KR101760048B1 - Primer set for Heukjinjuchal identification and method for identification - Google Patents
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Abstract
본 발명은 흑진주찰 판별용 프라이머 세트 및 판별방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트와 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법에 관한 것이다.More particularly, the present invention relates to a primer set for distinguishing black seedlings from black seedlings capable of effectively discriminating fruit varieties, protecting black seedlings, and purity of seedlings and pigments, and more particularly, The present invention relates to a discriminating method useful for distinguishing a black spot on a black spot using a primer set for discriminating black spot marks.
Description
본 발명은 흑진주찰 판별용 프라이머 세트 및 판별방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트와 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법에 관한 것이다.More particularly, the present invention relates to a primer set for distinguishing black seedlings from black seedlings capable of effectively discriminating fruit varieties, protecting black seedlings, and purity of seedlings and pigments, and more particularly, The present invention relates to a discriminating method useful for distinguishing a black spot on a black spot using a primer set for discriminating black spot marks.
옥수수(Zea mays L.)는 세계적으로 재배되고 있는 중요 3대 작물 중의 하나로 세계적으로 중요한 작물이지만 우리나라에서 소비되는 사료용 옥수수는 외국에서 수입에 의존하고 있는 상황이다. 국내에서는 대부분 찰옥수수를 많이 재배하고 있으며, 일부 단옥수수가 국내에서 재배되고 있다. 최근에 국민의 식생활 다변화와 더불어 육류 소비가 증가함에 따라 찰옥수수가 간식용, 다이어트 및 건강식품 등으로 소비자에게 각광을 받아 그 소비가 점점 증가하고 있는 상황이다.Maize (Zea mays L.) is one of the three major crops cultivated globally and is an important crop in the world, but the feed corn consumed in our country depends on imports from foreign countries. In Korea, most of the corn is cultivated and some of the corn is cultivated in Korea. In recent years, with the diversification of people's dietary life and the increase of meat consumption, waxy corn has been increasingly consumed by snacks, diets and health foods.
옥수수 작물의 육종은 방임수분 품종에서 복교잡종 그리고 단교잡종으로 품종육성 방법이 발전하여 왔으며, 현재에 이르러 단교잡종이 주류를 이루면서 우수한 자식계통을 통한 품종 개발 관심이 높아지고 있다(Bernado R. 1996. Crop Sci. 36: 867-871).The breeding of corn crops has been developed by breeding hybrids from abandoned watery varieties to breeding hybrids and single hybrids, and nowadays hybrid breeding is the mainstream and interest in developing varieties through superior breeding is increasing (Bernado R. 1996. Crop Sci. 36: 867-871).
오늘날 DNA에 기초한 분자마커 기술은 작물의 유전-육종연구에서 유전적 다양성과 계통유연관계 분석 그리고 식물유전자원의 보존과 관리 등에 유용한 정보를 제공하고 있다(Smith et al., 1997. Theor. Appl. Genet. 95: 163-173). 그 중에서 특히 SNP(Single Nucleotide Polymorphism) 분석법은 옥수수의 유전적 다양성을 분석하는데 널리 이용되고 있다(Ganal et al., 2011. PLoS ONE 6: e28334). SNP에 의한 분자마커는 옥수수의 육종연구에서 작물의 품종보호에 효율적으로 이용될 수 있으며 많은 연구자들이 옥수수 유전적 다양성을 평가와 판별을 위해 이용하고자 하였다.Today, DNA-based molecular marker technology provides useful information on genetic diversity and phylogenetic relationships in crop genetic-breeding studies, and conservation and management of plant genetic resources (Smith et al., 1997. Theor. Appl. Gen. 95: 163-173). Among them, SNP (Single Nucleotide Polymorphism) analysis is widely used to analyze the genetic diversity of corn (Ganal et al., 2011. PLoS ONE 6: e28334). Molecular markers by SNPs can be effectively used to protect crop varieties in corn breeding studies and many researchers have sought to use corn genetic diversity for evaluation and discrimination.
우리나라에서 옛날부터 식용으로 많이 재배 이용되고 있는 찰옥수수는 9번 염색체에 위치한 단일열성 유전자인 waxy 유전자에 의해 조절된다. 국내의 찰옥수수 유전자원은 다양하면서도 전 세계적으로도 그 품질이 우수하여 고품질의 찰옥수수 품종을 개발할 수 있는 기본적 여건을 갖추고 있다. 그러나 오늘날 국내 찰옥수수 유전자원에 대한 유전적 다양성과 품종 대한 분석 연구가 거의 없는 실정이다.Waxy corn, which has been cultivated for many years in Korea, is controlled by the waxy gene, a monotonous gene located on chromosome 9. Domestic waxy corn genetic resources have various qualities and have excellent quality all over the world, so they have basic conditions to develop high quality waxy maize varieties. However, there have been few studies on the genetic diversity and breed of the genetic polymorphic genomes in Korea today.
종래 기술들 중 등록특허 10-0723069(공개일자: 2006년05월18일)에는 유전자 변형 농산물에 대한 정성 및 정량 분석용 특이 프라이머, 프로브 및 표준 플라스미드와 이를 이용한 검정 방법에 관한 것으로서, 외래에서 도입된 목적 유전자 전체 또는 일부와 다른 발현조절부위의 DNA 영역의 전부 또는 일부를 포함한 영역을 증폭하도록 하는 프라이머(Primer), 프로브(Probe) 및 표준 플라스미드(Standard plasmid)를 사용함으로써 다양한 계통의 재조합 유전자를 판별하여 검출할 수 있는 PCR 프라이머 세트에 관하여 기재하고 있다.The present invention relates to a specific primer, a probe and a standard plasmid for qualitative and quantitative analysis of genetically modified agricultural products and a test method using the specific primer, A probe and a standard plasmid that amplify all or a part of the target gene or a region including all or a part of the DNA region of the other expression control region by using the recombinant gene of various strains And a PCR primer set which can be detected and detected.
본 발명은 상기와 같은 문제점을 해결하기 위하여 안출된 것으로, 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트와 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법을 제공하려는 목적이 있다.The present invention has been conceived to solve the above-mentioned problems. It is an object of the present invention to provide a primer set for discriminating black seedlings, It is an object of the present invention to provide a discriminating method useful for distinguishing a black spot by using a primer set.
본 발명은 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 프라이머를 포함하는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 제공한다.The present invention provides a primer set for discriminating black pebbles comprising a primer represented by at least two nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 뉴클레오타이드는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 2번 및 4번 염색체(chromosome)로 이루어진 군 중 1종 이상의 염기서열과 상보적일 수 있다.According to a preferred embodiment of the present invention, the nucleotide may be complementary to at least one nucleotide sequence from the group consisting of chromosomes 2 and 4 of the corn B73 standard genome.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 프라이머는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 및 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트;로 이루어진 군 중 1종 이상의 프라이머 세트를 함유할 수 있다.According to another preferred embodiment of the present invention, the primer comprises a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 3 and a nucleotide of SEQ ID NO: 4; And a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 7 and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
본 발명의 바람직한 또 다른 일실시예에 따르면, 상기 프라이머는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트; 또한 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트;를 함유할 수 있다.
