JPS62123104A - ナス科植物の土壌病害防除方法 - Google Patents
ナス科植物の土壌病害防除方法Info
- Publication number
- JPS62123104A JPS62123104A JP60261354A JP26135485A JPS62123104A JP S62123104 A JPS62123104 A JP S62123104A JP 60261354 A JP60261354 A JP 60261354A JP 26135485 A JP26135485 A JP 26135485A JP S62123104 A JPS62123104 A JP S62123104A
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- JP
- Japan
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- bacteria
- pseudomonas solanacearum
- soil
- phage
- plants
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- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Cultivation Of Plants (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
［産業上の利用分野］
この発明は、シュドモナス拳ソラナシアラム（Ｐｓｅｕ
ｄｏｍｏｎａｓ ｓｏｌａｍａｃｅａｒｕ＋＋）細菌の
寄生によって発症するナス科植物土壌病害の防除方法に
関する。
ｄｏｍｏｎａｓ ｓｏｌａｍａｃｅａｒｕ＋＋）細菌の
寄生によって発症するナス科植物土壌病害の防除方法に
関する。
〔従来の技術］
タバコ立枯病やタバコ以外のナス科植物例えばナス、ト
マト、ピーマン、ジャガイモ等の青枯病は病原性シュド
モナス−ソラナシアラム細菌の寄生によって引き起こさ
れる。植物がこれらの病気に感染すると、枯れて収穫で
きなくなり、大きな損害をもたらす。
マト、ピーマン、ジャガイモ等の青枯病は病原性シュド
モナス−ソラナシアラム細菌の寄生によって引き起こさ
れる。植物がこれらの病気に感染すると、枯れて収穫で
きなくなり、大きな損害をもたらす。
このようなタバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植物
の青枯病（この明細占において、これら病害を総称して
巾にナス科植物の土壌病害という）を防除する手段とし
て、特許協力条約に基づいて公開された国際出願（国際
公開番号ＷＯ３５１０３５１９）に、シュドモナス・ソ
ラナシアラム・Ｍ４Ｓ （微工研条寄第７００号）菌株
の生菌をナス科間物の根部に接種する方法が開示されて
いる。
の青枯病（この明細占において、これら病害を総称して
巾にナス科植物の土壌病害という）を防除する手段とし
て、特許協力条約に基づいて公開された国際出願（国際
公開番号ＷＯ３５１０３５１９）に、シュドモナス・ソ
ラナシアラム・Ｍ４Ｓ （微工研条寄第７００号）菌株
の生菌をナス科間物の根部に接種する方法が開示されて
いる。
［発明が解決しようとする問題点］
ヒ記方法による土壌病害発病の抑制効果は木畑において
も確認されているが、木畑において土壌病害防除法とし
て利用するためには、防除効果をさらに高めることが望
まれている。
も確認されているが、木畑において土壌病害防除法とし
て利用するためには、防除効果をさらに高めることが望
まれている。
［問題点を解決するための手段］
この発明では、シュドモナス・ソラナシアラムＭ４Ｓの
生＋２４によるナス科植物のモ壌病害防除効宋をより高
めるために、シュドモナスΦソラナシアラムＭ４Ｓの生
菌をナス科植物の根部に接種し、この接種から７日以内
の期間内に該生菌と病ＪｊＫ 性シュドモナス・ソラナ
シアラムとの両者を溶菌するバクテリオファージの増殖
液を該根部の土壌に散布する。
生＋２４によるナス科植物のモ壌病害防除効宋をより高
めるために、シュドモナスΦソラナシアラムＭ４Ｓの生
菌をナス科植物の根部に接種し、この接種から７日以内
の期間内に該生菌と病ＪｊＫ 性シュドモナス・ソラナ
