JPWO2014003176A1 - プロテインaのbドメイン変異体を含むポリペプチドが結合された担体からなる吸着材 - Google Patents
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Abstract
Description
(1) N末端側からタグペプチド、リンカー配列、及びプロテインAのBドメイン変異体を含むポリペプチドが結合された担体からなる吸着材であって、
上記リンカー配列が、Val-Pro-Arg配列を含まず、かつ7から12個のアミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列であり;前記プロテインAのBドメイン変異体が、pH5〜9及び60℃未満の条件下においてイムノグロブリンとの結合性が温度によって変化しうるものである、上記吸着材。
(3) リンカー配列が、メチオニン残基を含む、(1)又は(2)に記載の吸着材。
(4) リンカー配列が、ロイシン残基を含む、(1)から(3)の何れかに記載の吸着材。
(5) リンカー配列が、ヒスチジン残基を含む、(1)から(4)の何れかに記載の吸着材。
グリシン残基、セリン残基及びメチオニン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基及びヒスチジン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基及びロイシン残基から構成されるアミノ酸配列;又は
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基、ロイシン残基及びアルギニン残基から構成されるアミノ酸配列:
の何れかである、(1)から(5)の何れかに記載の吸着材。
(8) リンカー配列が、Ser-Ser-Gly-Leu-(Xbb)m-His-Met(式中、mは1から6の整数を示し、m個のXbbはそれぞれ独立に、グリシン残基、セリン残基又はアルギニン残基を示す)で示されるアミノ酸配列である、(1)から(7)の何れかに記載の吸着材。
(10) プロテインAのBドメイン変異体が、配列番号1のポリペプチドと60%以上の相同性を有するアミノ酸配列(但し、配列番号1で表されるアミノ酸配列において少なくとも19位のGly及び/または22位のGlyは、Ala又はLeuに置換されている)であって、かつpH5〜9及び60℃未満の条件下においてイムノグロブリンとの結合性が温度によって変化しうるアミノ酸配列を、1分子内に少なくとも1以上含むものである、(1)から(9)の何れかに記載の吸着材。
(11) プロテインAのBドメイン変異体が、配列番号2に記載のアミノ酸配列を1分子内に少なくとも1以上含むものである、(1)から(10)の何れかに記載の吸着材。
(13) 担体の平均粒子径が20〜200μmである、(1)から(12)の何れかに記載の吸着材。
(14) 担体が、ポリビニルアルコールの架橋重合体から構成される、(1)から(13)の何れかに記載の吸着材。
(16) 担体に対し、20mg/mL樹脂以上のポリペプチドが結合している、(1)から(15)の何れかに記載の吸着材。
(17) イムノグロブリンの最大結合容量が、20mg/mL樹脂以上である、(1)から(16)の何れかに記載の吸着材。
(18) 担体が、カルボキシル基を400〜600μmol/mL樹脂含むものである、(1)から(17)の何れかに記載の吸着材。
(20) 膜が中空糸状である、(19)に記載の吸着材。
(21) 膜が、グラフト高分子鎖を導入した基材膜から製造される、(19)又は(20)に記載の吸着材。
(22) (1)から(21)の何れかに記載の吸着材に、イムノグロブリンを含有する試料を接触させることを含む、イムノグロブリンの精製方法。
本発明の吸着材は、N末端側からタグペプチド、リンカー配列、及びプロテインAのBドメイン変異体を含むポリペプチドが結合された担体からなるものである。
本発明におけるリンカー配列の特徴の一つは、トロンビン認識配列であるVal-Pro-Arg配列を含まないことである。Val-Pro-Arg配列を除外したことにより、ポリペプチドの製造時の安定性が向上し、培養生産性を向上することができるとともに、使用時における安定性も向上し、Hisタグなどのタグペプチドの溶出を防止することができる。
上記した好ましいリンカー配列のアミノ酸配列の具体例としては、
グリシン残基、セリン残基及びメチオニン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基及びヒスチジン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基及びロイシン残基から構成されるアミノ酸配列;又は
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基、ロイシン残基及びアルギニン残基から構成されるアミノ酸配列:
などを挙げることができる。
