JPWO2008155998A1 - 抗不安抗うつ剤 - Google Patents
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Abstract
Description
本明細書中に用いられる用語「不安」とは、明らかに認識し得る刺激に結び付かないにも関わらず、不穏、緊張、頻脈、呼吸困難を伴って、危険や恐怖を感じることを意味する。また、本明細書中に用いられる用語「抗不安」とは、上記「不安」に対する防止、制限、解消または改善を包含する意味である。「抗不安」の具体的な例としては、当該「不安」が直接的に奏する各種の疾患・疾病の予防作用または治療作用が挙げられる。
本発明の1つの実施形態による抗不安抗うつ剤は、醗酵人参エキスを有効成分として含有する(以下、抗不安抗うつ剤1ともいう)。
ができる。
本発明の別の実施形態による抗不安抗うつ剤は、前記醗酵人参エキスから得られる成分を含み、好ましくは前記醗酵人参エキスから得られる成分である20(S)−プロトパナキサジオール 20−O−β−d−グルコピラノサイド(M1)を含む(以下、抗不安抗うつ剤2ともいう)。1つの実施形態においては、抗不安抗うつ剤2は実質的にM1からなる。
上記抗不安抗うつ剤は、例えば、医薬組成物、食品組成物または飼料組成物として用いられ得る。例えば、医薬品、医薬部外品などの医薬組成物として、そのまま、または他の医薬組成物と組み合わせて用いられてもよく;一般の食品、健康食品(機能性食品)などの食品組成物として、そのまま、または他の食品と組み合わせて用いられてもよく;家畜または養殖魚などの生産分野に利用される飼料組成物として、そのままあるいは他の飼料用材料と組み合わせて用いられてもよい。
本発明の飲食物は、上記抗不安抗うつ剤を含有し、抗不安抗うつ作用を有する。具体的には、上記抗不安抗うつ剤1を用いる場合には、上記醗酵人参エキスの含有量が、好ましくは0.1〜100重量%、より好ましくは0.5〜99.5重量%、さらに好ましくは2〜99重量%となるように抗不安抗うつ剤を含有する。本発明の飲食物が含有し得る他の成分としては、食品添加物として許容され得るものであればよい。例えば、上記添加物が挙げられる。
ラクトバチルス・カゼイ・ハセガワ菌株(FERM BP−10123)を前培養培地(組成:グルコース30g/L、酵母エキス10g/L、大豆ペプチド5g/L、K2HPO4 2g/L、MgSO4・7H2O 0.5g/L)20mLに1白金耳植菌し、28℃にて48時間静置培養した。
[HPLC条件]
装置:(株)島津製作所製、商品名「紫外吸光光度計(SPD−M10Avp)」
測定波長:203nm
カラム:(株)ワイエムシー製、商品名「YMC−Pack R−ODS−5A(5μM,C18,120A)」(φ4.6×250mm)
移動相:60%(v/v)アセトニトリル溶液
(水:ミリQ水、アセトニトリル:関東化学製)
流速:1.0mL/min
カラム温度:40℃
注入量:10μl
調製例1において、ラクトバチルス・カゼイ・ハセガワ菌株(FREM BP−10123)を植菌しなかったこと以外は、調製例1と同様の操作を行うことにより、当該菌株による醗酵がなされなかった非醗酵オタネ人参エキス150gを得た。
被検体として、8週齢のオスのC57BL/6マウス(体重19g〜24g、日本エスエルシー(株)製)を使用した。マウスを、2匹ずつ飼育ケージ(17×27×13cm)内で自由飲水にて飼育した。マウス搬入後、翌日から8日間、1匹あたり5分間ハンドリングを行った。また、同ケージ内で飼育するマウスの搬入時の体重差を0g〜0.5gとなるように設定した。なお、飼育室の温度を25±1℃に保持し、12時間の明暗サイクルを自動制御した(8時点灯、20時消灯)。
マウスに与える試料として、上記調製例1で得られた醗酵オタネ人参エキス、比較調製例1で得られた非醗酵オタネ人参エキス、およびコントロールとしてのマウス飼育用標準粉末飼料(オリエンタル酵母工業(株)製 商品名「MF」)を用いた。醗酵オタネ人参エキスおよび非醗酵オタネ人参エキスについては、摂食予備試験に基づいて50mg/kg体重/日となるように、上記MFと混合することにより濃度調製を行った。全ての試料を、マウス搬入直後から全測定終了まで、自由摂食させた。ただし、摂食量の計量に伴い、粉末給餌器の外側にプラスチック製カバー(オリエンタル酵母工業(株)製 Roden CAFE)を取り付けておき、マウスにはこのカバーの穴から摂食させた。なお、飼料(試料)の種類に応じて、マウスを8匹ずつ3群に分けた。
