JPS60136517A - 食物摂取の選択的阻害物質の製造方法 - Google Patents
食物摂取の選択的阻害物質の製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
ハンガリー特許第178,703号には、選択的な食欲
減退物質、すなわち食物摂取を選択的に抑制する物質の
製造法が記載されている。この物質はそれまで全く知ら
れていなかった物質で、新しい作用機構で働き、ヒトの
血漿から製造され、ザチェチンと命名された。この物質
は部分的にfk’JJされているにすぎなかったが、そ
れまで知られていた類似作用をもつ物質よりはるかに強
い作用を示した。
減退物質、すなわち食物摂取を選択的に抑制する物質の
製造法が記載されている。この物質はそれまで全く知ら
れていなかった物質で、新しい作用機構で働き、ヒトの
血漿から製造され、ザチェチンと命名された。この物質
は部分的にfk’JJされているにすぎなかったが、そ
れまで知られていた類似作用をもつ物質よりはるかに強
い作用を示した。
この物質は血漿の限外ろ過と、セファデックスG−15
およびEio−Gel F −2q″″″ル上2工程ク
ロマトグラフイーを用いて精製された。
およびEio−Gel F −2q″″″ル上2工程ク
ロマトグラフイーを用いて精製された。
この物質がペプチドとしての性質をもっこと、またアミ
ノ酸の定量的な関係も確認された。アミノ酸のほか、加
水分触後に糖成分も誌められ、したがって、この満腹中
枢に特異的に作用する物質は糖蛋白であると考えられた
。
ノ酸の定量的な関係も確認された。アミノ酸のほか、加
水分触後に糖成分も誌められ、したがって、この満腹中
枢に特異的に作用する物質は糖蛋白であると考えられた
。
この発明はさらに改良され、活性分画はさらに分割でき
ること、すなわち付加的工程を加えることで精製できる
ことが明らかにされた。1982年6月6日付で抽圧さ
れたハンガリー特許出願第2783/81号によれば、
前述の特許の方法で得られた活性物惜に比べて、3〜4
倍有効で、化学的組成もかなり異なる物質が得られてい
る。
ること、すなわち付加的工程を加えることで精製できる
ことが明らかにされた。1982年6月6日付で抽圧さ
れたハンガリー特許出願第2783/81号によれば、
前述の特許の方法で得られた活性物惜に比べて、3〜4
倍有効で、化学的組成もかなり異なる物質が得られてい
る。
この物質は、化学的に純粋かつ均一な活性物質と思われ
る。その物理的特性および最終的組成も明らかにされて
いる。
る。その物理的特性および最終的組成も明らかにされて
いる。
上述の方法によれば、血漿は限外ろ過後に重要な操作に
付された。すなわち、血漿ろ液はトリクロロ酢酸で処理
され、存在する血清蛋白(アルブミン等)が除去でれた
。その−足部分はアミコン(Am1con )膜を通過
できた。トリクロロ酢酸処理後、沈殿した血清蛋白を遠
心分離によって沈降させ、生物学的に有効なサチェチン
分画を含有する純粋な上清をデルカラム上でさらに精製
した。
付された。すなわち、血漿ろ液はトリクロロ酢酸で処理
され、存在する血清蛋白(アルブミン等)が除去でれた
。その−足部分はアミコン(Am1con )膜を通過
できた。トリクロロ酢酸処理後、沈殿した血清蛋白を遠
心分離によって沈降させ、生物学的に有効なサチェチン
分画を含有する純粋な上清をデルカラム上でさらに精製
した。
最初の工程では、セ、ファデックスG−15カラムから
の溶出に酢酸アンモニウム緩衝液を用いた。
の溶出に酢酸アンモニウム緩衝液を用いた。
活性を含む分画は空隙容量に、捕集され、適当に碗動し
たのちBlo−Ge1 F −2カラム上で脱塩された
。
たのちBlo−Ge1 F −2カラム上で脱塩された
。
この塩を含まない分画は純度の尚い物質と考えることが
できた。この生成物は食物摂取に開平るすべての実験を
含めた生物学的研究にきわめて有用であった。
できた。この生成物は食物摂取に開平るすべての実験を
含めた生物学的研究にきわめて有用であった。
この工程では、サチェテンの活性に影響しない低分子量
のペプチドおよびグリコペプチドが残ったのみで、これ
は次に電気泳動および胸、和性クロマトグラフィーによ
って除去された。純粋な活性物質は% Con −Aセ
ファロ−ヌカラム上での親和性クロマトグラフィーによ
る分画とBlo−Ge1 P、−2カラム上での反後脱
塩後に凍結乾燥して得られた。
のペプチドおよびグリコペプチドが残ったのみで、これ
は次に電気泳動および胸、和性クロマトグラフィーによ
って除去された。純粋な活性物質は% Con −Aセ
ファロ−ヌカラム上での親和性クロマトグラフィーによ
る分画とBlo−Ge1 P、−2カラム上での反後脱
塩後に凍結乾燥して得られた。
この方法で得られた物質は、ペプチド含蓄が低く(5〜
25チ)、炭水化物含量が高い(60〜90%)糖蛋白
であることが明らかにされた。活性物質の分子量は50
.000〜70.C100ダルトンの範囲で、等電点は
中性、すなわちpl 7.0〜7.1でめった。
25チ)、炭水化物含量が高い(60〜90%)糖蛋白
であることが明らかにされた。活性物質の分子量は50
.000〜70.C100ダルトンの範囲で、等電点は
中性、すなわちpl 7.0〜7.1でめった。
本発明は最近の研究中に、上述の公知方法が者しく単純
化できることを発見し、完成されたものである。ある特
定の工程を挿入することにょシ、物理的性状の異なる、