According to another preferred embodiment of the present invention, the primer comprises a primer comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2, a primer containing a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: set; And a primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 3, a nucleotide of SEQ ID NO: 4, a nucleotide of SEQ ID NO: 7, and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
또한, 본 발명은 옥수수에서 게놈 DNA를 분리하는 단계; 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 상기 증폭 산물을 검출하는 단계; 를 포함하는 흑진주찰 판별 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for isolating genomic DNA comprising: separating genomic DNA from maize; Amplifying the target sequence by performing amplification reaction using the separated genomic DNA as a template and using a primer set represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8; And detecting the amplification product; The black spot inspection method comprising the steps of:
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 증폭 반응은 45 ~ 67 ℃의 온도로 어닐링(annealing)하는 공정을 포함할 수 있다.According to a preferred embodiment of the present invention, the amplification reaction may include annealing at a temperature of 45 to 67 ° C.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 검출은 증폭 산물의 크기가 220 ~ 400 bp인 것을 확인하는 공정을 포함할 수 있다.According to another preferred embodiment of the present invention, the detection may include a step of confirming that the size of the amplification product is 220 to 400 bp.
본 발명의 바람직한 또 다른 일실시예에 따르면, 상기 뉴클레오타이드는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 2번 및 4번 염색체(chromosome)로 이루어진 군 중 1종 이상의 염기서열과 상보적일 수 있다.According to another preferred embodiment of the present invention, the nucleotide may be complementary to at least one of the nucleotide sequences of chromosomes 2 and 4 of the corn B73 standard genome.
본 발명의 바람직한 또 다른 일실시예에 따르면, 상기 프라이머는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 및 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트;로 이루어진 군 중 1종 이상의 프라이머 세트를 함유할 수 있다.According to another preferred embodiment of the present invention, the primer comprises a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 3 and a nucleotide of SEQ ID NO: 4; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; And a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 7 and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
본 발명의 바람직한 또 다른 일실시예에 따르면, 상기 프라이머는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트; 또한 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트;를 함유할 수 있다.
According to another preferred embodiment of the present invention, the primer comprises a primer comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2, a primer containing a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: set; And a primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 3, a nucleotide of SEQ ID NO: 4, a nucleotide of SEQ ID NO: 7, and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
이하, 본 발명의 용어를 설명한다.Hereinafter, terms of the present invention will be described.
본 발명의 용어 "프라이머"는 짧은 자유 3' 말단 수산화기(free 3' hydroxyl group)를 가지는 염기 서열로 상보적인 템플레이트(template)와 염기쌍(base pair)을 형성할 수 있고 주형 가닥 복사를 위한 시작 지점으로 기능을 하는 짧은 서열을 의미한다. 프라이머는 적절한 완충용액 및 온도에서 중합반응(즉, DNA 폴리머레이즈 또는 역전사효소)을 위한 시약 및 상이한 4가지 뉴클레오사이드 트리포스페이트의 존재하에서 DNA 합성을 개시할 수 있다. 이때, PCR 조건, 센스 및 안티센스 프라이머의 길이는 당업계에 공지된 것을 기초로 변형할 수 있다.The term "primer" of the present invention is a base sequence having a short free 3 'hydroxyl group and can form a base pair with a complementary template and is used as a starting point for template strand copy Quot; short sequence " The primer can initiate DNA synthesis in the presence of reagents and four different nucleoside triphosphates for polymerization reactions (i.e., DNA polymerase or reverse transcriptase) at appropriate buffer solutions and temperatures. At this time, the PCR conditions, the lengths of the sense and antisense primers can be modified based on those known in the art.
또한, 본 발명의 용어 "뉴클레오타이드"는 단일가닥 또는 이중가닥 형태로 존재하는 디옥시리보뉴클레오타이드 또는 리보뉴클레오타이드이며, 다르게 특별하게 언급되어 있지 않은 한 자연의 뉴클레오타이드의 유사체를 포함한다(Scheit, Nucleotide Analogs, John Wiley, New York(1980); Uhlman 및 Peyman, Chemical Reviews, 90:543-584(1990)).In addition, the term "nucleotide " of the present invention is a deoxyribonucleotide or ribonucleotide present in single-stranded or double-stranded form and includes analogs of natural nucleotides unless otherwise specifically indicated (Scheit, Nucleotide Analogs, John Wiley , New York (1980); Uhlman and Peyman, Chemical Reviews, 90: 543-584 (1990)).
본 발명은 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트와 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법을 제공하는 효과가 있다.The present invention relates to a method for effectively discriminating black seedlings from black seedlings by using a primer set for discriminating black seedlings and a primer set for discriminating black seedlings capable of effectively testing the kind of black seedlings, .
도 1은 실시예 1에서 3'말단 불일치 프라이머 제작 모식도이다.
도 2는 실시예 1에서 특이적 반응 프라이머를 탐색한 결과이다.
도 3은 선발한 프라이머를 통한 품종과 그의 모·부본간의 일치도를 검정한 결과이다.
도 4는 본 발명의 프라이머인 IBM471 및 IBM549를 이용한 교배친 및 흑진주찰의 PCR 결과이다.
도 5는 본 발명의 프라이머인 IBM535 및 IBM795를 이용한 흑진주찰의 PCR 결과이다.FIG. 1 is a schematic view showing the preparation of a 3 'end mismatch primer in Example 1. FIG.
Fig. 2 shows the result of searching for a specific reaction primer in Example 1. Fig.
FIG. 3 shows the result of checking the degree of correspondence between the varieties through the selected primers and their parents.
FIG. 4 shows the results of PCR for hybridization and black spot PCR using the primers IBM471 and IBM549 of the present invention.
FIG. 5 shows the PCR results of the black precipitate using the primers IBM535 and IBM795 of the present invention.
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail.
상술한 바와 같이 우리나라에서 옛날부터 식용으로 많이 재배 이용되고 있는 찰옥수수는 9번 염색체에 위치한 단일열성 유전자인 waxy 유전자에 의해 조절되는 것으로 알려져 있다. 국내의 찰옥수수 유전자원은 다양하면서도 전 세계적으로도 그 품질이 우수하여 고품질의 찰옥수수 품종을 개발할 수 있는 기본적 여건을 갖추고 있다. 그러나 오늘날 국내 찰옥수수 유전자원에 대한 유전적 다양성과 품종 대한 분석 연구가 거의 없는 실정이다.