シアラムとの両者を溶菌するバクテリオファージの増殖
液を該根部の土壌に散布する。
ところで、植物の病原性細菌を溶菌するバクテリオファ
ージ（以下、単にファージという）を利用して、同病原
性細菌の寄生による植物病害の防除をおこなおうとする
試みは古くからなされている。しかしながら、これらの
試みは実用の域に達していないのが現状である。その理
由は次のように考えられている。
ージ（以下、単にファージという）を利用して、同病原
性細菌の寄生による植物病害の防除をおこなおうとする
試みは古くからなされている。しかしながら、これらの
試みは実用の域に達していないのが現状である。その理
由は次のように考えられている。
すなわち、植物体内で増殖した病原性細菌は集塊をなし
、しかも多量の糖類等粘質物によって囲まれるため、全
ての細菌細胞がファージの感染を受けることがなく、フ
ァージの分布が著しく局在化されるためである。すなわ
ち、ファージは植物の−ｆい病斑に多く分布し、健全部
位には少ないということが大きな原因であると考えられ
ている。
、しかも多量の糖類等粘質物によって囲まれるため、全
ての細菌細胞がファージの感染を受けることがなく、フ
ァージの分布が著しく局在化されるためである。すなわ
ち、ファージは植物の−ｆい病斑に多く分布し、健全部
位には少ないということが大きな原因であると考えられ
ている。
このような原因でファージによる防除効果が期待できな
いことから、この発明においては、病原性細菌が植物体
内において増殖する前にファージを植物体内に導入しこ
れを増殖させている。より詳しくは、ナス科植物の土壌
病原菌であるシュドモナス拳ソラナシアラム菌株のうち
非病原性菌であるシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４
Ｓをナス科植物の根部に接種して、開閉を植物体内に侵
入させ、ファージを散布することによって、病原性細菌
シュドモナス・ソラナシアラムが植物体内に侵入するま
でにファージを植物体内で増殖させ、もって土壌病害防
除効果を高めている。
いことから、この発明においては、病原性細菌が植物体
内において増殖する前にファージを植物体内に導入しこ
れを増殖させている。より詳しくは、ナス科植物の土壌
病原菌であるシュドモナス拳ソラナシアラム菌株のうち
非病原性菌であるシュドモナス・ソラナシアラム・Ｍ４
Ｓをナス科植物の根部に接種して、開閉を植物体内に侵
入させ、ファージを散布することによって、病原性細菌
シュドモナス・ソラナシアラムが植物体内に侵入するま
でにファージを植物体内で増殖させ、もって土壌病害防
除効果を高めている。
この発明の方法に使用されるシュドモナス−ソラナシア
ラム・Ｍ４ＳｃＭ株Ｃ以下、単にＭ４Ｓ菌という）は、
上にも述べた通り、微工研において寄託されており（寄
託番号：微工研条寄第７００号）、その取得方法、培養
方法および菌学的性質等は、上記国際公開ＷＯ３５１０
３５１９公報に詳しく記載されている通りである。
ラム・Ｍ４ＳｃＭ株Ｃ以下、単にＭ４Ｓ菌という）は、
上にも述べた通り、微工研において寄託されており（寄
託番号：微工研条寄第７００号）、その取得方法、培養
方法および菌学的性質等は、上記国際公開ＷＯ３５１０
３５１９公報に詳しく記載されている通りである。
この発明に用いるファージの分離は、微生物学実験法（
微生物研究法懇談会編、昭和５０年１２月講談社サイエ
ンティフィックＦｌ ＞に記載されている方法を応用し
ておこなうことができる。
微生物研究法懇談会編、昭和５０年１２月講談社サイエ
ンティフィックＦｌ ＞に記載されている方法を応用し
ておこなうことができる。
すなわち１日本たばこ産業（株）宇都宮試験場で栽培し
、りへコ立枯病に感染したタバコの茎を１辺が１ｃｍ以
下の細片に切断し、そのｌＯｇを１００ｍ１の殺菌水に
懸濁し、１時間振盪した。
、りへコ立枯病に感染したタバコの茎を１辺が１ｃｍ以
下の細片に切断し、そのｌＯｇを１００ｍ１の殺菌水に
懸濁し、１時間振盪した。
上澄を１１００００ｒｐで１０分間遠心し、そのヒ澄部
をミリポアフィルタ−（０，４５牌ｍ）でろ過した。ろ
液０．２ｍｌを病原性タバコ立枯病菌を含む公知のＣＰ
Ｇ培地（成分：カザミノ酸１ｇ、ブドウ糖１０ｇ、ペプ
トン１０ｇ、水１リットル）に接種し、４８時間振盪培
養した。
