JPS59140899A - オキシダ−ゼによる基質の新規定量法 - Google Patents

オキシダ−ゼによる基質の新規定量法

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JPS59140899A
JPS59140899A JP57170639A JP17063982A JPS59140899A JP S59140899 A JPS59140899 A JP S59140899A JP 57170639 A JP57170639 A JP 57170639A JP 17063982 A JP17063982 A JP 17063982A JP S59140899 A JPS59140899 A JP S59140899A
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superoxide ions
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Yoshitsugu Sakata
佐方 由嗣
Yoshinobu Miyashita
宮下 佳展
Tadashi Hamanaka
忠 濱中
Hiromasa Kodera
小寺 宏征
Yutaka Miki
豊 三木
Kazuhiko Yamanishi
山西 一彦
Toshiro Hanada
寿郎 花田
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は基質定量方法に関□する。更には臨床化学検査
等に於ける、血液成分等を基質と、する酵素反応利用の
定量方法に関する。
酵素就中オキシダーゼによる基質定量方法では1、その
酵素反応で生成するものは、水であり、炭酸ガスであり
、過酸化水素であるが、近来その生成過酸化水素を測定
して、基質の定量を行うことは、酵素に先天的な特異性
が即ち定量性であるという極めて常識的な生化学の智識
によって、広い実用性を獲得した。これにより従前の化
学的定蓋法が、定−性を保持するには種々の工夫が要る
こと、薬なっていることは周知である。面も尚、近来の
酵素法が、十分満足できるものであるとは限らない。
これらのことを、コレステロールの定量を例として述べ
れば次の通りである。
コレステロールの増加ヲ高コレステロール血症、減少を
低コレステロール血症というが、前者はネフローゼ症候
群、重症糖尿病、甲状腺機能低下□ 能冗進症等にみられ、コレステロールの定量は、臨床化
学検査の分野で必須の試験項目である。一般に。リーベ
ルマン・プルクハルト反応やキリアニイ反応を、比色反
応に用いたザク・ヘンリイ変法とかズヤヨウォキー法が
□あったが、:l’v氷テ。−ルヲ、△4−コレステノ
ンと過酸化水素とに酸□化する酵素と、生成過酸化水素
を測定する試薬との組合せが提唱されたあと、方法の主
流はこの酵素法へ完全に移った。しかしこれが酵素法も
体液中の還元性物質の影響を回避できず、改良が提案′
キれねばならず、また感度が充分でなく、より高波長側
で発色する被酸化性呈色試薬を使う方法への改本発明者
らは、各種基質に対する夫々特異のオな最終生成iを単
純に産生ずるという従来の知識に疑問をもち、これら酵
素反応を深く解析すれば結果その洞察の正しいことを証
明することを得、本発明を完成した。即ち体液成分等の
種々の基質とそれら基質に夫々特異性を示すオキシダー
ゼとの組合せにつき、本発明者らをグループに分けて相
互に着想を交換し、研究を協同し、参人全く同様に、こ
れら基質に対し夫々のオキシダーゼが酵素反応をなすと
き、スーパーオキサイドイオンが定量的に生成、あらた
めて次の段階を経てこれが例えば過酸化水素に変換して
行くことを確認し、スーパーオキサイドイオンを測定す
る、基質の新規にして有用な実用的定量方法を完成した
スーパーオキサイドイオンは、被還元性試薬を以てすれ
ば真に容易であり普≠的である。被還元性□呈色試薬を
適宜に選ぶことによって、体液中に存在する還元力率さ
いビリルビン、アスコルビン酸等の影響が生じないのは
ひとつの利点である。
また高感度で且つ長波長側で発色する被還元性試薬を、
自由に選定使用できることはいまひとつの利点である。
従来遅ゝ速の差はあるにしても、スーパーオキサイドイ
オンは過酸化水素へ変化し、この変化は血清中に通常(
溶血しない限り、血清中の量は微量であるが)存在する
スーパーオキサイドジスムターゼによって促進されると
されている。本発明のいまひとつの重要な点は、過酸化