不安の評価として、以下の(1)明暗試験(light−dark test)および(2)高架式十字迷路試験(elevated plus−maze test)を採用した。マウス搬入11日後から、(1)および(2)の試験を、この順に1日おきに行い、それぞれ13時〜18時の時間帯に実施した。なお、体重測定は、搬入日、搬入4日後、行動実験開始日および最終日に行った。摂食量の計量は2日おきに行った。
本評価試験では、23×23×30cmの明領域(light area)と、18×23×30cmの暗領域(dark area)とが隣接する明暗箱で構成される装置であって、当該箱の床から5cmほどの境界を通して、マウスが上記2つの領域を相互に行き来可能となっている構造を有する装置を使用した。両領域とも天井はフタになっており、明領域は透明の壁と白色の床とで構成されている。暗領域は黒色の壁および黒色の床で構成されており、フタを閉じると内部が真っ暗になる構造を有する。本評価試験では、このような装置に、上記マウスを暗領域側から入れ、その後の行動を5分間観察および測定した。具体的には、マウスが最初に明領域に入るまでの時間、マウスが明領域で滞在する時間、およびマウスが明領域に入った回数を測定した。本評価試験は、明るい場所に対するげっ歯類の生得的嫌悪感と、新奇環境に対する探索行動とに基づくものである。本評価試験では、明領域に入るまでの時間が短いほど、また明領域での滞在時間が長いほど、そのマウスの不安が低いと評価することができる。
本評価試験では、不安を測定するための実験装置である高架式十字迷路を使用した。当該高架式十字迷路は、透明な壁(14cm)を有する2つのクローズド・アーム(closed arms)と、壁のない2つのオープン・アーム(open arms)と、これら4つのアームを接続する中央プラットフォームとから構成されている。床からアームまでの高さは70cm、全長は65cmおよびアーム幅は5cmであった。このような装置に、上記試料をそれぞれ摂取させたマウスを置き、5分間かけて以下の測定および解析を行った。すなわち、当該装置に配置されたマウスの全移動距離、全移動距離に対するオープン・アーム内での移動距離の割合、全時間に対するオープン・アーム内での滞在時間の割合、およびオープン・アームに入った回数を測定し、これら4つの指標を使ってマウスの不安水準を評価した。本評価試験では、全移動距離に対するオープン・アーム内での移動距離の割合が大きいほど、またオープン・アーム内での滞在時間が長いほど、そのマウスの不安が低いと評価することができる。なお、当該測定・解析には、ビデオ画像行動解析装置(PanLab社製 商品名「Smart」)を使用した。
(1)手術
麻酔薬として、ケタミン(ketamine)(20mg/ml)とキシラジン(xylazine)(5mg/ml)の1:1のカクテルを使用した。該麻酔薬を体重10gあたり0.1mlの割合で、上記試料をそれぞれ摂取させたマウスに腹腔内投与した。次いで、当該マウスの頭部を適度に散髪し、皮膚を円形にカットした後、頭骨に歯科用ドリルで3ヵ所穴を開けた。該3ヵ所の穴のそれぞれにテフロン(登録商標)コートされたステンレスワイヤーに予めはんだ付けしたステンレス製ビス電極を取り付けた。その後、筋電図記録のために、同様のワイヤーをマウスの両側の肩筋に取り付けた。計5本のワイヤーをはんだでソケットに接合した後、ワイヤーを覆うように、歯科技工用即時重合レジンで頭骨とともに固定した。術後は1週間の回復期間をおいた。
記録開始3日前に、上記手術を施したマウスを記録用ケージ(30×30×35cm)に移し、生体アンプ(日本光電工業(株)製 RM−6100)にケーブルで接続し、慣れさせた。記録当日は、明暗サイクルに合わせ、8時から24時間、当該マウスの脳波と筋電図とを記録した。サンプリングしたデータを、CED社製CED1401 DATAプロセッサにてA/D変換し、これを生体信号記録・解析システム(CED社製 商品名「Spike2」)によって記録・解析した。なお、記録は、コントロール群と醗酵オタネ人参エキス群について、各群3匹ずつ行った。一度の記録に各群1匹ずつの計2匹を同時に記録した。