をミリポアフィルタ−（０，４５牌ｍ）でろ過した。ろ
液０．２ｍｌを病原性タバコ立枯病菌を含む公知のＣＰ
Ｇ培地（成分：カザミノ酸１ｇ、ブドウ糖１０ｇ、ペプ
トン１０ｇ、水１リットル）に接種し、４８時間振盪培
養した。
培養ろ液の上澄をミリポアフィルタ−でろ過後１段階稀
釈し、ろ液０．１ｍｌを病原性立枯病菌を含むＣＰＧ寒
天寒天培地３シｌ濁し、これを直径９ｃｍのシャーレに
疏し込み、３０℃で２４時間培養した。形成された溶菌
斑からファージを分離した。
釈し、ろ液０．１ｍｌを病原性立枯病菌を含むＣＰＧ寒
天寒天培地３シｌ濁し、これを直径９ｃｍのシャーレに
疏し込み、３０℃で２４時間培養した。形成された溶菌
斑からファージを分離した。
ファージの培養は、Ｍ４Ｓ閑の培養に準じる。
すなわち、ファージとＭ４Ｓ閑とを同時に植菌した液体
培地で、２８〜３０℃で３６〜７２蒔間好ましくは４８
時間培養する。培養液を高速（例えば、ｔｏｏｏｏ回転
／分）で遠心し、その上澄をファージ増殖液として用い
る。実際に土壌に散布するに際しては、１ｍｌ当りのフ
ァージ数を１０個以上好ましくは１０個以上にＪＡ９し
て用いる。
培地で、２８〜３０℃で３６〜７２蒔間好ましくは４８
時間培養する。培養液を高速（例えば、ｔｏｏｏｏ回転
／分）で遠心し、その上澄をファージ増殖液として用い
る。実際に土壌に散布するに際しては、１ｍｌ当りのフ
ァージ数を１０個以上好ましくは１０個以上にＪＡ９し
て用いる。
さて、この発明に従って、ナス科植物の土壌病害を防除
するには、まず、Ｍ４Ｓ菌の生菌を、好ましくは滅菌水
に懸濁した状態（菌濃度：１０６〜ｌＯ個／ ｍ ｌ、
好ましくはｌＯ〜１０ 個／ ｍ ｌ ）で、前記国際
公開公報に記載されているように、木畑移植当日を含め
、移植の３週間前に当該植物の根部に接種する。この接
種の時期は、移植前１〜４日間であることが好ましい。
するには、まず、Ｍ４Ｓ菌の生菌を、好ましくは滅菌水
に懸濁した状態（菌濃度：１０６〜ｌＯ個／ ｍ ｌ、
好ましくはｌＯ〜１０ 個／ ｍ ｌ ）で、前記国際
公開公報に記載されているように、木畑移植当日を含め
、移植の３週間前に当該植物の根部に接種する。この接
種の時期は、移植前１〜４日間であることが好ましい。
なお。
根部とは、土壌を用いて栽培した際に土壌中に存在して
水分は栄養分の吸収をおこなう部分のことであり、ジャ
ガイモの塊茎などをも包含する。根部への接種は、Ｍ４
Ｓ菌の懸濁液中に根部を浸漬することによって容易にお
こなうことができる。
水分は栄養分の吸収をおこなう部分のことであり、ジャ
ガイモの塊茎などをも包含する。根部への接種は、Ｍ４
Ｓ菌の懸濁液中に根部を浸漬することによって容易にお
こなうことができる。
浸漬時間は、通常、３０分ないし３時間、好ましくは１
時間前後である。
時間前後である。
Ｍ４Ｓ菌を接種してから１時間後ないし７日後に、ファ
ージ個数を調整した上記ファージ増殖液を接種処理した
苗の根部土壌に１個体につき１００ ｍ １以上散布す
る。苗を本畑へ移植（定植）する場合には、ファージ増
殖液を散布して１１１１ｆ間から７日後、好ましくは１
〜４日後におこなうことが好ましい。
ージ個数を調整した上記ファージ増殖液を接種処理した
苗の根部土壌に１個体につき１００ ｍ １以上散布す
る。苗を本畑へ移植（定植）する場合には、ファージ増
殖液を散布して１１１１ｆ間から７日後、好ましくは１
〜４日後におこなうことが好ましい。
［発明の作用・効果］
この発明の方法によって、ナス科植物の土壌病害すなわ
ちタバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植物の青枯病
が防除される機構は次のように考えられる。
ちタバコ立枯病およびタバコ以外のナス科植物の青枯病
が防除される機構は次のように考えられる。
すなわち、まず、ナス科植物体に予め接種したＭ４Ｓ菌
が植物体内に侵入する。後に添加されたファージはこの
Ｍ４Ｓ菌を溶菌しながら植物体内に移行する（ファージ
が植物体内に移行することは実験的に確認されている）
。このファージが。
が植物体内に侵入する。後に添加されたファージはこの
Ｍ４Ｓ菌を溶菌しながら植物体内に移行する（ファージ
が植物体内に移行することは実験的に確認されている）
。このファージが。
後から侵入した病原性シュドモナス・ソラナシアラムの