水素へのコースである。これはSH基をもつ化合物即ち
チオール化合物を以てするものであり、このチオール化
合物の合目的々効果を、フェノール類(ナフトール類を
含む、以下同様)またはアミン類の添加で更に助長して
、還元反応を促進することである。且つパーオキシダー
ゼを共存させることにより、本発明方法の定量性が充分
に満足できるものになることも確認された。
即ち本発明方法及び試薬は、基質に夫々その基質に特異
性をもつオキシダーゼを作用させ、その酵素反応で定量
的に生成するスーパーオキサイドイオンを捉え、その還
元性を利用して基質を定量するものであるが、パーオキ
シダーゼ、アミン類またはフェノール類、及びSH基を
もつ化合物を共存させることによって、測定時間、感度
、定量性などを、実用に当って要求される水準へ充分に
対応させたものである。
更に本発明者らは、試薬及び反応系に於いて、チオール
化合物等の添加剤の、またはおそらくは測定時の反応の
好ましくない副反応である、自動酸化を除去する為に、
キレート剤を共存させて、所望の反応を安定に進行させ
る方法を見出した。
即し本発明方法及び試薬は、更に、童歌対象であル基質
に特異なオキシダーゼ、パーオキシダーゼ、アミン類ま
たはフェノール類、チオール化合物、及びキレート剤を
共存させるものである。
0.1モル・トリス緩衝液(P H8,0)に、チトク
ロームC7!l(2,5X 10−5モルに、コレステ
ロールオキシダーゼが15単位/ dtに、パーオキシ
ダーゼが600単位/ dtに、フェノールが0.1%
になるように溶解、これに同じ緩衝液にグルタチオン、
(還元型)0.8%溶解した液を加え、この両液の混液
にコレステロール200 w / dlを含むイソプロ
パツールを添加、37℃で例えば10分間インキュベー
トする。チトクロームCが発色し、波長550 nmの
吸光度は試薬盲検を対照1こ(即ち0、D、 (−B 
t)は)0.10をポす。コレステロールのインプロパ
ツール溶液の代りに、口重のインプロパツールのみを与
える場合、チトクロームC(7)発色はない。また被還
元性呈色試薬に2.2′−ジ(4−ニトロフェニル) 
−5,5’−ジフェニル−3゜3’−(3,3’−ジメ
トキシ−4,4′−ジフェニレン)ジテトラゾリウム=
クロイド(以下ニトロ TBという)を用いても同様で
ある。且つこれらの呈色は、スーパーオキサイドイオン
に特異的に作用する、スーパーオキサイドジスムターゼ
を大歌に存在させることによって阻害を認める。促ち本
発峰 曇の呈色は、スーパーオキサイドイオンの還元作用によ
ることが確認されるのである。
オキシダーゼは酸化酵素であり、基質毎に特異的にその
オキシダーゼが存在する。グルコースに対してはグルコ
ースオキじダーゼ、コレステ・ロールに対してはコレス
テロールオキシダーゼといつた具合であることは周知で
あり、パーオキシダーゼと同様に、それらを産生ずる生
物体から収得されて市販され、使用されていることも周
知であり、これらを夫々使用すれば良い。
アミン類は通常の有機アミンが使用される。脂肪族アミ
ンに比べて芳香族アミンが15、使用最少くても効果が
ある。−級、二級、三級を問わない。
実用に当っては、アニリン、N−エチルアニリン、N、
N−ジメチルアニリン、N、N−ジエチルアニリン、N
、N−ジエチル−m−)ルイジン、N−エチル−N−β
−ヒドロキシエチル−m−トルイジン0001%〜0.
2−程度存在するように添加すれば良い。 − フェノール類も特に他の置換−基によって支障を生スる
ということはない。フェノール、クロロフェノール類、
ジクロロフェノール類、ナフトールスルホン酸類なと、
入手し易い安価なものを適宜選んで使用すれば良く、多
くの場合呈色の段階で、反応液中0.000196〜0
.2チ程度存在するように用いれば良い。
フェノール類とアミン類とを併用することも、また例え
ば1− N、N−ジメチルアミノ−4−ナフ( トールとか、4− N、N−ジーチルサリチル酸のよう
に、一つの化合物がフェノール類でもあり、アミン類で
もある化合物を使用することもできる。
但し基質がアミンとかし一アミム酸などで、オキシダー
ゼが夫々アミンオキシダーゼとかL−アミノ酸オキシダ
ーゼなどである場合、アミン類でなくフェノール類を用
いることは当然である。
チオール化合物についても特に制限はなく、還元型グル
タチオン、チオグリコール酸、メルカプトエタノール、
チオサリチル酸、システアミン、システィン、ジメルカ