記録終了後、6秒ごとに、覚醒、ノンレム睡眠(徐波睡眠)およびレム睡眠(逆説睡眠)の3つのステージにデータを視察判定した。
飼育ケージ(15×22×12cm)に、上記試料をそれぞれ摂取させたマウスを1匹ずつ入れ、自発運動量測定装置(バイオリサーチセンター(株)製 商品名「ACTIMO」)によって、活動量の24時間測定を行った。記録・解析は、上記睡眠記録と同様に、生体信号記録・解析システム(CED社製 商品名「Spike2」)によって行った。なお、測定中は自由飲水・摂食(各試料)させた。測定は、コントロール群と醗酵オタネ人参エキス群について、各群2匹について実施した。
上記で得られた結果のそれぞれを、図1〜図4に平均値±標準誤差で示した。有意差検定として、行動実験についてはKruskal−Wallis検定を行い、post・hoc検定としてMann−Whitney U検定を行った。睡眠記録についてはMann−Whitney U検定を行った。いずれもp<0.05を有意とした。
実施例1における各行動実験の期間中、各マウスには、3つの群間で体重変化に差異が見出されず、各マウスとも成長は順調であった。摂餌量についても各群間で差異はなく、摂食予備試験と同様の結果であることを確認した。
被検体として、3週齢の雄のCD(SD)ラット(日本チャールズリバー社)を使用した。ラットは、3匹ずつ飼育ケージ(幅250mm×深さ400mm×高さ200mm)内で自由飲食にて飼育した。飼育室を湿度50−60%、室温24±1℃に保持し、12時間の明暗サイクルを自動制御した(8時30分点灯、20時30分消灯)。ラット搬入後10日間は予備飼育期間とし、その後試料の経口投与を開始した。試料としては、比較調製例1で得た非醗酵オタネ人参エキス、および調製例1で得た醗酵オタネ人参エキスを用いた。いずれの試料も、経口投与当日に目的濃度となるように蒸留水に溶解した。
試料の摂取量が0、1、10mg/kg体重/日となるように、蒸留水または蒸留水に溶解した上記試料を、毎日13時から15時の間に2週間経口投与した。また、ポジティブコントロールとして、抗うつ剤(イミプラミン)を15mg/kg体重/日となるよう、上記試料と同様に投与した。なお、試料の種類および摂取量に応じて、ラットを7匹ずつ7群に分けた。
ラットを用いた強制水泳試験はPorsoltら(Nature,266,730−732,1977)に従った。以下にその手順を示す。強制水泳試験の24時間前に、ラットに15分間の予備水泳をさせた。その後、強制水泳試験の24、5、1時間前に、それぞれ上記各試料またはイミプラミンを経口投与した。
強制水泳試験後、さらに1週間上記試料の経口投与を継続し、オープンフィールド試験に供した。オープンフィールド試験では、18個の等面積に区切られた円形フィールド(直径70cm)中央にラットを静かに置いた後5分間内に、ラットが跨いだ線の数、後ろ足で立ち上った回数、および排便数を測定した。これにより、自発活性を調べた。
上記で得られた結果を、図5に平均値±標準誤差で示した。有意差検定として、ラット強制水泳実験についてはKruskal−Wallis検定を行い、post・hoc検定としてMann−Whitney U検定を行った。p<0.05を有意とした。
表1に示すように、実施例2における各試験期間中、所定量の非醗酵オタネ人参エキスまたは醗酵オタネ人参エキスを経口投与した各ラットには、2つの群間で体重変化に差異が見出されず、各ラットとも成長は順調であった。摂餌量についても各群間で差異はなく、摂食予備試験と同様の結果であることを確認した。