選択的食欲摂取阻害物置を得ることができた。この物質
は化学的に均一で、したがって全く新規な生成物と考え
ることができた。この物質は、サチェチンーDと命名さ
れた。
化できることを発見し、完成されたものである。ある特
定の工程を挿入することにょシ、物理的性状の異なる、
選択的食欲摂取阻害物置を得ることができた。この物質
は化学的に均一で、したがって全く新規な生成物と考え
ることができた。この物質は、サチェチンーDと命名さ
れた。
その単離方法は第1図に示すとおりである。以下にその
方法について詳述するっ ヒトおよび(または)動物の血清または血漿を、分子量
50.000ダルトンまでの範囲を通過させる膜フィル
ターを通してろ過する。この膜ろ過(または限外ろ過)
は、それぞれ平坦な膜またはカラムを通すことによって
実施できる(いわゆる中空繊維法−hollovr f
ibre technics−による)。
方法について詳述するっ ヒトおよび(または)動物の血清または血漿を、分子量
50.000ダルトンまでの範囲を通過させる膜フィル
ターを通してろ過する。この膜ろ過(または限外ろ過)
は、それぞれ平坦な膜またはカラムを通すことによって
実施できる(いわゆる中空繊維法−hollovr f
ibre technics−による)。
ついでろ液を蒸発させ、濃縮物から遠心分離またはろ過
により不溶部分を適当に除去し、この液体に、温度0℃
〜10°Cで、濃度がb〜25W/v(l量/容量)係
、好ましくは9〜11W/v%になるようにトリクロロ
酢酸を加える。沈殿した蛋白を、遠心分離またはろ過に
よって適当に除去し、得られた純粋な溶液を、分子量4
,000ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマトグラ
フィーに付し、p)16.0〜7.0の緩衝液で溶出し
、生物学的活濃縮し、再び分子量3.000〜4,00
0ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマトグラフィー
に付し、蒸留水(脱塩)で溶出し、得られた粗生成物は
凍結乾燥物とし、さらに精製または処理する。
により不溶部分を適当に除去し、この液体に、温度0℃
〜10°Cで、濃度がb〜25W/v(l量/容量)係
、好ましくは9〜11W/v%になるようにトリクロロ
酢酸を加える。沈殿した蛋白を、遠心分離またはろ過に
よって適当に除去し、得られた純粋な溶液を、分子量4
,000ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマトグラ
フィーに付し、p)16.0〜7.0の緩衝液で溶出し
、生物学的活濃縮し、再び分子量3.000〜4,00
0ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマトグラフィー
に付し、蒸留水(脱塩)で溶出し、得られた粗生成物は
凍結乾燥物とし、さらに精製または処理する。
本発明の方法によれば、この凍結乾燥粗生成物をPH8
,1〜8.2の緩衝液、適当には2−アミノ−2−ヒド
ロキシメチル−1,3−プロノ々ンソオール塩酸塩(T
rig塩酸塩)の0.1モル溶液に溶解し、総重量に対
して0.01〜0.2N重、適当に扛0.1 M置部の
トリプシン、ならびに同量のキモトリプシンを加える。
,1〜8.2の緩衝液、適当には2−アミノ−2−ヒド
ロキシメチル−1,3−プロノ々ンソオール塩酸塩(T
rig塩酸塩)の0.1モル溶液に溶解し、総重量に対
して0.01〜0.2N重、適当に扛0.1 M置部の
トリプシン、ならびに同量のキモトリプシンを加える。
ついで、反応混合物を67〜68℃で、20〜60時間
、適当には24時間、好ましくは間欠的攪拌もしくは連
続的振盪下に、消化に付す。反応開始5時間後に、半蓋
″(前述の量に対して)のトリプシンおよびキモトリプ
シンを混合物に追加し、消化を続ける。この混合物から
、トリクロロ酢酸での冷時処理、ついで分子量3.00
0〜4.000ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマ
トグラフィーによシ、純粋な活性物刈を9jR’e含ま
ない形で分離する。
、適当には24時間、好ましくは間欠的攪拌もしくは連
続的振盪下に、消化に付す。反応開始5時間後に、半蓋
″(前述の量に対して)のトリプシンおよびキモトリプ
シンを混合物に追加し、消化を続ける。この混合物から
、トリクロロ酢酸での冷時処理、ついで分子量3.00
0〜4.000ダルトン以下の空隙容量のゲル上クロマ
トグラフィーによシ、純粋な活性物刈を9jR’e含ま
ない形で分離する。
本発明の方法の一実施態様によれば、精製操作は、Am
1con YM −,10平坦膜上、あるいは50,0
00ダルトンで分離するカラム上Am1con中空繊維
デバイス中、適当には圧力もしくは適当なボンデを用い
る限外ろ過によって始める。得られた限外ろ過液を減圧
下に蒸発させて濃縮し、不溶部分は製造遠心分離によっ
て分離するか、減圧下にzeissろ板でろ去する。か
くして得られた、沈殿を含まない混合物を温度0〜10
℃に冷却し、55チドリクロロ酢酸を、濃度が5〜25
′I/′vチ、好ましくは9〜11 ”/、 *になる
ように加える。このように処理した溶液を温度θ〜5℃
に好ましくは1時間保持し、沈殿または白濁を同温度で
超遠心分離するかまたは減圧下にZ6isSろ板全通し
てろ過して除去すると、純粋な、鮮明な黄色の溶液が得
