JPS63501841A - 組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ−(tpa)同族体 - Google Patents
組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ−(tpa)同族体Info
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- JPS63501841A JPS63501841A JP62500070A JP50007086A JPS63501841A JP S63501841 A JPS63501841 A JP S63501841A JP 62500070 A JP62500070 A JP 62500070A JP 50007086 A JP50007086 A JP 50007086A JP S63501841 A JPS63501841 A JP S63501841A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
e、スボドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperd
a )f、ボンビックス・モリ(Bombyx mori ) ;およびg、哺
乳動物細胞
の群から得られたものである前記第10項の化合物を含有する宿主細胞。
明 細 書
組織プラスミノーゲンアクチベーター(TPA)同族体
発明の背景
発明の分野
本発明はヒト組織プラスミノーゲンアクチベータ−(TPA)同族体を開示する
。該同族体は天然ドメイン領域が再配置された、欠失された、付加されたまたは
それらを組合せた処理をされたのいずれかであるTPA様分子である。該同族体
は本明細書中に同様に記載する組換体デオキシリボ核酸(DNA)の発現の産生
物である。さらに、本発明は前記TPA−コーディングDNA配列を含有する複
製および発現プラスミドならびに適当なプラスミドで形質転換された状態となっ
た後TPA同族体を発現することができる適当な宿主微生物を記載する。
背景
TPAは、血餅が形成されるときに該血餅を溶解するのを補助することによって
血液凝固を治療するのに治療価値を有する。血栓崩壊はフィブリン塊溶解の過程
である。その目的のためには、その不活性チモーゲン、プラスミノーゲンからセ
リンプロテアーゼプラスミンが形成される。プラスミノーゲンの活性化はプラス
ミノーゲンアクチベーターと呼ばれる一群のセリンプロテアーゼによる蛋白質加
水分解切断によって達成される。これらのアクチベーターはほとんどの体液中に
存在し、プラスミノーゲンのプラスミンへの活性化を開始する。これにより、少
量のプラスミノーゲンアクチベーターが多量のプラスミノーゲンを活性化するこ
とができるカスケードがつくられる。in vivo において、プラスミノー
ゲンアクチベーターはプラスミノ−・ゲンをプラスミンに活性化し、次いでプラ
スミンが作用してフィブリン塊を分解する。血餅溶解に対して生理学的に重要で
あるプラスミノーゲンアクチベーターはTPAである。
TPAは、血管内皮細胞によって産生される分子量が約66000ダルトンのセ
リンプロテアーゼである。それはグリコジル化されており、その唯一の公知蛋白
質基質はプラスミノーゲンである。TPAは5種のドメイン:フィブロネクチン
フィンガー(finget)ドメイン(F)、発育因子(growth fac
tor)ドメイン(G)、クリングル(kringle ) 1ドメイン(Kl
) 、クリングル(kringle ) 2ドメイン(K2)および活性部位ド
メイン(A)を有する。これらのドメインの1またはそれ以上はTPAの特別の
フィブリン結合活性を担っている。
そのフィブリン親和性に加え、プラスミノーゲンの活性化はフィブリンの存在に
おいて促進される。ウロキナーゼまたはストレプトキナーゼの如き他の血餅分解
薬剤はフィブリン塊に対する特異性を全く持っていないので、これらの特性はT
PAを価値ある治療剤とする。
該ドメインを操作することによって、フィブリンに対する天然酵素の親和性を改
良しミそのin vivo 半減期を増大させることが可能である。より具体的
には、クリングル(Kringle ) 2またはフィンガー(F inger
)ドメインの複製はフィブリン親和性を促進するであろう。
発育因子ドメインの除去はil vivo 半減期を増加させ、フィンガー(f
inger )領域ドメインをクリングル(kringle)領域1または2の
次に置くとフィブリン親和性を高めるであろう。
ヒ) TPAは精製され、その物理特性が研究されてきた。リジケンら(Rij
ken et al、 )、「培養中のヒト黒色腫細胞により分泌されたプラス
ミノーゲンアクチベーターの精製および特徴づけ」、ジャーナル・オブ・バイオ
ロジカル・ケミストリー(J、Biol、 Chem、 ) 、256巻、黒1
3.7035〜41頁(1981年7月10日)。
実験量のヒ) ’rpAはヒト黒色腫細胞の培地から得られる。クルフト・シイ
ら(KluftSCet al、 )、アドバーンシズ・イン・バイオテクノロ
ジカル・プロセシズ(Advances in Biotecchnologi
cal Processes )中の[ヒト黒色腫細胞からの外来性(組織タイ
プ)プラスミノーゲンアクチベーターの大規模産生」、ミズラヒ・エイおよびウ
エゼル・エイ・工/L/ (Mizrahi %A、 and Wezel 、
A、 L。
〕編、2:97〜110(1983)。ヒトTPAのバイオ活性は研究されてお
り、生命を脅かす血液凝固物を分解するその能力により、動物モデルおよびヒト
において治療価値を有することが証明されている。コルニンガーら(Korni
nger et al、 )、「大腿静脈血栓症を有するイヌにおけるヒト外来
性(組織タイプ)プラスミノーゲンアクチベーターを用いる血栓崩壊J、ジャー
ナル・オブ・クリニカル・インベステイゲーション(J、 Cl1n。
Invest、 )、69巻、573〜580頁(1982年3月);シイマー
ルら(Weimar et al、 ) 、r外来性(組織タイプ)プラスミノ
ーゲンアクチベーターの投与による腸骨大腿血栓の特異的溶解」、ザ・ランセラ
!−(TheLancet )、1018〜20頁(1981年11月7日);
およびバフ−デー+7エ/I、’7、エフら(Van De Werf 1F、
etal、)、進展した心筋梗塞を持つ患者における組織タイププラスミノー
ゲンアクチベーターを用いる冠血栓崩壊、ジャーナル・オブ・ニュー・イングラ
ンド・メデイシン(J、、of N、 Eng、 Med、 )、310:60
9〜613(1984)。TPAの半減期は2〜3分であると見積られており、
そのため、非実用的ではないにせよ、治療剤として使用するには不都合となって
いる。コレン、ディら(Co11en 、 D、 et al−)、組織タイブ
プラスミノーゲンアクチベーターを用いる血塊−選択的冠血栓崩壊、サイエンス
(5cience )、220 :1181〜1183(1983)。
TPAの酵素反応機構は研究されてきた。リジケンら(Rijken et a
l、 )、「−重鎖および二本鎖ヒト外来性(組織タイプ)プラスミノーゲンア
クチベーターのフィブリン溶解現象特性」、ジャーナル・オブ・バイオロジカJ
V−ケミストリー(J、 Biol、 Chem、) 、257巻:2920〜
2925(1982)。他の動物の血塊についてよりもヒト血塊についてより優
れたヒ) TPAの結合親和性およびフィブリン溶解親和性は公知である。コル
ニンガーら(Korninger et at、 )、r in Vitroで
のヒト血液および各種動物種におけるヒト外来性(組織タイプ)プラスミノーゲ
ンアクチベーターの特異的フィブリン溶解現象特性についての研究」、スロンボ
ウシス・アンド・ヘマトスタシス(Thrombos、 Haemostas、
)、46C2):561〜565 (1981)。フィブリン溶解活性および
親和性に関するドメインの構造関係も記載されてきた。バヌアイ・エルら(Ba
nyai 、 L、 et al、)、フィブロネクチンおよび組織タイププラ
スミノーゲンアクチベーターのフィブリン結合構造の共通の進化的起源、エフ・
イー・ビイ・ニス・レターズ(FEBS Lett、)、163(1):37〜
41 (1983)およびヌイ・ティら(Ny、T、etal、)、ヒト組織タ
イププラスミノーゲンアクチベーター遺伝子の構造:機能および構造ドメインに
対するイントロンおよびエクソン構造の関係、プロシーデイングズ・オブ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、 Natl、 Acad
、 Sci、) USA 181 : 5355〜5359 (1984)。
形質転換した細菌および酵母によるTPAの発現も公知である。ヒトTPAのメ
ツセンジャーリボ核酸(RNA)は最初1982年に単離された。オプデンアツ
カーら(Opdenakker et al、 )、「ヒト組織プラスミノーゲ
ンアクチベーターについてのメツセンジャーRNA」、ニアロビーアン・ジャー
ナル・オブ・バイオロジー(Eur、J。
Biol、 )、269〜74頁(1982)。ペニカら(Pennicaet
al、 ) によって、TPAの発現用に細菌が形質転換さプラスミノーゲン
アクチベーターc DNAのクローニングおよび発現」、ネイチャー(Natu
re )、301:214〜21 (1983)。ヒ) TPAを発現するため
の酵母を形質転換する方法は米国特許出願SN 663025号および公開され
たヨーロッパ特許出願EP 143081号に記載され本発明は、遺伝子組換え
によって天然ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターのドメイン領域を再配置
する仁とによる該蛋白質の改良された薬理学効果に関する。該改良された効果は
延長された半減期および増大されたフィブリン親和性を包含する。本明細書中に
て開示するのは、ドメインの好都合な切断および再配置に有用であるユニークな
制限部位をTPAのインタードメイン領域内に含有するDNA配列である。また
、このTPAをコード付けするDNAを含有するプラスミドおよび再配置された
TPAを発現する適当な宿主も開示する。最後に再配置したTPA蛋白質を記載
する。
具体的には、本発明は、活性部位ならびにフィンガー (finger )ドメ
イン(F)、発育因子ドメイン(G)、クリングル(kringle ) 1ド
メイン(K1)およびクリングル(kringle ) 2ドメイン(K2)よ
りなる群から選択される1またはそれ以上のドメインよりなり、=(a)インタ
ードメイン領域をコード付けするヌクレオチド配列内に、該ドメイン領域をコー
ド付けするヌクレオチド配列中には存在しない非天然エンドヌクレアーゼ制限部
位を含有し、(b) 90000ダルトン以下の分子量を有するTPA様蛋白質
をコード付けし、ここに該ドメインが2回以上現われないことを特徴とするTP
A様蛋白質についてコード付けするヌクレオチド塩基よりなるDNA化合物を記
載する。
さらに具体的には、Xba部位がヌクレオチド塩基187〜198間に挿入され
、HpaI もしくはSpa I部位またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基
328〜342間に挿入され、EcoRV 、 C1aI 、もしくはSmaI
部位またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基442〜462間に挿入され、B
amHI もしくはHpaI部位またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基70
9〜726間に挿入され、およびMstI 、5phI、もしくはXmam部位
またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基973〜997間に挿入された前記T
PA−コーディングDNAの化合物を本明細書中にて開示する。
前記したそれらのTPA−コーディングDNA配列のうちには、ドメイン領域に
ついてコード付けするヌクレオチドの配列がそれらの順序、出現または双方に関
して天然の配置から変えられたものがある。さらに具体的には、DNAが、該ド
メインがアミノ末端から(a)FA;(bl FGKI A ; (c) FG
K2A;(d) FK2A ; (e) FKIK2A ; (f)FK2に2
A iおよび、(g)FGKIK2Aの順序で並べられたTPA様蛋白質につい
てコード付けするTPAコーディングDNA配列を本明細書中にて開示する。
さらに、TPA様蛋白質をコード付けする配列から上流および下流の双方のヌク
レオチド配列が化合物を適当な宿主中で維持されることを可能とする前記した如
きTPA−コーディングDNA配列の化合物がある。さらに具体的には、発現さ
れる蛋白質の総分子量が90000ダルトンを超えずかつドメインが2回以上現
われない場合、適当な宿主細胞がドメイン領域がその順序、出現または双方にお
いて変化されたTPA様蛋白質特にそれらの同族体を発現できるようにすること
もできる化合物を本明細書中に記載する。なおさらに具体的には、ドメインがア
ミノ末端から次のように: (al FA ; (blFGKIA ; (c)
FGK2A ; fdl FA2A ; (el FKIK2A ; (f)
FK2に2Ai(glFKIAまたは(hl FGKIK2Aの順で並べられた
TPA様蛋白質についてコード付けするDNAを含有する発現および複製プラス
ミド(ベクター〕を本明細書中に記載する。
前記プラスミドであって再配置されたTPA蛋白質の発現用のものを維持するこ
とができる適当な宿主微生物も本明細書中に記載する。例えば、適当な宿主が=
(al酵母白b)エシェリヒア種(Escherichia ) ;および、(
cl細胞培養物よりなる群から選択される、TPA様蛋白質についてフード付け
するDNA配列を含有する発現および非発現ベクターを本明細書中に記載する。
さらに具体的には、適当な宿主細胞がチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細
胞である、TPA様蛋白質についてコード付けするDNA配列を含有する好まし
い発現ベクターを本明細書中に記載する。
最後に、活性部位(A)ならびにフィンガー(finger )ドメインfFl
、発育因子ドメイン(Gl、クリングル(kringle)1ドメイン(Kl)
、およびクリング/L/ (kringle ) 2ドメイン(K2)よりな
る群から選択される1またはそれ以上のドメインよりなり、発現される蛋白質の
総分子量が90000ダルトンを超えずかつドメインが2回以上現われない場合
、該ドメイン領域がそれらの順序、出現またはその双方に関して天然配置から変
えられたTPA様蛋白質の化合物を本明細書中に記載する。以下のTPAドメイ
ンの配置が好ましい: ia) FA ;(b) FGKIA ;(c) FG
K2A ; (d) FK2A ; (e) FKIK2A ; (f) FK
2に2A ;および(gl FKIA 0
本発明は、種々の公知方法で達成することができる一連の分子遺伝子操作を含む
。TPAのドメイン間にユニークなエンドヌクレアーゼ制限部位を有する2種の
始原型遺伝子はブダペスト条約に従って寄託した。宿主微生物は、各々チャー)
10および11に示すpTPA−Bl、2.3.4(a)およびpTPA−Bl
、2.3.4 と名付けたプラスミドを含有するイー・コ’) (E、coli
)株である。pTPA−Bl、2.3.4(a)の寄託は1986年8月29日
に米国、イリノイ州、ベオリア(Peoria ) 、ノーザン・リージョナル
・リサーチ・センター(NorthernRegional Re5earch
Center )に対してなし、与えられた受託番号はNRRL B−181
06であった。pTPA−Bl、2.3.4の寄託は1986年11月28日に
米国、イリノイ州、ペオリア(Peoria ) sノーザン・リージョナル・
リサーチ0センター(Northern Regional Re5earch
Center)に対してなし、与えられた受託番号はNRRL B−1814
2であった。
寄託されたプラスミドは断じて本発明を限定するものと解釈されるべきではない
。使用が容易な出発材料ではあるが、以下に別法出発材料からTPA同族体を作
製するのに利用できる各種方法を、続いて好ましい方法の具体的な実施例を詳し
く記載する。
要約すると、必要な遺伝子操作は、TPAのc DNAを得ること、インタード
メイン領域に選択された制限部位を有する各種TPAドメインのコーディング配
列を含有するオリゴヌクレオチドのブロックの合成、イー・コリ(E、 col
i )におけるドメインのクローニングおよび複製ならびに所望のTPA同族体
の発現として記載できる。
A0図
第1図は、合成TPA DNAについての特異的配列および塩基のナンバリング
位置を天然cDNAと比較して示す。天然ドメインは第1図のそれらの天然順列
のうちにすべて存在する。第2図は天然TPAのアミノ酸配列を、それらの正規
の順列中にすべての天然ドメインを有するTPA同族体に対して比較する(チャ
ート11参照)。両図において、上側の配列はヌクレオチドまたはアミノ酸のい
ずれかの天然配列を表わし、下側の配列は修飾されたTPAを表わす。第3図は
TPA同族体を合成によってつくるのに用いられるオリゴヌクレオチドを表わす
。第4図は、ドメイン領域内に含有されるアミノ酸およびヌクレオチドを示すこ
とによってTPAの天然順列を含有するチャート11に記載された同族体に対し
て天然TPA蛋白質を比較する。インタードメイン領域は第4図に記載されたド
メイン間に存在するアミノ酸である(定義参照)。本明細書を通じ、ヌクレオチ
ドまたはアミノ酸のいずれかに対する添数字はこれらの図をいう。
B、一般的方法
一般に、本願にて必要な命名法および一般的な実験室的手法はマニアテイスーテ
ィら(Maniatis 、 T、 et al。
)、モレキュラー・クローニング・ア・ラボラドリーバマニュアル(Mo1ec
ular Cloning A Laboratory Manual )、コ
ールド・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−(Cold Spring Ha
rbor Laboratory )、コールド−スプリング+/”i−バー(
Co1d Spring Harbor )、ニューヨーク、1982中に見い
出すことができる。該マニュアルは以後マニアテイスとして参照する。
すべてのイー・コ!J (E、 coli )株は、グルコースを含むルリア(
Luria ) ・ブロス(LB) 、ディフコ(Difco)の抗生物質培地