(グリシン、プロリン、アラニン、バリン)
(ロイシン、イソロイシン)
(グルタミン酸、グルタミン)
(アスパラギン酸、アスパラギン)
(システイン、スレオニン)
(スレオニン、セリン、アラニン)
(リジン、アルギニン)
精製の対象となるイムノグロブリンとしては、生体あるいは培養細胞等に由来するものの他、それらの構造を模して人工的に合成されたものでもよく、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。また、イムノグロブリンは、非ヒト動物由来のイムノグロブリンを、ヒト化等のキメラ化,あるいはヒト型化(完全ヒト化)したものでもよい。また、精製対象であるイムノグロブリンとしては、モノクローナル抗体の重鎖可変領域であるVH鎖と軽鎖可変領域であるVL鎖のみからなるファージ抗体でもよい。
(部位特異的変異導入のための鋳型プラスミドの調製)
ヒスチジンタグ配列、リンカー配列(配列番号5)および温度応答性プロテインAの反復配列からなるポリペプチドをコードする挿入遺伝子(配列番号3)の5'末端側にNcoI認識配列(CCATGG)を、3'末端側にBamHI認識配列(GGATCC)を付加したdsDNAは化学的に合成した。該DNAの両末端を制限酵素NcoIとBamHIで切断した後、アガロースゲル電気泳動を行い、QIAquick Gel Extraction Kit(キアゲン社製、日本)を用いて精製したものを挿入遺伝子として用いた。発現ベクターは、pET28b(+)プラスミド(メルク社製、日本)のクローニングサイトを制限酵素NcoIとBamHIで切断し、前記挿入遺伝子を、T4DNAリガーゼでライゲーションして調製した。
上記発現ベクターを用いて、ヒートショック法により、XL1−blueコンピテントセル(日本ジーン社製、日本)の形質転換を行った。その反応物を50μg/mLのカナマイシンを含むLB培地プレートで18時間増殖させた。該プレート上に出現したコロニーを50μg/mLのカナマイシンを含むLB液体培地に接種し、18時間増殖させて上記発現ベクターで形質転換された大腸菌クローンを得た。
この大腸菌株から、QIAprep Spin miniprep kit(キアゲン社製、日本)を使用して、部位特異的変異導入のための鋳型プラスミドを精製した。
リンカー配列の異なる変異体ポリペプチドは、上記鋳型プラスミドに、KOD plus Mutagenesis Kit(東洋紡社製、日本)を用いたInversePCR法によって部位特異的に変異導入して作成した。InversePCRの後、メチル化されている鋳型プラスミドをDpnIで消化した。その後、T4 DNAリガーゼでセルフライゲーションしたものを、リンカー配列の異なる変異体ポリペプチドの発現ベクターとした。作成した変異体ポリペプチドのリンカー配列部分のアミノ酸配列を、配列番号5に示した。得られた変異体ポリペプチドの発現ベクターを用いて、E.coli BL21(DE3)株の形質転換を行い、変異体ポリペプチドを発現する形質転換体1を得た。
変異体ポリペプチドを発現する形質転換体1を、50μg/mLカナマイシンを含むLB培地プレートで、37℃で、16時間増殖させた。出現したコロニーを1つ選び、50μg/mLカナマイシンを含むLB液体培地に接種して、37℃で振とう培養した。培養開始から5時間目に終濃度1mMとなるようにIPTGを添加してさらに3時間振とう培養を続けた。形質転換体1の菌体量を、分光光度計を用いて波長600nmの濁度で測定した値は14.8であった。
得られた上澄み液に含まれる各変異体ポリペプチドの発現量はHPLC法で測定した。発現量は1.13mg/mLであった。
変異体ポリペプチドのリンカー配列を、配列番号6〜11又は15〜16に示すものに変更し、それぞれに対応する形質転換体2〜7及び12〜13を得た以外は、実施例1と同様に、部位特異的変異導入、形質転換体の調製および発現量の確認を行った。結果を表3に示した。
変異体ポリペプチドのリンカー配列を、配列番号4又は配列番号12〜14に示すものに変更し、それぞれに対応する形質転換体10〜13を得た以外は、実施例1と同様に、部位特異的変異導入、形質転換体の調製および発現量の確認を行った。結果を表3に示した。
(形質転換体1の大量培養および安定性確認)
実施例1の形質転換体1を、50μg/mLカナマイシンを含むLB培地プレートで、37℃で、16時間増殖させた。出現したコロニーを1つ選び、50μg/mLカナマイシンを含むLB液体培地に接種して、37℃で7時間振とう培養した。得られた培養液の0.5mLを、5L容量の加圧通気攪拌培養槽(培地液量3L、培地組成:2% グルコース、0.1% ラクトース1水和物、0.5% 酵母エキス、1.0% ペプトン、0.5% NaCl)に接種して、37℃で16時間、通気攪拌培養を行った。実施例1と同様に、菌体量を測定し、菌体を破砕して変異体ポリペプチドの発現量を測定した。菌体量は、600nm濁度で35であり、変異体ポリペプチドの発現量は、培養液当たりで2.3g/Lであった(表4)。得られた菌体破砕液を10℃条件下で24時間放置した後、変異体ポリペプチドの濃度を再度測定したところ、2.3g/Lであった(表4)。