As described above, the waxy corn that has been cultivated for many years in Korea has been known to be regulated by the waxy gene, a monotonous gene located on chromosome 9. Domestic waxy corn genetic resources have various qualities and have excellent quality all over the world, so they have basic conditions to develop high quality waxy maize varieties. However, there have been few studies on the genetic diversity and breed of the genetic polymorphic genomes in Korea today.
이에 본 발명은 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 프라이머를 포함하는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 제공함으로써 상술한 문제의 해결을 모색하였다. 이를 통해, 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있는 흑진주찰 판별용 프라이머 세트와 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법을 제공하는 효과가 있다.
Accordingly, the present invention has solved the above-mentioned problem by providing a primer set for discriminating black spot patterns comprising primers represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8. This makes it possible to effectively discriminate black seedlings from black seedlings by using a primer set for discriminating black seedlings and a primer set for discriminating black seedlings, .
상기 뉴클레오타이드는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 일부 또는 전체와 상보적이라면 특별히 제한하지 않으나, 바람직하게는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 2번 및 4번 염색체(chromosome)로 이루어진 군 중 1종 이상의 염기서열과 상보적일 수 있다.The nucleotide is not particularly limited as long as it is complementary to a part or all of the corn B73 standard genome, but preferably it is one or more of chromosomes 2 and 4 of the corn B73 standard genome May be complementary to the base sequence.
상기 옥수수 B73 표준 게놈은 2011년 Ganal 등이 발표한(Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) 것으로서, MaizeGDB website(http://www.maizegdb.org/sequence.php)에 기재되어 있는 것일 수 있다.The corn B73 standard genome is described in 2011 by Ganal et al. (Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) and is described on the MaizeGDB website (http://www.maizegdb.org/sequence.php) Lt; / RTI >
상기 "상보"는 뉴클레오타이드와 염색체 전체 또는 일부가 특이적으로 결합하는 것을 의미한다.The "complement" means that the nucleotide and all or some of the chromosome are specifically bound.
상기 "옥수수 B73 표준 게놈"은 다형성 부위를 포함하는 다형성 서열(polymorphic sequence)이다. 다형성 서열이란 폴리뉴클레오티드 서열 중에 SNP를 포함하는 다형성 부위(polymorphic site)를 포함하는 서열을 의미한다. 상기 폴리뉴클레오티드 서열은 DNA 또는 RNA가 될 수 있다.
The "corn B73 standard genome" is a polymorphic sequence comprising a polymorphic site. A polymorphic sequence means a sequence comprising a polymorphic site comprising a SNP in a polynucleotide sequence. The polynucleotide sequence may be DNA or RNA.
상기 프라이머는 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 것이라면 특별히 제한하지 않으나, 적절한 버퍼 중의 적절한 조건(예를 들면, 4개의 다른 뉴클레오시드 트리포스페이트 및 DNA, RNA 폴리머라제 또는 역전사 효소와 같은 중합제) 및 적당한 온도 하에서 주형-지시 DNA 합성의 시작점으로서 작용할 수 있는 단일가닥 올리고뉴클레오티드가 될 수 있는데, 상기 프라이머의 적절한 길이는 사용 목적에 따라 달라질 수 있으나, 통상 15 내지 30 뉴클레오티드이다. 짧은 프라이머 분자는 일반적으로 주형과 안정한 혼성체를 형성하기 위해서는 더 낮은 온도를 필요로 한다. The primers are not particularly limited as long as they are represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8, but may be modified by appropriate conditions in suitable buffers (for example, four different nucleoside triphosphates and DNA, RNA polymerase, Stranded oligonucleotide that can act as a starting point for template-directed DNA synthesis under appropriate temperature, and the appropriate length of the primer may vary depending on the purpose of use, but is usually 15-30 nucleotides to be. Short primer molecules generally require a lower temperature to form a stable hybrid with the template.
상기 프라이머 서열은 상기 SNP 마커와 완전하게 상보적일 필요는 없으나, 상기 옥수수 B73 표준 게놈과 혼성화 할 정도로 충분히 상보적이어야 한다. 또한, 바람직하게는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 및 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트;로 이루어진 군 중 1종 이상의 프라이머 세트를 함유할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트; 또한 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트;를 함유할 수 있다.The primer sequence need not be completely complementary to the SNP marker, but should be sufficiently complementary to hybridize with the maize B73 standard genome. Also preferably, a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 3 and a nucleotide of SEQ ID NO: 4; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; And a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 7 and a nucleotide of SEQ ID NO: 8, and more preferably, a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: A primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; And a primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 3, a nucleotide of SEQ ID NO: 4, a nucleotide of SEQ ID NO: 7, and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
상기 프라이머는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법, 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 핵산 서열은 또한 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 이러한 변형의 비-제한적인 예로는 메틸화, "캡화", 천연 뉴클레오타이드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오타이드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예: 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예: 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형이 있다.
The primers can be chemically synthesized using the phosphoramidite solid support method, or other well-known methods. Such nucleic acid sequences may also be modified using many means known in the art. Non-limiting examples of such modifications include, but are not limited to, methylation, "capping ", replacement of natural nucleotides with one or more homologues, and modifications between nucleotides, such as uncharged linkers, such as methylphosphonate, Phosphoamidates, carbamates, etc.) or charged linkages (e.g., phosphorothioates, phosphorodithioates, etc.).
또한, 본 발명은 옥수수에서 게놈 DNA를 분리하는 단계; 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 상기 증폭 산물을 검출하는 단계; 를 포함하는 흑진주찰 판별 방법을 제공한다.The present invention also relates to a method for isolating genomic DNA comprising: separating genomic DNA from maize; Amplifying the target sequence by performing amplification reaction using the separated genomic DNA as a template and using a primer set represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8; And detecting the amplification product; The black spot inspection method comprising the steps of:
먼저, 옥수수에서 게놈 DNA를 분리한다.First, genomic DNA is isolated from corn.
상기 옥수수에서 게놈 DNA를 분리하는 방법은 당업계에 공지된 방법을 이용할 수 있으며, 예를 들면, CTAB 방법을 이용할 수 있고, wizard prep 키트(Promega 사)를 이용할 수 있으며, Dellaporta 등(Dellaporta et al., 1983. Plant Mol. Biol. Rep. 1: 19-211983)의 방법을 이용할 수 있다. As a method for isolating genomic DNA from corn, a method known in the art can be used. For example, a CTAB method can be used, a wizard prep kit (Promega) can be used, and Dellaporta et al. , 1983. Plant Mol. Biol., Rep. 1: 19-211983).
또한, 상기 옥수수는 옥수수 식물체 중 일부 또는 전부를 이용하는 것이라면 특별히 제한하지 않으나, 바람직하게는 옥수수의 뿌리, 줄기, 잎 및 과실로 이루어진 군 중 1종 이상의 부분을 이용할 수 있다.