!2ならびにグルコースおよび酸加水分解カゼインアミノ酸を補足したM9培地
上で増殖させる。抗生物質耐性株はマニアテイスに記載されている薬剤濃度で維
持した。形質転換は、モリソン・ディ・エイ(Morrison、 D、 A、
) (1977) 、ジャーナJL/−オブ・バタテリオロジー(J、 of
Bact、 )、132:349〜351iまたはクラークークルテイス・ジ
エイ・イーおよびクルテイス・アーw (C1ark−CurtisslJ、
E、 and Curtiss、R。
)、1983、メソッズ・イン・エンザイモロジー(Methods in E
nzymology )、101 :347〜362、ウー・アール、グロスマ
ン・エルおよびモルタフ・ケイ(Wu 、R。
、Grossman 、 L、 and Mo1dave1に、 )編、アカデ
ミツク・プレス(A(ademic Press ) 、ニューヨークによって
記載されている方法により行った。
すべての酵素は製造業者の指示に従って用いた。コロニーハイブリダイゼーショ
ンは次の方法を提供するために修飾した以外は一般にグルンスティン・エムら(
Grunstein 、 M、 et al、 )、ブロシイーデイングズ・オ
ブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、 Nat、 A
cad、 Sci、 )、72.72巻、3961〜5頁(1975)に記載さ
れている如く行う二ニトロセルロースフィルターに前記調製の細胞コロニーが含
有されるようにする。次いで、コロニー側を上にして、1.5MNaC1,1,
5M NaOHよりなる変性溶液中に浸漬した5−8の厚みのワットマン3MM
ペーパーのベット上に該フィルターを置く。変性剤を1.5〜2分間上方にコロ
ニー中に拡散させ、その時点で0.5 M )リス・HCJl?、pH7,4,
2X SSC(I X 5SC=0.15M NaC11O,015Mクエン酸
ナトリウム;pH7,1)、および25mMEDTAを含有する中和溶液に1〜
3分間浸漬した3MMペーパーの第2のベッドに該フィルターを移す。次いで、
フィルターを完全に風乾し、真空中、80℃にて2〜4時間加熱した。
オリゴヌクレオチドプローブについてのハイブリダイゼーション条件は以前ゲデ
ル・ディ・ブイら(Goeddel 、D、V、 et al、 )、ネイチャ
ー(Nature )、290巻、20〜26頁(1981)によって記載され
たのと同様である。
ハイブリダイゼーション後、プローブ含有溶液を除去し、保存し、400mQず
つで5回交換して合計3時間、0.1チSDS 、 0.2xSSC中でフィル
ターを洗浄する。フィルターを完全に風乾し、セットし、コダック(Kodak
) X−OMAT ARフィルムおよびデュポン・クロネツクス・ライトネニン
グ(Dupont Cronex Lightnening )と増感スクリー
ンを用いるオートラジオグラフィーに一70℃にて16時間付す。
プラスミドの配列決定法には、ホルメス・ディ・ニスら(HolmeslD、
S、 et al、 )、アナリテイカル・バイオケミストリー(Analyt
、 Biochem、 ) 、114巻、193頁m1ni prep )を調
製する。ジデオキシ配列決定法はサンガー・エフら(Sanger F、 et
al、 )、[迅速DNA配列決定法に対する助剤としての一重鎖バタテリオ
ファージにおけるクローニング」、ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロ
ジー(J、Mo1. Biol、 ) 143 :161〜178(1977)
により行う。該ジデオキシ含有反応は、2分間で90’まで加熱し、氷上でクエ
ンチすることによる電気泳動で調製する。−通路当たり2〜3μlを調製した0
、8%配列決定法変性ポリアクリルアミドゲル上に載せ、サンガーおよびコルン
ン(Sanger and Coulson)、rDNA配列決定に対する薄い
アクリルアミドゲルの使用」、エフ・イー・ビイ・ニス・レターズ(FEBSL
ett、 ) 87 :107〜110 (1978)により操作する。ゲルを
室温にて2〜4日間露出し、フィルム(コダック(Kodak XAR−5)を
製造業者の推薦法に従って現像する。
ヌクレオチドの大きさは、キロベース(kb)または塩基対(bp)のいずれか
で表わす。これらはアガロ−。
スゲルミ気泳動から見積ったものである。
C,TPA cDNA
TPA cDNA は核酸配列の活性部位部分の好都合な源であった。従って、
活性部位を化学的に合成する必要はなかった。TPA cDNA は多数の源か
ら入手可能である。研究者は、多量のTPAを産生ずる細胞培養物特にボウニス
(Bowes )黒色腫細胞から単離したメツセンジャーRNAからTPA c
DNAの部分を調製することを報告している。ニドランドら(Ed−1und
et al 、 )、「ヒト組織プラスミノーゲンアクチベーターの一部をコー
ド付けするcDNA配列の単離」、80巻、349〜352(1983年1月)
;グロ/つら(<;ronow et al、 )、「細胞培養によるヒトプラ
スミノーゲンアクチベータ−c5産生」、トレンズ・イン・バイオテクノロジー
(Trendsin Biotechnology )、1巻、&1.26〜2
9 (1983) iおよびペニカら(Penn1ca et at、 )、「
イー・コリ(E、coli)におけるヒト組織タイププラスミ/−ゲンアクチベ
ーターc DNAのクローニングおよび発現」、ネイチャー (Nature
)、301巻、214〜21 (1983年1月20日)。
さらに詳しくは、ジエネンテク・インコーホレイティラド(Genenjech
、 Inc、 )は、各々1982年5月5日;。
1982年7月14日および1983年4月7日の出願日付を有する米国特許出
願番号374860号i 398003号および483052号に基づく優先権
を主張して1983年5月4日にヨーロッパ特許出願(0093619号)を行
つたが、以後これをジエネンテク出願として参照する。
該ジエネンテク出願はATCC番号31446のイー・コリ(E、coli )
Kl 2株294、すなわちTPAについてコード付けする組換体DNA化合
物を有する形質転換体を開示している。さらに、r DNAによって形質転換さ
れたイー・コリ(E、 coli ) Kl 2株W 3110がそれからフィ
ブリン溶解活性の検定用のTPAの抽出物も調製されるATCC番号27325
として該ジェネンテク出願中に開示されている。かくして、該開示は本願にて
有用な組換体DNA化合物を含む。同様に、該ジエネンテク出願の開示は、やは
りTPAを発現する増幅用に形質転換したDHFRCHO−KI (ATCCC
L61)細胞を提供する。
かくして、再度、該寄託物ATCCCL61は本願にて有用なTPAについてコ
ード付けする組換体DNAヌクレオチドを開示している。
本明細書における調製例2の開示は、TPAについてコード付けする組換体DN
A化合物を得るためのボウエ。
ス(Bowes )黒色腫細胞に適用できる当該分野で公知な方法のうちから1
の単離方法を当業者に提供する。該ボウニス(Bowes)黒色腫細胞は通常公
に入手可能である。
D、TPAドメインの合成
前記の如く、TPA同族体DNA配列の部分はc DNAから調製した;しかし
ながら、はとんどの配列および全配列でさえ合成により作製することができた。
コストおよび便利さが個々のTPA同族体配列の作製法を決定するtこおける支
配的パラメーターである。所望の同族体のTPAドメイン中に見い出されない制
限部位を選択し、これらの制限部位をTPAのインタードメイン領域内に挿入す
ることによって、TPA DNA配列の所望の部分を消化することを避け、各個
々のドメインの容易な除去および挿入が可能となる。
TPA遺伝子の一部を化学的に合成することによって、いずれのヌクレオチドが
用いられるべきかの塩基・塩基法を決定できる。以下の利点が本性から生ずる:
(1)転写産生物における二次構造の最小化;(2)自己相補性のAT−GC領
域の最小化;および(3) cDNA配列に沿っての所望の位置におけるユニー
ク制限部位の設置。
オリゴヌクレオチドは、ニードハム・パン・デバンター・ディ・アールら(Ne
edham Van Devanter 、D、R,、et al、 )、ヌク
レイツク・アシツズ・リサーチ(NucleicAcids Res、 )、1
2 : 6159〜6168(1984)に記載されている如く、自動合成器を
用いるベカジ・ニス・エルおよびカルサー・エム・エイチ(Beaucage
S、 L、 andCaruthers 、 M、 H,)、テトラヘドロン・
レターズ(Tetrahedron Letts、ン、22(20): 185
9〜1862(1981)によって最初に記載された固相ホスホルアミダイト(
phosphoramidite )・トリエステル法によって化学的に合成す
れる。オリゴヌクレオチドの精製は、パーソン・ジエイ・ディおよびレグニエ・
エフ・イー(Pearson 。
J、 D、 and Regnier 、 F、 E、 ) 、ジャーナ/L/
−オブ・り(+?トゲラフイー(J、Chrom、 ) 、255 :137〜
149(1983)に記載されている如く、天然アクリルアミドゲル電気泳動法
または陰イオン交換HPLCのいずれかによった。
オリゴデオキシヌクレオチドはヌクレオチド40個以下の長さで化学的に合成す
る。各7ラグメントはその対応する相補鎖に対して相補的となるように設計し、
各二重鎖セグメントは結びを最適化する付着末端を含有する。フラグメントの合
成用DNAの配分においては以下の基準を考慮する:1)化学的合成および精製
が容易となるようにオリゴヌクレオチドフラグメントの長さは塩基40個以下の
長さであること 2)相補する上方および下方ヌクレオチド7ラグメントから突
出する最小6個の塩基が出現してセグメントの最適な配列列のいずれかに連結で
きる塩基4個またはそれ以上の領域は避けること。
合成オリゴヌクレオチドの配列はマキサム・エイ・エムおヨヒキルバート・ダフ
リュー、グロスマン・エルおよびモルダブ・ディ(Maxam 、 A、M、
and G11bert 。
W2、Grossman %L、 and Mo1dave、 D、 )編、ア
カデミツク・プレス(Academic Press )、ニューヨーク、メン
ッズ・イン・エンザイモロジー(Methods in Enzymology
)、65 : 499〜560 (1980)の化学的分解法を用いて確認で
きる。別法として、該配列は、マキサムおよびギルバート(Maxam and
G11bert )、前掲の方法、またはワレイス・アール・ビイら(Wal
lace 、 R,B、、et al、 )、ジーン(Gene )、16:2
1〜26 (1981)の二重鎖鋳型を配列決定するための鎖末端法を用いて、
オリゴヌクレオチドフラグメントを二重鎖DNA配列に入れる組立ての後に確認
できる。
87種の別異のオリゴヌクレオチド(第3図)を合成した。本明細書中で開示す
る特別の組立法は、チャートαυに示す選択された制限部位を有するTPA同族
体の5′部分をコード付けする最初の1099個の塩基対を作製するものであっ
た。次いで、この合成オリゴヌクレオチドを、活性部位を含有する位置1287
のEcoRI部位にてTPA cDNAの3′部分に連結する。
オリゴヌクレオチドフラグメントを二本M DNAに入れて組立てるには、アニ
ーリングおよび結びのために87種のフラグメントすべてを一緒に混合すること
ができる。さらに十分な結びには、オリゴヌクレオチドを4つのブロックに分割
した方がよい。各ブロックの結びおよび精製の後、次いで4つのブロックをアニ
ールし、結んで最終産生物を得ることができる。組立てたブロックおよび最終産
生物の精製はマニアナイスに記載されている如くアクリルアミドゲル電気泳動法
によって行うことができる。アニーリングおよび結びを行うには、マニアナイス
に記載されている一般法も用いられる。
合成TPA遺伝子用の開始コードンを用意する必要があるであろう。イー・コリ
(E、coli)系の目的には、F−met についてコー、ド付けする開始コ
ードンATGが必要である。該開始コードンは合成遺伝子中に取り込むことがで
きるか、あるいは所望の発現プラスミドによって供給できる。開始コードンに加
え、イー・コリ(E、coli )用には、シャイン・ダルガノ領域と開始コー
ドン間に適当な間隔を付与する配列をTPAの合成遺伝子中に取り込むのが便利
である。
配列の適当な選択は、さもなければ転写および翻訳を防害する二次構造を最小化
し、最適なコードン使用法を併合する(グロスジーン・エイチおよびフイエルズ
・ダブリ−y−−(Grosjean H,and Fiers 、 W、 )
、ジーン(Gene )、18:199〜209.1982 ) iおよびリボ
ンーム結合部位あたりの配列に見い出される統計的偏りを満足させる(ボルド・
エルら(Gold 、 L−1et al、 )、アニュアル・レビュー・オブ
・ミクロバイオロジー(Ann、 Rev、 Microbiol、 )、35
: 365〜403.1981)。本発明についての具体的な配列はその実際
の配列により本明細書中に記載する。しかしながら、異なる宿主細胞におけるT
PA同族体の発現を最適化するのに別法配列を用いることができることを理解さ
れたい。
E、 cDNAおよびTPA遺伝子の合成部分のクローニング
c DNAおよびTPAの部分についてコード付けする組換体フラグメントの複
製用のTPAの合成部分をクローンするのに用いる方法は当該分野で公知の標準
方法である。ひき続いて記載するすべてのクローニングを実行するのに十分な方
法を含有するマニアナイスマニュアル。すべてのクローニングは、十分に特徴づ
けされたいずれの株も有用である形質転換イー・コリ(E。
coli)において行った。特に断わらない限り、株HB101が好ましい。
イー・コリ(E、coli)を形質転換するのに有用なりローニングベクターは
pBR322およびpKC7を包含する。
F、ユニーク制限部位のDNA−コーディングTPA中への挿入
TPAのインタードメイン領域について選択した具体的な制限部位はチャート1
0および11に示す。これらが本発明において有用である唯一の制限部位ではな
い。制限部位はそれらがTPA cDNAにおいてユニークである塩基に基づい
て選択する。インタードメイン領域に最小のアミノ酸変化を導入する部位が好ま
しく、アミノ酸変化に関してサイレントである部位が最も好ましい(第1図およ
び第2図参照)。インタードメイン内に異なる解読フレームを有する多重部位は
、発現の目的で他のドメインに結んだ後ドメインが同相であるのを保証するため
に有用である。0重複制限部位は、単に該部位を消化し、末端を平滑末端とした
後結ぶことによって除去できる。ユニーク部位の導入は、化学的合成、商業的に
入手可能なリンカ−によって、または単一部位突然変異によって実現できる。
天然TPA cDNAはチャート10および11に示したTPAの2の始原型c
DNA中に入れられた部位以外に、以下のエンドヌクレアーゼ制限酵素によっ
て認識される部位を含有しない:
ACCI A′FL 2 AFL3 AHA 3ASU 2 AVA 3 AV
R2BCL IBGLI B55H2HIND3KPNIMLUI MST2
NAEINCOINDE I NHE I N0TI NRU lN5I I
PVU I 5AC2SAL l5AU I SFI I SNA I SNA
BISPE I XHOI
G、イー・コリ(E、 coli ) におけるTPA同族体の発現原核系にお
いてクローンした遺伝子、例えば修飾したTPA遺伝子の高いレベルの発現を得
るには、最小限、mRNA転写を方向づける強力なプロモーター、翻訳開始用の
リポソーム結合部位および転写ターミネータ−を含有する発現ベクターを組立て
ることが必須である。多量の遺伝子産生物の蓄積はしばしば細胞増殖を抑制しし
かも時々細胞死をひき起こすので、産生物の合成を方向づけるのに選択したプロ
モーターは、プロモーターの誘導前に細胞増殖が高密度に達、することができる
ように調節されなければならない。この目的に対して適当な調節領域の例は、ヤ
ノフスキイ・シイ、ケリイ・アール・エルおよびホーン・ブイ(Yanofsk
y、C0、Kelley %R,L、 and Horn 、 V、 )、ジャ
ーナル・オブ・バクテリオロジー(J、 Bacteriol、 )、158:
1018〜1024 (1984)によって記載されている如きイー・コリ(E
、coli) トリプトファン生合成経路のプロモーターおよびオペレーターな
らびにヘルスコビイツツ・アイおよびハーゲン・ディ(Herskowitz
、 1. and Hagen、D。
)、アヌーレブ・ジエネト(Ann−Rev、 Genet、 )、14:39
9〜445(1980)によって記載されている如きフ。
アージラムダ(PL)の左方プロモーターである。イー・コ!j (E、 co
li ) 中で産生されたTPAは多数のシスティン残基のために正しく折りた
たまれていない。該イ然状態に戻さなくてはならない。これは、イー・コリ(E
、 coli ) 産生TPAをグアニジンHCIに溶解し、すべてのシスティ
ン残基をβ−メルカプトエタノールで還元することによって達成できる。次いで
、ゆっくりとした透析またはゲル濾過のいずれかによって該蛋白質を天然状態に
戻す。米国特許第4511503号。
H,酵母におけるTPA同族体の発現
酵母における異種蛋白質の発現はよく知られている。メンツズ・イン・イースト
・ジエネテイツクス(Methods in Yeast Genetics
) 、ジャーマン・エフら(Sherman 、 F、、et al、 )、コ
ールド・スプリング・ハーバ−eラボラトリ−(Co1d Spring Ha
rbor Laboratory )、(1982)は酵母におけるTPA同族
体を産生ずるのに有用な各種方法を記載しているよく知られた研究である。
酵母における遺伝子の高レベル発現のためには、原連結すること、および酵母遺
伝子から効果的な転写上、△
/ポリアゾニレージョン配列も供給することが必須である。有用なプロモーター
の例はGALI、10(ジョンストン・エムおよびディビス・アール・ダブリュ
ー(J(+hnston M、、and Davis、 R,W、 )、モレキ
ュラー・アンド・セリュラー・バイオロジー(Mo1. and Ce11.B
iol。
)、4:1440〜48.1984)、ADH2(ラッセル・ディら(Ru5s
el、D、 、et al、 )、ジャーナ/L/−オブ・バイオロジカル・ケ
ミストリー(J、 Biol、 Chem、 )、258:2674〜2682
.1983)、PH05(ヨーロピアン・モレキュラー・バイオロジー・オーガ
ナイゼイション・ジャーナル(EMMOJ、)、6:675〜680.1982
