B1 true NO320145B1 (no) | 2005-10-31 |
Family
ID=27222520
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO20040149A NO320145B1 (no) | 2001-07-16 | 2004-01-13 | Fremgangsmate for fremstilling av tagatose |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
NO (1) | NO320145B1 (no) |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6057135A (en) * | 1992-01-16 | 2000-05-02 | Kraft Foods, Inc. | Process for manufacturing D-tagatose |
-
2004
- 2004-01-13 NO NO20040149A patent/NO320145B1/no not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
NO20040149L (no) | 2004-01-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU2002354844B2 (en) | Process for manufacturing of tagatose | |
AU2002354844A1 (en) | Process for manufacturing of tagatose | |
Jørgensen et al. | Enzymatic conversion of D-galactose to D-tagatose: heterologous expression and characterisation of a thermostable L-arabinose isomerase from Thermoanaerobacter mathranii | |
RU2451688C2 (ru) | Способ получения тагатозы с использованием олигосахарида сои | |
Leang et al. | Novel reactions of L-rhamnose isomerase from Pseudomonas stutzeri and its relation with D-xylose isomerase via substrate specificity | |
WO2022148008A1 (zh) | 产塔格糖的枯草芽孢杆菌基因工程菌及制备塔格糖的方法 | |
US6991923B2 (en) | Process for manufacturing of tagatose | |
KR20210093939A (ko) | 신규 케토오스3-에피머라아제 | |
TWI471418B (zh) | 纖維二糖2-表異構酶與其製造方法及用途 | |
WO2021212723A1 (zh) | 一种β-半乳糖苷酶GALA及其应用 | |
CN102443578B (zh) | 一种葡萄糖异构酶突变体及其应用 | |
FI79557B (fi) | Foerfarande foer isomerisering av glukos till fruktos. | |
Ravaud et al. | Overexpression, purification, crystallization and preliminary diffraction studies of the Protaminobacter rubrum sucrose isomerase SmuA | |
US7501246B2 (en) | Gene for coding thermostable L-arabinose isomerase and method for producing the same | |
KR100443865B1 (ko) | 호열성 아라비노스 이성화효소 및 그를 이용한 타가토스의 제조방법 | |
US7052898B2 (en) | Thermostable isomerase and use hereof, in particular for producing tagatose | |
NO320145B1 (no) | Fremgangsmate for fremstilling av tagatose | |
EP1407038B1 (en) | A thermostable isomerase and use thereof, in particular for producing tagatose | |
ZA200400088B (en) | Process for manufacturing of tagatose. | |
WO2019035482A1 (ja) | エピメリ化活性を有するタンパク質 | |
KR20200047176A (ko) | 투라노스의 제조방법 | |
AU2002328273B2 (en) | A thermostable isomerase and use thereof in particular for producing tagatose | |
KR102141174B1 (ko) | 아밀로수크라제의 발현 시스템 및 이를 이용한 투라노스의 생산 | |
Deok-Kun et al. | Expression, purification, and crystallization of D-psicose 3-epimerase from Agrobacterium tumefaciens | |
AU2002328273A1 (en) | A thermostable isomerase and use thereof in particular for producing tagatose |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM1K | Lapsed by not paying the annual fees |