Further, the corn is not particularly limited as long as it uses some or all of the corn plants, but preferably at least one of the roots, stems, leaves and fruits of the corn can be used.
다음, 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 프라이머 세트를 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭한다.Next, an amplification reaction is performed using the separated genomic DNA as a template and a primer set represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8 to amplify the target sequence.
상기 표적 핵산을 증폭하는 방법은 통상적으로 핵산 서열 증폭에 사용하는 방법이라면 특별히 제한하지 않으며, 예를 들면 중합효소연쇄반응(PCR), 리가아제 연쇄반응(ligase chain reaction), 핵산 서열 기재 증폭(nucleic acid sequence-based amplification), 전사 기재 증폭 시스템(transcription-based amplification system), 가닥 치환 증폭(strand displacement amplification) 또는 Qβ 복제효소(replicase)를 통한 증폭 또는 당업계에 알려진 핵산 분자를 증폭하기 위한 임의의 기타 방법을 사용할 수 있으며, 바람직하게는 PCR을 수행할 수 있다.The method of amplifying the target nucleic acid is not particularly limited as long as it is a method for amplifying a nucleic acid sequence, and examples thereof include a polymerase chain reaction (PCR), a ligase chain reaction, a nucleic acid sequence- acid sequence-based amplification, a transcription-based amplification system, a strand displacement amplification or an amplification through a Q [beta] replicase, or any amplification of nucleic acid molecules known in the art Other methods can be used, and preferably PCR can be performed.
상기 PCR은 중합효소를 이용하여 표적 핵산에 특이적으로 결합하는 프라이머 쌍으로부터 표적 핵산을 증폭하는 방법이다. 이러한 PCR 방법은 당업계에 잘 알려져 있으며, 상업적으로 이용가능한 키트를 이용할 수도 있다.
The PCR is a method of amplifying a target nucleic acid from a pair of primers that specifically bind to a target nucleic acid using a polymerase. Such PCR methods are well known in the art, and commercially available kits may be used.
또한, 상기 증폭 반응은 통상적으로 핵산 서열 증폭에 사용하는 조건이라면 특별히 제한하지 않으나, 바람직하게는 45 ~ 67 ℃의 온도로 어닐링(annealing) 하는 것을 포함할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 50 ~ 65 ℃의 온도로 어닐링(annealing) 하는 것을 포함할 수 있다.The amplification reaction is not particularly limited as long as the amplification reaction is usually used for nucleic acid sequence amplification. Preferably, the amplification reaction may include annealing at a temperature of 45 to 67 ° C, more preferably 50 to 65 ° C RTI ID = 0.0 > of < / RTI >
어닐링 온도는 사용하는 프라이머 세트 특이적으로 결정할 수 있으며, 이로 인해 분리된 게놈 DNA의 표적 서열 증폭 효과에 영향을 미칠 수 있다.
The annealing temperature can be determined specifically for the primer set used, which can affect the target sequence amplification effect of the isolated genomic DNA.
상기 증폭한 표적 서열은 검출가능한 표지 물질로 표지할 수 있다. The amplified target sequence may be labeled with a detectable labeling substance.
본 발명의 일 구현예에서, 상기 표지 물질은 형광, 인광 또는 방사성을 발하는 물질일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 바람직하게는 상기 표지 물질은 Cy-5 또는 Cy-3이다. 표적 서열의 증폭시 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지할 수 있다. In one embodiment of the present invention, the labeling substance may be a fluorescent, phosphorescent or radioactive substance, but is not limited thereto. Preferably, the labeling substance is Cy-5 or Cy-3. When the target sequence is amplified, PCR is carried out by labeling the 5'-terminal of the primer with Cy-5 or Cy-3, so that the target sequence can be labeled with a detectable fluorescent labeling substance.
또한, 방사성 물질을 이용한 표지는 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하면 증폭 산물이 합성되면서 방사성이 증폭 산물에 혼입되어 증폭 산물이 방사성으로 표지할 수 있다.
When the radioactive isotope such as 32 P or 35 S is added to the PCR reaction solution, the amplification product is synthesized and the radioactive substance is incorporated into the amplification product and the amplification product can be labeled as radioactive.
상기 뉴클레오타이드는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 일부 또는 전체와 상보적이라면 특별히 제한하지 않으나, 바람직하게는 옥수수 B73 표준 게놈(genome)의 2번 및 4번 염색체(chromosome)로 이루어진 군 중 1종 이상의 염기서열과 상보적일 수 있다.The nucleotide is not particularly limited as long as it is complementary to a part or all of the corn B73 standard genome, but preferably it is one or more of chromosomes 2 and 4 of the corn B73 standard genome May be complementary to the base sequence.
상기 옥수수 B73 표준 게놈은 2011년 Ganal 등이 발표한(Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) 것으로서, MaizeGDB website(http://www.maizegdb.org/sequence.php)에 기재되어 있는 것일 수 있다.The corn B73 standard genome is described in 2011 by Ganal et al. (Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) and is described on the MaizeGDB website (http://www.maizegdb.org/sequence.php) Lt; / RTI >
상기 "상보"는 뉴클레오타이드와 염색체 전체 또는 일부가 특이적으로 결합하는 것을 의미한다.The "complement" means that the nucleotide and all or some of the chromosome are specifically bound.
상기 "옥수수 B73 표준 게놈"은 다형성 부위를 포함하는 다형성 서열(polymorphic sequence)이다. 다형성 서열이란 폴리뉴클레오티드 서열 중에 SNP를 포함하는 다형성 부위(polymorphic site)를 포함하는 서열을 의미한다. 상기 폴리뉴클레오티드 서열은 DNA 또는 RNA가 될 수 있다.
The "corn B73 standard genome" is a polymorphic sequence comprising a polymorphic site. A polymorphic sequence means a sequence comprising a polymorphic site comprising a SNP in a polynucleotide sequence. The polynucleotide sequence may be DNA or RNA.
상기 프라이머 세트는 서열번호 1 내지 8로 이루어진 군 중 2종 이상의 뉴클레오타이드로 표시되는 것이라면 특별히 제한하지 않으나, 적절한 버퍼 중의 적절한 조건(예를 들면, 4개의 다른 뉴클레오시드 트리포스페이트 및 DNA, RNA 폴리머라제 또는 역전사 효소와 같은 중합제) 및 적당한 온도 하에서 주형-지시 DNA 합성의 시작점으로서 작용할 수 있는 단일가닥 올리고뉴클레오티드가 될 수 있는데, 상기 프라이머의 적절한 길이는 사용 목적에 따라 달라질 수 있으나, 통상 15 내지 30 뉴클레오티드이다. 짧은 프라이머 분자는 일반적으로 주형과 안정한 혼성체를 형성하기 위해서는 더 낮은 온도를 필요로 한다. The primer set is not particularly limited as long as it is represented by two or more nucleotides of the group consisting of SEQ ID NOS: 1 to 8, but it is preferable that the primer set is selected from the group consisting of four different nucleoside triphosphates and DNA, Or a reverse transcriptase) and a single strand oligonucleotide capable of serving as a starting point of template-directed DNA synthesis under a suitable temperature. The appropriate length of the primer may vary depending on the purpose of use, but is usually 15-30 Nucleotides. Short primer molecules generally require a lower temperature to form a stable hybrid with the template.