られる。上述の特許の記載から明らかなように、限外ろ
過後に存在する蛋白、たとえにアルブミンもトリクロロ
酢酸によって除去されるが、活性物置、すなわちサテエ
チンは溶液中に残る。
1con YM −,10平坦膜上、あるいは50,0
00ダルトンで分離するカラム上Am1con中空繊維
デバイス中、適当には圧力もしくは適当なボンデを用い
る限外ろ過によって始める。得られた限外ろ過液を減圧
下に蒸発させて濃縮し、不溶部分は製造遠心分離によっ
て分離するか、減圧下にzeissろ板でろ去する。か
くして得られた、沈殿を含まない混合物を温度0〜10
℃に冷却し、55チドリクロロ酢酸を、濃度が5〜25
′I/′vチ、好ましくは9〜11 ”/、 *になる
ように加える。このように処理した溶液を温度θ〜5℃
に好ましくは1時間保持し、沈殿または白濁を同温度で
超遠心分離するかまたは減圧下にZ6isSろ板全通し
てろ過して除去すると、純粋な、鮮明な黄色の溶液が得
られる。上述の特許の記載から明らかなように、限外ろ
過後に存在する蛋白、たとえにアルブミンもトリクロロ
酢酸によって除去されるが、活性物置、すなわちサテエ
チンは溶液中に残る。
精製の次の工程としては、分子量4,000り゛ルトン
以下の空隙容量のrシカラム上におけるrルクロマトグ
ラフイーが採用される。この工程はセファデックスG−
15、a−1OfたはG−25ゲルを充填したカラム上
で実施できる。溶出には、揮発性で凍結乾燥により比較
的除去しやすい酢酸アンモニウムの0.1モル溶液が使
用されるうそのほか、生理食塩水(0,9%塩化ナトリ
ウム溶液)や各種のリン酸塩緩衝液も分離のために使用
できる。活性な分画はカラムの空隙容量に現われ(この
分画はカラム容量の6分の1に相当する溶出容量でrル
から排出される)、これを合して、凍結乾燥によシ濃縮
する。
以下の空隙容量のrシカラム上におけるrルクロマトグ
ラフイーが採用される。この工程はセファデックスG−
15、a−1OfたはG−25ゲルを充填したカラム上
で実施できる。溶出には、揮発性で凍結乾燥により比較
的除去しやすい酢酸アンモニウムの0.1モル溶液が使
用されるうそのほか、生理食塩水(0,9%塩化ナトリ
ウム溶液)や各種のリン酸塩緩衝液も分離のために使用
できる。活性な分画はカラムの空隙容量に現われ(この
分画はカラム容量の6分の1に相当する溶出容量でrル
から排出される)、これを合して、凍結乾燥によシ濃縮
する。
精製の次の工程も1分子23,000ダルトン以下の空
隙容量のゲル上クロマトグラフィーである。
隙容量のゲル上クロマトグラフィーである。
Blo−Ge1 P −2カラム上、メジウムとして蒸
留水を用いるのが適当でおる。この積装工程では、塩お
よび存在する可能性がある他の低分子酋夾雑物が除去さ
れる。サチェテン活性を有し、空隙W”Aに現れる分画
を合し5て凍結乾燥すると、淡黄色または白色の粉末の
形で粗生成物が得られる。等電点pIは、7.0〜7.
1である。この方法により、ヒト血清または血漿11か
ら、凍結乾燥粗生成物8〜10■が得られ、その11v
は25 SU (サチェチン単位)のサチェチン活性を
示し、食物摂取調節剤として使用できる。
留水を用いるのが適当でおる。この積装工程では、塩お
よび存在する可能性がある他の低分子酋夾雑物が除去さ
れる。サチェテン活性を有し、空隙W”Aに現れる分画
を合し5て凍結乾燥すると、淡黄色または白色の粉末の
形で粗生成物が得られる。等電点pIは、7.0〜7.
1である。この方法により、ヒト血清または血漿11か
ら、凍結乾燥粗生成物8〜10■が得られ、その11v
は25 SU (サチェチン単位)のサチェチン活性を
示し、食物摂取調節剤として使用できる。
この生成物のサテエチン活性は、生物学的活性の測定用
に本発明者らが作成した方法によって測定できる。サチ
ェテン1単位(SU )とは596時間絶食させた体重
200〜240gのOFY雌性ラットに脳室内投与した
場合、栄養開始初日における**固型飼料の消費が平均
の24.4±0.76 gから10.9に低下する童を
意味する。
に本発明者らが作成した方法によって測定できる。サチ
ェテン1単位(SU )とは596時間絶食させた体重
200〜240gのOFY雌性ラットに脳室内投与した
場合、栄養開始初日における**固型飼料の消費が平均
の24.4±0.76 gから10.9に低下する童を
意味する。
かくして得られた、サチェテン活性を有する粗生成物は
、電気泳動法たとえばドデシル硫酸ナトリウム(SDS
)の存在下におけるアクリルアミドデル′電気泳動また
は%電点電気泳動によって検討した場合、蛋白染色によ
って数個のバンドが検知はれることから、まだ均一な物
質とは考えられない、。
、電気泳動法たとえばドデシル硫酸ナトリウム(SDS
)の存在下におけるアクリルアミドデル′電気泳動また
は%電点電気泳動によって検討した場合、蛋白染色によ
って数個のバンドが検知はれることから、まだ均一な物
質とは考えられない、。
均一な活性物質の製造を目的とした努力の過程で、従来
の方法とは異なる、より効率的かつ単純な方法が案出さ
れた。本発明の方法におけるこの工程には、蛋白分解の
ための消化が採用されている。これは夾雑物として認め
られるペプチドや蛋白は消化によって分解されるが、糖
蛋白であるザチェチンは蛋白消化に対してはるかに安定
であろうとの考え方に基づくものである。すなわち、本
発明の方法の一態様によれば、上述のVJIt H方法
によって得られた高純度の生成物を、PH8,1〜8.