)、およびMFctlである。Lue−2、URA−3、Trp−1、およびH
is−3の如き選択マーカーを有するマルチコピー(multicopy )プ
ラスミドもまた望ましいものである。
細胞をグルコース上で増殖させる場合、GALおよびADH2プロモーターは抑
制され、かくして細胞が高密度まで増殖することが可能となる。GALプロモー
ターは細胞をガラクトース培地に移すことによって作動で−きるが、ADH2は
すべてのグルコースが細胞によって利用されてしまった後作動する。PH05プ
ロモーターは培地中のリン酸塩濃度乞操作することによって作動または作動停止
できる。α接合型の宿主におけるMFct1Fc上−ターは終始作動状態にある
が、二倍体またはα接合型を有する細胞中では作動停止の状態である。しかし、
それは1のSIR座にtS突然変異を有する宿土中で温度を上げ下げすることに
よって調節できる。
35℃におけるかかる突然変異のα型細胞に対する効果はa接合型についてコー
ド付けする正常なサイレント遺伝子を作動させることにある。一方、サイレント
a接合型遺伝子の発現はMFct、 1プロモーターを作動停止する。増殖の温
度を27℃まで下げると該過程を逆に進行させ、a接合型を作動停止し、MF(
tlを作動させる(ヘルスコビイッッ・アイおよびオーシマ・ワイ(Hersk
owitz 、 1. k Oshima 、 Y、 (1982)、ザ・モレ
キュラー・バイオロジー・オブ・ザ・イースト・サツカロミセス(in The
molecular biology of the yeast sacc
haro−myces ) 、ストラザン・ジエイ・エヌ、ジョーンズ・イー・
ダブリューおよびブローチ・ジエイ・アール(Strathern 、 J、N
、、Jones、 E、W、、& Broach 、 J、R,)編、コールド
・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−(Cold Spring Harbo
r Lab、 ) 、コールド・スプリング・ハーバ−(Co1d Sprin
g Harbor ) 、=−x、−ヨーク、181〜209頁)。
ポリアゾニレ−ジョン配列はADHI 、MFα1、またはTPIのような高度
に発現された遺伝子のいずれの3′−末端配列によっても供給される(アルバー
ト・ティおよびカワサキ・シイ(Albert 、 T、 and Kawas
aki 、 G、 )、ジャーナル・オブ・モレキュラー・アンド・アプライド
・ジエネテイックス(J、 of Mo1. k Appl、 Genet、)
、1:419〜434.1982)。
YEp6 、YEp13 、YEp24のような数多くの酵母発現プラスミドを
ベクターとして使用できる。TPAの如き注目する遺伝子を前記のいずれのプロ
モーターにも融合することができ、次いで各種酵母宿主中での発現のためのプラ
スミドに結ぶことができる。前記プラスミドは文献中に詳細に記載されている(
プロスティンら(Brostein 、 et al、 )、ジーン(Gene
)、8 : 17〜24.1979 ’;ブローチら(Broach、 et
al、 )、ジーン(Gene )、8:121〜133.1979)。
前記プラスミドは酵母において外来性遺伝子を発現するのに用いることができか
つ用いられたことがあるが、本明細書中にて開示するのは発現ベクターの各種成
分の挿入および/または切除に関して大いなる融通性を可能とするベクターであ
る。かかる例の1つは、チャート18に示すベクターpα1−ADHtである。
酵母細胞を形質転換するのに2つの方法を用いる。
1の場合、ザイモリアーゼ、リチカーゼまたはグルスラーゼを用いて酵母細胞を
まずプロトプラストに変換し、続いてDNAおよびポリエチレングリコール(P
EG)を添加する。該PEG処理プロトプラストを次いで選択した条件下、3悌
アガール培地中で再生する。この方法の詳細は、ジエイ・ディ・ベグズ(J、D
、 Beggs )、ネイチャー(1’Jature ) (ロンドン(Lon
don ) )、275:104〜109(i978)iおよびヒネン・エイら
(Hinnen 。
A、、etal、) 、プロシーデイングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−・
オブ・サイエンシズ(Proc、 Natl。
Acad、 Sci、 ) USA、 75 :1929〜1933(1978
)による報告文中に記載されている。第2の方法は、細胞壁の除去を含まない。
その代りに、細胞を塩化もしくは酢酸リチウムおよびPEGで処理し、選択した
プレート上に置((イトー−xイチら(Ito、Hl、et at、 )、ジャ
ーナル・オブ・バグテリオロジー(J、 Bact、 )、 153:163〜
163.1983)。
TPA同族体は、細胞を溶解し、次いで標準的な蛋白質単離法を溶解物に適用す
ることによって単離できる。TPA同族体は、ウェスタンプロット法またはラジ
オイム/アッセイを用いることによって検出できる。
■、細胞培養物における発現
TPA同族体をコード付けするDNAは宿主細胞培養体を形質転換するのに用い
る各種発現ベクターに結ぶことができる。該ベクターはすべて、形質転換される
べき宿主細胞に受容可能なTPA同族体の転写および翻訳を開始する遺伝子配列
を含有する。宿主細胞が高等動物細胞、例えば哺乳動物細胞である場合、TPA
遺伝子の天然に生じる転写および翻訳遺伝子配列を用いることができるか、ある
いは天然に生じる遺伝子配列を異種プロモーター配列と共に用いることができる
。加えて、該ベクターは好ましくは、マーカーを含有して形質転換宿主細胞の選
択のための表現型特性を提供する。さらに、複製ベクターはレプリコンを含有し
てもよい。
TPA同族体の産生に有用な細胞培養物の例は昆虫もしくは哺乳動物源の細胞で
ある。哺乳動物細胞浮遊液も用いることができるが、哺乳動物細胞系はしばしば
細胞の単層形態である。哺乳動物細胞系の例はベロ(VERO) およびヘラ(
HeLa)細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CHO) 細胞系、W138
、 BHK、 CO3−7またはMDCK細胞系である。昆虫細胞系の例はスポ
ドプテラ・フルギペルダ(5podoptera frugiperda )
(行列毛虫ヨ゛トウガ幼虫)およびボンビツクス・モリ(Bombyxmor
iン(カイコ)を包含する。
前記の如く、ベクター、例えば宿主細胞を形質転換するのに用いるプラスミドは
好ましくはTPA遺伝子配列の転写および翻訳を開始する遺伝子配列を含有する
。これらの配列を発現制御配列という。宿主細胞が昆虫もしくは哺乳動物源のも
のである場合、例えば有用な発現制御配列は5V−40プロモーター(サイエン
ス(5cience )、222.524〜527、(1983))、CMVl
、E、プロモーター(プロシーデイングズ・オプ・ナショナル・アカデミ−・オ
ブ・サイエンシズ(Proc、 Natl。
Acad、 Sci、 )、81:659〜663.1984)またはメタロチ
オネインプロモーター(ネイチャー(Nature ) )、296.39〜4
2(1982))から得られる。前記の如く、宿主細胞が哺乳動物のものである
場合、TPA遺伝子用発現制御配列を用いることができるが、TPA同族体を異
種転写開始部位と組合せるのが好ましい。発現制御配列を含有するプラスミドま
たは複製もしくは統合DNA物質は制限酵素を用いて切断し、要すればあるいは
所望により大きさを調節し、当該分野でよく知られた方法によってTPA同族体
についてコード付けするc DNAで結ぶ。
酵母の場合の如く、高等動物宿主細胞を用いる場合、公知哺乳動物遺伝子からの
ポリアゾニレ−ジョン、またはターミネータ−配列はベクター中に取り込まれて
いる必要がある。ターミネータ−配列の例はウシ成長ホルモン遺伝子からのポリ
アゾニレ−ジョン配列である。
さらに、宿主細胞における複製を制御する遺伝子配列を、ウシ乳頭腫ウィルス型
ベクター中で見い出されるものの如きベクター中に取り込んでよい。サベリアー
カンボ・エム(Saveria−Campo、M、)、[ウシ乳頭腫ウィルスD
NA :真核性クローニングベクター」、ディ・エヌーエイ・クローニング(D
NA Cloning ) II巻ア・ブラクテイカJL/ ・アプローチ(a
practical approach )、ディ・エム・グローバー(D、
M、 Glover )編、アイ・アール・エル・プレス(IRL Press
) 、アーリントン(Arlington ) 、バージニア州、213〜2
38頁(1985)。
宿主細胞は形質転換について適格であるかまたは各種方法によって適格とされる
。DNAを動物細胞に導入するいくつかのよく知られた方法がある。これらはニ
リン酸カルシウム沈殿、DNAを含有する細菌プロトプラストでの受容体細胞の
融合、DNAを含有するリポソームでの受容体細胞の処理、DNAの細胞中への
直接マイクロインジェクションを包含する。
形質転換した細胞は当該分野でよく知られた方法により増殖させ、バイオケミカ
ル・メソツズ・イン・セル・カルチャー・アンド・パイロロジー(B ioch
emicalMethods in Ce1l Cu1ture and Vi
rology )、クチラー・アール・ジエイ、ドウデン(Kuchler 、
R,J、 、Dowden ) 、ハツチンソン・アンド・ロス・インコーホ
レイティラド(Hutchinson and Ross、 Inc、 )、(
1977)、例えば当該分野でよく知られた機械的もしくは酵素的方法によって
宿主細胞系を破壊した後、宿主細胞または細胞浮遊液から蛋白質を排出する系に
おいて、発現されたTPA同族体を細胞培地から収穫する。
J、 TPA同族体の評価
TPAおよびその同族体は2つの方法のうちいずれかで評価できる。プラスミ/
−ゲンを切断してプラスミンとする相対能力を評価することができ、およびプラ
スミンの産生を阻止する抑制物質の相対能力を評価することができる。かかる評
価についての手順を以下に詳しく記載する。
アミトールアッセイ。TPA同族体の機能活性は、ベルへインエン・ジエイ・エ
イチら(Verheijen 、 J、 H,、etal、)、「血漿中の測定
に適用できる外来性(組織タイプ〕プラスミノーゲンアクチベーターについての
簡単で鋭敏な分光光度計アッセイ」、スロンボウシス・アンド・ヘモスタシス(
Thromb、 Haemostas、 l 48 : 266〜269(19
82)によって記載されているアミトールアッセイを用いることによって測定さ
れる。略言すれば、TPA同族体を含有する試料をプラスミノーゲンおよびCN
Br消化フィブリノーゲンフラグメントと混合する。か(して形成されたプラス
ミンは、次いで、系外から加えた色素生成基質、S−2251(H−D−バリル
−し−口イシル−L−IJ シン−p−ニトロアニリド二塩酸塩; KABI
、ストックホルム、スウェーデン)を切断し、分光光度計によりモニターされる
着色生成物を生じる。プロテアーゼ抑制物質のTPA同族体に対する効果は、ベ
ルへインエン・ジエイ・エイチら(Verheijen 、 J、 H,、et
、al、)、「ヒト血漿中の組織タイププラスミノーゲンアクチベーターについ
ての連作用抑制物質の出現の証拠」、スロンボウシス・アンド・ヘモスタシス(
Thromb、 Haemostas、 )、51:392〜395(1984
)によって記載されている本アッセイの修正法を用いることによって評価される
。添加した抑制物質はTPAに結合し、不可逆的な複合体を形成し、それによっ
てTPAがプラスミノーゲンを活性化するのを阻止する。例えば、精製された天
然TPAは増加した量の抑制物質含有試料で力価測定され、残余TPA活性は前
記を添加した抑制物質含有試料の量の関数としてグラフに表わすことによって標
準曲線を描く。同様に、TPA同族体を抑制物質で力価測定する。得られた曲線
をTPA標準のものと比較する。曲線間の類似度が個々の同族体の抑制に対する
感受性に直接関係する。
フィブリンオートグラフィー。TPA同族体の分子量は、該同族体を含有する試
料をドデシル硫酸すl−IJウムーポリアクリルアミドゲル電気泳動(5DS−
PAGE )に付し、次いでアクリルアミドゲルをプラスミノーゲン含有フィン
プリンの指示薬フィルム上に置くことによって見積られる。同族体蛋白質がアク
リルアミドゲルから指示薬フィルムに拡散するに従い、それはプラスミノーゲン
をプラスミンに変換し、他の場合には不滑なゾーンの形成をひき起こす。このゾ
ーンの出現はアクリルアミドゲル中の対応する位置に活性なTPA同族体が存在
することを示す。この方法は、TPA同族体とプロテアーゼ抑制物質間の相互作
用を評価するのにも用いられる。前記の如く、この相互作用の結果、同族体自身
よりも大きな分子量を有する酵素−抑制物質複合体が形成される。5DS−PA
GEの後、該複合体はフィブリン指示薬フィルム中で可視化される残余TPA活
性を呈する。この方法の詳細は、最初、グラネリ・ピペ)V/−1イおよびイー
・ライナ(Granelli Piperno 。
A、 and E、 Re1ch )、「生物学的流体におけるプロテアーゼお
よびプロテアーゼ−抑制物質複合体の研究」、ジャーナル・オブ・エクスペリメ
ンタル・メデイシン(J−Exp、 Med−)、148:223〜234(1
978)によって記載された。
TPA同族体の抗原性の評価
サイドイツチ型酵素免疫測定法(S−エライヤ法)。TPA同族体の抗原性は2
つの異なるS−エライヤ法により免疫学的に測定される。第1のものは、ヒト子
宮TPAについて特異的なりギ多クローン抗体を用いる。第2のものは、マウス
単クローン抗体を用いる。この単クローン抗体はTPAの活性について必要なエ
ピトープに対して特異的に定方向化される。TPAの活性部位ドメインに対して
特異的な抗体の使用により、その主要構造がドメインにおいて活性部位以外のも
のに変化してしまったいずれのTPA同族体の抗原性も測定する効果的な方法が
提供される。このアッセイは、コルニンガー・シイら(Korninger、
C−1eta1.)によって記載された方法、単クローン抗体を使用するTPA
抗原性についてのサンドイツチェライサ(Sandwich EL I SA
)法と同様のものである。スロンボウシス・リサーチ(Thromb、 Res
、 ) 、41 : 527〜535(1986) 、両アッセイについての感
度限界は1mQ当たりTPA約1ngである。
ウェスタンイムノブロッティング法。抑制物質と共に複合体を形成するTPAの
能力もまた、最初トウビン・エイチら(Towbin 、 H,et al、
) 、r蛋白質のポリアクリルアミドゲルからニトロセルロースシートへの電気
泳動的移動:方法およびいくつかの応用」、プロシーデイングズ・オプ・ナショ
ナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、Natl、 Acad、
Sci、 ) USA 、 76 : 4350〜4354(1979) によ
って記載された如く、5DS−PAGEおよびウェスタンイム/ブロッティング
法を用いることによって評価できる。簡単に述べると、TPA同族体を抑制物質
と相互作用をさせ、混合物を5DS−PAGEに付シ、蛋白質をニトロセルロー
スペーパーへ電気的に移動させる。複合体化してない遊離のTPAおよび抑制物
質との複合状態にあるTPAの双方を、TPAに対して特異的な精製した多クロ
ーンヤギIgGおよびヤギIgGに対して定方向化されたウサギ抗血清を用いる
ことによって検出する。次いで、1125−ラベル蛋白質Aおよびオートラジオ
グラフィーを用いることによってTPA含有免疫複合体を可視化する。
定義
「細胞培養物」なる語はもとの植物または動物の体外で細胞が生存を維持するの
を可能とする、多細胞植物もしくは動物のいずれか由来の増殖している細胞の容
器をいう。
「ドメイン」なる語は特定の機能に一致し得るアミノ酸配列の別々の連続部分を
いう。TPAに関しては、前記引用文献がドメイン領域を定義しており、本明細
書中の第4図はドメイン間に存在するインタードメイン領域の中央地点のおおよ
その位置を開示する。
「下流」なる語は発現の方向においてさらに進行する配列に同一であり;例えば
、コーディング領域は開始コードンより下流にある。
「インタードメイン」なる語はドメイン間に存在する蛋白質のアミノ酸配列の領
域をいう。この適用において、インタードメイン領域は第4図に示した中央地点
からプラスもしくはマイナスの5個のアミノ酸残基である。かくしてフィンガー
(finger )および発育因子ドメイン間のインタードメイン領域はアミノ
酸44〜アミノ酸55間に存在しかつそれらを包含し;発育因子およびクリング
ル(kringle ) 1ドメイン間のインタードメインはアミノ酸86〜ア
ミノ酸97間に存在しかつそれらを包含し;クリングル(kringle )
1およびクリングル(kringle ) 2間のインタードメインはアミノ酸
169〜アミノ酸180間に存在しかつそれらを包含し;クリングル(krin
gle ) 2および活性部位間のインタードメインはアミノ酸257〜アミノ
酸268間に存在しかつそれらを包含する。
「維持された」なる語はプラスミドが自律複製体としてまたは宿主のゲノムの統
合部分として存在する、形質転換宿主内のプラスミドの安定な存在をいう。
「微生物」なる語は細菌、放線菌および酵母の如き単細胞の原核生物および真核
生物を共に包含する。
「非天然エンドヌクレアーゼ制限部位」なる語句は天然c DNA配列の同等位
置に見い出されないエンドヌクレアーゼ制限部位をいう。これらはユニークおよ
び非ユニーク部位を共に包含する。
「オペロン」なる語は遺伝子発現および調節の完全な単位であり、構造遺伝子、
調節遺伝子、および調節遺伝子産生物によって認識されるDNA中の制御要素を
包含する。
「プラスミド」なる語は自律的に自己複製する染色体外環状DNAをいい、発現
型および非発現型を共に包含する。組換体微生物または細胞培養物が発現プラス
ミドを宿すと記載される場合、「発現プラスミド」なる語は染色体外環状DNA
および宿主染色体中に取り込まれたDNAを共に包含する。
「プロモーター」なる語はRNAポリメラーゼが結合して転写を開始するのに係
るDNA領域である。
r DNA配列」なる語はヌクレオチド塩基、アデノシン、チミジン、シトシン
およびグアノシンよりなる一本鎖または二本鎖DNA分子をいう。
「適当な宿主」なる語は組換体プラスミドを受容することができ、該プラスミド
が複製し、そのゲノム中に取り込まれるかまたは発現されることを可能とする細
胞培養物または微生物をいう。
「上流」なる語は発現から逆の方向に進行する配列に同一であり;例えば、細菌
プロモーターは転写単位から上流にあり、開始コードンはコーディング領域がら
上流にある。