形質転換体1の代わりに、形質転換体2〜9をそれぞれ用いること以外は、実施例10と同様に、形質転換体2〜9の大量培養および安定性確認を行った。結果を表4に示した。
(形質転換体10の大量培養および安定性確認)
形質転換体10を用いた以外は、実施例10と同様に培養を行った。菌体量は、600nm濁度で32であり、変異体ポリペプチドの発現量は、培養液当たりで1.2g/Lであった(表4)。実施例10と同様に菌体破砕液を10℃条件下で24時間放置した後、変異体ポリペプチドの濃度を再度測定したところ、0.9g/Lであった(表4)。SDS−PAGEで確認したところ、変異体ポリペプチドのバンドよりも低分子量のバンドが出現していた。
形質転換体10の代わりに、形質転換体11〜13をそれぞれ用いること以外は、比較例5と同様に、形質転換体11〜13の大量培養および安定性確認を行った。結果を表4に示した。
(形質転換体1培養液からの変異体ポリペプチドの精製)
実施例10で得られた変異体ポリペプチドを含む菌体破砕液を遠心分離して、変異体ポリペプチドを含む上澄み液を得た。得られた上澄み液を、Ni−Sepharose CL−6B(GEヘルスケア社製)カラムに吸着させて、250mMイミダゾールを含む10mM Tris−HCl緩衝液(pH8.0)で溶出した。溶出液は、さらに、陰イオン交換カラムに吸着させて、NaCl濃度グラジエントで溶出させることにより精製した。陰イオン交換カラムの溶出画分は、限外濾過膜(分画分子量3000kDa)で濃縮と脱塩を行って、変異体ポリペプチドの濃縮液20mLを得た。濃縮液中に含まれる変異体ポリペプチドの量は、1.0gであった。
得られた変異体ポリペプチドを、以下の方法により、架橋ポリビニルアルコールビーズへ固定化した。
1)カルボキシル基の導入
無水コハク酸3.0g及び4−ジメチルアミノピリジン3.6gをトルエン450mLに溶解させたものを反応液として用いた。架橋ポリビニルアルコールビーズ(平均粒子径100μm)1gを上記反応液と50℃で接触させ、2時間攪拌した。その後、架橋ポリビニルアルコールビーズを脱水イソプロピルアルコールで洗浄した。カルボキシル基導入量を測定した結果、443μmol/mL−ビーズ体積であった。
上記架橋ポリビニルアルコールビーズを、空カラム(Tricorn5/20、GEヘルスケア社製)に充填した。
上記カラムを40℃に加温しながら、NHS活性化反応液(NHS0.07g、脱水イソプロピルアルコール45mL、ジイソプロピルカルボジイミド0.09mL)を、0.4mL/分の流速で30分間透過し、カルボキシル基をNHS活性化した。反応後、脱水イソプロピルアルコールを透過させることで洗浄した。
上記NHS活性化カラムに氷冷した1mM塩酸を2mL透過して、脱水イソプロピルアルコールを置換した。ついで、変異体ポリペプチド30mgを1mLのカップリング緩衝液(0.2Mリン酸緩衝液、0.5M NaCl、pH8.3)に溶解後に2℃に冷却し、0.4mL/分の流速でカラムに供給した後、16時間保持させた。所定時間経過後、カラムにカップリング緩衝液を透過させることで、NHS活性基とカップリング反応しなかった変異体ポリペプチドを洗浄・回収した。
変異体ポリペプチドをカップリングしたカラムにブロッキング反応液(0.5M エタノールアミン、0.5M NaCl、pH8.0)を10mL透過し、残留NHSをエタノールアミンでブロッキングした。反応後、このカラムを純水で洗浄し、その後20%エタノールでカラムに封入した状態で4℃で保存した。
クロマトグラフィーシステム(AKTA FPLC、GEヘルスケア社製)を用いて、温度変化による免疫グロブリン(献血ヴェノグロブリン−IH、ベネシス社製)の吸着・溶出試験を行った。カラムの温度変化操作は、クロマトグラフィーシステムのポンプを一度停止し、カラムを所定温度の恒温水槽に浸漬し、その後10分以上放置した後にクロマトグラフィーシステムのポンプを再度起動することにより行った。吸着温度を2℃、溶出温度を40℃とした。温度溶出後、溶出しきれなかった抗体を、低pHの溶出緩衝液(0.1Mクエン酸緩衝液、pH3.0)で溶出させた。各溶出画分のUV吸収(280nm)を測定し、下記式より免疫グロブリン濃度を算出することにより、免疫グロブリンの最大結合容量を算出した。
免疫グロブリン濃度(mg/mL)=280nmの吸光度/14×10
最大結合容量(mg/mL)=
温度溶出画分の免疫グロブリン濃度×温度溶出画分の液量/ビーズ体積
動的吸着容量は、得られた破過曲線の10%破過点の溶出容量から算出した。
免疫グロブリンの最大結合容量は34.0mg/mL−ビーズ体積、動的吸着容量は19.9mg/mL−ビーズ体積であった(表5)。
架橋ポリビニルアルコールビーズの平均粒子径が60μmであること以外は、実施例19と同じ条件で実施した。免疫グロブリンの最大結合容量は47.0mg/mL−ビーズ体積、動的吸着容量は26.0mg/mL−ビーズ体積であった(表5)。