2の緩和なアルカリ性緩衝液、好ましくはTris地酸
塩の0.1モル溶液に溶解し、凍結乾燥生成物の総重量
に対して計算して0201〜0.2、好ましくは0.1
重量部のトリジシン、および等輩のキモトリプシンをこ
の溶液に加える。ついで、この混合物を、温度66〜6
9℃、好ましくは67〜68℃に20〜60時間好まし
くは24時間保持する。
の方法とは異なる、より効率的かつ単純な方法が案出さ
れた。本発明の方法におけるこの工程には、蛋白分解の
ための消化が採用されている。これは夾雑物として認め
られるペプチドや蛋白は消化によって分解されるが、糖
蛋白であるザチェチンは蛋白消化に対してはるかに安定
であろうとの考え方に基づくものである。すなわち、本
発明の方法の一態様によれば、上述のVJIt H方法
によって得られた高純度の生成物を、PH8,1〜8.
2の緩和なアルカリ性緩衝液、好ましくはTris地酸
塩の0.1モル溶液に溶解し、凍結乾燥生成物の総重量
に対して計算して0201〜0.2、好ましくは0.1
重量部のトリジシン、および等輩のキモトリプシンをこ
の溶液に加える。ついで、この混合物を、温度66〜6
9℃、好ましくは67〜68℃に20〜60時間好まし
くは24時間保持する。
反応混合物は振盪または攪拌するのが好ましい。
消化開始から5時間後に、最初加えた量の半量のトリジ
シンおよびキモトリプシンを混合物中に追加し、消化を
続ける。約24時間後に、混合物を温度0〜10℃まで
冷却し、トリクロロ酢酸を濃度が4〜6、好ましくは約
5w//チになるように■ 加える。ついで混合物を一15〜5℃に、少くとも1時
間、最高24時間まで保持する。沈殿した不溶部分を好
ましくは超遠心分離またはzeisaろ板全通したろ過
によシ除去する。
シンおよびキモトリプシンを混合物中に追加し、消化を
続ける。約24時間後に、混合物を温度0〜10℃まで
冷却し、トリクロロ酢酸を濃度が4〜6、好ましくは約
5w//チになるように■ 加える。ついで混合物を一15〜5℃に、少くとも1時
間、最高24時間まで保持する。沈殿した不溶部分を好
ましくは超遠心分離またはzeisaろ板全通したろ過
によシ除去する。
精製の次工程では、消化に用いた過剰の酵素をトリクロ
ロ酢酸で除去したのち、トリクロロ酢酸、塩、使用した
緩衝液および他の低分子量フラグメントを除去する。本
発明の方法によれば、この工程は、分子量3,000〜
4.000ダルトン以下の空隙容量を有するrル上、水
性メジウムで純粋な澄明反応混合物を溶出させることに
よって行うのが好ましい。純粋かつ均一なサチェチンは
ゲルから排出され、カラムの容量の6分の1に等しい各
相に出現する。脱イオン水によって得られた、活性物質
含有分II!1ltl−合し、凍結乾燥する。純白色の
、完全に純粋な、取り扱いやすい、均一な粉末が得られ
る。これ線サチェチン−Dと命名され、以前に得られた
均一のサテエテン生成物とは異なるものである。
ロ酢酸で除去したのち、トリクロロ酢酸、塩、使用した
緩衝液および他の低分子量フラグメントを除去する。本
発明の方法によれば、この工程は、分子量3,000〜
4.000ダルトン以下の空隙容量を有するrル上、水
性メジウムで純粋な澄明反応混合物を溶出させることに
よって行うのが好ましい。純粋かつ均一なサチェチンは
ゲルから排出され、カラムの容量の6分の1に等しい各
相に出現する。脱イオン水によって得られた、活性物質
含有分II!1ltl−合し、凍結乾燥する。純白色の
、完全に純粋な、取り扱いやすい、均一な粉末が得られ
る。これ線サチェチン−Dと命名され、以前に得られた
均一のサテエテン生成物とは異なるものである。
本発明の方法によって単離された、均一かつ純粋なサチ
ェチンーD活性物質の分子量ヲ、ドデシル硫酸す) I
Jウム(日DB)を用いるゲル電気泳動によって測定し
たところ、40,000から50.000ダルトンであ
った。この生成物の純度および均一性は、5Dslfル
電気泳動において蛋白、炭水化物の両染色に対し感受性
を示す単一のバンドを与えることによっても証明された
うこの事実はこの生成物が糖蛋白の性質をもつことを示
すものでもある。生成物をPH3〜10および6〜5の
両性電解質、それぞれの存在に展開した等電点電気泳動
では、等電点はpi値として約2.9〜6.1であった
。この値は前述の値と異なシ、ヒト血清中に存在する新
規物質と考えることができる。
ェチンーD活性物質の分子量ヲ、ドデシル硫酸す) I
Jウム(日DB)を用いるゲル電気泳動によって測定し
たところ、40,000から50.000ダルトンであ
った。この生成物の純度および均一性は、5Dslfル
電気泳動において蛋白、炭水化物の両染色に対し感受性
を示す単一のバンドを与えることによっても証明された
うこの事実はこの生成物が糖蛋白の性質をもつことを示
すものでもある。生成物をPH3〜10および6〜5の
両性電解質、それぞれの存在に展開した等電点電気泳動
では、等電点はpi値として約2.9〜6.1であった
。この値は前述の値と異なシ、ヒト血清中に存在する新
規物質と考えることができる。
この生成物の最終組成は次のとおりであったっ蛋白含−
720〜26俤 炭水化物含! 56〜60係 非結合水 6〜10チ 蛋白含量はマイクロビユレット法で測定し、加水分解後
にアミノ酸分析を行った。アミノ酸分析の結果は次のと
おシでめった。
720〜26俤 炭水化物含! 56〜60係 非結合水 6〜10チ 蛋白含量はマイクロビユレット法で測定し、加水分解後