本願にとっては特別であるが、チャート1〜27においてプラスミドおよびフラ
グメントを表わすのに用いる約束はプラスミドおよびそれらのフラグメントの常
用表現と同意義であることを意味する。常用環状図とは異なり、チャート上の単
一線の図は翻訳または転写が左から右に(5′から3′に〕起こる環状および直
線状二本鎖DNAを共に表わす。星印(米)はプラスミドのグメントは二本鎖D
NAの直線片であるから、星印を有しない。エンドヌクレアーゼ制限部位は直線
の上方に示す。遺伝子マーカーは直線の下方に示す。プラスミドまたはフラグメ
ントを表わす図表の下方の棒線はDNA上の2つの地点間の塩基対の数を示すの
に用いる。マーカー間の相対的間隔は実際の距離を示すものではなく、示したD
NA配列上のそれらの相対的位置を示すことを単に意味する。
調製例
調製例1. ベクター−pSK4−チャート1〜3プラスミドp SK4はイー
・コリ(E、 coli )において異種蛋白質の発現を定方向化できる発現ベ
クターである。それは転写を伝達するための強力な、調節可能なプロモーターお
よび翻訳開始についての強力なリポソーム結合部位を有する。具体的には、p
SK4はトリプトファン(trp )オペロンからのプロモーターおよびリポソ
ーム結合部位(R3B) を用いる。RBSから直ぐの下流のユニークC1aI
部位はTPAの如き望ましい遺伝子の挿入に利用できる(チャート3)。
プラスミドp SK4を作製するには、公知の、)KO2(チャート2)で新規
なpTRZ 1 (チャート1)をクローンする必要がある。ラオ・アール・エ
ヌおよびロジャーズ・ニス・シイ(Rao 、R,N、 and Rogers
、 S、G、 )、ジーン(Gene )、7:79〜82(1979)。プラ
スミドpTRZ 1はプロモーター/オペレーター領域、+1ボソ一ム結合部位
、およびtrpLE融合△LE1413ならびにガラクトシダーゼ(IacZ)
およびラクトースペルメアーゼ(]acY)についての構造遺伝子を包含するt
rpオペロンの部分を含有する。プラスミドpKC7はアンピシリンおよびカナ
マイシンに対する耐性を特異化し、多(ノユニーク制限エンドヌクレアーゼ部位
を有スるp BH322の誘導体である。
pTRZ 1およびpKC7の組換体プラスミドはtrpプロモーター、RBS
、およびpKC7内のLEを有するp SK3を生じる。次いで融合ペプチド配
列trpLE を除去するためにプラスミドp SK3を修飾して一般的な発現
べ〃ターpSK4を得る。
1) I)TRZ 1 の組立て−チャート1プラスミドpTRZ 1は公知プ
ラスミドpMc1403およびpVVlのクローンである。
プラスミドpMc1403はpTRZl からN末端の8個のアミノ酸を除いた
pTRZl の1acZ遺伝子を供給するものであり、それはカサダバン・エム
・ジエイら(Casadaban、 M、J、 、et al、 )、ジャーナ
ル・オブ・バクテリオロジ−(J、 Bacteriol、 )、1980.1
43 : 971〜980によって詳細に記載されている。プラスミドpMc1
403は3つのユニーク制限酵素切断部位を有する。それをEcoRIで切断し
、細菌アルカリ性ホスファターゼで脱ホスホリル化し、イー・コリ(E、col
i ) DNAポリメラーゼエのクレノーフラグメントで末端を一平滑とする。
プラスミドpVV1はtrpプロモーターおよびオペレーター配列を供給し、そ
れはニコルス・ビイ・ビイおよびヤノフスキイ・シイ(N1cols、 B、P
、 and Yanofsky、 C,)、1983、メソツズ・イン・エンザ
イモロジー(Methodsin Enzymology ) 、エル・グロス
マンおヨヒケイ・モルディプ(L、 Grossman and K、 Mo1
dave )編、101:155〜165、アカデミツク・プレス(Acade
mic Press )、ニューヨークによって詳細に記載されている。プラス
ミドpVV1はtrp先導配列をtrpLEを形成するtrp E遺伝子に融合
する952塩基対欠失を有するtrpオペロン(△LE1413 )を含有する
。プラスミドPVVIをPvu IIおよびBglmで切断してフラグメント2
(32’3bp)を得、これを調製アガロース電気泳動で単離する。BglI
I部位をクレノー酵素で満たす。次いでフラグメント2をpMc1403 テ結
んテpTRZ 1 を得る。
+21psK3の組立て
pTRZl の構造遺伝子LacY およびLacZはp SK4の組立てには
不要であり、それらの欠失はより多(のクローニング部位を有するより小さいプ
ラスミドを供給する。さらに、LacYの欠失ば膜結合蛋白質の過剰産生の有害
効果を回避する。チャート2に示す如く、trp配列(フラグメント3)をEc
oRI /BamHI 消化によってpTRZl から切り出し、アルカリ性ホ
スファターゼで処理して再挿入を最小化し、次いでpKC7のEcoR工/Ba
mHI領域、フラグメント4、に挿入するが、それは消化の結果もはやカナマイ
シンに対する耐性を特異化しない。アンピシリン耐性(AmpR)およびカナマ
イシン感受性(KanS)を有するクローンをtrpプロモーター/オペレータ
ー配列の挿入について期待される制限フラグメントについてスクリーニングを行
う。このプラスミドをpSK3で示し、その均等体はチャート2に記載されてい
るとおりである。
+3)pSK4の組立て
p SK3のtrpプロモーターは、直接発現ベクターの組立には不要なtrp
LEペプチドをなお保持している。trp L Eセグメントを以下の方法によ
って切り出す。
チャート3に記載した如く、trp配列を有するEcoRI/BamHフラグメ
ント5をp SK3から切断し、ポリアクリルアミドゲルからの電気溶出によっ
て精製する。
示した如く、このフラグメントは3つのTaqI部位を含有し、そのうちの1つ
はプロモーター/オペレーター領域にあり(Taq I″) 、そのうちの1つ
はリポソーム結合部位とTrpLE翻訳の開始間にある( Ta q I″′)
。該フラグメントをTaqIによって部分的に消化し、フラグメントの全集合物
を先にEcoRIおよびC1aIの双方で切断したp BH322との結び反応
に用いる。
TaqIはT↓CGA を認識しく矢印は鎖切断点を示す)、一方C1a I
はAT ! CGATを認識する。これらの2の酵素は適合する付着末端を産生
じ、塩基5′ないしリポソーム結合部位およびtrpLE間のTaq” までは
Aであるので(ジャーナル・オブ・バタテリオロジ−(J。
of Bact、 )、133:1457〜1466) 、このTaq I末端
のC1aI末端への結びはC1aI 部位を再生する。このクローニング機構は
単一のTaq I切断部こついて選択することに注意されたい。また、プロモー
ターからの転写は時計回り方向であることを確認されたい。278bpEcoR
I / C1a I挿入を表示するクローン、およびt r’pプロモーターの
制限パターン特性を選択するが、それはp SK4に同等であろう。C1aI部
位に挿入した場合、該クローンは翻訳開始が可能な蛋白質配列の発現に有用であ
る。
調製例2. ヒト組織プラスミノーゲンアクチベータ−1こついてコード付けす
る完全長cDNAの単離
A、材料および方法
(1)ボウニス(Bowes )黒色腫細胞の増殖ボウニス(Bowes )は
ヒト自然発生黒色腫由来の株化細胞系を表わし、これはニューヨーク医科大学の
ダニエル・リフキン(Daniel Rifkin )博士から贈られたもので
ある。95%空気/ 5 Li2CO3を用い、37℃における湿潤雰囲気中、
10%胎児ウシ血清(Gibco )および50μli/rnQゲンタマイシン
(S igma )を補足したダルベラコラの修正イーグル培地(Gibco)
中で細胞を培養する。RNA調製用に収穫した細胞をファルコン(Falcon
)150c′In フラスコ中、接触し合うまで増殖させる。
t2) TPA mRNAの調製
ボウニス(Bowes )黒色腫細胞からのRNAを実質的にリザルデイら(L
izardi 、 et al、 )、アナリテイカル・バイオケミストリー(
Anal、 Biochem ) 、98巻、116〜122頁(1979月こ
よって記載されている如くに単離する。
DNAは、アビブ・エイチら(Aviv、 H,et al、 )、プロシーデ
イングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、
Nat、 Acad、 Sci、) 、69巻、1408〜12頁(1972)
によって記載されている如く、オリコテオキシチミジン−セルロース(OdT−
セルロース−コル(Col )研究所〕カラムを通過させることによってポリA
豊富とする。別々のOdTカラム上で2回選択した10〜150a11フフスコ
からの典型的収率は約50μgポリA mRNAである。
15〜30%直線スクロースグラジェントによる遠心によってボ!J 、A”m
RNAを分画する。滅菌蒸留水200〜400μlに溶解したポリA”mRNA
(〜300 pg )をグラジェント上に重ね、35000rpmにてベック
マン(Beckman)SW41 Tiローター中で18時間遠心し、ブチラー
・オート・デンシーフo −(Buchler Auto Densi −F
low )モデル■Cを用いて0.5 mmずつの両分を収集してトップからボ
トムに収穫し、ギルソン・マイクロ(GilsonM 1cro )分画器(モ
デルFC80−K)に連結する。各両分からの一部をクセノプス(Xenopu
s )卵母細胞に注入し1.ミスキン・アールら(Miskin 、 R,、e
t al、 )、ヌクレイツク・アシツズ・リサーチ(Nuc、 Ac1ds
Res、 )、9巻、3355〜63頁によって記載されているのに類似のカゼ
イン−寒天プレート法によって、翻訳産生物をプラスミノーゲンアクチベーター
活性について検定する。
TPA活性は約19秒において移動するmRNAによって表わす。
具体的には、組織プラスミノーゲンアクチベーターTPAを、プラスミ/−ゲン
のプラスミン、カゼインを消化する非特異的プロテアーゼへの変換を観察するこ
とによって検定する。該アッセイは以下の如くに行う。煮沸した8%カゼイン0
.5 mQを2 X MBS 1 rnQと混合し、50℃まで加熱する。3%
アガロースを融解し、50℃まで冷却する。3%アガロース0.5mQをカゼイ
ン/MBSに添加し、ピペットによって混合する。混合しながら1 ’9 /
rnQヒトプラスミノーゲン100μlを添加しく終濃度は50μg/mQ )
、該物質を直径3.5αのプラスチック製ペトリ皿に注入する。アガロース溶液
を室温まで冷却する(約30分〕。アガロース中の直径2門孔をバイオラド(B
1orad )カッター・ゲル・パンチで切断子る。眼孔を使用直前に作成し
、ウェルをMBSで満たす。アッセイの少くとも6時間前にTPARNAを注入
した1または2の卵母細胞を各ウェルに加える。インキュベーションは湿らせた
皿の中で12〜24時間行う。カゼイン加水分解の明瞭なゾーンが容易に観察さ
れる。
2倍容量のエタノールを添加し、ドライアイス上で1時間インキュベートするこ
とによってTPA mRNAに富む両分を沈殿させる。エペンドルフ(Eppe
ndorf )卓上マイクロヒュージ(microfuge )中、室温におけ
る遠心により沈殿を収集し、滅菌蒸留水に溶解し、プールし、再沈殿させる。こ
のTPAポリA豊富化mRNAはクローニング用c DNAを生成するのに用い
る。
f3)cDNAの合成
すべてのこれらの反応物は氷上で組立てる。
(A) OdTよ。−08プライマーを用いる第−鎖の合成豊富化した、ポリA
+選択したボウニス(Bowes)mRNA (H2O1tt(l中)の1ot
4を10 mM MeHgOH(アルファ(Alfa))の存在において室温で
10分間インキュベートして二次構造のときほぐれを補助する。続いて、以下の
成分を加える;β−メルカプトエタノール〜2’ 8 mM ; RNasin
(バイオチク・インコーホレイティラド(Biotec Inc ) 1単位
/μg最終反応容量;75mM )リス塩基pH8,3; 6 mM MgCβ
2 i 50 mM KCβ910μgオリゴデオキシチミジン(OdT12−
18コル(Cot)研究所;100μCi α−32P−dCTP (アメルス
ハム(Amersham ) ) ; dGTP、 dTTPおよびdATP各
〜5ooμmi dCTP〜250μm(fべてのヌクレオチドはビイ・エル・
バイオケミカルズ(P、L、 Biochemicals )から入手、10m
M)リス塩基pH8中に〜20mM溶解し、i、。
M NaCj?で中和〕および逆転写酵素(ライフ・サイエンシズ・インコーホ
レイティラド(Life 5ciences Inc。
)1単位/pgインプット(1nput ) RNA、最終反応容量50μ10
反応物を42℃にて60分間インキュベートする。
[B)プライマーとして特異的15一体オリゴヌクレオチドを用いる第−鎖の合
成(はぼ類似の方法についてはパナビエレス・エフら(Panabieres、
F、 et al、 )、ジーン(Gene )、19巻、321〜6(19
82)参照)3′ポリAテイル部を合成始点とするmRNAからのTPAについ
てコード付けする完全なc DNA鎖を得るのは、前記方法を用いて常には可能
でない。恐らくポリAテイル部から上流の配列を合成始点とすることによって、
ポリAテイル配列で開始した不完全c DNAに連結できる5’TPAコーデイ
ングc DNAの配列が得られる。
c DNA合成用のプローブまたはプライマーのいずれかとして用いるには、3
種の15体が好ましい。それらの配列は:
3’TPA位置に対し、て
相補的
5′3′
1、TCA CGG TCG CAT GTT 1759〜17732、GGG
GTT TGA GTCTCG 634〜6483、CCCATCAGG A
TT CCG 886〜900それらは前記方法によって合成され、精製される
。
ポリA+選択したRNAの25μgをプライマー(鋳型に対して5〜10倍ピコ
モル過剰のプライマー)1μyおよび58pl中の1.5 mM EDTAと共
に90℃にてイ 。
ンキュベートす°る。最初90℃まで加熱したjmQ水浴中に浸漬することによ
って、混合物をゆっくりと室温まで平衡化する。RNA鋳型に対する該15体を
アニールシタ後、以下の試薬を加えるニジチオスレイトール(DTT )〜2
mM ; RNasin 1単位/p(l最終反応容量;100mM )リス塩
基、pH8,3; 11mM MgCn2 ; 50mM KC6;100μc
iα−32P−dCTP i各500μmのdGTP 、 dTTP。
およびdATPi250μM dCTP i逆転写酵素(ライフ・サイエンス・
インコーホレイティラド(Life 5cience 。
Inc、 ) ) 〜1単位/pl/RNA020℃にて3時間インキュベーシ
ョンを行ない、その時点で等量の逆転写酵素をさらに加え、50°にて30分間
反応を継続する。
フェノール抽出によって反応を停止し、マニアナイス中に詳細に記載されている
如く、アルカリ加水分解によってRNA鋳型を除去する。
fc)第二鎖の合成
最終容量100μl で、40 mM KPO4(K−ホスフェ−) ) pH
7,5; 6.6 mM MgC(12; 1 mM DTT; 各 500μ
mのdGTP 、 dTTP %dATA i 250 ttrn dCTP
j io。
μCi ”H−dCTP (アメルスハム(Amersham ))およびDN
Aポリメラーゼクレノ=フラグメント(BRL)の1単位/μgインプット(1
nput ) RNAよりなる反応にて第二鎖を合成する。反応物を15℃にて
4時間インキュベートするが、続いて3H−dCTPの取込みをモニターするこ
ともできる。フェノール抽出によって反応を停止し、第一エタノール沈殿の代り
に(NaCg〜0.3Mよりむしろ) NH4Acを2.5M加える以外は第−
鎖の合成について前記した如く二本鎖cDNAを沈殿させる。
S工を用いてヘアピン構造を除去する。該S□反応はマニアテイスにより行う。
TCA可溶カウントの増加によりヘアピンの除去が成功したことが測定される。
沈殿を省略してフエ/−ル抽出によって反応を停止する。
水性相をプールし、直接ポ!J A+mRNAの分画に用いたのと同一のスクロ
ースグラジェントに付す。両分を収集し、5μ1分をアクアフルオール(Aqu
afluor ) シンチL/−ジョン流体(二ニー・イングランド・ヌクレア
(New England Nuclear ) ) 10−中に溶解し、32
pおよび3Hを共に測定することによって検定する。2倍容量のエタノールを加
え、ドライアイス上で30分間インキュベートすることによって関連画分からの
c DNAを沈殿サセル。エペンドルフ(Eppendorf ) マイクロヒ
ュージ(microfuge )中、室温にて15分間遠心することによって沈
殿物をペレット化する。ペレットを滅菌0.3M NaC6に溶解し、プールし
、再沈殿させる。沈殿物をペレット化し、乾燥する。
(D)cDNAのベクターDNAへのティリング(tailing )およびア
ニーリング
マニアテイス(Maniatis )によって記載されている方法によって、d
CTPのホモポリマー系をcDNA分子の3′末端に酵素的に加える。理想的に
は、dCTPの10〜30残基を加えてクローニング効率を最大化すべきである
。
(pBR322を消化してPstlで完成し、dGTP残基のホモポリマー系を
添加することによって調製した)ベクターDNAはニュー・イングランド・ヌク
レア(NewEngland Nuclear ) から商業的に入手可能であ
る。該ベクターDNAはマニアナイスによって記載されている方法によっても調
製できる。ベクターDNAと共にc DNAをアニールする方法もマニアナイス
によって記載されている。簡単に述べると、10 mM )リスpH7,4−0
,4M NaCl; l mM EDTAを含有する50plの反応において、
ティリングを行ったc DNAを1:1のモル比でベクターと混合する。最終D
NA濃度は20〜60μy/mQ間で変化する。アニーリングは、1)65°/
10分;42゜/60分;37°/2時間、および次いで室温での2時間よりな
る定義したインキュベーション処理に付すか、または2)水浴を閉じて65°/
10分にてインキュベートし、次いでゆっくりと一晩で室温まで平衡化させるか
のいずれかによって行う。
(E)完全長TPA cDNAのクローニングおよび配列確認チャート4〜5
既に記載した形質転換法を用いて、c DNA含有ベクターをイ・コリ(E、c
oli ) 中に導入する。前記したハイブリダイゼーション法を用いて該細菌
をインシテユ(il 5itu )スクリーニングする。
本明細書中に記載するコロニーハイブリダイゼーションはプローブとして同様に
前記した15体を用いる0ハイブリダイゼーシヨンプローブとして用いるには、