架橋ポリビニルアルコールビーズの代わりに、架橋セルロースビーズを用いること以外は、実施例19と同じ条件で実施した。免疫グロブリンの最大結合容量は18.9mg/mL−ビーズ体積、動的吸着容量は2.9mg/mL−ビーズ体積であった(表5)。
架橋ポリビニルアルコールビーズの代わりに、架橋アガロースビーズを用いること以外は、実施例19と同じ条件で実施した。免疫グロブリンの最大結合容量は18.0mg/mL−ビーズ体積、動的吸着容量は6.1mg/mL−ビーズ体積であった(表5)。
実施例19で得られた変異体ポリペプチドの濃縮液を用いて、中空糸への固定化を行った。
1)表面グラフト重合
GMA20gをメタノール180mLに溶解させ、30分間、窒素バブリングしたものを反応液として用いた。ポリエチレン製中空糸(内径2.0mm、外径3.0mm、平均孔径0.25μm)2gを窒素雰囲下において、ドライアイスで−60℃に冷却しながら、コバルト60を線源としてγ線を200kGy照射した。照射後の中空糸は、13.4pa以下の減圧下に5分間静置した後、20mLの上記反応液と該中空糸を40℃で接触させ、16時間静置した。その後、中空糸をエタノールで洗浄し、真空乾燥機で真空乾燥させた。
表面グラフト重合した中空糸を0.5mol/L硫酸中に投入し、80℃で2時間反応を行うことで、グラフト鎖中に残存していたエポキシ基をジオール基に変換した。反応後、この中空糸を純水で洗浄した後、膜をエタノールで洗浄し、真空乾燥機で真空乾燥させた。
エポキシ基をジオール化した中空糸を、無水コハク酸3.0g及び4−ジメチルアミノピリジン3.6gをトルエン900mLに溶解させた反応液に浸漬し、40℃で60分間反応させることで、グラフト鎖にカルボキシル基を導入した。反応後、この中空糸をエタノールで洗浄し、真空乾燥機で真空乾燥させた。
モジュール化した中空糸(中空糸1本モジュール、有効糸長4cm)を40℃に加温しながら、NHS活性化反応後(NHS0.07g、脱水イソプロピルアルコール45mL、ジイソプロピルカルボジイミド0.09mL)を0.4mL/分の流速で60分間透過し、カルボキシル基をNHS活性化した。反応後、中空糸モジュールを氷冷しながら、中空糸モジュールに脱水イソプロピルアルコールを0.4mL/分の流速で60分間透過させることで洗浄した。洗浄後の中空糸モジュールは、脱水イソプロピルアルコールを封入した状態で、4℃で保存した。
カルボキシル基をNHS活性化した中空糸モジュールに氷冷した1mmol/L塩酸を10mL透過して、保存液である脱水イソプロピルアルコールを置換した。次いで、実施例19で得られた変異体ポリペプチド20mgを7mLのカップリング緩衝液(0.2mol/L リン酸緩衝液、0.5mol/L NaCl、pH8.3)に溶解後に2℃に冷却し、0.4mL/分の流速で中空糸モジュールを透過させ、透過液を供給液に連続的に加えることで、16時間循環させた。循環中もモジュールを2℃に保つことで、カップリング時の温度を2℃に保った。所定時間経過後、中空糸モジュールにカップリング緩衝液を透過させることで、NHS活性基とカップリングしなかった変異体ポリペプチドを洗浄・回収した。
変異体ポリペプチドをカップリングした中空糸モジュールにブロッキング反応液(0.5mol/L エタノールアミン、0.5mol/L NaCl、pH8.0)を10mL透過し、室温で30分間放置することで、残留NHSをエタノールアミンでブロッキングした。反応後、この中空糸モジュールを純水で洗浄し、その後20%エタノールでモジュールに封入した状態で4℃で保存した。
実施例19と同様にクロマトグラフィーシステム(AKTA FPLC、GEヘルスケア社製)を用いて、温度変化による免疫グロブリン(献血ヴェノグロブリン−IH、ベネシス社製)の吸着・溶出試験を行った。下記式より免疫グロブリン濃度を算出することにより、免疫グロブリンの最大結合容量を算出した。
免疫グロブリン濃度(mg/mL)=280nmの吸光度/14×10
最大結合容量(mg/mL)=
温度溶出画分の免疫グロブリン濃度×温度溶出画分の液量/膜体積
免疫グロブリンの最大結合容量は15.3mg/mL−膜体積であった(表5)。
形質転換体2〜8を使用し、架橋ポリビニルアルコールビーズの平均粒子径が60μmであること以外は実施例19と同じ条件で、培養液から変異体ポリペプチドを精製し、架橋ポリビニルアルコールビーズに固定化し、免疫グロブリンの最大結合容量、及び動的吸着容量を測定した。結果を表5に示した。
形質転換体10〜13を使用し、架橋ポリビニルアルコールビーズの平均粒子径が60μmであること以外は実施例19と同じ条件で、培養液から変異体ポリペプチドを精製し、架橋ポリビニルアルコールビーズに固定化し、免疫グロブリンの最大結合容量、及び動的吸着容量を測定した。結果を表5に示した。
Claims (22)
- N末端側からタグペプチド、リンカー配列、及びプロテインAのBドメイン変異体を含むポリペプチドが結合された担体からなる吸着材であって、