にアミノ酸分析を行った。アミノ酸分析の結果は次のと
おシでめった。
Asp 2.83 %、Thr 1.(S 1 %、S
er 1.25 %、()lu 3.60 ’16、P
ro 1.36 % 、Gly o、a 7%1Ala
1.18 % 、Oys 0.16 %、Val 0
.93 %、Met [1,17%、■IQ 0.76
%、 Leu 1.25 %、Pbe 0.77%、L
ys 3.67%、 His 0.22 %、Arg
0.67チ すなわち、総アミノ酸含量は22.71 %、グルコサ
ミン含量は4.90 %であった。
er 1.25 %、()lu 3.60 ’16、P
ro 1.36 % 、Gly o、a 7%1Ala
1.18 % 、Oys 0.16 %、Val 0
.93 %、Met [1,17%、■IQ 0.76
%、 Leu 1.25 %、Pbe 0.77%、L
ys 3.67%、 His 0.22 %、Arg
0.67チ すなわち、総アミノ酸含量は22.71 %、グルコサ
ミン含量は4.90 %であった。
サンプル中の炭水化物含量の1例を示すと次のとおりで
ある。
ある。
フコース4,5係、マンノース8.05係、ガラクトー
ス60.6俤、グルコース14.4チ、合計56.5% 以上の分析結果および性状から、消化過程を経て得られ
た生成物が新規で、これまでヒト血清から分離されたこ
とのない物質であることは明白である。ヒト血清11か
ら、サテエチン活性約50〜1 [1013U /■の
純粋かつ均一な生成物約4〜6mりが得られる。
ス60.6俤、グルコース14.4チ、合計56.5% 以上の分析結果および性状から、消化過程を経て得られ
た生成物が新規で、これまでヒト血清から分離されたこ
とのない物質であることは明白である。ヒト血清11か
ら、サテエチン活性約50〜1 [1013U /■の
純粋かつ均一な生成物約4〜6mりが得られる。
次に本発明を実施例によりさらに詳細に例示するが、こ
れは本発明を限定するものではない。
れは本発明を限定するものではない。
例1
a)ヒト血清3.ODO+++/を、たえず攪拌しなか
ら6〜4気圧下に%Am1con、 UM −1[]の
膜を通してろ過する。得られた限外ろ液、約2.000
mlf:減圧下に60m1まで蒸発させる。沈殿を含
む濃縮液を9,000 #で60分間遠心分離したのち
上溝液を分離し、冷却、攪拌下に55 % ト1Jクロ
ロ酢酸12#I/を満願し、ついで混合物を温度5〜1
0℃に1時間保持する。沈殿した蛋白を除去するため、
混合物を約5℃、30.0009で、光学的に完全に澄
明な上溝液が得られるまで超遠心外l1IWに付す。こ
の成体をセファデックスG−15カラム(5,90cr
n)上クロマトグラフィーに付し、0.1モル酢酸アン
モニウム緩衝液(pH6−6)で溶出する。500〜6
00’mlの分画を合して、凍結乾燥する。凍結乾燥残
渣を10m1の#留水に溶解し−Bio−Gel P
−2)t”ルカラム(2,5X 90cIn)に導入す
る。カラムラ蒸留水で溶出し、160〜180m/の分
画を合し、凍結乾燥すると、塩を含まない粗すチェチン
25IR9が、わずかに黄色を帯びた白色粉末として得
られる。
ら6〜4気圧下に%Am1con、 UM −1[]の
膜を通してろ過する。得られた限外ろ液、約2.000
mlf:減圧下に60m1まで蒸発させる。沈殿を含
む濃縮液を9,000 #で60分間遠心分離したのち
上溝液を分離し、冷却、攪拌下に55 % ト1Jクロ
ロ酢酸12#I/を満願し、ついで混合物を温度5〜1
0℃に1時間保持する。沈殿した蛋白を除去するため、
混合物を約5℃、30.0009で、光学的に完全に澄
明な上溝液が得られるまで超遠心外l1IWに付す。こ
の成体をセファデックスG−15カラム(5,90cr
n)上クロマトグラフィーに付し、0.1モル酢酸アン
モニウム緩衝液(pH6−6)で溶出する。500〜6
00’mlの分画を合して、凍結乾燥する。凍結乾燥残
渣を10m1の#留水に溶解し−Bio−Gel P
−2)t”ルカラム(2,5X 90cIn)に導入す
る。カラムラ蒸留水で溶出し、160〜180m/の分
画を合し、凍結乾燥すると、塩を含まない粗すチェチン
25IR9が、わずかに黄色を帯びた白色粉末として得
られる。
b)粗生成物(上記aで得られた)100mgを0.1
モルTris塩酸塩緩衝液PH8,2に室温で振盪、撹
拌しながら溶解し、温度5 #11// m/の溶液を
14製する。得られたわずかに蛋白光を発する液に、ト
リノシン10mgとキモトリジシン10■を加え、つい
で混合物を十分に撹拌する。わずかに沈殿を宮む混合物
を67℃に保持した浴上に置き、ときどき振盪または攪
拌する。5時間後に、トリジシン5mgとキモトリジシ
ン5〜を混合物に加え、67℃でのインキュベーション
を19時間続ケる。
モルTris塩酸塩緩衝液PH8,2に室温で振盪、撹
拌しながら溶解し、温度5 #11// m/の溶液を
14製する。得られたわずかに蛋白光を発する液に、ト
リノシン10mgとキモトリジシン10■を加え、つい
で混合物を十分に撹拌する。わずかに沈殿を宮む混合物
を67℃に保持した浴上に置き、ときどき振盪または攪
拌する。5時間後に、トリジシン5mgとキモトリジシ
ン5〜を混合物に加え、67℃でのインキュベーション
を19時間続ケる。
すなわち、反応混合物は計24時間インキュベートする
。消化終了後、混合物を温度θ〜5℃に冷却し、0.1
W/v%、すなわち2 F/の冷(約5℃)55W/
