JPS6034918A - ジフテリア毒素と免疫交さ性を有するタンパク質の製法 - Google Patents

ジフテリア毒素と免疫交さ性を有するタンパク質の製法

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JPS6034918A
JPS6034918A JP59020118A JP2011884A JPS6034918A JP S6034918 A JPS6034918 A JP S6034918A JP 59020118 A JP59020118 A JP 59020118A JP 2011884 A JP2011884 A JP 2011884A JP S6034918 A JPS6034918 A JP S6034918A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、ジフテリア毒素と相互関係にあるりンパク質
をコート化しかつその染色体内にノンタンデムモードで
、組込まれたλつの変異ファージを他゛するコリイ・バ
クテリウム・ジフデリアエ(Corynebacter
ium dipbtherja、e )に属する微生物
を、秩イオン0,05ないしθ、汐t4/yrtlを含
有する液状栄養培地中で、温度30ないしllo’c、
中性培地雰囲気において、好気的条件下で培養すること
によってジフテリア毒素と相互関係にあるタンパク質を
・艮、皆する方法に係わる。
ジフテリア毒素はへ核細胞に対して著るしい肩S刈ミを
発4軍するタンパクI偕である。
このような毒素は一つのザブユニットでなる。
すなわち、1つは真核ii1 :IFtの膜上に存在す
る受容% H,(結合しうるB−フラグメントであり、
他の1つは赴件であってかつ11il胞内にft人後、
タンパク合成を阻害するA−フラグメントである。
(C,Rattl、 R,Rappuolx、 E、O
,Gianoi 「ヌクレイツク・アシッド・リサーチ
(Nucleic Ac1dResearcb )j 
/ / 、乙!8:g9.A393C/9g3))、i
−にコリネバクテリウム・ジフテリアエに感染するいく
つかの相関するバクテリオファーン(β。
乙ω)のDNA に存在することが知られている( J
、J、Co5taら[ジャーナル・オブ・)くクテリオ
ロジ−(J、Bacteri、ol、)J / Q−g
 、 / 、2’l 〜/ 30(/9g/)、V、F
reeman 「ジャーナル砦オブΦノくクテリオロジ
ー」t’/、t’)3〜4gg(/qsi))。
これらファージは細菌に感〆々したのち、 ;il+1
閑を、容解させて死滅させるか、あるいは細菌の染色体
内に組込まれ、休眠状態を惟持し、 at菌が↑夏製さ
れる場合には同時に複製される。組込捷れたファージの
DNA は、染色体とともに1浪細胞に遺伝され、この
ようにして娘細胞はタンノ々りa+コート化遺伝子を含
有するようになる。
現在では、ジフテリア毒素はPW8菌株を培養すること
によって製造されており、ホルマール毒化されたのち、
抗ジフテリアワクチンの製造に使用されている。
最近, Uchida らは、ニトロノグアニジノによ
る処理によって、ファージβの変異体を得ている(「ネ
ーチャー・ニュー・バイオロジー(、NatureNe
w Biol, ) J 23旦,g−// (/9’
)3))。
コリネバクテリウム・ジフテリアエのバクテリア染色体
内に組込−まれる上記変異ファージは、ジフテリア毒素
と相互関係にあるタンパク質の合成をコード化し、毒素
の構造遺伝子に挿入された7寸たはそれ以上の変異体の
存在のだめ、構造および/捷たけ機能について界なった
ものとなる。
上記種類のタンパク質は、これらがジフテリア4素と免
疫交さ反応を生ずるため、[交さ反応物質(cRIJ 
と称される。
分離されたいくつかの変異ファージの中でも、タンパク
′−I C R M / 7乙,CHM /91,CR
M :1.2gおよI′〆CRM ll−3 をコード
化するものについて、背に検討されている( Ucli
cla ら1ジヤーナル・オブ・X・バイオロジカル・
ケミストリー(JBjol.Chemj J 、2/g
 、、3g3g−、7g49( /タフ3ン〕。
貞らに詳述づーれIば, ORMII−&は、ジフテリ