上記リンカー配列が、Val-Pro-Arg配列を含まず、かつ7から12個のアミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列であり;前記プロテインAのBドメイン変異体が、pH5〜9及び60℃未満の条件下においてイムノグロブリンとの結合性が温度によって変化しうるものである、上記吸着材。 - リンカー配列が、1から4個のグリシン残基と3から7個のセリン残基を含む、請求項1に記載の吸着材。
- リンカー配列が、メチオニン残基を含む、請求項1又は2に記載の吸着材。
- リンカー配列が、ロイシン残基を含む、請求項1から3の何れか1項に記載の吸着材。
- リンカー配列が、ヒスチジン残基を含む、請求項1から4の何れか1項に記載の吸着材。
- リンカー配列が、
グリシン残基、セリン残基及びメチオニン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基及びヒスチジン残基から構成されるアミノ酸配列;
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基及びロイシン残基から構成されるアミノ酸配列;又は
グリシン残基、セリン残基、メチオニン残基、ヒスチジン残基、ロイシン残基及びアルギニン残基から構成されるアミノ酸配列:
の何れかである、請求項1から5の何れか1項に記載の吸着材。 - リンカー配列が、Ser-Ser-Gly-(Xaa)n-Met(式中、nは3から8の整数を示し、n個のXaaはそれぞれ独立に、グリシン残基、セリン残基、ヒスチジン残基、ロイシン残基又はアルギニン残基を示す)で示されるアミノ酸配列である、請求項1から6の何れか1項に記載の吸着材。
- リンカー配列が、Ser-Ser-Gly-Leu-(Xbb)m-His-Met(式中、mは1から6の整数を示し、m個のXbbはそれぞれ独立に、グリシン残基、セリン残基又はアルギニン残基を示す)で示されるアミノ酸配列である、請求項1から7の何れか1項に記載の吸着材。
- タグペプチドが6xヒスチジンタグである、請求項1から8の何れか1項記載の吸着材。
- プロテインAのBドメイン変異体が、配列番号1のポリペプチドと60%以上の相同性を有するアミノ酸配列(但し、配列番号1で表されるアミノ酸配列において少なくとも19位のGly及び/または22位のGlyは、Ala又はLeuに置換されている)であって、かつpH5〜9及び60℃未満の条件下においてイムノグロブリンとの結合性が温度によって変化しうるアミノ酸配列を、1分子内に少なくとも1以上含むものである、請求項1から9の何れか1項に記載の吸着材。
- プロテインAのBドメイン変異体が、配列番号2に記載のアミノ酸配列を1分子内に少なくとも1以上含むものである、請求項1から10の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体が、粒子状のクロマト充填剤である、請求項1から11の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体の平均粒子径が20〜200μmである、請求項1から12の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体が、ポリビニルアルコールの架橋重合体から構成される、請求項1から13の何れか1項に記載の吸着材。
- ポリペプチドがアミド結合によって担体に結合されている、請求項1から14の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体に対し、20mg/mL樹脂以上のポリペプチドが結合している、請求項1から15の何れか1項に記載の吸着材。
- イムノグロブリンの最大結合容量が、20mg/mL樹脂以上である、請求項1から16の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体が、カルボキシル基を400〜600μmol/mL樹脂含むものである、請求項1から17の何れか1項に記載の吸着材。
- 担体が膜である、請求項1から11の何れか1項に記載の吸着材。
- 膜が中空糸状である、請求項19に記載の吸着材。
- 膜が、グラフト高分子鎖を導入した基材膜から製造される、請求項19又は20に記載の吸着材。
- 請求項1から21の何れかに記載の吸着材に、イムノグロブリンを含有する試料を接触させることを含む、イムノグロブリンの精製方法。
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Citations (5)
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---|---|---|---|---|
JPS61268193A (ja) * | 1985-03-28 | 1986-11-27 | チロン コ−ポレイシヨン | 融合蛋白質をコードするdna |