vチドリクロロ酢酸を加え、混合物を完全に振、盪した
のち、−夜凍結するかまたは少なくとも1時間温度0〜
5℃に保持する。次に、沈殿を含むことがある、わずか
に蛋白光を帯びた混合物を、上述の温度、15,000
〜20,000 gで25分間超遠心分離を行う。澄明
な上清をBlo−Ge1F−2rルカラム(5,0X4
5cIn)に通し、カラムを蒸留水で溶出する。250
〜32Qm/の分画を合し、凍結乾燥すると、塩を含′
!)′ない純粋なサテエテンーD(生物学的活性50〜
100sty/〜)58Ingが純白色の粉末として得
られる。
。消化終了後、混合物を温度θ〜5℃に冷却し、0.1
W/v%、すなわち2 F/の冷(約5℃)55W/
vチドリクロロ酢酸を加え、混合物を完全に振、盪した
のち、−夜凍結するかまたは少なくとも1時間温度0〜
5℃に保持する。次に、沈殿を含むことがある、わずか
に蛋白光を帯びた混合物を、上述の温度、15,000
〜20,000 gで25分間超遠心分離を行う。澄明
な上清をBlo−Ge1F−2rルカラム(5,0X4
5cIn)に通し、カラムを蒸留水で溶出する。250
〜32Qm/の分画を合し、凍結乾燥すると、塩を含′
!)′ない純粋なサテエテンーD(生物学的活性50〜
100sty/〜)58Ingが純白色の粉末として得
られる。
例2
a)ヒト血清3,000m/を、たえず攪拌しながら6
〜気圧下に、Am1con中空繊維30,000カラム
を通してろ過する。得られた限外ろ液約2.000m/
を減圧下に60m1まで蒸発させる。沈殿を含む濃縮液
を’71,000 yで60分間遠心分離したのち上溝
液を分離し、冷却、攪拌下に55係トリクロロ酢t’1
1212m1を満願し、ついで混合物を温度5〜10℃
に1時間保持する。混合物を温度約5℃、30,000
.9で、光学的に完全に澄明な上清液が得られるまで超
遠心分離して沈殿した蛋白を除去し、上清をセファデッ
クスG−15カラム(5,90cm)上クロマトグラフ
ィーに付し、0.1モル酢酸アンモニウム緩衝液(p+
−16,6)で溶出する。500〜600 mlの分画
を合して、凍結乾燥する。凍結乾燥残渣を10m/の蒸
留水に溶解し、Blo−Ge1 P −2ゲルカラム(
2,5X90cIn)に導入する。カラAを蒸留水で溶
出し、130〜1BOmlの分画を合し、凍結乾燥する
と、塩を含まない粗すテエチン3Q+yがわずかに黄色
を帯びた白色粉末として得られる。
〜気圧下に、Am1con中空繊維30,000カラム
を通してろ過する。得られた限外ろ液約2.000m/
を減圧下に60m1まで蒸発させる。沈殿を含む濃縮液
を’71,000 yで60分間遠心分離したのち上溝
液を分離し、冷却、攪拌下に55係トリクロロ酢t’1
1212m1を満願し、ついで混合物を温度5〜10℃
に1時間保持する。混合物を温度約5℃、30,000
.9で、光学的に完全に澄明な上清液が得られるまで超
遠心分離して沈殿した蛋白を除去し、上清をセファデッ
クスG−15カラム(5,90cm)上クロマトグラフ
ィーに付し、0.1モル酢酸アンモニウム緩衝液(p+
−16,6)で溶出する。500〜600 mlの分画
を合して、凍結乾燥する。凍結乾燥残渣を10m/の蒸
留水に溶解し、Blo−Ge1 P −2ゲルカラム(
2,5X90cIn)に導入する。カラAを蒸留水で溶
出し、130〜1BOmlの分画を合し、凍結乾燥する
と、塩を含まない粗すテエチン3Q+yがわずかに黄色
を帯びた白色粉末として得られる。
b)粗生成物(上記例2のaで得られた)100 #1
17全0.1モルTri5塩酸塩緩衝液PH8,2に室
温で振盪、撹拌しながら溶解し、濃度5 m9 / m
eの浴液を調製する。得られたわずかに蛋白光を発する
液に、トリプシン10mgとキモトリプシン10m9を
加え、ついで混合物を十分に攪拌する。
17全0.1モルTri5塩酸塩緩衝液PH8,2に室
温で振盪、撹拌しながら溶解し、濃度5 m9 / m
eの浴液を調製する。得られたわずかに蛋白光を発する
液に、トリプシン10mgとキモトリプシン10m9を
加え、ついで混合物を十分に攪拌する。
わずかに沈殿を含む混付物を67℃に保持した浴上に置
き、ときどき振盪または攪拌する。5時間俵に、トリプ
シン5 m9とキモトリゾシン5my+a合物に追加し
、67℃でのインキュベ−ショyi19時間続ける。す
なわち、反応混合物は計24時間インキュベートする。
き、ときどき振盪または攪拌する。5時間俵に、トリプ
シン5 m9とキモトリゾシン5my+a合物に追加し
、67℃でのインキュベ−ショyi19時間続ける。す
なわち、反応混合物は計24時間インキュベートする。
消化終了後、混合物を温度0〜5℃に冷却し、0.1w
/ %、すなわち2mlの冷(約5℃) 55 ”/、
、% ) IJジクロロ酸を加え、混合物を完全に振
盪したのち、−夜凍結するかまたは少なくとも1時間温
度0〜5℃に保持する。次に、沈殿を含むことがあるわ
ずかに蛋白光を帯びた混合物を、上述の温度、15,0
00〜20.0009で24分間超遠心分離を行う。澄
明な上清をBlo−Ge1 F −2ゲルカラム(5,
0X 45cm)に通し、カラム(5,0x45crn
)に通し、カラムを蒸留水で溶出する。250〜320
mlの分画を合し、凍結乾燥すると、塩を含まない純
粋なサチェテンーD(生物学的活性50〜100 SU
/my)62moが純白色の粉末として得られる。
/ %、すなわち2mlの冷(約5℃) 55 ”/、