70mMトリス塩基(pH7,6)、100mM KC(1;10mMMgC1
2,5mMジチオスレイトール、および50 μci r32P dATP (
ビイ・エル・バイオケミカルズ(P、L。
Biochemicals ) )、ならびにポリヌクレオチドキナーゼにニュ
ー・イングランド・バイオラブズ(New EnglandBiolabs )
) I Uよりなる5ca1反応容量中で、15一体1μyをホスホリル化す
る。インキュベーションは37゜において60分間行う。このようにして、15
一体をクローンのPst 1 制限分析を用い、プローブに対して相補性配列を
示すクローンを第二のスクリーニングについて選択して、消化産物が、第1図に
示すまたはペニカら(Penn1ca et al 、 )、「イー・コリ(E
、coli ) におけるヒト組織タイププラスミノーゲンアクチベータ−cD
NAのクローニングおよび発現」、ネイチャー(Nature )、301巻、
214〜21 頁(1983年1月20日)により示された配列から得ることが
できるPst 1制限マツプと合致するかどうかを決定する。望ましいクローン
はTPA cDNAの3′部の大きな部分である。消化により4種のフラグメン
ト:元のpBR322ベクター、1150 bpフラグメント、80bpフラグ
メントおよび78bp7ラグメントを得る。これらの結果は、遺伝子の3′末端
の約1300bpの挿入大きさくヌクレオチド1250〜2550 )を示唆す
る。この仮定を確認するために、クローンをPstlおよびDde 1 で二重
消化する。後者の酵素は1150bpフラグメントを切断して926bpフラグ
メントと229bp フラグメントとし、一方78または80bpフラグメント
を無傷で残すべきである。
かかる二重消化の結果は、クローンが事実TPA遺伝子の3′末端を示すという
結論を支持するであろう。
最後の証拠として、DNAのミニ調製物をクローンから単離し、ジデオキシ鎖停
止によって配列する。一般法の節に記載した如くにプラスミドDNAのミニブレ
プを調製する。20:1モル過剰の鋳型中、15体#1をプライマーとして用い
て、一般法の節に記載した如くにジデオキシ配列決定を行う。pTPA Hで示
すこのクローンから得られた配列データは、ヒト組織プラスミノーゲンアクチベ
ーターについてのべ二重ら(Pennica et al、 ) 、ネイチャー
(Nature )、301巻、214〜21頁(1983)によって示された
配列データと同一である(チャート4)。
これより、遺伝子の5′末端の単離に焦点をあてる。
これを行うには、0dT12−18からよりもむしろ15体#1からプライマー
伸長させることによって、c DNAを2回選択ポ!J A + mRNAから
合成する。この方法によって得られる利点は2つある。まず、プライマー伸長が
TPAに対して特異的であるので、生成したcDNAの高パーセンテージがTP
Aの特異的配列によって示される。第2に、プライマー伸長がポ’JAテイル部
の約800bp5’であり、該部位は第、−鎖合成をプライマー伸長させるOd
T工2−08によって利用される。これによって、この方法から得られたcDN
AはpTPA Hよりもさらに5′を伸長させる転写を包含することがほぼ確認
される。
コノTPA−プライマー伸長のc DNAでの形質転換効率はcDNA 1μg
につき2.5X10”形質転換体である。
合計25000の形質転換体の2のバンクが生成する。ジ−ンーウオーキング(
gene −walking )の概念を適用して故意にスクリーニングを偏ら
せる。pTPA H5’末端8゜bp Pstlフラグメントをゲル単離し、プ
ライマー伸長バンクから得られた28000 コロニーをプローブスルのに用い
る。これにより少くともpTPA Hと同様に5′まで伸びるクローン、および
プライマー伸長試行の結果、さらに5′配列を含有するクローンも同様に特異的
に選択される。
インシテユ・ハイブリダイゼーションにょるスクリーニングは多くの陽性体を生
成する。最も長いTPA挿入はPst 1およびDdelでの第2のスクリーニ
ングにで示すクローンはヌクレオチド550〜1600の挿入大きさを包含して
いた(チャート4)。
制限データは3′末端の位置をかなり正確に(+/−〜10%)決定することを
可能とする。プライマー伸長がヌクレオチド1759で開始し、およびpTPA
80−1が約1600位置に3′末端を有するならば、クローニングの間にどこ
かの位置にて約160個の塩基対の損失が起こることになる。S1エンドヌクレ
アーゼが最も可能性のある損失原因である。
pTPAHおよびpTPA80−1の配位を決定する。プラスミドpTPAHお
よびpTPH80−1を5acIおよびPyuIで切断して各々フラグメント7
(1251bp)および8(5、1kb )を得、これをゲル単離する。該フ
ラグメントを細菌アルカリ性ホスファターゼで処理し、T4ボリメラーセを用い
て結んテTPA c’DNA (7)位置55’O〜2230塩基を有するpT
PA 3’ cDNA (6,3kb)を得る。新しい組立体をPst 1 消
化によって確認する。
pTPA80−1は第一のプライマー伸長バンクにおいて検知される陽性体の中
で最も長いTPA挿入を示すので、アミノ酸残基233〜237のコーディング
配列に対して相補的な第二のオリゴヌクレオチド(ヌクレオチド886〜900
;15一体+12)を用いてもう1つのcDNAライブラリーを生成し、5′末
端を完成する。もしS□が転写の3′末端から200bpまでも除去するならば
、pTPA 3’cDNAでの十分な重複がなお存在してフラグメントの組立が
可能となるように遺伝子のこの特定領域を選択する。
5′塩基を含有するc DNAをPstI 切断pBR322に結び、前記の如
くにイー・コ’J (E、coli)中に形質転換した。このc DNAでの形
質転換効率は3.6xlO’形質転換体/μi cDNAの桁である。ヌクレオ
チド645〜660(15一体#3)から伸長するコーディング配列に対して相
補的なオリゴヌクレオチドでこのラリブラリーからのコロニーをスクリーニング
し、明らかな陽性体を選択する。Pst 1 およびBgllI消化によって第
二のスクリーニングを行い、pTPA5’ cDNAで示す1のクローンは残存
する5′配列1〜750を含有することが示された。再び、S工の挿入長に対す
る影響はpTPA 5’ cDNAに関して明らかである。プライマー伸長はヌ
クレオチド886にて開始するが、pTPA 5’ cDNAはヌクレオチド約
750個しか伸長しない;発明者らの実験は約136 bpの損失を示した。
2のクローン(pTPA 3’ cDNAおよびpTPA5’ cDNA)につ
いて利用可能な完全なTPA配列に関し、最後の組立作業が残る。方法はチャー
ト5に示す。
プラスミドpTPA5’ cDNAをTaqIで切断してフラグメント9 (2
194bp)を得る。pTPA5’ cDNA のTPA配列内の1のTaqI
部位(位置634)は高度に酵素耐性である。フラグメント9をBgllIおよ
びHga Iで切断して蛋白質の成熟部分を表わすTPA cDNAの塩基18
8〜593を有するフラグメント10 (405kb)を得る。
TPA cDNAの中央部分は、まずpTPA3’ cDNAをPuv■で切断
し、フラグメント11 (1748bp)をEcoRI分離することによって得
られる。次いでフラグメント11をHgaIで切断して塩基594〜802を含
有するフラグメント12 (209bp)を得る。
c DNAの3′部分を得るには、pTPA3’ cDNA をPvuIで消化
し、6.5 kb 7ラグメントを単離し、T4ポリメラーゼで処理し、Eco
RIで部分的に消化して塩基802〜2230を含有するフラグメント13 (
1871bp)を得る。
c DNAの3つの部分の結びは、公に入手でき、かつラオ・アール・エヌおよ
びロジャーズ・ニス・シイ(Rao 、 R,N、 and Rogers 、
S、G、 ) 、プラスミドpKC7:DNAセグメントをクローンするのに適
当な10の制限部位を含有するベクター、ジーン(Gene) 7 : 79〜
82(1979)に詳細に記載されているpKC7の使用を含む。プラスミドp
KC7をBglIIおよびSmaIで消化し、細菌アルカリ性ホスファターゼで
処理してフラグメン) 14 (4,8kb)を得、これをゲル単離する。
フラグメント10.12.13および14を単一の結びプールにおいて結ぶ。こ
の方法の1の注目すべき態様は、それにより内部フラグメントのアルカリ性ホス
ファターゼ処理の必要性が排除される方法である。
典型的には、多数片(≧47ラグメント)結びはフラグメントのコンカテメリゼ
ーション(concatemerization)のため非常に低い効率で所望
の組立を実現する。適当な方法にてのアルカリ性ホスファターゼでの処理はこの
問題を最小限とし、その結果圧しい多数片組立ての効率が劇的に増加する。TP
Aフラグメントを組立てるにおいて、発明者らは、制限エンドヌクレアーゼHg
aIがDNAを切断する特別な方法を利用した。酵素の認識(結合)配列はGA
CGCであるが、該酵素はその認識部位を超えた地点で切断を行う。その結果、
Hga Iで切断されたフラグメントはそれらの元々隣接していた反対部分での
み結ばれる。HgaI突出部分によって促進される自己結びは起こり得ない。該
4片TPA結びはHgaI末端を有する2の7ラグメントを含有する。(自己閉
鎖を最小化するために)ベクターをアルカリ性ホスファターゼで処理することを
つけ加えることにより、その結果はとんどの形質転換体が正しく組立てられたT
PA遺伝子を有することになる。正しい組立ては制限的消化によって証明される
。TPAについての完全なcDNA配列を含有するプラスミドをpTPAcDN
A (7,’4 kb)で示す。
実施例
実施例11合成オリゴヌクレオチドの調製前記した方法により87種の別々のオ
リゴヌクレオチド(第3図)を合成した。記載した方法により、位置187にお
けるBgl I[部位および位置1287におけるEcoRI部位間の合成りN
Aの1084塩基対を組立ててpTPA−Bl、2.3に入れる(チャート9)
。インタードメイン領域への挿入のために選択した特異的制限部位はチャート1
0および11に示す。各ブロックをイ −−・コIJ (E、coli ) に
おける複製用のおよび配列証明用の適当なりローニングベクターと再び組合せる
。用いたすべての結びおよびクローニング方法はマニアテイスら(Maniat
is et at、 ) 、前掲、によって記載されたとおりである。すべての
クローンした配列をサンが−(Sanger)ジデオキシ配列決定法を用0て配
列して配4Jを証明する。
ブロック1. オリゴヌクレオチドPI−P4、P8−pHオリゴヌクレオチド
P5.P7およびPI3−PI3よりなる第2のセグメントに結ぶ。得られたブ
ロック1はフィンガー(finger )ドメインについてコード付けする配列
を含有する。ブロック1をクローンして調製例1に記載したpSK4のBgl
IIおよび5phI部位に入れる。
ブロック2. フィンガー(finger )ドメインについてコード付けする
配列を含有するオリゴヌクレオチドP15−P18およびPI3−P23を単一
工程のアニーリングおよび結びにおいて一緒に結んでブロック2を得、クローン
してpBR322の5phIおよびCIaI部位に入れる。
ブロック3. オリゴヌクレオチドP24−P28 、P34−P38をアニー
ルし、結んで二本鎖セグメントを得、これをオリゴヌクレオチドP29−P33
およびP39−P43よりなる第2のセグメントに結ぶ。得られたブロック3は
クリングル(kringle ) 1ドメインについてコード付けする配列を含
有する。ブロック3をクローンしてpBR322のC1aIおよびBamHI部
位に入れる。
ブロック4. オリゴヌクレオチドP44−P47おヨヒP67−P701P4
8−P51およびP71−P74 i P52、P53、P92、P93および
、P75、P76、P94、P95 i P57−P61およびP2O−P84
逼ならびにP62−P66およびP85−P2Oを各々5個の別の試験管中でア
ニールして二本鎖セグメントとし、次いでこれらをプールし、結んでブロック4
を得る。ブロック4はクリングル(kringle )2ドメインについてコー
ド付けするDNA配列を含有する。ブロック4をクローンしてpBR322のB
amHIおよびE coRI部位に入れる。
実施例2. TPA cDNAの活性部位を用いてのブロック1−4の組立て、
チャート6〜11
以下の実施例は、実施例1の各種合成ブロックを組立てて生物学的に活性なTP
Aについてコード付けすることができる遺伝子に入れるのに必要な工程の要約を
提供する。2の始原型遺伝子を記載する。プラスミドpTPA−Bl、2.3.
4(a)はクリングル(kringle ) 2ドメインおよび活性部位間に人
工的に導入されたエンドヌクレアーゼ部位を有しないTPAをコード付けする遺
伝子を有する。プラスミドpTPA−B 1.2.3.4 はクリングル(kr
ingle ) 2および活性部位間に人工的に導入されたエンドヌクレアーゼ
制限部位を有するTPAをコード付けする遺伝子を有する。
A、pTPA−Blの組立て−チャート6プラスミドp SK4をC1a Iお
よびsph Iで消化し、大きな4.1kbフラグメント15を単離し、C1a
I/X ba Iリンカ−を用いてブロック1フラグメントに結ぶ。マニアテ
イスによって記載された塩化カルシウム形質転換法を用いて、結んだ混合物を形
質転換してHBIOlに入れる。マニアティスら(Maniatis et a
l、 )によって記載されたニックトランスレーション法を用いて、形質転換体
をニックトランスレーションを行ったブロック1フラグメントでスクリーニング
を行う。次いで、サンガー(Sanger )ジデオキシ配列決定法を用いて、
プローブに対しハイブリダイゼーションされた形質転換体を配列して正しい配列
および配位を確認する。この新しい形質転換体をpTPA−81(4,25kb
)で示す。
B、pTPA−Bl、2 の組立て−チャート7プラスミドpTPA−B 1を
EcoRIおよびsph Iで消化し、フラグメント16(450bp)を単離
する。プラスミドp BR322をE co RIおよびC1aIで消化し、大
きなフラグメント17 (4,35kb )をゲル単離する。次いでフラグメン
ト16および17を合成した5phI/C1aIブロツク2に結ぶ。結んだ混合
物を形質転換してHBIOIニ入し、形質転換体をニックトランスレーションヲ
行つたブロック2でスクリーニングを行う。プローブに対してハイブリダイゼー
ションされた形質転換体を配列してそれらがその正しい配位にあるブロック2を
含有することを確認する。この組立体をpTPA−81,2(4,8kb )で
示す。
C,pTPA−Bl、2(a)の組立て−チャート8゛プラスミドpTPA −
B 1.2(a)はフィンガー(finger )および発育因子ドメインから
上流にHind MおよびBgl II制限部位を含有する。プラスミドp、T
PA−B 1.2をXbaIオJ: U E coR,Iで消化し、大きな4.
5kbフラグメント18をゲル単離し、HindI[およびBallI部位を含
有するオリゴヌクレオチドリンカーに結ぶ。結んだ混合物を形質転換してHBI
OIに入れ、形質転換体をHindI[I/Bgl II部位の存在についてス
クリーニングする。新しい組立体をpTPA −B 1.2fa)(4,5kb
)で示す。
D、pTPA−Bl、2.3の組立て−チャート9プラスミドpTPA−B 1
.2(a)をCIaI およびBamHIで消化し、大きな4.0kbフラグメ
ント19を単離する。このフラグメントをブロック3 (270bp)よりなる
合成したC1 a I / Bam’HI クリングル(kringle )
1領域に結び、形質転換してHBIOlに入れる。形質転換体をニックトランス
レーションを行ったブロック3でスクリーニングした。ブロック3に対してハイ
ブリダイゼーションした形質転換体を配列して配列および配位を確認した。この
新しい組立体をpTPA−B 1.2.3(4,3kb)で示す。
E、pTPA−Bl、 2.3.4aの組立て一チャート10このプラスミドは
酵素活性を有するTPA同族体についてコード付けする全始原型TPA遺伝子を
含有する。
この遺伝子には、クリングル(kringle ) 2および活性部位間のイン
タードメイン領域に対する変化はない。
pTPA −B 1.2.3.4a(4,2kb)の組立てにはいくつかの工程
を必要とする。プラスミドpTPA cDNA (チャート5)を5caI で
切断し、TPA遺伝子の3′端部についてコード付けするフラグメント20 (
6,Obp)をゲル単離する。プラスミドpTPA −Bl、2.3(チャート
9)をSca IおよびBamHI で切断してフィンガー(finger )
、発育因子およびクリングル(kringle ) 1ドメインを含有するフ
ラグメント21 (1100bp)ヲ得る。
ブロック4をBam HI およびSca Iで切断することによって第3のフ
ラグメン) 4 a (230bp) ヲ得る。T4リガーゼを用いて3つのフ
ラグメントを結んでpTPA−Bl、2.3.4a を得る。Hindl[およ
びAat IIを用いてTPA遺伝子をpBr322から切断して2.2 kb
フラグメントを得、これを継代クローンしてpUC−19に入れる。プラスミド
pUC−19は種々の源から商業的に入手可能であり、TPAドメインの操作を
面倒でなくする選択した制限部位をそのDNA配列中に含有する。
F、pTPA−Bl、2.3.4の組立て一チャート11このプラスミドは酵素
的に活性なTPA同族体についてコード付けする全始原型TPA遺伝子を含有す
る。この同族体において、すべての4のドメインおよび活性部位はユニーク制限
部位がクリングル(kringle ) 2および活性部位間の領域を包含する
すべてのインタードメイン領域中に入れられた状態で存在する。まずpTPA−
Bl、2.3.4aをE co RIおよびBam HI で切断し、フィンガ
ー(finger )、発育因子およびクリングル(kringle ) 1ド
メインを含有する大きな3.7 kbフラグメントを単離することによってプラ
スミドを組立てる。
合成により生成したブロック4を、BamHIでの消化およびE co RIで
の部分的消化によりそのクローンから得て560kbを有する無傷のブロック4
を得る。T41Jガーゼを用いて2つの7ラグメントを結んでpTPA −B
1プラスミドpTPA −B 1.2(3,4は種々の合成TPAへ
同族体を組立てるのに用いることができる。
実施例3. TPA同族体の組立て
A、pFKIK2Aの組立て(発育因子ドメインの欠失〕プラスミドpTPA
−B 1.2.3.4aをEcoRVで、およびHpaI で部分的に消化して