増殖を阻害し１発病を抑制する。加えて、Ｍ４Ｓ菌の作
用により植物自身が持つ防除反応が誘起される。
増殖を阻害し１発病を抑制する。加えて、Ｍ４Ｓ菌の作
用により植物自身が持つ防除反応が誘起される。
こうして、この発明によれば、ナス科植物の土壌病害が
効果的に防除される。
効果的に防除される。
［実施例］
実施例 １
１辺が２８．５ｃｍの塩化ビニル樹脂製ポット（２５本
植）で栽培し、木畑に移植する太きさまで生育した木ｔ
Ｊ９枚のタバコ〔ａ（品種：白遠州１号）を供試した。
植）で栽培し、木畑に移植する太きさまで生育した木ｔ
Ｊ９枚のタバコ〔ａ（品種：白遠州１号）を供試した。
これら苗各２０本をそれぞれ以下のように処理した。
（１）Ｍ４Ｓ菌とファージ液による処理区（本発明）：
Ｍ４Ｓ閑の生菌を濃度が１０ 個／ ｍ ｌとなるよ
うに滅菌水に懸濁した！９濁液を調製し。
Ｍ４Ｓ閑の生菌を濃度が１０ 個／ ｍ ｌとなるよ
うに滅菌水に懸濁した！９濁液を調製し。
これにタバコ醒を１時間浸漬した後直径１５ｃｍの植木
鉢に鉢植えした。４日後、ファージ液（ファージ数：ｌ
Ｏ８個／ｍｌ誠菌水）を１鉢につき１００ｍ１ずつ添加
した。
鉢に鉢植えした。４日後、ファージ液（ファージ数：ｌ
Ｏ８個／ｍｌ誠菌水）を１鉢につき１００ｍ１ずつ添加
した。
（２）Ｍ４ＳＶｉ処理区：ファージの添加をおこなわな
かった以外は処理区（１）と同じにおこなった。
かった以外は処理区（１）と同じにおこなった。
（３）ファージ液処理区：Ｍ４Ｓ菌による処理をおこな
わなかった以外は処理区（１）と同様におこなった。
わなかった以外は処理区（１）と同様におこなった。
（４）対照区：タバコ苗を蒸留水のみに浸漬した後同様
の植木鉢に鉢植えした。
の植木鉢に鉢植えした。
各処理をおこなってから４日後に、病原性シュドモナス
・ソラナシアラムが濃度１０ 個／ ｍ ｌで含まれる
水懸濁液を調製し、上記合計８０本の菌の根にナイフを
さし込んで傷をつけた直後に。
・ソラナシアラムが濃度１０ 個／ ｍ ｌで含まれる
水懸濁液を調製し、上記合計８０本の菌の根にナイフを
さし込んで傷をつけた直後に。
この病原性細菌の懸濁液を１０ｍ１ずつ潅注した。１０
日後に発病状態を観察した０発病程度は以下の表１に示
すようにＯから５までの６段階とし、以下の式により平
均罹病指数を求め防除率を計算した。結果を表２に示す
。
日後に発病状態を観察した０発病程度は以下の表１に示
すようにＯから５までの６段階とし、以下の式により平
均罹病指数を求め防除率を計算した。結果を表２に示す
。
表 １
発病１−０病Ｕ
Ｏ無発病
１ 葉の一部が萎凋
２ １〜３枚の！ｔが萎凋
３ 成長点に近い２〜３枚の菓を除いて萎凋
４ 全葉萎凋
ただし、Ｎは供試個体数、ｎｏ ” ｎ５ は発病
指数０〜５に属する個体数６ 対照区の旺均罹病指数 表 ２ Ｐ −内十 ｔ”、病Ｆｔ Ｉ／ｊ＝４（１）
Ｏ＄ ０ １００％ （２） １６．７Ｘ ０．７５ ７８．３％（
３） ８３．３ ３．６７ ０４）（文！１ｒ
（区 ８８．７＄ ３．１８ −表２に
示す結果から明らかなように、Ｍ４Ｓ菌とファージの処
理区（１）では発病が全く認められす、発病の抑制効果
が最も高く、Ｍ４Ｓ菌処理１ズ（２）よりも発病の抑制
効果が高い、また、ファージ処理区（３）では、対照区
よりも発病率が高く、発病の抑制効果は認められなかっ
た。
指数０〜５に属する個体数６ 対照区の旺均罹病指数 表 ２ Ｐ −内十 ｔ”、病Ｆｔ Ｉ／ｊ＝４（１）
Ｏ＄ ０ １００％ （２） １６．７Ｘ ０．７５ ７８．３％（
３） ８３．３ ３．６７ ０４）（文！１ｒ
（区 ８８．７＄ ３．１８ −表２に
示す結果から明らかなように、Ｍ４Ｓ菌とファージの処
理区（１）では発病が全く認められす、発病の抑制効果
が最も高く、Ｍ４Ｓ菌処理１ズ（２）よりも発病の抑制
効果が高い、また、ファージ処理区（３）では、対照区
よりも発病率が高く、発病の抑制効果は認められなかっ
た。
実施例 ２
実施例１と同様に調製したＭ４Ｓ菌懸濁液（ｅ１龜１０
８ 個／ ｍ ｌ ）に、実施例１と同様にｆｒ成した
タバコＷを浸漬し、鉢植えし、各区１２本ずつ処理した
。すなわち、鉢植え３０分後（処理区５）、１［１後（
処理区６）、４Ｂ後（処理区７）および７目後（処理区
８）に７７−ジ液（濃度［Ｏ個／ ｍ ｌ ）を１鉢に
ｌｏＯ＋ｎｌずつ添加した。鉢植え１０日後に病原性シ