ア毒素のものの構造および・1ア“、弓部に似たフラグ
メントAと真核細胞の表面上に存在する受容器にタンノ
ヨク・−を結合させうるセグメントに欠けるフラグメン
トBとによって構成されるタンパク質でちる。
研究によれば、CRM15は、[イン・ビトロ」におい
て充分に活性なフラグメン)Aを■するものではあるが
、4I胞内に1見透しないため、[イン・ビボ」活性を
全く有していないことが判明している。逆に、フラグメ
ントBは、変化なく 、 rl+胞の円部にフラグメン
)A紮移動させるに必要な疎水性構造を有している。こ
れらの特徴、すなわちlf3件フラグメンl− Aの存
在、フラグメン)Aを細胞内gfBに移動させるために
要求される構造のフラグメン)B中における存在、およ
び糾・泡膜の受容器を、9識させる領域の不存在、7考
・痘して, 4イ8神毒素を形厄するために0 11 
M II−、tを第11用することが4・θS付された
。実際、抗体、単りローン注抗[本、ホルモン捷たは生
化学的に興味のある他の物質などD、ターゲット細胞の
如きいくつかの細胞の表面−にで特殊な分子を認熾しつ
る物質によって、欠乏づーるセグメントを置換えること
により、いくつかの;Fill胞のみを選択的に死滅さ
せうる准種毒素が得られている。このような雑種毒素は
修学分野、とりわけいくつかの腫瘍の治療に選択的に応
用される(79g3) )。
cp、M/qqkj:、ジフテリア1素と同じ分子−債
を有し、かつこの毒素のものと機能および114造につ
いて一致するフラグメントBと非計1牛であってかつア
ミノ酸7個のため元のフラグメントとはaなるフラグメ
ン)Aとでなる。無1+jでめるCRM/97はジフテ
リア毒素とは免役学問に区別され、したがって、現在ワ
クチンの製造に使用されているジフテリア毒素の代用と
なる。実際、ホルマールによるCRM/?’7の配合処
理により、Gui nea 棟の啄用のジフテリア抗体
の4114足できる保・助レベルが肖られている( M
、Porroらl J、Tnfect Dis、 J/
ll−ス、S (/ワgo) )。
しかしながら、覗、在までのところ、ジフテリア毒素と
相互関係にありかつU c b i d a jfcよ
り開示された方法によって優られる生成吻の開発につい
ては、このようなタンパク質の培養合成の収率が低いた
め、制約を受けている。
本発明の目的は、ジフテリア・け素と相互関係にあるタ
ンパク質をコード化しかつその令色体内にノンタンデム
モードで組込まれた一つの変異ファージを有するコリネ
バクテリウム・ジフテリアエ(Corynebacte
rium diphtheriae )に・・属するh
a生・I勿ヲ、鉄イオン0.0左ないしo 、 s t
t&−/meを含有する敵伏栄女培地中で、ra IF
” 30ないし1l−0°C1中注培養4囲気において
、好気的条件下で培養することによってジフテリア毒素
と・:1」q関係にあるタンパク質を製〕責する方法と
提供することにある。
さらに詳・ホすれ(ば、本発明の目的d:、染色体内に
ノンタンデムモードで組込まれたλつのβL/S変醍フ
ァ下ジをもつc、(β/Iり)1v181M4未およ0
1染色体内にノンタンデムモードで、11」込まれたλ
つのβ/97フアージをもつc、(β/97)M、菌株
を培養することにより、それぞれ、収率SOないしλ0
OLf/1/LeでCRM’l左をおよび収率30ない
しA(n−r/、、1でORM/17金製造できる方法
を提供することにある。
本発明は、本質的には、コリネバクテリウム・ジフテリ
アエC,(ATOO−乏7010)菌株が染色体内に、
ファージDNA が組込まれつる一つの付層部位(at
ts)を有しているとのかなり党くべき事実の発見に基
いている。
Campbell 氏% (Epitomes Adv
、 Genetics jが、その方法は特定部位at
tP における環状ファージDNA の開裂および、i
+IIl菌染色体の同等の% 5l部位attB C付
滑75f’s位と呼ばれる)ての一体化である。現在捷
でのところ、公知のいずれの配置においても、7つのa
ttP 部位および7つのattB部位が一致していた
これに7寸し、コリネバクテリウム・ジフテリアエC,
(ATCC,i70/θ)菌株は、その染色体内に、a