724ではなく334 における部位を消化する。大きなフラグメント(6,9
kb)ヲ単離し、再び結んでpFKIK2Aを得る。次いでプラスミドpFKI
K2Aを形質転換してHBIOIまたはいくつかの他の適当な宿主に入れる。次
いで正しい配位および配列について該プラスミドをスクリーニングする。
B、pFK2A の組立て(発育因子およびクリングル(Kringle )
1ドメインの欠失)プラスミドpTPA −B 1.2.3.4 をHpa I
で消化する。大きな6.5kb フラグメントを単離し、再び結んでpFK2
A を得る。該プラスミドを形質転換してHBlolまたはいくつかの他の適当
な宿主に入れ、正しい配位および配列についてスクリーニングする。
C,pFK2に2Aの組立て−チャート12(発育因子およびり、す、ングi)
しく kringle ) 1の欠失ならびにタリング/L/ (kringl
e ) 2の複製〕プラスミドpTPA −B 1.2.3.4 (チャート1
1)をHpa I で消化してフラグメント22 (6,5kb) を得、これ
を単離する。pTPA−B 1.2.3.4 の第2の試料をHpaIおよびM
stIで消化し、クリングル(kringle ) 2ドメインを含有する得ら
れた5 60 bp フラグメント23を単離する。HpAI消化のFK2Aフ
ラグメントを平滑末端でHpaI/MstIフラグメントに結んでpFK2に2
A (6,5kb) を得る。次いでプラスミドp FK2 K2 Aを形質転
換してHBIOIに入れ、正しい配位および正しい配列についてスクリーニング
する。
D、イー・コリ(E、coli ) プラスミドpTPA EXP 1における
発現−チャード13
TPA同族体の発現は、チャート7に示す発現プラスミドpTPA−Bl、2、
チャート6に示すpTPA−Bl 、またはそれらの均等体を用いることによっ
てイー・コリ(E、coli )中で達成できる。いずれの同族体も発現用のX
ba I およびBamHI 部位内に置くことができる。イー・コリ(E、
coli ) においてpFK2に2Aを発現するには、pTPA−Bl、2(
チャート7)およびpFK2に2A (チャート12)をXbaIおよびBam
HI で切断し、フラグメ7 ) 24 (4,2kb) オよび25(2,
0kb)をゲル単離する。フラグメント24および25を結んで発現プラスミド
pTPA Exp 1 (6,2kb ) を得る。
プラスミドpTPAExp 1 はTrpプロモーターおよびオペレーターを含
有し、発現は構成的である。イー・コリ(E、 coli )の培養はマニアテ
イス(前掲)による。該イー・コ’) (E、 coli )培養は活性なTP
Aを産生じないであろう。イー・コリ(E、coli ) によって産生された
TPAは再び折りたたんで天然状態としなければならない。公知のシスティン再
シャフリング(shuffling )法によって活性TPAを得ることができ
る。米国特許第4511502号。
実施例4.真核生物における発現
A、酵母におけるヒ) TPAの発現
本実施例は、MFα1プロモーターおよびpre−pro配列を有する酵母発現
プラスミドpα1−FK2に2A の組立てを説明する。酵母におけるTPA同
族体の発現用の培養条件および好ましい宿主株も提供する。
(1)pα1−ADHt1酵母発現ベクターの組立てプラスミド、pα1−AD
Htlは酵母についての多目的発現ベクターである。都合よい地点の制限部位が
その構造中に組込まれており、MFα1プロモーター下の制御は一般に高レベル
の発現に適合する。以下の工程はpα1−ADHtの組立てを記載する。(チャ
ート14〜18)a、 ’ pYRep3’Bの組立て一チャート14REP
mおよび2μプラスミドの複製開始点配列をpYIP31のURA3遺伝子のS
am I部位に入れて都合よいカセットを得ることによってプラスミドpYRe
p3’Bを組立てる。プラスミド、2μおよびpYIP31は共に公に入手可能
であり、文献中に詳細に記載されている。
該2μプラスミドは、[酵母サツカロミセス・セレビシェ(Saccharom
yces cerevisiae ) J Cライフ“サイクル・アンド・イン
へりタンス(Life cycle and 1nheritance)L44
5〜470頁においてジエイ・アール・ブローチ(J、R,Broach )に
よって詳細に記載され、RepI[領域はセル(Ce11)34:95〜104
(1983)およびセル(Cell)35:487〜493(1983)+C記
載されティる。プラスミドpYIP31はジーン(Gene )、18:17〜
24(1979)に記載されていた。
プラスミドpYIP31をまずSamIで切断し、細菌アルカリ性ホスファター
ゼで処理してフラグメント26(5,4kb)を得、これを単離する。酵母の2
μプラスミドをPstI およびXbaIで切断し、フレ/−で満たし、フラグ
メント27 (1,3kb)を単離する。T4 DNAリガーゼを用いてフラグ
メント26および27を結んでpYRep3’ B(6,7kb )を得る。
b、pADHLの組立て一チャート15〜16プラスミドpADHt (3,8
6kb)は酵母発現ベクターを組立てるのに有用な制限部位を供給するので有用
である。
pADHt の組立用の出発プラスミドはpGG400(4,0kb)である。
プラスミドpGG400を公に入手容易なプーナ/L/−オブ・バクテリオロジ
−CJ、 Bacter、 )、126:447〜453(1976)。°具体
的には、テトラサイクリン耐性についてコード付けするpBR322の遺伝子を
カナマイシン耐性についてコード付けするpML21 の一部で置換える。プラ
スミドpBR322をまずEcoRIおよびPvu IIで切断し、クレノー酵
素でEcoR工突出部を満たし、アガロースゲルから単離してフラグメント28
(2,3kb ) を得る。プラスミドpML21 をPuv I[で切断して
カナマイシンに対する耐性用の遺伝子を有するフラグメント29 (1,7kb
)を得る。満たしたEcoRI部位を用いてPuv H切断部を結ぶことにより
、結んだ後EcoRI部位が再生する。フラグメント28および29を結んでp
GG400を得、これをpADHt を組立てるのに用いる(チャート15)。
pGG400をPvuIIおよびXhoIで切断し、クレノー酵素で処理してフ
ラグメン) 3’ O(3,5kb)を°得、これを単離することによってプラ
スミドpADHtを組立てる。まずHinc II およびBam HIで切断
し、T4 ポリメラーゼで処理し、フラグメント31 (0,36kb)を単離
することによって酵母アルコールデヒドロケナーゼエ(ADHI)の3′端部を
pADHBCから得る。プラスミドpADHBCは公に入手可能であり、ジャー
ナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ=(J、Biol、 Chem、 )
257:3018〜1025(1982)に詳細に記載されている。フラグメ
ント30および31を結んで特にpADHt を得、形質転換してイー・コ!J
(E、 coli )に入れる。p ADHtを有するそれらの形質転換体は
それらのプラスミドにおいてBamHI およびXhoI部位を再生するであろ
う。これらの形質転換体を選択し、制限酵素分析法および配列決定法によってク
ローンしたADHI3’端部の正しいことを確認する(チャート16)。
c、pADHt−REPIIIの組立て一チャート17プラスミドpADHt
−REP m (6,2kb )は、URA3−REP lll−複製開始点カ
セットをpADHtに入れて酵母における発現および複製を容易とするpADH
tおよびpYRep31Bの組立体である。E coRI −Hind ffl
またはEcoRI−3maIフラグメントは適当な酵母プロモーターを有する所
望のDNAフラグメントで置換えることができる、あるいはそれは複製開始点、
選択可能なマーカーおよび酵母URA3遺伝子の3′端部を有するSat I
−XhoIフラグメントを供給するのに用いることができるので、プラスミドp
ADHt−REPTILは発現ベクターの組立てに有用である。
BamHIで切断し、端部をクレノー酵素で満たし、8一体5alI!Jンカー
を満たしたBamHI部位に挿入することによってプラスミドpADHt を修
飾する。(修飾した〕プラスミドpADHtをsph Iで切断し、端部をT4
ポリメラーゼで満たしてフラグメント32 (3,8kb。
)を得る。プラスミドpYRep31B をHindlI[で切断し、URA3
の3′端部および安定性を増大させると考えられる2μRep ffi領域なら
びに複製開始点を含有させてフラグメント33 (2,4kb)を単離する。フ
ラグメント32および33を結び、時計回りの転写を可能とする配位のURA3
遺伝子を持つプラスミドを有するイー・コリ(E、 coli )形質転換体を
スクリーニングしてpADHt −REPI[を得る。
d、pα1−ADHtの組立て一チャート18pADHt −REPmのEco
RI −Hindl[フラグメントをプロモーターおよびMFα1遺伝子のpr
e−pro 配列を含有するpα1からのEcoRI−HindllI フラグ
メントで置き換えることによってpα1−ADHt (6,5kb )の組立て
を完成する。プラスミドpα1はエイ・シンラ(A、Singh%et al。
)、ヌクレイツク・アシッド・リサーチ(Nucleic Ac1dResea
rch )、11:4049〜63(1983)およびジエイ・クルヤンら(J
、 Kurjan、 et al、 )セル(Cell)、30:933〜94
3(1983)によって詳細に記載されている。プラスミドpADHt−REP
IIIをまずEcoRI およびHindu で切断してフラグメント34 (
5,3kb)を得、これを単離する。また、プラスミドpα1をE co RI
およびHindlI[を切断してフラグメント35 (1,2kb)を得、これ
を単離する。次いでフラグメント34および35をT4 DNA’Jガーゼを用
いて結んでpα1−ADHtを得る。
(2)pα1−FK2に2Aの組立て、TPA同族体cDNAの酵母発現ベクタ
ーへの挿入−チャード19酵母中でTPA同族体を産生ずるための好ましい発現
ベクターをMFα1プロモーターを有するpα1−FK2に2Aで示す。プラス
ミドI)FK2に2A (チャート12)をBglnで切断してフラグメント3
6 (2,0kb)を得、これをゲル単離する。プラスミドpα1−ADHtを
HindIIIおよびXho Iで切断してフラグメント37 (5,6kb)
を得、転写、ポリアゾニレ−ジョンおよび翻訳部位を供給する。本明細書中で記
載する系は成熟TPA蛋白質より下流で停止し、得られた産生物は酵母起源の少
しのアミノ酸をさらに有するであろう。TPA遺伝子の正確な端部で翻訳を停止
するために、停止コードンを供給することができる。
同族体がMFαpre−pro 配列の解読フレームと同相であることを確認す
るには、同族体の5′および3′端部を変化させない。もう1つのリンカ−を挿
入するかあるいはクレノー(PolI)およびマングビーン(Mung Bea
n)ヌクレアーゼと組合せるのいずれかによって5′端部におけるBg1m部位
を操作して解読フレームをMFα1’ pre−pro”配列と同相に維持しつ
つHindu部位を得ることができる。本実施例については、アデノシンおよび
グア/シンと共にクレノーを用いてフラグメント37のBgl、I[部位を部分
的に満たす。次いで部分的に満たした部分をマングビーン(Mung Bean
)ヌクレアーゼで平滑末端とし、pα1−ADHtのHindllI部位に結
ぶ。(端部を部分的に満たした〕フラグメント36および37を結んでpFK2
に2A (7,6kb )を得る。解読フレームが子を平滑末端として発現ベク
ターに挿入することもできる。
(3)酵母におけるプラスミドpα1−FK2に2A からのTPA同族体の発
現
酵母株YNN227 (α、ura3−52 trpl−289)をpα1−F
K2に2Aで形質転換する。グルコース最小培地(2哄グルコース、0.7%酵
母窒素ベース、1%カザミノ酸、40μg/[[1区アデニン、501111/
rnQ )リプトファン)中で形質転換体を10時間増殖させる。次いで遠心に
より細胞をペレット化する。ガラスピーズで撹拌することによって細胞を溶解す
る。TPA量はウェスタンブロッティング法またはラジオイムノアッセイ法ある
いはクセノプス(Xenopus )卵母細胞について前記したアガール中のカ
ゼイン酵素アッセイ法を用いて検知することができる。
まずQ、 5 txmガラスピーズで溶解し、続いてアフィニテイカラム上で精
製することによってTPA酵母細胞から単離することができる。標準的な蛋白質
精製法を適用してさらに精製を行うことができる。
B、チャイニーズハムスター卵巣細胞におけるTPA同族体の発現−チャード2
0〜22
以下の実施例はチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞においてpFK2に
2Aを発現する好ましい方法を示すものである。要約すると、各々イー・コリ(
E、coli)およびCHO細胞においてアンピシリン耐性およびジヒドロ葉酸
還元酵素遺伝子をマーカーとして用いてCHOおよびイー・コ!J (E、 c
oli )の両細胞において複製するシャトルベクターpsVcOW7をここに
開示する。プラスミドpsVcOW7は、また、CHO細胞における発現に必要
なウシ成長ホルモンからのポリアゾニレ−ジョン配列を供給するものである。プ
ラスミドpsVcOW7をまず切断し、細菌プロモーターおよびTPA同族体を
挿入する。CHO細胞において発現されるTPAについての形質転換培養条件お
よび抽出方法も以下に記載する。
(1)pSvCOW7ノ組立チー1−ヤ−ト20(アメリカン・タイプ・カルチ
ャー・コレクション(American Type Cu1ture Co11
ection )から入手可能な、あるいはニス・スブラマニら(S、 Sub
ramani %et al、 )、[シミアン(Simian)ウィルス40
におけるマウスジヒドロ葉酸還元酵素相補性デオキシリボ核酸の発現]、モMo
1ecular and Ce1lular Biology ) 2 : 8
54〜8.64 (1981年り月〕の方法により調製した)出発プラスミドp
SV2dhfrをBamHIおよびE coRIで消化してアンピシリ・ン耐性
遺伝子、SV40複製開始点、およびdhfr 遺伝子を含有するフラグメント
38(5,0kb) を得る。
psVcOW7の第2の部分は、pSV2dhfrを切゛断するのに用いたのと
同一の制限エンドヌクレアーゼで消化してゲノムウシ成長ホルモン遺伝子、すな
わち、BGHgDNAの3′端部を含有するフラグメント39を得るプラスミド
rλGH2R2から得られる。プラスミドPλGH2R2は、イリノイ州、ペオ
リア(Peoria )のノ、−ザン・リージョナル・リサーチ・ラボラトリー
ズ(Northern Regional Re5earch Laborat
ories )に寄託した(NRRL B−15154) イー・コリ(E、
coli ) HBI 01宿主から公に入手可能である。フラグメント38お
よび39を結んでpsVcOW7 (7,1kb)を得る。
(2) pTPA −cDNA 、 BamHIの組立て一チャート21TPA
同族体をpsvcow7に都合よく挿入するために達成するには、pTPA 5
’c D NA (チャート5)をHgaIで切断し、塩基78〜593を含有
するフラグメン) 40 (517bp)をクレノー酵素で平滑にする。平滑末
端を10一体BamHI リンカ−に結び、フラグメント40をNarIで切断
してTPA cDNAの塩基68〜521を有するフラグメント41を得る。
プラスミドpTPA−cDNA (チャート5)をNar IおよびBglmで
切断し、TPA cDNAの3′部分を含有するフラグメント42 (1644
bp)をゲル単離する。フラグメント41および42をpKC7のBamHIお
よびBgl m消化の結果得られたフラグメンl−43(4,3kb)に結んで
pTPA・−cDNA 、 BamHI (6,5kb ) を得る。
[3) pTPA−IE−PAの組立て−チャート22TPAドメインの天然配
置を有するTPA修飾c DNAを含有するプラスミドpTPA−I E−PA
はCHO細胞によって発現されることが可能である、あるいはTPA同族体を含
有する別法発現プラスミドの組立を容易とするのに用いることができる。pTP
A−I E−PAの組立は2つの工程で達成される。まずpTPA−cDNAか
らのTPAcDNAをp S VCOW7に挿入し、次いでサイトメガロウィル
スの即時型プロモーターを挿入してTPA同族体の転写を開始する。
工程1、 プラスミドpsVcOW7をE co RIおよびPuvIIで切断
し、BGH遺伝子の3′はとんどのエクソンにおけるPuv II部位から3′
末端より下流のEcoRI部位まで伸びるウシ成長ホルモンのポリアゾニレ−ジ
ョン配列を含有するフラグメント44(600bp)を得る。BGHポリアゾニ
レ−ジョン配列の完全な記載については、以下の文献を参照されたい:(1)b
GHゲノムDNAの同定および特徴づけが開示されている1984年6月27日
出り・アール・ビイら(Woychik、 R,P、 et al、 )、「正
確なポリアゾニレ−ジョンのためのウシ成長ホルモン遺伝子の3′フランキング
領域の要件」、プロシーデイングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サ
イエンシズ(Proc、Natl、 Acad、 Sci、 ) USA 81
: 3944〜3948(1984年7月〕りおよび、ディ・アール・ヒッグ
ズら(D、R,Higgs、 et at、 ) 、ネイチャー(Nature
)306:398〜400(1983年11月24日)およびそこに引用され
ている文献。
psVcOW7の第2の試料をEcoRIおよびBamHI で切断してフラグ
メント45を得る。別法として、フラグメント45はベセスダ・リサーチ・ラボ
ラトリーズ(Bethesda Re5earch Laboratories
)から入手可能な親プラスミドpSV2dhfrからのEcoRI / Ba
mHIフラグメントから得られる。フラグメント45はpBR322からの複製
開始点およびイー・コ!J (E、 coli ) においてプラスミドの選択
を可能とするイー・コリ(E、 coli ) において発現されたアンピシリ
ン耐性遺伝子を含有する。該フラグメントは、また、哺乳動物細胞において発現
を可能とする組立体中にマウスジヒドロ葉酸還元酵素cDNAを含有する。スブ
ラマニら(Subramani 、 et al。
〕、モレキュラー・アンド・セリュラー・バイオロジ(Mo1.’Ce11.