ュドモナス・ソラナシアラム閑を接種し、その１４日後
に発病状態を観察した。なお、Ｍ４Ｓ閑のみによる処理
（処理区９）についても同様に観察した。対照区は実施
例１と同様滅菌蒸留水を用いたものであった。
８ 個／ ｍ ｌ ）に、実施例１と同様にｆｒ成した
タバコＷを浸漬し、鉢植えし、各区１２本ずつ処理した
。すなわち、鉢植え３０分後（処理区５）、１［１後（
処理区６）、４Ｂ後（処理区７）および７目後（処理区
８）に７７−ジ液（濃度［Ｏ個／ ｍ ｌ ）を１鉢に
ｌｏＯ＋ｎｌずつ添加した。鉢植え１０日後に病原性シ
ュドモナス・ソラナシアラム閑を接種し、その１４日後
に発病状態を観察した。なお、Ｍ４Ｓ閑のみによる処理
（処理区９）についても同様に観察した。対照区は実施
例１と同様滅菌蒸留水を用いたものであった。
結果を表３に示す。
表 ３
（５） ２５．０ ０．７５ ７８．６（６） ８
．３ ０．３３ ９０．５（７） ８．３ ０．０８
９７．７（８） ２５．０ ０．５８ ８３．４（
９） ５０．０ １．７５ ５０．０文、開−８３，
３３，５０− 表３に示す結果かられかるように、Ｍ４Ｓ菌処卵処理後
以内であればいずれの時期にファージ液で処理しても発
病の抑制効果が認められた。特に、Ｍ４５ＩＪ処理１日
後と４日後にファージ培で処理した区で発病の抑制効果
が高い。
．３ ０．３３ ９０．５（７） ８．３ ０．０８
９７．７（８） ２５．０ ０．５８ ８３．４（
９） ５０．０ １．７５ ５０．０文、開−８３，
３３，５０− 表３に示す結果かられかるように、Ｍ４Ｓ菌処卵処理後
以内であればいずれの時期にファージ液で処理しても発
病の抑制効果が認められた。特に、Ｍ４５ＩＪ処理１日
後と４日後にファージ培で処理した区で発病の抑制効果
が高い。
実施例 ３
実施例１と同様に育成したタバコ苗（品種コブライトエ
ロー４号）を、実施例１と同様にＭ４Ｓ菌懸濁液に浸漬
し、鉢植えし、その３０分後にファージ液を添加した（
処理区１０）。なお、Ｍ４Ｓ菌だけを添加した区（処理
区１１）およびファージだけを接種した区（処理区１２
）も準備した。対照区は減菌水で処理したものである。
ロー４号）を、実施例１と同様にＭ４Ｓ菌懸濁液に浸漬
し、鉢植えし、その３０分後にファージ液を添加した（
処理区１０）。なお、Ｍ４Ｓ菌だけを添加した区（処理
区１１）およびファージだけを接種した区（処理区１２
）も準備した。対照区は減菌水で処理したものである。
７］］後に、病原性のｕ−１０１Ａ（ファージによって
溶菌される）および０Ｋ２９ （ファージによって溶菌
されない）をそれぞれ接種し、１０日後に発病状態を観
察した。結果を表４に示す。
溶菌される）および０Ｋ２９ （ファージによって溶菌
されない）をそれぞれ接種し、１０日後に発病状態を観
察した。結果を表４に示す。
表 ４
（１０） ｕ−１０２１，４０，４３９１，４（ｌ ｌ
） ｕ−１０６４，３１，９３８１，４（１２） ｕ
−１０９２，０３，５０３０，０対照区 ｕ−１０１
００，０５，０−（１０） ０Ｋ２９ ５７．０ １．
７１ ０（１１） ０Ｋ２９ ５０．０ ０．９３ ３
１．８（１２） ０Ｋ２９ ５０．０ ＋、９３ ０
文ｒ 「ｑ−ＯＫ２９ ５０．０ １．３Ｂ −表４
かられかるように、ファージに感受性のあるｕ−１０菌
を接種した場合、上記実施例における各結果と同様に、
Ｍ４Ｓ菌とファージで処理した区（処理区１０）が発病
抑制効果が鰻も高く。
） ｕ−１０６４，３１，９３８１，４（１２） ｕ
−１０９２，０３，５０３０，０対照区 ｕ−１０１
００，０５，０−（１０） ０Ｋ２９ ５７．０ １．
７１ ０（１１） ０Ｋ２９ ５０．０ ０．９３ ３
１．８（１２） ０Ｋ２９ ５０．０ ＋、９３ ０
文ｒ 「ｑ−ＯＫ２９ ５０．０ １．３Ｂ −表４
かられかるように、ファージに感受性のあるｕ−１０菌
を接種した場合、上記実施例における各結果と同様に、
Ｍ４Ｓ菌とファージで処理した区（処理区１０）が発病
抑制効果が鰻も高く。
ファージのみを添加した区（処理区１２）では発病抑制
効果はほとんど認められない。
効果はほとんど認められない。
ファージに感受性を持たない０Ｋ２９菌を接種した場合
は、ファージ液添加による立枯病発病の抑制効果は認め
られない。
は、ファージ液添加による立枯病発病の抑制効果は認め
られない。