つの付層部位attB、およびattB2を有し、ここ
でファージDNA が組込まれる。TYE 培地(若ン
デム)、および一つのファージがその1つかれることが
新たに確認された((78図参照)。
本発明によれば、CY 培地」−で育種することにより
、コリネバクテリウム・ジフテリアエC(ATOo 、
2’)010)に、−ジフテリア僅素とイ目尾関係にあ
るタンパク質をコード化する変異ファージを感染させる
。温度3汐°Cで/1g時1141育伸したのち、ファ
ージの溶菌プレートが97fされ、これ体内で組込まれ
ている。ついで、菌株を無菌伏暢で取出し、CY 培地
で育種して個体コロニーを単るため[ファージ・リリー
ス・アッセイJ (Mi 1lerら[ビopギー(V
irology ) J 、!9./110−<xis
素と相互関係にあるタンノ;り質のだめのコード化:青
伝子λ個を有するため、これらはこのタンノくり質をユ
倍量舒成できるとの事実に基いて行なわれる。
それぞれジフテリア抗1j素血7’l”、”i 乙、g
または/;z u /TLl と含有するTY!!: 
培地を使用しよって生成されたタンパクーノf (、J
: l刈池中に存在する抗体から沈殿され量輪(hal
o) f:形成する。そのサイズは個体コロニーによっ
て生成されたCRM杭体9 #、 3 U /rneの
グレートでは、すべての櫨ニーが同一の骨輪を形成する
。抗体を中位の1第a図は抗体A U/ld を含有す
るTYE プレー次に、常法に従って染色体DNA の
硝−・樅により込まれた一つのファージを含(−1する
ものであることを証明する。
第1B図では、部位AおよびBにおいて制御″a酵素に
よりファージDNA を切ケすれば7個のABフラグメ
ントが得られるが、仮に同じ酵素をモノグメントAおよ
びB(これらはいずれも細菌染色については3つのフラ
グメントが得られるはずであることがわかる。事実、第
3図に示すヌロく、32PでラベルしたattP 部位
を含有するβBam IIフラグメントを指標として使
用してS o u t b e r nblo t の
方法(ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー
(J8Mol、+3:iol、) J 9 g 、 5
03−、’r/?。
</qqs))に従って行なった分析では、第18図の
分析に基いて予想したものとバンドの・奴および位置の
両方で一致した。
薗 K(D)は3つのバンドを与え、そのうちの7つはファ
ージのものとともに移動している。
もの)から個体コロニーを取出し、CY 培地上で育種
し、電輪法により/捷たけλつのファージの存在を確認
することによりチェックした。分析で本発明に従って、
c、tffg株にORM ll−3タンパク質をコード
化するβtt!i 変異ファー/あるい・け会畔ノでり
る。
このうち菌株c、(β’l 3 ) M、およびc、(
β/9))M。
は、吾託機関でちるアメリカン・タイプ・カルチャー・
コレクション・アクセツノヨンKWNしてあり、寄託番
号はそれぞれATCC−393,2Aおよ鉄イオンO,
O、!iないしo、s11’j/ml、好ましくはθ、
/μft /7rLeを含有する液吠栄必培地中で、温
度30ないしrto″C1好址しく Irl 3 Sな
いし3ブC,TIH中注において、培地中に多層のタン
パク質が生成されるに必要な時間育成することによって
行なう[、RM/I5およびCRlvl / 97の生
成について試・倹した。つづいて、タンパク4を回収し
、当分野で公知の常法によI)清書した。
上記方法で使用される培ノルについて1説明する。
1g、203〜.2Q9(/977))に若干の変りを
力[]え、以下の組成とした。
ト リ ン゛ ト − ス / θ ノ・酵母エキス 
、S−4% NaC43y・ K1−12PO43ゾ〜 水 / e p[(を9./Iに6周、祭し、高温滅菌する前にCa
C/。
(SO%)λtnlを添加する。沈殿物を浄I樅させた
のち、溶液II 、21lll’/ 13 *溶液m 
/ nte / gおよびnool、e agar −
agar / 211te / eを添加する。i& 
(+に、馬面液種ジフテリア血清を、期待される丹輸に
応じて弐度q、乙、gまたば/;z u /?tle!