상기 프라이머 서열은 상기 SNP 마커와 완전하게 상보적일 필요는 없으나, 상기 옥수수 B73 표준 게놈과 혼성화 할 정도로 충분히 상보적이어야 한다. 또한, 바람직하게는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트; 및 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머 세트;로 이루어진 군 중 1종 이상의 프라이머 세트를 함유할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 서열번호 1의 뉴클레오타이드와 서열번호 2의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 5의 뉴클레오타이드와 서열번호 6의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트; 또한 서열번호 3의 뉴클레오타이드와 서열번호 4의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머와 서열번호 7의 뉴클레오타이드와 서열번호 8의 뉴클레오타이드를 포함하는 프라이머를 함유하는 프라이머 세트;를 함유할 수 있다.The primer sequence need not be completely complementary to the SNP marker, but should be sufficiently complementary to hybridize with the maize B73 standard genome. Also preferably, a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: 2; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 3 and a nucleotide of SEQ ID NO: 4; A primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; And a primer set comprising a nucleotide of SEQ ID NO: 7 and a nucleotide of SEQ ID NO: 8, and more preferably, a nucleotide of SEQ ID NO: 1 and a nucleotide of SEQ ID NO: A primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 5 and a nucleotide of SEQ ID NO: 6; And a primer set containing a nucleotide of SEQ ID NO: 3, a nucleotide of SEQ ID NO: 4, a nucleotide of SEQ ID NO: 7, and a nucleotide of SEQ ID NO: 8.
상기 프라이머 세트는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법, 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 핵산 서열은 또한 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 이러한 변형의 비-제한적인 예로는 메틸화, "캡화", 천연 뉴클레오타이드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오타이드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예: 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예: 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형이 있다.
The primer set may be chemically synthesized using the phosphoramidite solid support method, or other well-known methods. Such nucleic acid sequences may also be modified using many means known in the art. Non-limiting examples of such modifications include, but are not limited to, methylation, "capping ", replacement of natural nucleotides with one or more homologues, and modifications between nucleotides, such as uncharged linkers, such as methylphosphonate, Phosphoamidates, carbamates, etc.) or charged linkages (e.g., phosphorothioates, phosphorodithioates, etc.).
다음으로, 상기 증폭 산물을 검출한다.Next, the amplification product is detected.
상기 검출은 통상적으로 증폭한 표적 서열을 포함하는 증폭 산물을 검출하는데 사용하는 방법이라면 특별히 제한하지 않으며, 예를 들면 모세관 전기영동, DNA 칩, 겔 전기영동, 방사성 측정, 형광 측정 또는 인광 측정을 통해 수행될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. The detection is not particularly limited as long as it is a method used for detecting an amplification product containing a target sequence amplified, for example, by capillary electrophoresis, DNA chip, gel electrophoresis, radioactive measurement, fluorescence measurement or phosphorescence measurement But is not limited thereto.
상기 모세관 전기영동은 예를 들면, ABi Sequencer를 이용할 수 있으며, 겔 전기영동은 증폭 산물의 크기에 따라 아가로스 겔 전기영동 또는 아크릴아미드 겔 전기영동을 이용할 수 있다. 또한, 형광 측정 방법은 프라이머의 5'-말단에 Cy-5 또는 Cy-3를 표지하여 PCR을 수행하면 표적 서열이 검출가능한 형광 표지 물질로 표지하며, 이렇게 표지한 형광은 형광 측정기를 이용하여 측정할 수 있다. 또한, 방사성 측정 방법은 PCR 수행시 32P 또는 35S 등과 같은 방사성 동위원소를 PCR 반응액에 첨가하여 증폭 산물을 표지한 후, 방사성 측정기구, 예를 들면, 가이거 계수기(Geiger counter) 또는 액체섬광계수기(liquid scintillation counter)를 이용하여 방사성을 측정할 수 있다.
For example, the capillary electrophoresis can use an ABi Sequencer, and gel electrophoresis can use agarose gel electrophoresis or acrylamide gel electrophoresis according to the size of the amplification product. In the fluorescence measurement method, Cy-5 or Cy-3 is labeled at the 5'-end of the primer. When PCR is carried out, the target is labeled with a fluorescent label capable of detecting the target sequence. The labeled fluorescence is measured using a fluorescence meter can do. In addition, in the case of performing the PCR, the radioactive isotope such as 32 P or 35 S is added to the PCR reaction solution to mark the amplification product, and then a radioactive measurement device such as a Geiger counter or liquid scintillation counter The radioactivity can be measured using a liquid scintillation counter.
나아가, 상기 검출은 증폭한 표적 서열을 포함하는 증폭 산물을 검출하는 것이라면 특별히 제한하지 않으나, 바람직하게는 증폭 산물의 크기가 220 ~ 400 bp인 것을 확인하는 공정을 포함할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 증폭 산물의 크기가 240 ~ 395 bp인 것을 확인하는 공정을 포함할 수 있다.Further, the detection is not particularly limited as long as it is capable of detecting an amplification product containing the amplified target sequence. Preferably, the amplification product may include a step of confirming that the size of the amplification product is 220 to 400 bp, And confirming that the size of the amplification product is 240 to 395 bp.
상기 "증폭 산물의 크기"는 표적 서열의 위치 및 크기에 따라 상이하며, 증폭에 사용한 프라이머 세트에 따라서도 상이할 수 있다.
The "amplification product size" differs depending on the position and size of the target sequence, and may vary depending on the primer set used for amplification.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명하기로 한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to examples. However, these examples are intended to further illustrate the present invention, and the scope of the present invention is not limited to these examples.
[[ 실시예Example ]]
준비예Preparation Example . .
하기 실시예의 흑진주찰은 동부팜한농에서 구입하여 사용하였고, 흑진주찰의 모본과 부본은 농촌진흥청 국립식량과학원에서 유지하고 있는 종자를 사용하여 2013년에 농촌진흥청 국립식량과학원 밭작물시험연구포장에서 재배한 후 잎을 채취하여 사용하였다.