実施例 ４
播種後２回移植し、塩化ビニル樹脂製法で栽培し、播種
後４０日を経過して木畑定植苗の大きさに育ったトマト
萌（品種二豊金）を供試した。すなわち、実施例１と同
様に調製したＭ４Ｓ菌懸濁液（７５度１０” １！／
ｍ Ｉ） ニドマド［Ｗを浸漬し、鉢植えした。４日後
にファージ液（Ｃ度１０ 個／ ｍ ｌ ）をｌｏＯｍ
ｌずつ添加した。その２ｕ後に病原性シュドモナス・ソ
ラナシアラム菌を接種し、さらに７日後に発病状態を観
察した。対照区は減菌蒸留水による処理区である。結果
を表５に示す。なお、Ｍ４Ｓ閑のみで処理した場合（処
理区１４）の結果も併記する。
後４０日を経過して木畑定植苗の大きさに育ったトマト
萌（品種二豊金）を供試した。すなわち、実施例１と同
様に調製したＭ４Ｓ菌懸濁液（７５度１０” １！／
ｍ Ｉ） ニドマド［Ｗを浸漬し、鉢植えした。４日後
にファージ液（Ｃ度１０ 個／ ｍ ｌ ）をｌｏＯｍ
ｌずつ添加した。その２ｕ後に病原性シュドモナス・ソ
ラナシアラム菌を接種し、さらに７日後に発病状態を観
察した。対照区は減菌蒸留水による処理区である。結果
を表５に示す。なお、Ｍ４Ｓ閑のみで処理した場合（処
理区１４）の結果も併記する。
表 ５
、− 発 ８゛ ％ −Ｂ 病 防
二（１３） ０ ０ ｔｏ。
二（１３） ０ ０ ｔｏ。
（１４） ５０．０ １．３１ ４７．６文・ｍ×
６２．５ ２．５０ −表５かられかるよ
うに、Ｍ４Ｓ菌で処理したｍにファージ液を添加した区
では発病が全く認められず、１００％の防除効果を示し
た。
６２．５ ２．５０ −表５かられかるよ
うに、Ｍ４Ｓ菌で処理したｍにファージ液を添加した区
では発病が全く認められず、１００％の防除効果を示し
た。
実施例 ５
実施例１と同様に育成したタバコ苗（白遠州１号）を１
区につき１６０本ずつ供試した。実施例１と同様にＭ４
ＳＶｉの生菌懸濁液（濃度ｌＯ個／ ｍ １ ）にタバ
コ苗の根を１時間浸漬した。３日後ニ、ｙ ｙ −シ懸
’ａ液（ｊ５度２ 、５ ｘ １０９（１４／ｍｌ）を
醒１本につき１００ｍ１ずつ土壌に添加した。さらに２
日後の４月２４日に立枯病汚染畑（ケ枯病菌数５．８ｘ
ｌＯ個／ｇ乾士）に移植し１発病状態を観察した。なお
、対照区には何の処理もおこなわず、同じ日に移植した
。７月１６日と８月５０に発病状態を調査した結果を表
６に示す。
区につき１６０本ずつ供試した。実施例１と同様にＭ４
ＳＶｉの生菌懸濁液（濃度ｌＯ個／ ｍ １ ）にタバ
コ苗の根を１時間浸漬した。３日後ニ、ｙ ｙ −シ懸
’ａ液（ｊ５度２ 、５ ｘ １０９（１４／ｍｌ）を
醒１本につき１００ｍ１ずつ土壌に添加した。さらに２
日後の４月２４日に立枯病汚染畑（ケ枯病菌数５．８ｘ
ｌＯ個／ｇ乾士）に移植し１発病状態を観察した。なお
、対照区には何の処理もおこなわず、同じ日に移植した
。７月１６日と８月５０に発病状態を調査した結果を表
６に示す。
表 ６
処理区 ７月１６日 １４．５ ０．７３ ３７．
２対照区 ／ｌ １８．４ １．１８
−処理区 ８月５日 ３２．２ ２．２９ ３
４．４文明区 ／ｌ ５０．３ ３．５０
−表６かられかるように、いずれの調査月日にお
いても処理区の方が発病率が低く、平均罹病率も低かっ
た。また防除率も３０％以上であった。
２対照区 ／ｌ １８．４ １．１８
−処理区 ８月５日 ３２．２ ２．２９ ３
４．４文明区 ／ｌ ５０．３ ３．５０
−表６かられかるように、いずれの調査月日にお
いても処理区の方が発病率が低く、平均罹病率も低かっ
た。また防除率も３０％以上であった。
Claims (1)
- シュドモナス・ソラナシアラムＭ４Ｓの生菌をナス科植
物の根部に接種し、この接種から７日以内の期間内に該
生菌と病原性シュドモナス・ソラナシアラムとの両者を
溶菌するバクテリオファージの増殖液を該根部の土壌に
散布することを特徴とするナス科植物土壌病害防除方法
。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60261354A JPS62123104A (ja) | 1985-11-22 | 1985-11-22 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60261354A JPS62123104A (ja) | 1985-11-22 | 1985-11-22 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62123104A true JPS62123104A (ja) | 1987-06-04 |