 で添カロする。。
リグドア 775 ml、K1−12PO4!iゾ・お
よび水//ll!てなる徹(pH2,<z)を沸ノ騰さ
せ、S S時Wha tma rlフィルタ上で1w過
する。溶液■Ω17Il! 、溶液i11 / meを
添加し、ついで反応混合物をオートクレーブに導入する
。1更用前にマルトース−GiaCff12の溶液を培
地10oml当り3プの量で添加する。
溶液■ Iす、s O4” 7 H2022−5W〜、アラ=7
//3fllq、ニコチン酸//jtを用意し、ついで
これら成分を溶アククさせるため水7mlおよびrlB
4月01全01し、その後、ピメリンfli 7.3 
ml、CuSO4伺」20 (/%)S111g、1%
Zn5O,e s O20q ml!、/ % MnC
’2・ダ1]20/、5rn13および濃HcJ! 3
 mlを加え、M rlkに水を1JOえて全゛喰/ 
00 nleとする。
溶液■ r、−ンスチン、2oy−,4HcJ1.2omeに水
を7J口、li−て全量/ 007Illiとする。
マルト−ス−cacJ2市液 マルトースso+J−1504CaC’22 ml I
 K82P04/7に水を加えて全量/ 00 weと
すル。pH全7./lK調整し、溶glf7 V+’h
a tlllan”l 01シ紙上fit3過り。
その後1.〉容液をオートクレーブに入゛比る。
次に図面について説明する。
Campbe11氏法による棲寺工程 ファージDNA を特殊な部位attP で切断し、細
菌染色体における同等の特殊部位attB で一体化さ
せる。
第lB図: ファー・ンDNA を伺N tfB fff a tも
P で切断し1,4]jを生ずる。
第2図: 抗ジフテリア血l肖A U /Iulを宵有するTY1
4; 培地でなるグレート D N A f BamH,で消化し、アガロースゲル
(/、3%)上でフラグメントを分帰し、ニトロセルロ
ースに移入させ、そのiL ”PてラベルしたattP
部位を含有するβBam ’lフラグメントと交雑させ
る。8Bam/lフラグメントは第7B図のフラグフラ
グメントが見られる。
イン←1.直株C,(β/97)M、による1易合に係
わる。なお、記号−で示す曲尿は培地の光学密度の変化
を表わす。
以下の実を准sすは本発明を説明するだめのものであっ
て、本発明を限定するものて1はない。
夷悔例/ それぞれcyt音1也/θmlを収容するフラスコ(谷
:i′t/ −23d )を用意し、720°Cて/3
−分1111すなわちc、(β/97)r、i5.cパ
β/97)M8 およびC,(β/ 97 ) M T
 を白争耳/を薗に相当する:萩で接伸した。このよう
に啜・小したフラスコを3j−’Cて/政培ρした。
各々の培地0 、 / 7を、そizそれ脱鉄化したt
2y培地/ O1lleを収容するエルレンマイヤーフ
ラスコ(各A4 / 23 H1! )に接1重し、F
eA−+ θ、 / tt9/md ?添力nし、回’
ECj’¥j拌機上、−2’l Orpm、 、’! 
5 時間、温度J5’Cで培養を行なった。
、2特出]−苺にザンブル;山出し、それぞれについて
、光学密度および上厳液に放出されたC)(M/97の
含量を測定した。光学d度については、Perk+穐−
1:1mer Mod 、 3 !; 分光光g=t<
光路/ nr・) f使用し、!i90 nm で測定
を行ない、CRM/97の含量については、ロケット免
疫電気泳動法(Murfyら「ジャーナル・オブ・クリ
ニカル・ミクロバイオロジー(J、C11n、Micr
obiol、 ) J 7 、9/−91s(/9’)
g))および/4た・けフロキュレーション法(0,R
amon 「C,R,Soc、Biol、 J g 1
. 、乙乙/−乙7/(/ハ―))により測定した。な
お、フロキュレーションの単位を、0.1(amonが
1M記[c。
R,Soc、Biol−(パリ)」に報告している如く
br/1rr13で示した。舛られた結果を第9図に図
示した。このグラフから吃られるように、CFtM/9
7の生成は、培地の光学密度かズ1戚増メ直期に相当す
るグ、りないし5(0,DJに達する前には、開始され
ない。この対数期の終末期になるにつれて、ORM/9
7の生成が始まり、定當期の開始まで続き(約、20時
1f#] )、この時点で1宥大光学密度およびCRM
/97の最大量が観察される。育成2ヶ時減少は7S係
である。
実施例ス 実姉列/と同じ方法によって、C7(β/l汐) iJ
、、C7(、βii−s ) ”1+ およびc、(β
4’4−)M8を調製した。
各培地0./meを、それぞれ脱快化したCY 培地/
 Olulを収容するフラスコ(容積723m1)に接
種し、Fe″+o、/14−/ptlを添加した。谷フ
ラスコを回転撹1q’ 夜(24’ Orpm )上、
35°Cで3乙時間培凄じた。発酵開始から20時間後
および30時間後に取出したサンプルについて、光学・
d度および上心、41反中に放出されたCRMQ−3の
生成昂、を測定するために、実姉列/と同じ方法で分1
パした。
得られた結果を次表に示す。
C,(β1l−5)、 M a ll、5 9−7 /
乙 3/、sC,(βり左)Mll り、、5− 9.