The following examples were purchased from Dongbu Farm Hanchon and used and cultivated in the field research test package of the National Institute of Food Science and Technology, Rural Development Administration in 2013 using the seeds retained by the National Institute of Rural Development The leaves were collected and used.
실시예Example 1. One.
1-1: 1-1: DNADNA 추출 extraction
옥수수 게놈(Genomic) DNA는 Dellaporta 등(Dellaporta et al., 1983. Plant Mol. Biol. Rep. 1: 19-211983)의 방법을 약간 수정하여 준비예 1에서 수득한 흑진주찰 옥수수의 어린잎으로부터 추출하였다. The maize genomic DNA was extracted from the young leaves of the black pearl corn obtained in Preparation Example 1 with minor modifications to the method of Dellaporta et al. (1983. Plant Mol. Biol. Rep. 1: 19-211983) Respectively.
구체적으로, 찰옥수수의 어린잎 조직을 0.1g 잘라내어 유발 액체질소에 첨가하고 유봉으로 완전히 분쇄한 후 2.0 ㎖ 튜브에 담았다. 이후 65℃ 수조에 넣어 준비한 추출 버퍼(1M Tris-HCl pH 8.0, 0.5M EDTA, 5M NaCl, 20% SDS)에 0.16g의 소듐 비설페이트를 넣은 후 튜브에 소듐 비설페이트를 포함하는 추출 버퍼 600 ㎕를 넣고 탭핑(tapping)하였다. 이후 튜브에 다시 600 ㎕의 페놀:클로로포름:이소아밀알콜(25:24:1, v/v/v)을 첨가하고 탭핑한 후 65℃ 수조에서 15분간 인큐베이션하고, 그 후 바로 13,000 rpm에서 20분간 원심분리한 후 상층액을 새 튜브에 옮겼다. Specifically, 0.1 g of juvenile leaf tissue of corn was cut out, added to the induced liquid nitrogen, completely pulverized with a pestle, and then placed in a 2.0 ml tube. Thereafter, 0.16 g of sodium bisulfate was added to an extraction buffer (1 M Tris-HCl pH 8.0, 0.5 M EDTA, 5 M NaCl, 20% SDS) prepared in a water bath at 65 ° C and then 600 μl of an extraction buffer containing sodium bisulfate And tapping was performed. Then, 600 μl of phenol: chloroform: isoamyl alcohol (25: 24: 1, v / v / v) was added to the tube and the tube was incubated for 15 minutes in a water bath at 65 ° C. and then immediately incubated at 13,000 rpm for 20 minutes After centrifugation, the supernatant was transferred to a new tube.
이후 상층액이 클로로포름:이소아밀알콜(24:1 = v:v) 용액을 600㎕을 첨가한 후 탭핑하고 다시 14,500 rpm에서 20분간 원심분리하였다. 이후 상층액을 새 튜브에 옮기고, 95% 에탄올 600㎕와 3M 소듐아세테이트 60㎕를 첨가한 후 -20 ℃에서 2 시간 동안 인큐베이팅하고 14,500 rpm에서 20분간 원심분리 하였다. Then, 600 μl of chloroform: isoamyl alcohol (24: 1 = v: v) solution was added to the supernatant, followed by tapping and centrifugation at 14,500 rpm for 20 minutes. The supernatant was then transferred to a new tube, 600 μl of 95% ethanol and 60 μl of 3M sodium acetate were added, incubated at -20 ° C. for 2 hours and centrifuged at 14,500 rpm for 20 minutes.
이후 침전된 펠렛이 떨어지지 않게 모든 용액을 버린 후 70% 에탄올 600㎕를 넣고 가볍게 탭핑한 후, 10,000 rpm으로 원심분리하고 에탄올을 버린 후 공기 중에 건조하였다. 그 후 30㎕의 증류수를 첨가하여 녹이고, 리보누클레아제1(Ribonuclease; Rnase)(Thermo Scientific사의 제품명: RNase I)을 1㎕ 첨가하여 RNA를 완전히 제거하여 옥수수 DNA를 수득하였다.
Subsequently, all the solution was discarded so that the precipitated pellets did not fall off, and then 600 μl of 70% ethanol was added thereto, followed by light tapping, centrifugation at 10,000 rpm, ethanol removal, and air drying. Thereafter, 30 쨉 l of distilled water was added to dissolve, and 1 ㎕ of Ribonuclease (Rnase) (product name of RNase I, manufactured by Thermo Scientific) was added to completely remove RNA to obtain maize DNA.
1-2: 1-2: 프라이머primer 제작 making
흑진주찰 품종 판별용 프라이머를 선발하기 위해, 2011년 Ganal 등이 발표한(Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) 옥수수 B73 표준 게놈을 이용한 SNP 어레이(array)정보를 통하여 800,000개 이상 SNP 사이트(site)가 존재하고 있음을 밝혔고 이 정보를 통하여 염색체(chromosome)당 200개의 SNP site(20 SNP site/chromosome)를 선발하였다. 이렇게 선발한 SNP site을 MaizeGDB website(http://www.maizegdb.org/)을 이용하여 시퀀스 정보를 확보하였다. (Ganal et al., 2011. PloS ONE 6: e28334) SNP array information using the corn B73 standard genome in order to select primers for discrimination of black seedlings from more than 800,000 SNPs We found 200 SNP sites (20 SNP sites / chromosome) per chromosome through this information. Sequence information was obtained using the selected SNP site using the MaizeGDB website (http://www.maizegdb.org/).
이후 PCR 수행시 전방(Forward) 프라이머 3' 말단이 불일치로 인하여 PCR 생성물이 생기지 않는 원리를 이용한 서울대학교 이석하교수 실험실에서 발표한 3'말단 불일치 프라이머 제작 방법을 통하여 프라이머 200개를 제작하였다(Kim et al., 2005. Theor. AppL. Genet. 110:1003-1010)(도면 1 참조). After that, 200 primers were prepared by using 3 'end-inconsistent primer production method published by Professor Lee Seok-ha of Seoul National University using the principle that the PCR product is not generated due to inconsistency of the forward primer 3' al., 2005. Theor. AppL. Genet. 110: 1003-1010) (see Figure 1).
구체적으로, SNP site에서 3'말단의 2번째 염기서열을 불일치시켜 SNP site가 존재 시에는 PCR 생성물이 생성되지 않고 SNP site 존재하지 않을 경우에는 PCR생성물이 생기게 하는 방식으로 보다 쉽게 SNP site의 존재 유무를 검정코자 하였으며, 품종판별을 간편하게 하고자 하였다. 프라이머는 Primer3 프로그램을 이용하였으며, PCR 생성물은 200 ~ 500bp에서 생성되도록 제작하였다.