| JPH0448762B2 JPH0448762B2 (ja) | 1992-08-07 |
Family
ID=17360679
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60261354A Granted JPS62123104A (ja) | 1985-11-22 | 1985-11-22 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62123104A (ja) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1990014766A1 (en) * | 1989-05-30 | 1990-12-13 | The University Of Western Australia | Sterile red fungus as biological control agent |
| EP0414304A2 (en) * | 1989-08-21 | 1991-02-27 | Unilever N.V. | Aqueous antibacterial compositions comprising surfactant and bacteriophage |
| JPH06197754A (ja) * | 1992-04-15 | 1994-07-19 | Japan Tobacco Inc | シュードモナス属新菌株 |
| WO2001050866A2 (en) * | 2000-01-11 | 2001-07-19 | Intralytix, Inc. | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| CN103704075A (zh) * | 2014-01-03 | 2014-04-09 | 安徽奥林园艺有限责任公司 | 一种断根吸液治疗重症病虫害果树方法 |
| CN105104027A (zh) * | 2015-07-28 | 2015-12-02 | 贵州大学 | 一种防治番茄青枯病的方法 |
| US10111458B1 (en) | 2014-05-16 | 2018-10-30 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Process for inhibiting formation of nitrosamines |
| CN109136194A (zh) * | 2017-06-28 | 2019-01-04 | 菲吉乐科(南京)生物科技有限公司 | 新型茄科雷尔氏菌噬菌体及其组合物和应用 |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4532959B2 (ja) * | 2004-03-30 | 2010-08-25 | 山陰建設工業株式会社 | 青枯病菌に対して溶菌性を示すバクテリオファージ |
-
1985
- 1985-11-22 JP JP60261354A patent/JPS62123104A/ja active Granted
Cited By (18)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1990014766A1 (en) * | 1989-05-30 | 1990-12-13 | The University Of Western Australia | Sterile red fungus as biological control agent |
| EP0414304A2 (en) * | 1989-08-21 | 1991-02-27 | Unilever N.V. | Aqueous antibacterial compositions comprising surfactant and bacteriophage |
| JPH03118306A (ja) * | 1989-08-21 | 1991-05-20 | Unilever Nv | 望ましくない微生物に対するウイルスの使用 |