調製例1で得た醗酵オタネ人参エキス25gに50%エタノールを500ml加えて懸濁した後、遠心分離を行って、上清分画を回収した。得られた上清分画を、水で平衡化した分離精製用樹脂カラム(樹脂:三菱化学社製、(登録商標)ダイヤイオンHP20、カラム:φ200mm、高さ75cm)に導入し、カラム容積の3倍量の50%エタノールを流した。次に、カラム容積の3倍量の100%エタノールを流して吸着物を溶出させた。得られた溶出液中の溶媒を減圧留去し、凍結乾燥してM1を含むサポニン粗分画10gを得た。このサポニン粗分画5gをさらに逆相シリカゲルカラムクロマトグラフィー(メルク社製、シリカゲルRP−8,250g、溶出溶媒:80%メタノール)にて分離精製し、0.5gのM1を得た。得られたM1の純度は、95%以上であった。
被験体として、C57BL/6マウス(雄性、8〜9週齢、体重27±3g、日本エスエルシー(株))を使用した。マウスの飼育は、徳島大学栄養学科棟動物室(室温23±1℃、8時〜20時、20時〜8時の明暗サイクル)で同大学の動物飼育規定に従って行った。飼育の間は、マウス飼育用標準固形飼料(オリエンタル酵母工業(株)製 商品名「MF」)の自由摂食及び自由飲水とした。
1回0.2mlの経口投与で所望の摂取量となるように、実験当日に投与試料液を作製し、経口投与した。具体的には、M1の摂取量が50または100mg/kg体重/日となるように、調製例2で得たM1を溶解した5%アラビアゴム水溶液を経口投与した。ポジティブコントロールとして、抗不安薬であるジアゼパム(Diazepam)の摂取量が2mg/kg体重/日となるように、ジアゼパムを溶解した5%アラビアゴム水溶液を経口投与した。さらに、コントロールとして、5%アラビアゴム水溶液を経口投与した。なお、M1の摂取量が100mg/kg体重/日であるものをM1群、50mg/kg体重/日であるものをM1h群、ポジティブコントロールをD群、コントロールをV群とした。
elevated−plus maze、marble burying test、light−dark test、およびopen field testを行い、マウスの情動(特に不安)行動を評価した。これらの実験は、概日リズムを考慮して13:00〜18:00の間に行った。
十文字型の通路(幅:6cm、全長:65cm)を有する高さ55cmの高架式十字迷路を用いて実験を行った。十文字型の通路のうち、向かい合う一組の通路(close arm)は透明の壁で囲まれており、他方の組の通路(open arm)には壁がない。それぞれの通路が6×6cmのプラットホームでつながって十字型をなしている。上記試料の投与1時間後に、プラットホームの中央にマウスを置き、1匹ずつ10分間かけて以下の測定および解析を行った(M1群、M1h群、D群、V群;n=6)。すなわち、当該装置に配置されたマウスの全移動距離(total distance)、全移動距離に対するオープン・アーム内での移動距離の割合(percent distance)、および、全時間に対するオープン・アーム内での滞在時間の割合(percent time)を測定した。本実験では、全移動距離に対するオープン・アーム内での移動距離の割合が大きいほど、またオープン・アーム内での滞在時間が長いほど、そのマウスの不安が低いと評価することができる。なお、当該測定・解析には、ビデオ画像行動解析装置(PanLab社製 商品名「Smart」)を使用した。
横15cm、縦25cmおよび深さ15cmのプラスチックケージに、木製床敷(日本クレア株式会社製)を深さ5cmになるように入れた。上記試料の投与後すぐに、マウスを該ケージの中に入れ、1時間静置した。1時間経過後、該ケージの中に15個のタブレット状ガラスビーズ(直径1.5cm、黒色)を、縦3列×横5列の等間隔に並べた。30分後、マウスをケージから取り出し、床敷により3分の1以上隠れたガラスビーズの数を目視により計測した(M1群、M1h群、V群;n=6)。本実験は、物体に対して恐怖心を持つと、該物体を隠そうとするマウスの性質を利用して、不安の程度を評価するものであり、ガラスビーズを隠した数が多いほど不安が強いとみなすことができる。