Specifically, if the second nucleotide sequence at the 3 'end of the SNP site is inconsistent to generate a PCR product in the presence of the SNP site and a SNP site is not present in the SNP site, the presence or absence of the SNP site , And it was tried to discriminate the cultivars easily. The Primer3 program was used and the PCR product was constructed to be generated at 200 ~ 500bp.
1-3: 특이적 반응 1-3: Specific reaction 프라이머primer 선별 Selection
실시예 1-2에서 제작한 전방 프라이머 3'말단의 2번째 염기가 불일치된 200개의 프라이머 세트의 조합 중 찰옥수수 품종 DNA에 특이적으로 반응하는 프라이머 조합을 선발하기 위하여 국내에서 널리 재배되고 있는 실시예 1-1에서 수득한 흑진주찰 DNA를 PCR을 수행한 후 단일밴드로 증폭되거나 증폭이 되지 않는 프라이머 조합을 1차로 선발하였다. 1차 선발 과정을 도면 2에 나타냈다.The combination of 200 primer sets inconsistent with the second base at the 3 'end of the forward primer prepared in Example 1-2 was widely used in the domestic field to select primer combinations that specifically react with the rice corn variety DNA The primer combination amplified or amplified by a single band was firstly selected after performing the PCR on the black spot DNA obtained in Example 1-1. The first selection process is shown in Fig.
구체적으로, 각 염색체당 20개씩의 실시예 1-2에서 제작한 프라이머를 이용하여 PCR 증폭시킨 후, 그 중에서 증폭 양상이 명확한 프라이머 16개를 선발하여 분석에 사용하였다.Specifically, 20 primers per chromosome were amplified by PCR using the primers prepared in Example 1-2, and 16 primers whose amplification patterns were clear were selected for analysis.
상기 PCR 증폭에서 용액의 조성은 총 20㎕로 구성되며 실시예 1-1의 흑진주찰 DNA 20ng, 실시예 1-2에서 제작한 프라이머 0.3M 및 2×GoTaq Polymerase(Promega사 제품)로 하였다.The composition of the solution in the PCR amplification was 20 μl in total, and 20 ng of the DNA of Example 1-1, the primer prepared in Example 1-2, and 2 × GoTaq Polymerase (manufactured by Promega) were used.
PCR 반응은 95℃에서 5분간 인큐베이션하고, 95℃에서 1분간 변성, 45 ~ 65℃에서 1분간 어닐링, 72℃에서 2분간 연장을 하고, 이 과정을 29 사이클을 반복하였으며, 사이클 완료 후 72℃에 10분간 연장하였고 4℃에서 PCR 증폭반응을 종결시켰다. 이후 증폭된 PCR 산물 18㎕를 1% 아가로오스 겔(agarose gel)에 로딩(loading)한 후 100V(볼트)에서 40분 동안 전기영동을 수행하였으며, 전기영동이후 에티듐 브로마이드(EtBr; Ethidium bromide)로 염색한(staining) 후 UV를 이용하여 밴드를 확인하였다.
The PCR reaction was carried out at 95 ° C for 5 minutes, denatured at 95 ° C for 1 minute, annealed at 45 ° C to 65 ° C for 1 minute, and extended at 72 ° C for 2 minutes. This process was repeated 29 cycles. For 10 min and the PCR amplification was terminated at 4 ° C. Then, 18 μl of the amplified PCR product was loaded on 1% agarose gel and electrophoresed at 100 V (volts) for 40 minutes. After electrophoresis, EtBr (Ethidium bromide ), And the band was confirmed using UV.
도 2에서 확인되는 바와 같이, 예상하지 않은 PCR 밴드가 생기는 프라이머 조합을 제외하고 SNP site에 특이적으로 반응하는 프라이머 조합만을 선발하였다.
As can be seen in Figure 2, only the primer combinations that specifically reacted to the SNP site were selected, except for primer combinations that resulted in unexpected PCR bands.
이후 프라이머 조합이 자식계통과 품종 간에 불일치되는 프라이머 조합을 제거하기 위하여 찰옥수수 모·부본의 DNA를 실시예 1-1의 방법과 동일한 방법으로 DNA를 추출하여 이들 간에 상호 구별 가능성을 검정하였다. Then, in order to remove the primer combination in which the primer combination is inconsistent between the offspring and the cultivars, the DNA of the corn bran was amplified in the same manner as in Example 1-1,
구체적인 검정 방법은 2014년에 수확한 찰옥수수 DNA를 F1으로 하고, 교배친인 모본은 KBW24를 사용하였고 부본은 KBW2를 사용하였으며(모본과 부본은 농촌진흥청 국립식량과학원에 분양을 요청할 경우 분양받을 수 있다), 품종은 실시예 1-1에서 수득한 흑진주찰 DNA를 이용하였다. 또한, DNA 추출방법을 실시예 1-1과 동일한 방법으로 수행하였고, PCR 증폭방법은 상술한 바와 같이 수행하였으며, 결과는 도 3에 나타났다.
The specific test method is to use F 1 for the corn DNA harvested in 2014, KBW24 for the crossbreed sample, and KBW2 for the replicate (the sample and the replicate are sold to the National Institute of Food Science and Technology ). For the cultivar, the DNA of the black precipitate obtained in Example 1-1 was used. In addition, the DNA extraction method was performed in the same manner as in Example 1-1, and the PCR amplification method was performed as described above, and the results are shown in FIG.
도 3에서 확인되는 바와 같이, 모본과 부본에서는 PCR 밴드가 있으나 품종에서는 생성되지 않은 프라이머 조합은 품종을 판별할 수 있는 프라이머 조합으로는 적합하지 않아 선발에서 제외하였다. 이후 선발한 프라이머 세트 4개는 하기 표 1에 기재하였다.As can be seen in FIG. 3, primer combinations that were not generated in the varieties but not in the PCR bands were excluded from the selection because they were not suitable as a primer combination capable of discriminating the varieties. The four primer sets thus selected are listed in Table 1 below.
번호 order
number
번호 order
number
(℃)Tm
(° C)
상기 표 1에서 확인되는 바와 같이, 본 발명의 프라이머는 2번 염색체(chromosome)에서 3개, 4번 염색체에서 1개의 프라이머 조합을 선발하였다. 선발한 프라이머 조합은 50 ~ 64℃의 다양한 어닐링(annealing) 온도를 가졌다.
As shown in Table 1, the primers of the present invention selected three primers on chromosome 2 and one primer on chromosome 4. The primer combinations selected had various annealing temperatures of 50-64 ° C.
이후 흑진주찰에 대하여 교배친의 순도와 품종의 품질을 평가에 적합한 프라이머 세트를 선발하기 위하여, 흑진주찰 모·부본의 DNA를 실시예 1-1의 방법과 동일한 방법으로 DNA를 추출하여 평가하였다. Then, in order to select a primer set suitable for evaluating the purity of the hybrid and the quality of the cultivar, the DNA was extracted from the DNA of the black pearl raspberry by the same method as in Example 1-1.