JP2003508023A (ja) * | 1999-07-13 | 2003-03-04 | ボルダー バイオテクノロジー, インコーポレイテッド | 免疫グロブリン融合タンパク質 |
JP2007289200A (ja) * | 1999-12-24 | 2007-11-08 | Genentech Inc | 生理活性化合物の消失半減期延長のための方法及び組成物 |
WO2008143199A1 (ja) * | 2007-05-21 | 2008-11-27 | Nomadic Bioscience Co., Ltd. | 新規ポリペプチド,アフィニティークロマトグラフィー用材,及びイムノグロブリンの分離及び/又は精製方法 |
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---|---|---|---|---|
US5395924A (en) * | 1986-03-20 | 1995-03-07 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Blocked lectins; methods and affinity support for making the same using affinity ligands; and method of killing selected cell populations having reduced non-selective cytotoxicity |
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US20020041865A1 (en) * | 2000-01-20 | 2002-04-11 | Richard Austin | Methods for treating tumors |
EP1933883B1 (en) * | 2005-08-03 | 2015-10-07 | Rq Bioscience, Inc. | Methods and compositions for diagnosis of iga-and igm-mediated kidney diseases |
WO2007097361A1 (ja) * | 2006-02-21 | 2007-08-30 | Protenova Co., Ltd. | イムノグロブリン親和性リガンド |
CA2860950C (en) * | 2007-07-10 | 2017-08-01 | Apogenix Gmbh | Tnf superfamily collectin fusion proteins |
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Patent Citations (5)
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---|---|---|---|---|
JPS61268193A (ja) * | 1985-03-28 | 1986-11-27 | チロン コ−ポレイシヨン | 融合蛋白質をコードするdna |
JP2003508023A (ja) * | 1999-07-13 | 2003-03-04 | ボルダー バイオテクノロジー, インコーポレイテッド | 免疫グロブリン融合タンパク質 |
JP2007289200A (ja) * | 1999-12-24 | 2007-11-08 | Genentech Inc | 生理活性化合物の消失半減期延長のための方法及び組成物 |
WO2008143199A1 (ja) * | 2007-05-21 | 2008-11-27 | Nomadic Bioscience Co., Ltd. | 新規ポリペプチド,アフィニティークロマトグラフィー用材,及びイムノグロブリンの分離及び/又は精製方法 |
WO2011125673A1 (ja) * | 2010-03-31 | 2011-10-13 | Jsr株式会社 | アフィニティークロマトグラフィー用充填剤 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
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COCCA, B. A. ET AL.: "Tandem Affinity Tags for the Purification of Bivalent Anti-DNA Single-Chain Fv Expressed in Escheric", PROTEIN EXPRESSION AND PURIFICATION, vol. 17, JPN6017000424, 1999, pages 290 - 298, XP027414811, ISSN: 0003477188, DOI: 10.1006/prep.1999.1148 * |
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