Biol、 )1:8,5:4−864 (1981)。
TPA cDNAは、pTPA−cDNA 、 BamHIをBamHIおよび
Ba1Iで切断することから得られるフラグメント46(1,9kb )から得
られる。フラグメント46はtPAcDNAからの全コーディング領域を含有す
る。BamHI切断はmRNAの5′未翻訳配列についてコード付けするcDN
Aにおけるものであり、Ba1I切断はc DNAの3′未翻訳領域についてコ
ード付けするcDNAにおけるものである。
フラグメント44.45および46を結んでイー・コIJ (E、 coli
)およびCHO細胞間を行き来できる複製ベクターであるpTPA−PA(8,
4kb)を得る。プラスミドpTPA−PAを形質転換してイー・コリ(E、c
oli)に入れる。
工程2.工程2においては、ヒトサイトメガロウィルスからの即時型遺伝子プロ
モーター(CMV 1.B、プロモーター)を挿入することによって、pTPA
−PAを発現プラスミドpTPA−I E−PAに変換する。CMVl、E。
プロモーターはCMVゲノムのPst I 消化から得られる。主たる即時型遺
伝子を含有するヒトサイトメガロウィルスゲノム(CMV 1.E、 )の領域
の制限エンドヌクレアーゼ切断マツプは詳細に記載されている(ステインスキイ
ら(5tinsti 、 et al、 )、リサーチ/L/ −オブ・パイロ
ロジー(J、Virol、)46:1〜14.1983 ;ステンベルグら(S
tenberg、 et al、 )、ジャーナル・オブ・パイロロジー(J、
Virol、 ) 49 : 190〜199.1984iおよび、トムセンら
(Thomsen 、 et al、 )、プロシーデイングズ・オブ・ナショ
ナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、 Natl、 Acad、
Sci、 ) USA 、 81 : 659〜663.1984)。
これらの文献は、その配列の中に主要な即時型遺伝子についてのプロモーターを
含有スる2、0キロベースのPstIフラグメントを記載している。それにより
所望の760塩基対フラグメントが産生物の中に得られるこの2. Okb P
st Iフラグメントの5au3AIでの単離消化によってCMV 1.E、プ
ロモーターをさらに単離することができる。この760塩基対フラグメントは、
その大きさならびにフラグメント内のSca I切断部位およびBa1I切断部
位の存在によって他の産生物から区別できる。その便利な同定のため、このSa
u 3 A Iフラグメントの利用は本明細書中に記載するCMVl、E、プロ
モーターを用いる好ましい方法である。
工程1で組立てたプラスミドpTPA−PAをBamHlで切断し、CMV即時
型プロモーターを含有する5au3AIフラグメントをBamHI 部位に結ぶ
。プロモーターからの転写がTPAについてのmRNAを合成するような配位で
CMVプロモーターフラグメントを含有するプラスミドは、プラスミドを5ac
I で切断することによって同定される。得られたプラスミドを、TPA cD
NAの5′端部にCMV 1.F、、プロモーターを有し、およびその、3′端
部にbGHポリアデニレーションシグナルヲ有スるpTPA−IE−PAで示す
。
(4) pTPA−I E−FK2に2Aの組立て−チャート23pTPA−I
E−FK2に2Aの組立ては2段工程である。工程1は所望のTPA同族体、
BGHからのポリアゾニレ−ジョンシグナル配列ならびにpsVcOW7の選択
可能なマーカーおよびレプリコンを含有するpTPA−FK2に2Aの生成を含
み、工程2は前記CMV 1.E、プロモーターの挿入を含む。以下の実施例は
TPA同族体FK2に2Aの挿入を記載するが、同一の酵素および方法を用いて
他の同族体を挿入するこ吉もできる。
工程1. プラスミドpTPA−IE−PA (チャート22)をBamHIお
よびBgl nで切断してTPA先導配列塩基1〜188を含有するフラグメン
ト47を得る。p 5VCOW7(チャート20)をEcoRIおよびP vu
IIで切断してフラグメント48(600bp)を得ることによって、BGH
のポリアゾニレ−ジョンシグナル配列が得られる。
TPA同族体配列はpFK2に2A (チャート12)をBgl I[およびB
a1I で切断してフラグメン) 49 (2,0kb)を得ることより得られ
る。psVcOW7の第2の試料をEcoRIおよびBamHI で切断してp
sVcOW7のマーカーおよびレプリコンを含有するフラグメント50(5,8
kb)を得る。4種のフラグメントをゲル単離し、T4 リガーゼを用いて結ん
でpTPA−FK2に2A(8,3kb)を得る。
工程2. プラスミドpTPA−FK2に2AをBamHI で切断し、5au
3A消化のCMV−IEプロモーター配列を挿入してpTPA−IE−FK2に
2Aを得、これをCHO細胞中へのトランスフェクションまでイー・コリ(E、
coli )中で維持する。
+51 CHO細胞のトランスフェクションおよび培養グラバ春ら(Graha
m 、 et al、 ) (イントロダクション・オブ・マクロモレキュール
ズ・イントウ・バイアプル・ママリアン・セルズ(Introduction
of Macromoleculesinto Viable Mammali
an Ce1ls )、アラン・アール・リス・インコーホレイティラド(Al
an R,Li5s Inc、 )、ニューヨーク、1980.3〜25頁)に
よって詳細に記載されているDNAの細胞中へのトランスフェクションのための
リン酸カルシウム法を用いて、プラスミドpTPA−IE−FK2に2Aをジヒ
ドロ葉酸還元酵素(dhfr)を欠くチャイニーズハムスター卵巣(CHO)
細胞中にトランスフェクトする。用いる細胞系は元来コロンビア大学のエル・チ
ェイシン(L、 ChaSin ) から入手可能な突然変異体DXB−11で
あり、プロシーデイングズ・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシ
ズ(Proc。
Natl、 Acad、 5ci−) USA 77 : 4216〜4220
.1980にすべて記載されている。前記トランスフェクション法は、トランス
フェクトされたプラスミドを一体化する細胞はもはやdhfr を欠くものでは
なくてダルベラコラの修正イーグル培地子プロリン中で増殖するという事実に基
づくものである。
pTPA−I E−FK2に2Aでトランスフェクトした細胞からクローンを単
離するが、それは、単層で2日間増殖させた場合、百万細胞当たり少く表も10
ngのTPAを合成する。p I ETPA−I PA−dhf rを有する
細胞からクローンを単離するが、それは、百万細胞当たり少(とも100 ng
のTPAを合成する。TPA同族体の発現はラジオイムノアッセイ、またはウ
ェスタンプロット法によって検知できる。
リジケンおよびコレン(R1jken and Co11en ) 、ジャーナ
ル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー(Journalof Biolog
ical Chemistry )256 : 7035〜7041(1979
)の方法によりTPA同族体を精製する。組換体TPA同族体を含有するCHO
細胞を血清の無い培地中で増殖させる。72時間後培地を収穫し、1. OMN
aCn および0.01%ツイーン(Tween) 80を含有する0、02M
ドースカラムに付す。カラムを同一の緩衝液で洗浄し、同一の緩衝液中でO〜0
.05Mイミダゾールの直線グラジェントでTPA同族体を溶出する。TPA同
族体を含有する画分をプールし、1.0 M NaCn および0.01%ツイ
ーン(Tween) 80 を含有するO:01Mリン酸緩衝液pH7,5で平
衡化したコンカナバリンA−アガロースカラムに付す。同一緩衝液でカラムを洗
浄した後、平衡化緩衝液〜o、oi’zツイーン(Tween) 80.0,4
MD−メチルマンノシドおよび2Mチオシアン酸カリウムを含有する0、 OI
M IJン酸緩衝液pH7,5の直線グラジェントで溶出する。TPA活性を
有する両分をプールし、固体KSCNを加えてKSCN濃度を1.6Mまで増加
させる。両分を約10倍の濃度とし、1.6 M KSCNおよび0.01%ツ
イーン(Tween) 80を含有する0、01Mリン酸緩衝液pH7,5で平
衝化したセファデックスG−150カラムに付す。TPA活性を有する画分をプ
ールし、0.15MNaCβおよび0.01%ツイーン(Tween、 )80
に対して透析し、−80℃にて保存する。
C,スポドプテラ・フルギペルダ(Spodopterafrugiperda
)における発現以下の実施例は昆虫細胞培養におけるTPAの発現に関する。
すべての手順はサマーズ・エム・ディおよびスミス・シイ・イー(Summer
s 、 M、D、 and Sm1th%G、 E 。
)、テキサス州、カレンダ・ステーション(CollegeStColle )
、テキサス・アグリカルチュラル・イクステンション・サービス(Texas
Agricultural ExtensionService ) 、テキサ
ス・アグリカルチュラル・エクスペリメント・ステーション(Texas Ag
ricultural ExperimentStation )、農業単科大
学によって発行されたバクロウィルスベクター取扱法および昆虫細胞培養手順に
詳細に記載されている。出発プラスミドpAc 373 (7,1kb )は、
アウトグラファ・カリホルニ力・ヌクレア・ポリヘドロシス−ウイノしス(Au
tographa californica nuclearpolyhedr
osis virus ) (AcNPV)についての多角体プロモーターから
直ぐ下流にユニークBam HI部位を有する一般的なバクロウィルス発現ベク
ターである。多角体蛋白質はウィルス感染およびin vitro複製には必須
でないマトリックス蛋白質である。該プラスミドはテキサス77843 、カレ
ンダ・ステーション(CollegeStColle ) 、テキサスAgeM
大学、昆虫学部門のマックス・サマーズ(Max Summers )教授より
入手可能であり、モレキュラー・アンド・セリュラー・バイオロジー(Mole
cular and Ce11. Biology )、3 o2 : 215
6〜2165 (1983) に詳細に記載されている。
fil p A c T P Aの組立て−チャート24ユニークBam HI
部位をやはりユニークであるBalII部位を挿入することによって、出発プラ
スミドpAc373を修飾してTPA同族体を受容するようにする。プラスミド
pAc373をまずBamHIで切断し、次いでマング・ビーン(Mung b
ean )ヌクレアーゼで処理して平滑末端を得る。次いでBglII IJン
カーを該末端に結び、該末゛端を再び結合してpAc373 、BgllI を
得る。チャート21からのプラスミドpTPAcDNA SBamHIをBam
HIで十分に消化し、BgllI で部分的に消化して無傷TPAcDNAにつ
いてコード付けするフラグメント51(1,95kb )を得る。フラグメント
51をゲル単離シ、pAc373 、 BglIIのBglI[部位に挿入して
ニス・フルギペルダ(S、 frugiperda )において天然TPAを発
現できるpAcTPAを得る。
(21pAcFK2に2Aの組立て−チャート25この発現プラスミドについて
は、BglII を用いてTPA同族体FK2に2AをpFK2に2A (チャ
ート12)から切り出し、TPA同族体をコード付けするcDNAをフラグメン
ト53(2,0kb) としてゲル単離する。プラスミドpAcTPA (チャ
ート24)をBgllI で切断してフラグメント52 (7,15kb) を
得る。フラグメント52および53を結んでpAcFK2に2A(9,15kb
)を得、これをニス・フルギペルダ(S、 frugiperda )中にト
ランスフェクトするまでイー・コリ(E、coli )中で維持する。
(3)ニス・フルギペルダ(S、 frugiperda )のトランスフェク
ションおヨヒ培養
ニス・フルギペルダ(S、 frugiperda )における共トランスフェ
クションによってTPA同族体ヲ天然ACNPVDNAと再び組合せる。ニス・
フルギペ/Ll”(S。
frugiperda) (SF9;ATCCCRL 1711)はディフコ(
Difco)ラクトアルブミン加水分解物および酵母分解物を補足したブレイス
(Grace)培地(ジブコ・ラブ(Gibco Lab、)、リボニア(Li
vonia )、ミシガン州48150)、10%胎児ウシ血清中で培養する。
細胞を各々1p/mQおよび2μ/己にてAcNPV D’NAおよびpAcT
PAFK2に2Aで共トランスフェクトする。得られたウィルス粒子は、培地を
収集し、低速遠心によって細胞物質を除去することにより得られる。次いでウィ
ルス含有培地ヲ用いてニス・フルギペルダ(S。
frugiperda )を感染する。天然ウィルスDNAおよびFK2に2A
TPA同族体についてコード付けするcDNAfrugiperda )の感
染の結果、多角体蛋白質の代りにTPA同族体を発現するいくらかの細胞が得ら
れる。TPA同族体を産生ずる感染細胞コロニーの検出は、系統的に希釈した(
No−’〜1O−6)培地を含有するウィルスであらかじめ1時間感染したニス
・フルボ ペルダ(S。
frugiperda )の単層を重ねることによって決定する。次いで、 6
m9 / rnQフィブリノーゲンおよび0.5単位トロンビンを含有する0
、7%低融点アガールを有するブレる細胞は感染の中心付近に明瞭なプラークを
形成する。
実施例5
以下の同族体をCHO細胞から単離し、活性および抗原性について評価した:
FGKIK2A%FKIK2AおよびK2A 0
第1表は2つの異なるin vitro テスト、活性および抗体認識の結果を
要約する。同族体FGKIK2AおよびFK2Aは血小板からのプラスミノーゲ
ンアクチベーター抑制物質と共に複合体を形成する(トロンビン誘導血小板放出
体)。同族体の分子量は各々約62000 および40000 ダルトンである
。酵素抑制物質複合体の分子量は各々約110000および85000 ダルト
ンである。
実施例6 、 TP、A同族体の治療応用TPAは血栓を溶解し、治療的に有用
であることは公知である。ザ・ランセット(The Lancet )、101
8〜20頁(1981年、11月7日);サイエンス(3(ience )、2
20:1181(1983)暮およびニュー・イングランド・ジャーナル・オブ
・メデイシン(N、Eng、 J、 Med、)、310:609(1984)
。冠血栓を有する患者へのTPA同族体の投与は、前記2つの文献に記載された
一般法により、歯冠内もしくは静脈内経路を介して行うことができる。
第1表
米
試料 活性(U/mQ) 抗原”(ng/mQ)精製した天然
組換体TPA 49000 91200OFGKIK2P 2.1±、03 4
7±2FKIK2P 8.4±、34 200±6FK2P 4.2±、0.6
97±28来活性は標準TPA調製に対し相対的に示す。
■抗原測定値は前記TPAに対するヤギ多クローン抗体を用いて得た。
第 1 図
第1図(続き]
第1図(紐き)
第1図(続き〕
一致=2526 誤一致=15 不一致=12長さ=2553 一致/長さ=9
9.0”−セント第 2 図
第2図(続き)
第2□□□(続き]
一致=556 誤一致=7 不一致=3長さ=566 一致/長さ=98.2パ
ーセント第 3 図
TPA万リゴすクレ万ナト
ブロック1=フインガー(finger)ドメインブロック2=発育因子ドメイ
ン
P265’GGCA(1:GTGGAGCACAG(:GGAG第3図(続き)
P37 5’ACGCG(:TGCTCTT(:CAGTrGGTGCAC:T
CGGP38 5’CCCGCTGTAGCCCTTCTGにGCCAブロック
4=クリング/L/(kringle]2ドメインP835’ATにCCC(1
:GCACAGGAACCGCP845’AGAGAGAATC(:AGCAG
GAGC:TGATGAGT第3図(@き)
P855’CTCTCCTGGAAGCAGTGGGCGGC:P865’Cに
TCAにGTGGTGGGGCGGAAAC第4図
TPAドメイン
ドメイン 天然TPA
フィンガー セリン#1−リジン#49(Finger ) ヌクレオチド19
0−336発育因子 セリン#50−スレオーニン#91ヌクレオチド337−
462
クリングル1 システィン#92→セリン#174(Kringle ) ヌク
レオチド463−711クリングル2 グルタミン酸#175→セリン#262
(Kringle ) ヌクレオチド712−975活性部位 スレオニン#2
63−−jロリン#527ヌクレオチド976→1770
TPA同族体(チャート11)
フィンガー セリン#1→バリン#49(Finger ) ヌクレオチド19
0−342発育因子゛ アラニン#5ニーアラニン#91ヌクレオチド343−
456
クリングル1 スレオニン#92−システィン#175(Kringle )
ヌクレオチド457−726クリングル2 グルタミン酸#17ローアラニン#
266(Kringle ) ヌクレオチド727−999活性部位 システィ
ン#267−9プロリン#53゜ヌクレオチド1000−1782
チャート1. pTRZlの組立
(alpMc1403をEcoRI、クレノー酵素および細菌アルカリ性ホスフ
ァターゼで処理してフラグメント1を(blpVVlをpvu II、Bgll
Iおよびクレノー酵素で処理し、続いてtrpプロモーターおよびTrp L
E部分を含有するフラグメント2(323bp)を精製する。
(cl T 4 D N A リガーゼを用いてフラグメント1および2を結ん
でpTRZl (10kp )を得る。
チャート1(続き)
AmpR=アンピシリン耐性
1acZ、 LacY%LacA=ラクトースオペロンにおけ、る遺伝子
Ptrp = Trpプロモーター/オペレーターtrpLE = trpLお
よびtrpEの融合チャート2(続き)
(al pTRZl (10kb )をBamHIおよびEcoRIならびニア
ルカリ性ホスファターゼで処理してフラグメント3(350bp)を得る。
(b) pKC7(5,8kb >をBam H工およびEcoRI で処理し
てフラグメント4(4,0kb)を得る。
(clフラグメント3および4を結んでpSK3 (4,3kb )を得る。
5K3
D = Trpプロモーター/オペレーターE = Trp Lリポソーム結合
部位F、=trpLE および制限部位
AmpR=アンピシリン耐性
チャート3. pSK4の組立
(alpsK3をEco RIおよびBamHIで切断してフラグメント5(3
22bp)を単離する。
(b)部分子aqI消化により278bl)フラグメント6EcoRI〜Taq
Iおよび他のフラグメントを得る。
fc)フラグメント6をクローンしてpBR322に入れ、EcoRIおよびC
1a Iで切断してpSK4 (4,6kb )を得る。
D = Trpプロモーター/オペレーターE=シャイン・ダルガノ領域
チャート4. pTPA 3’ c DN、Aの組立(alpBR322をPs
tIで切断し、ティリングし、位置1250〜253’Oを有するTPAcDN
Aの3′端部を挿入することによってプラスミドpTPAH(5,7kb )を
得る。
(b)pBR322をPstIで切断し、ティリングし、位置550〜1600
を有するTPAのcDNA を挿入することによってプラスミドpTPA80−
1(’5.4kb)を得る。
(c)プラスミドpTPAHおよびpTPA80−1をSac IおよびPvu
Iで切断し、フラグメント7(1251bp)および8(5,1kh)を各々
ゲル単離する。該フラグメントを細菌アルカリ性ホスファターゼで処理し、T4
で結んでTPAcDNAの塩基550〜2530を有するpTPA3’cDNA
(’ 6.3 kb )を得る。
チャート4(続き)
TetR=テトラサイタリン耐性
P=TPAcDNAの550〜802塩基位置A = TPAcDNAの802
〜2530塩基位置N=TPAの未翻訳3′領域
チャート5. pTPAcDNAの組立(alpBR322をPstIで切断し
、テーイリングし、TAPc DNA位置1−750の5′領域を挿入すること
によってプラスミドpTPA5’cDNAを得る。
(blプラスミドpTPA5’をTaqI で切断してフラグメント9(219
4bp)を得、これをゲル単離し、BglIIおよびHga Iで切断してTP
AcDNAの塩基188〜593を含有するフラグメン) 10 (’405
bp )を得る(成熟TPA蛋白質)。
フラグメント10
(clプラスミドpTPA3’cDNA (チャート4)をPvu IIおよび
Eco’RIで切断し、フラグメント11(1748bp)をゲル単離する。フ
ラグメント11をHga I で切断してフラグメン)12(209bp)を得
、これをゲル単離するが、このものは塩基594〜802を含有する。
チャート5(続き)
fd)プラスミドpTPA3’CDNAをPvu I で切断し、直線状6.3
kbフラグメントをT4ポリメラーゼで処理して平滑末端とし、EcoRIで部
分的に消化してpBR322の塩基802〜2530と123 bp を含有す
るフラグメント13(1871kb) を得る。
(e)プラスミドpKC7をBgllIおよびSma Iで切断し、細菌アルカ
リ性ホスファターゼで処理し、フラグメント14(4,8kb)をゲル単離する
。
フラグメント14
チャート5(続き)
(flフラグメント10.12.13および14をプールし、T41Jガーゼを
用いて結んで成熟TPAcDNAを含有するpTPAcDNA (7,4kb
)を得る。
AmpR=アンピシリン耐性
T =TPA cDNAの5′部分
P = TPA cDNAの中央部分
A = TPA cDNAの3′部分
N = TPA cDNAの未翻訳3′部分チャート6、pTPA−Blの組立
(alプラスミドpSK4をC1a 1および5phI で切断してフラグメン
ト15(4,1kb)を得、これを単離し、ATGを含有するC1a I/Xb
a I リンカ−によりフィンガー(f inger ) ドメインを含有する
ブロック1に結Σず。
フラグメント15
(blリンカ−によりフラグメント15およびプロ゛ンク1を結んでpTPA−
Bl(4,25kb)を得る。
pTPA−Bl
±
チャート6(続き)
D = Trpプロモーター/オペレーターE=TrpL リポソーム結合部位
F−フィンガー(finger )ドメインAmpR=アンピシリン耐性
ATG = 翻訳開始コードン
チャート?、pTPA−Bl、2の組立(alプラスミドpTPA−BlをEc
o RIおよびsph Iで切断してフラグメン)16(450bp)および発
育因子ドメインを含有するブロック2(’100bp)を得、Eco RIおよ
びsph Iを用いて適当なりローンから単離する。
フラグメント16
(b)フラグメント16およびブロック2をpBR322のEco RI /
C1a I消化から得たフラグメント17(4,35kb)に結んでpTPR−
Bl、2(4,8kb)を得る。
フラグメント17
チャート7(続き)
pTPA−81,2
P10=Trpプロモーター/オペレーターRbS =Trpリポソーム結合部
位
ATG =翻訳開始コードン
F=フィンガー(finger )ドメインG=発育因子ドメイン
AmpR=アンピシリン耐性
Ori = pBR322の複製開始点チャート8. pTPA−Bl、2(a
)の組立(a)プラスミドpTPA−Bl、2をXba IおよびEcoRIで
切断してフラグメン)18(4,5kb)を得、これを単一に結んでpTPA−
Bl、2(al C4,s kb )を得る。
フラグメント18
pTPA−B’L、2(a)
F=フィンガー(finger )
G=発育因子領域
AmpR=アンピシリン耐性
チャート9. pTPA−Bl、2.3の組立プラスミドpTPA−Bl、2(
a)をC1a I / BamHI で切断し、フラグメント19(4,0kb
)を単離し、クリングル(kringle ) 1ならびに上流にC1a I部
位および下流にBamHI を含有するブロック3(270bp)で結んでpT
PA 3 (4,3kb)を得る。
フラグメント19
pTPA−Bl 、2.3
F=フィンガー(finger )ドメインG=発育因子ドメイン
に=クリングル(’ kringle ) IAmpR=アンピシリン耐性
チャー) 10. pTPA−Bl、2.3.4(a)の組立(a)プラスミド
pTPAcDNA (チャート5)をSca Iで切断し、TPA遺伝子の3′
端部を含有するフラグメント20 (6,0kb)をゲル単離する。
フラグメント20
(b)プラスミドpTPA−Bl、2.3(チャート9)をSca IおよびB
amHIで切断し、フラグメント21(1100bp ’)をゲル単離する。
(C)フロック4を含有するクローンからクリングル(kring!e ) 2
領域を含有するBam HI / Sca Iフラグメン)4a(230bp)
を単離する。
チャート10(続き)
フラグメント4a
(elプラスミドpTPA −B 1.2.3.4aをHindI[[およびA
atIIで切断し、2.2kb始原型TPA遺伝子を継代クローンしてHind
I[およびAatIIで同様に消化したpUC19に入れてpTPA −B
1.2.3.4(at (4,2kb)を得る。
プラスミドpTPA −B 1.2.3.4aは記号的にpTPA−Bl、2.