本評価試験では、23×23×30cmの明領域(light area)と、18×23×30cmの暗領域(dark area)とが隣接する明暗箱で構成される装置であって、当該箱の床から5cmほどの境界を通して、マウスが上記2つの領域を相互に行き来可能となっている構造を有する装置を使用した。両領域とも天井はフタになっており、明領域は透明の壁と白色の床とで構成されている。暗領域は黒色の壁および黒色の床で構成されており、フタを閉じると内部が真っ暗になる構造を有する。上記試料の投与1時間後に、マウスを暗領域に入れ、その後の行動を1匹ずつ5分間観察および測定した(M1群、M1h群、D群、V群;n=9)。具体的には、マウスが最初に明領域に入るまでの時間(first enter time)、マウスが明領域で滞在する時間の割合(percent time)および二つの領域を行き来した回数(number of transitions)を測定した。本実験は、暗所を好むマウスの性質を利用して不安を評価するものであり、明領域に入るまでの時間が短いほど、また、明領域での滞在時間が長いほど不安が小さいと評価することができる。
上記試料の投与1時間後に、直径80cm、深さ50cmのプラスチック製の円筒内中央にマウスを置き、全移動距離(total distance)、底面の中心円内部分(底面積の30%)を移動した距離の全移動距離に対する割合(percent distance)および該中心円内部分での滞在時間の割合(percent time)を10分間計測した(M1群、M1h群、D群、V群;n=6)。本実験は、壁際を好むマウスの性質を利用して不安を評価するものであり、percent distanceおよびpercent timeが大きいほど不安が小さいと評価することができる。なお、当該測定・解析には、ビデオ画像行動解析装置(PanLab社製 商品名「Smart」)を使用した。
(1)手術
麻酔薬として、ケタミン(ketamine)(20mg/ml)とキシラジン(xylazine)(5mg/ml)の1:1のカクテルを使用した。該麻酔薬を体重10gあたり0.1mlの割合で、マウスに腹腔内投与した。当該マウスの頭骨に歯科用ドリルで穴を開け、極小のステンレス製ネジ電極をとりつけた。さらに筋電図記録のために、テフロン(登録商標)コートされたステンレスのスチールワイヤーを両側の肩筋に取り付け、歯科用アクリルセメントで頭骨とともに固定した。マウス(M1群、V群;n=6)に各群一匹ずつペアで、同日内に手術を行った。術後は、10日間の回復期間をおいた。
記録開始前日にマウスを記録用ケージ(30×30cm、深さ35cm、室温23±1℃、8時〜20時、20時〜8時の明暗サイクル、飼料および水は自由摂取)に移し、コンピュータのデータ解析システム(CED1401 data processor,Cambridge Electronic Design、CED社製)に、ケーブルでつなぎ、一晩慣らし期間をおいた。翌日8時から24時間、脳波と筋電図のポリグラフをM1群、V群のマウスを1匹ずつペアで記録した。暗期が開始する1時間前の19時にマウスにそれぞれ試料を経口投与した。測定終了後、データをoff−lineのコンピューター上で、5秒ごとに、覚醒、ノンレム睡眠およびレム睡眠の3つのステージに視察判定した。
上記実験の結果を図6〜10に平均値±標準誤差(mean±SE)で示した。有意差検定としては、Analysis of Variance(ANOVA)を行い、P<0.05を有意とした。
図6に示すとおり、elevated−plus mazeの結果によれば、percent distanceについて、V群およびM1h群が10%以下であり、M1群およびD群が40%強という有意に高値を示した(p<0.05)。percent timeについても同様に、V群およびM1h群が約10%であり、M1群およびD群が約50%という有意に高値を示した(p<0.05)。このように、M1群およびD群が、percent distanceおよびpercent timeについて有意に高値を示したことから、M1およびジアゼパムが抗不安作用を有することがわかる。
被検体として、7週齢の雄のC57BL/6Jマウス(日本チャールズリバー社)を使用した。マウスは、5匹ずつ飼育ケージ内で、マウス飼育用標準固形飼料(オリエンタル酵母工業(株)製 商品名「MF」)およびイオン交換水の自由飲食にて飼育した。飼育室は湿度50〜60%、室温23±1℃に保たれており、8時から20時まで点灯した。マウス搬入後7日間を予備飼育期間とし、この間、十分なハンドリング処置を施した。