| JPH06197754A (ja) * | 1992-04-15 | 1994-07-19 | Japan Tobacco Inc | シュードモナス属新菌株 |
| US6699701B1 (en) | 2000-01-11 | 2004-03-02 | Intralytix, Inc. | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| US7459272B2 (en) | 2000-01-11 | 2008-12-02 | Intralytix, Inc. | Reduction in bacterial colonization by administering bacteriophage compositions |
| WO2001050872A3 (en) * | 2000-01-11 | 2001-12-20 | Intralytix Inc | Method for produce sanitation using bacteriophages |
| WO2001050866A3 (en) * | 2000-01-11 | 2002-02-07 | Intralytix Inc | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| WO2001050866A2 (en) * | 2000-01-11 | 2001-07-19 | Intralytix, Inc. | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| EP1421855A2 (en) * | 2000-01-11 | 2004-05-26 | Intralytix Inc. | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| EP1421855A3 (en) * | 2000-01-11 | 2004-07-14 | Intralytix Inc. | Method and device for sanitation using bacteriophages |
| WO2001050872A2 (en) * | 2000-01-11 | 2001-07-19 | Intralytix, Inc. | Method for produce sanitation using bacteriophages |
| US8003323B2 (en) | 2000-01-11 | 2011-08-23 | Intralytix, Inc. | Reduction in bacterial colonization by administering bacteriophage compositions |
| CN103704075A (zh) * | 2014-01-03 | 2014-04-09 | 安徽奥林园艺有限责任公司 | 一种断根吸液治疗重症病虫害果树方法 |
| US10111458B1 (en) | 2014-05-16 | 2018-10-30 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Process for inhibiting formation of nitrosamines |
| CN105104027A (zh) * | 2015-07-28 | 2015-12-02 | 贵州大学 | 一种防治番茄青枯病的方法 |
| CN109136194A (zh) * | 2017-06-28 | 2019-01-04 | 菲吉乐科(南京)生物科技有限公司 | 新型茄科雷尔氏菌噬菌体及其组合物和应用 |
| CN109136194B (zh) * | 2017-06-28 | 2021-08-24 | 菲吉乐科(南京)生物科技有限公司 | 新型茄科雷尔氏菌噬菌体及其组合物和应用 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0448762B2 (ja) | 1992-08-07 |
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