3.4aに似ているが、より好都合な制限部位の配置を有する。
AmpR=アンピシリン耐性
F=フィンガー(finger )ドメインチャート12. pFK2に2Aの
組立(a)プラスミドpTPA−Bl、2.3.4aをHpaIで切断してフラ
グメン) 22 (’6.5kb)を得、これをゲルがら単離する。
フラグメント22
(blプラスミドpTPA−Bl、2.3.4をHpaI およびMstlで切
断してクリングル(’ kringle ) 2を含有するフラグメント23(
506bp)を得る。
(clフラグメント22および23を一緒に結んでpFK2に2A(7,1kb
)を得る。
Ori = pBR322についての複製開始点AmpR=アンピシリン酎性
チャ耐ト12 (続き)
K=クリングル(kringle ) 2ドメインF=フインガー(finge
r ) ドメインA=活性部位
N=非コード3′配列
チャート13. pTPA Exp 1の組立(alプラスミドpTPA −8
1,2(チャート7)をXba IおよびBamHI で切断し、フラグメント
24(4,2kb)を得、これをゲル単離する。
フラグメント24
(blプラスミドpFK2に2A(チャート12)をXba IおよびBglI
[で切断してフラグメント25(2,0kb)をフラグメント25
(clフラグメント24および:25 ヲ結A、 テpTPA Exp 1(6
,2kb>を得る;BamH:[およびBa1I[は相補的であるが回復されな
い。
チャート13(続き)
pTPAExp 1
rrpP10=)リプトファージプロモーター/オペレーター
Rb5=リポソ一ム結合部位
に=クリングル(kringle ) 2F=フインガー(finger )ド
メインAmpR=アンピシリン耐性
ATG= 翻訳開始コードン
チャート14. pyRep 3’Bの組立(allプラスミドルYIP31を
SmaIで切断し、細菌アルカリ性ホスファターゼで処理してフラグメント26
を得る。
フラグメント26
(b)酵母の2μプラスミドをPst IおよびXba Iで切断し、クレノー
酵素で処理する。得られたフラグメンフラグメント27
(c)フラグメント26および27を結んでpyRep3’B (6、7kb
)を得る。
U = URA3
R=Repl[および複製開始点に及、3コ配列チャート15. プラスミドp
GG400の組立(alプラスミドpBR322をEcoRIおよびPvu I
Iで切断し、末端をクレノー酵素で満たしてフラグメント28(2,3kb)を
得る。
フラグメント28
(blプラスミドpML21をPvu IIで切断してフラグメント29(1,
7kb)を得る。
フラグメント29
(clT4を用いてフラグメント28および29を結んでpGG400 (4,
0kb )を得る。
Amp R=アンピシリン耐性
KmR=カナマイシン耐性
チャート16. pADHtの組立
(atプラスミドpGG400をXho IおよびPvu IIで切断し、クレ
ノー酵素で処理し、得られたフラグメント3゜(3L5kb)を単離する。
フラグメント30
(blプラスミドpADHBCをHinc ■およびBamHI で切断し、末
端をT4リガーゼで満たし、得られたフラグメント31(0,36kb)を単離
する。
フラグメント31
(C)T4リガーゼを用いてフラグメン)30および31を結んでpADHt
(3,86kb)を得る。
チャート16(続き)
AmpR=アンピシリン耐性
KmR=カナマイシン耐性
H=ADHt3’末端
チャート17. プラスミドp ADHt −Rep mの組立(a) Bam
HI で制限し、8一体5alIリンカ−を満たしたBamHI 部位へ結ぶこ
とによってプラスミドpADHtを修飾する。
(b)(修飾した)プラスミドpADHtをsph I で切断し、T4 リガ
ーゼで末端を満たしてフラグメント32(’ 3−8 kb )を得る。
(c)プラスミドpyRep 31 B (チャート16)を)(indI[[
で切断し、T4リガーゼで末端を満たしてフラグメント33 (2,4kb )
を得る。
(dlT4リガーゼを用いてフラグメント32および33を結んでpADHt
−Repm (6,2kb )を得る。
チャート18.pα1−ADHtの組立チャート17(続き)
AmpR=アンピシリン耐性
H=ADHt3’末端
チャート18(続き)
(alプラスミドpADHt−Repm (チャート15)をEco RIおよ
び)(indI[で切断し、フラグメント34(5,3kb)を単離する。
(bl Eco RIおよび)(ind IIでプラスミドpαlを制限して1
.2kbを有するフラグメント35を含有するMFα1遺伝子を得る。
フラグメント35
(clT4リガーゼを用いてフラグメント34および35を結んでpα1−AD
Ht (6,5kb )を得る。
AmpR=アンピシリン耐性
H=ADHt’末端
u ” Ura 3
R=RepNおよび複製開始点
MFα1=プロモーターおよびMFα1遺伝子についてのシグナル配列
チャート19.pα1−FK2に2Aの組立(a)プラスミドpFK2に2A(
チャート12)をBglIIで切断してフラグメン)36(2,0kb)を得、
これをゲル単離する。
フラグメント36
(b)プラスミドpa 1−ADHtをHindl[およびXho Iで切断す
る;塩基アデノシンおよびグアノシンの存在において末端をクレノー酵素で部分
的に満たし、マンク゛・ビーン(’Mung bean )ヌクレアーゼで処理
してフラグメンl−37(5,6kb)を得、これをゲル単離する。
フラグメント37
(clフラグメント36および37を結んでp /21−FK2に2A(7,5
kb)を得る。
チャート19 (続き)
MFα1=プロモーターおよびMFα1遺伝子についてのシグナル配列
F=フィンガー(finger )
K=クリング/L/ (kringle )領域2A=活性部位
N=未翻訳3′配列
H=ADH13′末端
R=RepI[および複製開始点
チャート20. psVcOW7の組−立(alプラスミドpSV2dhfrを
BamHIおよびEcoRIで切断してフラグメント38 (5,Okb )を
得る。
フラグメント38
(b)プラスミドpλGH2R2をBamHIおよびECORIで切断してフラ
グメン)39(2,1kb)を得る。
フラグメント39
(clフラグメント38および39を結んでpsVcOW7(7,1kb)を得
る。
psVcOW7
チャート20(続き)
A−ウシ成長ホルモンポリAティル部
G=ゲノムウシ成長ホルモン
■=イントロン
dhfr =ジヒドロ葉酸還元酵素
5V40= SV40プロモーターおよび複製開始点AmpR=アンピシリン耐
性
チャート21. pTPAcDNA、BamHIの組立(alプラスミドpTP
A5’cDNA (チャート5、パートクレノーで平滑とし、1o一体BamH
Iリンカ−に結ぶ。
フラグメント40をNarI で切断してTPAcDNAの塩基78〜518を
有するフラグメント41(44obp)を得る。
フラグメント40
(blプラスミドpTPAcDNA (チャート5)をNarIおよびBgln
で切断し、TPA cDNAの3′部分を含有するフラグメント42(1644
bp)をゲル単離する。
フラグメント42
(c)プラスミドpKC7をBamHIおよびBgllI で切断してフラグメ
ント43(4,3kb)を得、これをゲル単離し、フラグメント41および42
を結んでpTPAcDNA、チャート21(続き)
BamHI (’ 6.5 kb )を得る。
pTPAcDNA、 BamHI
L−先導配列
T = TPA cDNAの5′部分
P=TPAcDNAの中央部分
A = TPAcDNAの3′部分
N=TPAc’DNAの未翻訳3′部分チャー) 22. pTPA−IE−P
Aの組立(alプラスミドpsVcOW7をEco RIおよびPvuIIで切
断してウシ成長ホルモンのポリアゾニレ−ジョン配列を含有するフラグメン)
44 (600bp ) ヲ得、コレラゲル単離する。
フラグメント44
(b)プラスミドpsvcow7(チャート20)をEcoRIおよびBamH
I で切断してフラグメント45 (’ 5.8 kb)フラグメント45
(clプラスミドpTPAcDNA、BamHI (チャート21)をBamH
IおよびBa1Iで切断してフラグメント46(2,0kb)を得る。
チャート22(続き)
フラグメント46
(dlフラグメント44.45および46を結んでpTPA−PA (8,4k
b )を得る。
pTPA−PA
プラスミドpTPA−PAをBamHIで切断し、CMVゲノムのPstIおよ
びSau 3 A I消化からのCMV −I E プロモーター(760bp
)を挿入してpTPA−IE−PAを得る。
pTPA−IE−FA
チャート22 (続き)
AmpR=アンピシリン耐性
Ori = pBR322複製開始点
SV40/□ri=シミアン(51m1an )ウィルス複製開始点
MO/dhfr=マウスジヒドロ葉酸還元酵素マーカーCMV/From =サ
イトメガロウィルスプロモーターL = TPA先導配列
T = TPA cDNAの5′領域
P=TPAcDNAの中央領域
A=TPAcDNAの3領域
N=TPAcDNAの未翻訳3′領域
a=ポリアゾニレ−ジョンシグナル配列チャー) 23. pTPA−4E−F
K2に2Aの組立(al pTPA −I E −PA (チャート22)をB
amHIおよびBgllI テ切IFr L、テア ラフl 7 ) 47 (
’120bp ) f得、これをゲル単離する。
フラグメント47
断してウシ成長ホルモンのポリアゾニレ−ジョン配列を含有するフラグメント4
8(600bp) を得、これをゲル単離する。
フラグメント48
(clプラスミドpFK2に2A(チャート12)をBglIIおよびBa1I
で切断してフラグメント49(1,7kb)を得、これをゲル単離する。
チャート23(続き)
フラグメント49
(d)プラスミドI)SVCOW7 (チャート20)をEcoRIおよびHa
mHIで切断してフラグメン)50を得る。
フラグメント50
(elT4リガーゼを用いてフラグメント47.48.49および50を結んで
pTPA FK2に2A (8,3kb )を得る。
pTPAFK2に2A
CMVゲノムのPstIおよびSau 3 A I消化からのCMV −IEプ
ロモーター(76obp)を挿入してpTPA−4E−チャート23(続き)
FK2に2A を得る。
pTPA−IE−FK2に2A
AmpR=アンピシリン耐性
Ori = pBR322複製開始点
5V40−シミアン(51m1an )ウィルス複製開始点CMV/From
=サイトメガロウィルスプロモーターL=TPA先導配列
T=TPAcDNAの5′領域
P = TPA cDNAの中央領域
* F=フ、インガー(finger )ドメインに一クリングル(kring
le ) 2A=活性部位
N = TPA cDNAの未翻訳3′領域a−ポリアゾニレ−ジョンシグナル
配列チャー) 24. pAc TPAの組立(a)プラスミドpAc 373
(7,1kb )をBamHIで切断し、マング・ビーン(Mung bea
n )ヌクレアーゼで処理して平滑末端を得、これにBgllIIJンヵーを加
える。
末端を再び連結してpAc373、BgllIを得る。
pAe373. EglI工
(blプラスミドpTPAcDNA、BamHI (チャート21)をBamH
Iで切断し、BglIIで部分的に消化して無傷TPAcDNAを含有するフラ
グメント51(1,95kb )を得る。
フラグメント51
チャート24(続き)
(clフラグメント51を挿入し、pAc373、BglIIのBg1m部位に
結んでpAc TPA (9,05kb )を得る。
L=先導配列
T = TPA cDNAの5′部分
P = TPA cDNAの中央部分
A=TPAcDNAの3′部分
N =TPA cDNAの未翻訳3′邪分AmpR−アンピシリン耐性
Po1y−多角体蛋白質遺伝子
チヤード25. pAcFK2に2Aの組立(al pAc TPA (チャー
ト24)をBglIIで切断してフラグメント52(7,15kb)を得る。
フラグメント52
(b)プラスミドI)FK2に2A (チャート12)をBgllIで切断し、
同族体cDNAをフラグメント53(2,0kb )としてゲル単離する。
フラグメント53
(c) 7ラグメント52および53を結んでpAc FK2に2A(9,15
kb ) を得る。
チャート25 (続き)
L−先導配列
F−フィンガー(finger )ドメインに=クリングル(kringle
) 2ドメインA=活性部位ドメイン
N=TPAcDNAの未翻訳3′部分
AmpR−アンピシリン耐性
国際調査報告
1msme++eaal Asthmas N。 PCT/υS 861026
84ANNEX To °zjE INTERNATIONAL 5EARCH
REPORT JNEF’−A−02075B9 07101/87 None
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1.溶性部位と、フィンガー(finger)ドメイン(F)、発育因子ドメイ ン(G)、クリングル(kringle)1ドメイン(K1)およびクリングル (kringle)2ドメイン(K2)よりなる群から選択される1またはそれ 以上のドメインよりなり、(a)インタードメイン領域をコード付けするヌクレ オチド配位内に該ドメイン領域をコード付けするヌクレオチド配列中には存在し ない非天然エンドヌクレアーゼ制限部位を含有し、(b)90000ダルトン以 下の分子量を有するTPA様蛋白質をコード付けし、ここに該ドメインはその中 で2回以上現われないことを特徴とするTPA様蛋白質コード付けヌクレオチド 塩基よりなるDNA化合物。 2.該ドメイン領域コード付けヌクレオチド配列がその順序、出現またはそれら の双方に関し天然配置から変化されたものである前記第1項の化合物。 3.Xba部位がヌクレオチド塩基187〜198間に挿入された前記第1項の 化合物。 4.HpaIもしくはSphI部位またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基3 28〜342間に挿入された前記第1項の化合物。 5.EcoRV、ClaI、もしくはSmaI部位またはそれらの組合せがヌク レオチド塩基442〜462間に挿入された前記第1項の化合物。 6.BamHIもしくはHapI部位またはそれらの組合せがヌクレオチド塩基 709〜726間に挿入された前記第1項の化合物。 7.MstI、SphI、もしくはXmaIII部位またはそれらの組合せがヌ クレオチド塩基973〜997間に挿入された前記第1項の化合物。 8.DNAが、該ドメインがアミノ末端からa.FA; b.FGK1A; c.FGK2A; d.FK2A; e.FK1K2A; f.FK2K2A; g..FK1A;または h.FGK1K2A の順で並ぶTPA様蛋白質についてコード付けする前記第1項の化合物。 9.TPA様蛋白質をコード付けする配列から上流および下流の双方のヌクレオ チドの配列が該化合物を適当な宿主細胞によつて維持されることを可能とする前 記第1項の化合物。 10.該適当な宿主細胞がTPA様蛋白質を発現することを可能とすることがで きる前記第9項の化合物。 11.該ドメインがアミノ末端から a.FA; b.FGK1A; c.FGK2A; d.FK2A; e.FK1K2A; f.FK2K2A; g.FK1A;または h.FGK1K2A の順で並ぶTPA様蛋白質をコード付けするDNAを含有する前記第10項の化 合物。 12.該適当な宿主が: 1.酵母、 2.真核生物細胞、および 3.エシエリヒア(Escherichia)種よりなる群から選択される前記 第10項の化合物。 13.該適当な宿主細胞がチヤイニーズハムスター卵巣細胞である前記第10項 の化合物。 14.該適当な宿主細胞が昆虫由来の真核生物細胞である前記第10項の化合物 。 15.該昆虫宿主細胞がボンビックス・モリ(Bombyxmori)またはス ポドプテラ・フルギペルダ(Spodopterafrugiperda)から 選択される前記第14項の化合物。 16.活性部位ならびにフインガー(finger)ドメイン(F)、発育因子 ドメイン(G)、クリングル(kringle)1ドメイン(K1)およびクリ ングル(kringle)2ドメインよりなる群から選択されろ1またはそれ以 上のドメインよりなり、該ドメイン領域が、蛋白質の総分子量が90000ダル トンを超えずかつドメインが2回以上現われない場合、その順序、出現またはそ れらの双方に関し天然配置から変化されたものであることを特徴とするTPA様 蛋白質。 17.該ドメインがアミノ末端から a.FA; b.FGK1A; c.FGK2A; d.FK2A; e.FK1K2A; f.FK2K2A;または g.FK1A の順で並んだものである群から選択される前記第14項の蛋白質。 18.該細胞が以下の真核生物および原核生物種:a.イー・コリ(E.Col i); b.酵母; c.チヤイニーズハムスター細胞; d.昆虫細胞; e.スポドプテラ・フルギペルダ(Spodopterafrugiperda )f.ボンビツクス・モリ(Bombyxmori);およびg.哺乳動物細胞 の群から得られたものである前記第10項の化合物を含有する宿主細胞。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US81160785A | 1985-12-20 | 1985-12-20 | |
US811,607 | 1985-12-20 | ||
US909,482 | 1986-09-19 |
Publications (2)
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---|---|
JPS63501841A true JPS63501841A (ja) | 1988-07-28 |
JPH0550271B2 JPH0550271B2 (ja) | 1993-07-28 |
Family
ID=25207026
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62500070A Granted JPS63501841A (ja) | 1985-12-20 | 1986-12-12 | 組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ−(tpa)同族体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63501841A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63133988A (ja) * | 1986-01-24 | 1988-06-06 | ザイモジエネテイクス,インコ−ポレイテイド | 変形された組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ− |
JPH02215384A (ja) * | 1988-10-24 | 1990-08-28 | Boehringer Mannheim Gmbh | 組織プラスミノーゲンアクチベーターミユーテイン、その製造方法および該ミユーテインを含有する凝血塊溶解剤 |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE29513138U1 (de) * | 1995-08-16 | 1995-10-12 | Schmidt & Lenhardt GmbH & Co. oHG, 88316 Isny | Umschaltweiche zum Anschluß an Wasserhähne und Mischarmaturen |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS523782A (en) * | 1975-06-27 | 1977-01-12 | Yoshio Nakamura | Rotating shearing machine for rod materials |
JPS57147272A (en) * | 1981-03-06 | 1982-09-11 | Mitsubishi Electric Corp | Semiconductor element |
-
1986
- 1986-12-12 JP JP62500070A patent/JPS63501841A/ja active Granted
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS523782A (en) * | 1975-06-27 | 1977-01-12 | Yoshio Nakamura | Rotating shearing machine for rod materials |
JPS57147272A (en) * | 1981-03-06 | 1982-09-11 | Mitsubishi Electric Corp | Semiconductor element |
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---|---|---|---|---|
JPS63133988A (ja) * | 1986-01-24 | 1988-06-06 | ザイモジエネテイクス,インコ−ポレイテイド | 変形された組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ− |
JPH02215384A (ja) * | 1988-10-24 | 1990-08-28 | Boehringer Mannheim Gmbh | 組織プラスミノーゲンアクチベーターミユーテイン、その製造方法および該ミユーテインを含有する凝血塊溶解剤 |
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---|---|
JPH0550271B2 (ja) | 1993-07-28 |
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