、% ) IJジクロロ酸を加え、混合物を完全に振
盪したのち、−夜凍結するかまたは少なくとも1時間温
度0〜5℃に保持する。次に、沈殿を含むことがあるわ
ずかに蛋白光を帯びた混合物を、上述の温度、15,0
00〜20.0009で24分間超遠心分離を行う。澄
明な上清をBlo−Ge1 F −2ゲルカラム(5,
0X 45cm)に通し、カラム(5,0x45crn
)に通し、カラムを蒸留水で溶出する。250〜320
mlの分画を合し、凍結乾燥すると、塩を含まない純
粋なサチェテンーD(生物学的活性50〜100 SU
/my)62moが純白色の粉末として得られる。
第1図は本発明の方法の一態様を示すサチェチンーD単
離工程図で6り、第2図は本発明の方法の一態殊におけ
る最終ゲルクロマトグラフィーでのサチェチン活性の溶
出位置を示す図である。 第1頁の続き [相]発明者 ベルタ ノール ハンガリア国ブダペス
ト 7.、マダツク チル・ 2−手続補正書(方式) %式% 事件との関係 特許出願人 図面の浄書(内容:こ変更なし)
離工程図で6り、第2図は本発明の方法の一態殊におけ
る最終ゲルクロマトグラフィーでのサチェチン活性の溶
出位置を示す図である。 第1頁の続き [相]発明者 ベルタ ノール ハンガリア国ブダペス
ト 7.、マダツク チル・ 2−手続補正書(方式) %式% 事件との関係 特許出願人 図面の浄書(内容:こ変更なし)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1) ヒトおよび(または)動物血液から、満腹中枢
に選択的に作用して食物摂取を調節する物質を単離する
にあたシ、ヒトおよび(または)動物血清または血漿を
最高s o、o o oダルトンまでの分子量を透過さ
せる限外ろ過に付し、ろ液の一部を#発させ、得られた
凝縮物から不溶部分を除去し、温度0℃〜10℃で液相
に対し5〜25、適当には9〜11W/v(重量/容j
/#)%になるようにトリクロロ酢酸を加え、沈殿した
蛋白質を除去し、得られた溶成を空隙容量が分子1ii
4.000ダルトン以下のゲル上クロマトグラフィーに
付し、−6,0〜7.0の溶液で溶出し、生物学的に活
性な分画を磯癲し、再び空隙容量が分子量4.000ダ
ル)y以下のゲル上クロマトグラフィーに付し、水で溶
出して分画し、活性な分画を凍結乾燥し、凍結乾保分画
をpH8,1〜8.2の緩衝液に溶解し、この溶液に凍
結乾燥生成物の総重蓋からii算して0.01〜0.2
重量の等量のトリプシンおよびキモトリプシンを加え、
この混合物を温度66℃〜69℃で好ましくは時々振盪
しながら20〜30時間消化し、1〜10時間後にはじ
めの酵素量から計算して半分のトリプシンおよびキモト
リジシン等量を加えて消化を続け、ついで反応混合物に
温度0℃〜10℃で濃度4〜6w/ チ好ましくは■ 5w/v%になるようにトリクロロ酢酸を加え、混合物
を一15℃〜5℃に1〜24時間保持し、不溶部分を除
去し、反応混合物を空隙容量が分子量4.000ダルト
ン以下のゲル上クロマトグラフィーに付し、水で溶出し
て分画し、生物学的に活性な分画を凍結乾燥すること全
特徴とする製造方法。 (2) ヒトおよび(または)動物血清の限外ろ過は平
坦な膜を通して行う特許請求の範囲第1項記載の製造方
法。 (3) ヒトおよび(または)動物血清の限外ろ過はカ
ラA上で行う特許請求の範囲第1項記載の製造方法。 (4)不溶部分および(または)沈殿した蛋白質の除去
は超遠心または減圧ろ過によって行う特許請求の範囲第
1項記載の製造方法。 (5) pH6,0〜7.0の緩衝液は0.1モル濃度
の酢酸アンモニウム溶液を用いて溶出を行う特許請求の
範囲第1項記載の製造方法。 (fi) pH6,0〜7.0の浴液で溶出後、生物学
的に活性な分画を凍結乾燥または減圧上蒸発によって行
う特許請求の範囲第1項記載の製造方法。 (7) pH8,1〜8.2の緩衝液として2−アミノ
−2−ヒドロキシメチル−1,3−プロパンジオール塩
酸塩の0.1モル溶液を用いる特許請求の範囲第1項記
載の製造方法。 (8ン 溶液へのトリプシンおよびキモトリジシンの添
加は、凍結乾燥生成物の総重量から計算して[J、11
賃の等量行う特許請求の範囲第1項記載の製造方法。 (9) 消化は温度67℃〜68℃で24時曲行う特許
請求の範囲第1項記載の製造方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
HU832718A HU194916B (en) | 1983-07-29 | 1983-07-29 | Process for producing new type of active compound of selective inhibiting activity for intake of food |
HU2251/2718/83 | 1983-07-29 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60136517A true JPS60136517A (ja) | 1985-07-20 |
JPH0533240B2 JPH0533240B2 (ja) | 1993-05-19 |
Family
ID=10960797