ざ 」」 ゲ2e、(β/I−l−5)’%、7 10
 /7−0 70わかる。
(子にして調製し、この予培秦′吻−!711を、それ
ぞれ脱鉄化したCY 培地300 rugを収容した2
つのエルレノマイヤーフラスコ(容積−0θo 1lt
l ) K 移植し、Fe++0./μW□/i/!f
添加し、攪拌(コク。rpHlJト形ファーメソファ−
メンタたFe″−イオン::贋+y0、/μP/rul
のCY 培地りθ存に接種し、4度37°Cにおいて、
底部から頂部に向って7567分で通気し、乙00rp
mでtX、!l拌しかつ培地の1)14 を逮θ多グル
コース@glまたはり規定N a OHで乙、汐/よい
し7.!iに維持しながらito時間培讐を行なった。
発酵30時間後のCRM445の−qrtd2oO’、
f/yriliであった。川られたブロス培地をj東悦
流動・屯心汁離イ幾で遠心分離し、上澄液に硫1波アン
モニウムを飽和Jff73φて添加することによりタン
パク質を沈殿させ、回収した。碍られたスラリを遠心分
211t l、、沈殻物命p[(7,、’ffのりン設
塩緩伸工液で洗浄後、イオン交1灸樹脂(ジメチルアン
モニウムメチルセルロース)を光」Aしだカラムを介し
て[6裂した。塩化ナトリウム溶可(剤で縮量すること
により、jメギg。
係でタンパク質が得られた。
【図面の簡単な説明】
力投化 第1八図はOampbell 代演による≠→工程を、
悦第λ図は抗ジフテリア血清を含■するTYE 培地を
示すグラフである。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 / ジフテリア毒素と相互関係にあるタンパク質の製法
    において、ジフテリア毒素と相互関係にあるタンパク質
    をコード化しかつ物色体の一つの伺層部位においてノン
    タンデムモードで組込まれたλつの変異ファージを有す
    るコリネバクテリウム・ジフテリアエ( Corynebacteriui diphthert
    ae)に属する微勺三ζ勿を、鉄イオンo、osないし
    o 、s tt’i/nteを含有する液仄栄、臂培池
    中で、温度3oないしり0°C,pH中性において、好
    気的条件下で培養することを特徴とする、ジフテリア毒
    素と相互関係にあるタンパク′?!fの・製法。 ユ ジフテリア毒素と相互関係にあるタンパク質が08
    M4’、!i タンパク環である特許請求の範囲l耶/
    項記載の書法。 3 前記微生物が、染色体ビ]にノンタンデムモードで
    組込寸れたユつのβヶ5 変異ファージる特許請求の範
    囲第a項記載の製法。 taジフテリア毒素と相互1瑚係にあるタンパク′偕が
    CRM’/ワフ タンパク1色である特、午を青水の笥
    囲第1項記載の・製法。 5 @jl 6己イ:′!i生I吻が、染色1本内にノ
    ンタンデムモードで姐込才れた2つのβ/q7 変異フ
    ァージを有するC7(β/ q7) M + A TC
    CJ 9−2 J 5である特許請求の範囲第q頃記或
    の製法。 乙 前記微生物の分離を、抗ジフテリア面清ダないし7
    2 U/ralを含有する固仄栄養培地を使用して行な
    うtPf許諸求の・rijχ四第1項第1項記載。 7 前記液犬栄女培池中の汐くイオンのil典ルーが0
    、/μ於/271eである特許請求の範囲;ニジ/項記
    載の製法。
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