投与量が0、0.3、1mg/kg体重/日となるように、精製水または精製水に溶解した調製例2で得たM1を、腹腔内に単回投与した。また、ポジティブコントロールとして、抗うつ剤(イミプラミン)を30mg/kg体重/日となるよう、上記試料と同様に投与した。投与量は0.5mL/100gとした。なお、試料の種類・摂取量に応じて、マウスを8匹ずつ4群に分けた。
マウスを用いた強制水泳試験はPorsoltら(Eur.J.Pharmacol.,47,379−391,1978)に従った。以下にその手順を示す。なお、強制水泳試験は、上記試料またはイミプラミンを投与した1時間後に行った。
Rodriguesらの方法(Rodriguesら、Pharmacol.Toxicol.,79,150−156,1996)を参考にして、オープンフィールド試験を行った。フィールドとしては、縦50cm×横50cmであり、高さ50cmの壁面で囲まれているフィールドを用いた。試験中のフィールド内の照射強度は、50luxに設定した。試料投与の1時間後、マウスをフィールドの右下の角に静置し、10分間にマウスが移動した距離を測定した。解析にはImage Jをもとに作られたImage J OF1 for Open field test (O‘Hara & Co., Ltd.)を使用した。結果を表3に示す。
上記実験の結果を図11に平均値±標準誤差(mean±SE)で示した。有意差検定としては、Analysis of Variance(ANOVA)を行い、P<0.05を有意とした。
図11に示すように、強制水泳試験においては、M1を1mg/kg体重/日で投与した群のマウスは、コントロール群(0mg/kg体重/日)のマウスと比較して、無働時間が有意に短縮した。また、表3に示すように、オープンフィールド試験において、M1を1mg/kg体重/日で投与した群では、移動距離の増加が見られなかった。すなわち、この群で測定された無働時間の短縮は、自発活性の上昇によるものではなく、抗うつ作用によるものと考えられる。
Claims (9)
- 醗酵人参エキスおよび/または該醗酵人参エキスから得られる成分を有効成分として含有する、抗不安抗うつ剤。
- 前記人参が、ウコギ科薬用人参である、請求項1に記載の抗不安抗うつ剤。
- 前記ウコギ科薬用人参が、オタネ人参(高麗人参;Korean ginseng:Panax C.A.Meyer)、三七ニンジン(Panax notoginseng Burk.)、アメリカニンジン(Panax quinquefolium L.)、竹節ニンジン(Panax japonicus C.A.Meyer)、ヒマラヤニンジン(Panax Pseudo−ginseng Qall.Subsp.Himalaicus Hara)、およびベトナムニンジン(Panax Vuetnamensis Ha etGrushy)からなる群より選択される少なくとも1種のウコギ科薬用人参である、請求項2に記載の抗不安抗うつ剤。
- 前記醗酵人参が、β−グルコシダーゼ、α−アラビノシダーゼおよびα−ラムノシダーゼからなる群より選択される少なくとも1種の酵素を生産する微生物を用いて醗酵された人参である、請求項1から3いずれか記載の抗不安抗うつ剤。
- 前記微生物が、ラクトバチルス カゼイ ハセガワ菌株(FERM BP−10123)である、請求項4記載の抗不安抗うつ剤。
- 前記醗酵人参エキスが、20(S)−プロトパナキサジオール 20−O−β−d−グルコピラノサイド(M1)と20(S)−プロトパナキサトリオール(M4)とを1以上の含有量比[M1/M4:重量比]で含む、請求項1から5いずれか記載の抗不安抗うつ剤。
- 前記醗酵人参エキスから得られた成分が20(S)−プロトパナキサジオール 20−O−β−d−グルコピラノサイドである、請求項1〜6いずれかに記載の抗不安抗うつ剤。
- 医薬組成物、食品組成物または飼料組成物である、請求項1から7いずれか記載の抗不安抗うつ剤。
- 請求項1から7いずれかに記載の抗不安抗うつ剤を含有し、抗不安抗うつ作用を有することを特徴とする、不安症もしくはうつ症の予防または治療のために用いられる旨の表示を付した飲食物。
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