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59157084A Granted JPS60136517A (ja) | 1983-07-29 | 1984-07-27 | 食物摂取の選択的阻害物質の製造方法 |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4588685A (ja) |
EP (1) | EP0133308B1 (ja) |
JP (1) | JPS60136517A (ja) |
AT (1) | ATE32515T1 (ja) |
AU (1) | AU572534B2 (ja) |
DE (1) | DE3469359D1 (ja) |
DK (1) | DK161153C (ja) |
HU (1) | HU194916B (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
HUT45903A (en) * | 1986-12-17 | 1988-09-28 | Rixhter Gedeon Vegyeszeti Gyar | Cleaned active substances of biological origin hindering the nutrition selectively, their antibodies and immune complexes of these active substances and the proper antibodies |
US5858967A (en) * | 1995-01-20 | 1999-01-12 | University Of Washington | Appetite supression factor and related methods |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
HU178703B (en) * | 1978-08-29 | 1982-06-28 | Richter Gedeon Vegyeszet | Process for separating appetite-controlling fraction from human or animal sera,of activity specifically on the nutrient center |
HU183590B (en) * | 1981-09-28 | 1984-05-28 | Richter Gedeon Vegyeszet | Process for the isolation of an active suastance influencing specifically the nutrition centre with a regulative effect on the appetite from human and/or animal blood serum |
-
1983
- 1983-07-29 HU HU832718A patent/HU194916B/hu not_active IP Right Cessation
-
1984
- 1984-07-19 US US06/632,439 patent/US4588685A/en not_active Expired - Fee Related
- 1984-07-27 JP JP59157084A patent/JPS60136517A/ja active Granted
- 1984-07-27 DE DE8484108919T patent/DE3469359D1/de not_active Expired
- 1984-07-27 EP EP84108919A patent/EP0133308B1/de not_active Expired
- 1984-07-27 AT AT84108919T patent/ATE32515T1/de not_active IP Right Cessation
- 1984-07-27 DK DK369184A patent/DK161153C/da not_active IP Right Cessation
- 1984-07-27 AU AU31271/84A patent/AU572534B2/en not_active Ceased
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
HU194916B (en) | 1988-03-28 |
US4588685A (en) | 1986-05-13 |
ATE32515T1 (de) | 1988-03-15 |
DK369184A (da) | 1985-01-30 |
DK369184D0 (da) | 1984-07-27 |
EP0133308A2 (de) | 1985-02-20 |
DK161153C (da) | 1991-11-18 |
HUT34767A (en) | 1985-04-28 |
AU572534B2 (en) | 1988-05-12 |
DK161153B (da) | 1991-06-03 |
EP0133308A3 (en) | 1986-01-02 |
DE3469359D1 (en) | 1988-03-24 |
AU3127184A (en) | 1985-01-31 |
EP0133308B1 (de) | 1988-02-17 |
JPH0533240B2 (ja) | 1993-05-19 |
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