구체적으로, DNA 추출방법을 실시예 1-1과 동일한 방법으로 수행하였고, PCR 증폭방법은 상술한 바와 같이 수행하였다. 이때 사용한 프라이머는 IBM471, IBM535, IBM549와 IBM795를 이용하였다. 증폭 결과 중 교배친의 순도를 확인한 결과는 도 4에, 품종의 품질판별 결과는 도 5에 나타냈다.
Specifically, the DNA extraction method was performed in the same manner as in Example 1-1, and the PCR amplification method was performed as described above. The primers used were IBM471, IBM535, IBM549 and IBM795. FIG. 4 shows the results of confirming the purity of the mating fungus among the amplification results, and FIG. 5 shows the results of the quality discrimination of the varieties.
도 4에서 알 수 있는 것과 같이, 모본과 부본의 순도 확인은 IBM471 및 IBM549 프라이머 세트를 이용한 PCR 증폭 산물에서 모본 또는 부본에서 증폭 밴드(IBM471은 390 bp, IBM549은 316 bp)를 확인할 수 있어야 교배친의 순도가 높음을 알 수 있었다. As can be seen in Figure 4, the purity of the samples and duplicates should be confirmed by amplification bands (390 bp for IBM471 and 316 bp for IBM549) in the PCR amplification product using the IBM471 and IBM549 primer sets. Of the purity was high.
또한, 품종의 품질은 IBM471 및 IBM549 프라이머 세트를 이용한 PCR 증폭 산물 중 IBM471은 390 bp에서, IBM549은 316 bp에서 밴드가 확인되어야 우수한 품질임을 알 수 있었다.
In addition, the quality of breed was superior to that of IBM471 and IBM549 in the PCR amplification products using the IBM471 and IBM549 primer sets, respectively, and the band was confirmed at 316 bp for IBM549.
도 5에서 확인되는 바와 같이, 흑진주찰는 IBM535 및 IBM795 프라이머 세트를 이용한 PCR 증폭 산물 모두에서 각각 251 bp(IBM535) 및 250 bp(IBM795)에서 밴드가 확인되어야 흑진주찰로 판별할 수 있는 것을 알 수 있었다.
As can be seen in Figure 5, it was found that black spots can be distinguished from black spots by confirming bands at 251 bp (IBM535) and 250 bp (IBM795) in both PCR amplification products using the IBM535 and IBM795 primer sets .
상기 실시예를 통해 확인할 수 있는 바와 같이, 본 발명의 프라이머 세트는 흑진주찰의 효과적인 품종 판별, 흑진주찰 품종보호 및 모·부본의 순도를 효과적으로 검정할 수 있음을 알 수 있었다. 또한, 본 발명은 상기 흑진주찰 판별용 프라이머 세트를 이용하여 흑진주찰 판별에 유용한 판별방법을 제공함을 알 수 있었다.As can be seen from the above examples, it can be seen that the primer set of the present invention can effectively test the kind of black seed crystals, the protection of black seed crystals, and the purity of mother seeds. Further, the present invention provides a useful discriminating method for black spot inspection using the primer set for black spot inspection.
<110> REPUBLIC OF KOREA(MANAGEMENT : RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Primer set for Heukjinjuchal identification and method for identification <130> 1040816 <160> 8 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 1 ttctgctgtg gtaaatgcaa tt 22 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 2 gctgtccaac accttgctta 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 3 tgctggattc gctcatccgg 20 <210> 4 <211> 21 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 4 tgcgtcggca gcaaggaaca t 21 <210> 5 <211> 24 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 5 tcgcaatcga tcacagctgt ataa 24 <210> 6 <211> 21 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 6 gcagcatctt ctccatcaag g 21 <210> 7 <211> 24 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 7 gctgtatgta atgtgaccta cacg 24 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 8 ttgtgtccac gtctgtcaac 20 <110> REPUBLIC OF KOREA (MANAGEMENT: RURAL DEVELOPMENT ADMINISTRATION) <120> Primer set for Heukjinjuchal identification and method for identification <130> 1040816 <160> 8 <170> Kopatentin 2.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 1 ttctgctgtg gtaaatgcaa tt 22 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 2 gctgtccaac accttgctta 20 <210> 3 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 3 tgctggattc gctcatccgg 20 <210> 4 <211> 21 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 4 tgcgtcggca gcaaggaaca t 21 <210> 5 <211> 24 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 5 tcgcaatcga tcacagctgt ataa 24 <210> 6 <211> 21 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 6 gcagcatctt ctccatcaag g 21 <210> 7 <211> 24 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 7 gctgtatgta atgtgaccta cacg 24 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> single nucleotide polymorphism <400> 8 ttgtgtccac gtctgtcaac 20
Claims (10)
서열번호 7로 표시되는 정방향 프라이머 및 서열번호 8로 표시되는 역방향 프라이머의 프라이머 세트를 포함하는 흑진주찰 판별용 프라이머 조성물.A primer set of the forward primer represented by SEQ ID NO: 3 and a reverse primer set forth in SEQ ID NO: 4; And
A primer set of a forward primer represented by SEQ ID NO: 7 and a reverse primer set forth in SEQ ID NO: 8.
서열번호 1로 표시되는 정방향 프라이머 및 서열번호 2로 표시되는 역방향 프라이머의 프라이머 세트; 및
서열번호 5로 표시되는 정방향 프라이머 및 서열번호 6으로 표시되는 역방향 프라이머의 프라이머 세트;를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는, 흑진주찰 판별용 프라이머 조성물.The method of claim 1, wherein the primer composition comprises
A primer set of a forward primer represented by SEQ ID NO: 1 and a reverse primer represented by SEQ ID NO: 2; And
A primer set of a forward primer represented by SEQ ID NO: 5 and a reverse primer set forth in SEQ ID NO: 6.
상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 제 1항의 프라이머 조성물을 이용하여 증폭 반응을 수행하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및
상기 증폭 산물을 검출하는 단계;
를 포함하는 흑진주찰 판별 방법.Isolating the genomic DNA from the maize;
Amplifying the target sequence by performing an amplification reaction using the separated genomic DNA as a template and using the primer composition of claim 1; And
Detecting the amplification product;
Wherein the black discrimination discrimination method comprises the steps of:
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JP2008212005A (en) | 2007-02-28 | 2008-09-18 | Japan Grassland Farming Forage Seed Association | Primer set for detecting dna marker linking to maize pleiophylly-associated gene locus, and use thereof |
JP2008220269A (en) | 2007-03-13 | 2008-09-25 | Japan Grassland Farming Forage Seed Association | Primer set for detecting dna marker linked to gene locus relating to fat-content in corn seed and its use |
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