プトコハク酸などが例示され、入手し易い安価なものを
適宜選んで使用すれば良く、多くの場合呈色の時点で、
反応液中1〜507?v/ dl程度存在するように用
いれば良い。
被還元性呈色試薬としては、適当な酸化還元電位を示し
て、スーパーオキサイドイオンによって還元されて呈色
するもの、既に化学分析に於いてゾ 多数のものが使用され、ている中から、適斎に選んで使
用すれば良い。ニトロTB、2−(4−ヨードフェニル
)−3−(4−二トロフェニル)−5−フェニルテトラ
ゾリウムコクロリド(以下INTさいう)、または3−
(4,5−ジメチルチアゾリル−2)−2,5−ジフェ
ニルテトラゾリウムにプロミド(MTT)等のテトラゾ
リウム塩、チトクロームC1テトラニトロメタン(危険
性の故に実用は奨められない)、プラストシアニン、ブ
ループロティン等が例示できる。被還元性呈色試薬は通
常呈色の時点で、反応液中1〜40.−y’ / di
程度存在するように用いれば良い。テトラゾリウム類は
、従来それらが還元されて生ずるホルマザン類が水難溶
で、呈色の定量性及び機器類汚染につき問題ありとされ
ることがあったが、近時溶解性基を巧みに導入すること
により、その問題の解消が進み、本発明の実施に貢献す
るようになった。
キレート剤も、EDTA (エチレンジアミン四酢酸)
、CyDTA(トランス−7クロヘキサンジアミン四酢
酸=トランス−1,2−シクロヘキサンジアミン−N、
N、N’ N’−テトラアセチックアシド)、DTPA
 (ジエチレントリアミン五酢酸=ジエチレントリアミ
ン−N、N、N’、N“、N“−ペンタアセチ!ノクア
Jド)と略称される通常周知のものを始め、極めて多数
のものがあるが、これもそれらの中から、入手し易い安
価なものを適宜選んで使用すれば良く、多くの場合呈色
の段階で、反応液中0.5〜5ミリモル/ dt程度存
在するように用いれば良い。キレート剤添加効果は、現
象的には試薬盲検値の変動が小さいという結果を招来す
る。
パーオキシダーゼは多くの場合呈色の段階の液量1こ湾
して、50〜1000単位/dt程度になるように用い
れば良い。
上記の各化合物を適宜に組み合せて使用する場合、呈色
を測定しようとする最終混液に、それは臨床化学分析に
ままあることで−あるが、万−濁りが生じて測定゛に支
障を来たす場合は、適宜界面活性剤乃至溶解補助剤を予
め加えて、この問題を解消する通常の手法を用いる。
またキレート剤を使用するのであるが、これは抗凝固剤
として、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、シュウ酸ナト
リ、ウムと同様に使用され、別の目的で使用されている
場合もあるが、キレ−I・剤の存在は前述の通り、本発
明方法及び試薬では積極的に使用すべきものである。他
の抗凝固剤、またフッ化ナトリウムの如き解糖阻ll:
、剤の存在は、本発明方法及び試薬による呈色を全く阻
害しない。まン、ヘモグロビン、尿酸、ヒルビン酸、グ
ルコース等は、各々目的の基質に対する夫々のオキシダ
ーゼの特異性の故に、全く目的の呈色蝉を阻害しない。
実際の測定1こ当っては、適宜の媒体(通常緩衝液であ
るが)の中に於いて、被検液に、定量対象基質に特異な
オキシダーゼ、パーオキシダーゼ、アミン類またはフェ
ノール類、チオール化合物、及び被還元性呈色試薬、更
に好ましくは◆レート剤の混合を与え、インキュベート
して所望の反応たはそれらの変化を測定、被検液中の基
質を定量・する。その方法のためにオキシダーゼ以下の
添加剤乃至試薬を、一つに混合、或は幾つかの群に分け
て単独にまたは混合し、該当の基質の測定用試薬として
・組み合せ、本発明の試薬が得られる。試験中のpHが
7.0以上、好ましくは7.5以上になるように、試薬
の媒体乃至反応液の媒体を選んで処方する。
斯く本発明は、スーパーオキサイドイオンを測定するこ
とにより、体液成分などの基質を定量する方法と試薬と
を提供する、極めて画期的な発明であり、斯界に貢献す
る部署しいものである。以下に実施例を示すが、これら
は限定的な例示ではない。実施例中の発色試液は本発明
試薬の実施例であり、これによる測定定量が本発明方法
の実施例である。
実施例L(コレステロール) ニトロTBが20う/dt、第1表のグエノニル゛化合
物またはアミン化合物が1.06 mM/l、還元型グ
ルタチオンが0.65 mM/l、パーオキシダーゼカ
300 U/di、コレステロールオキシダーゼが 1
 5  U/dl、   )  IJ  )  7X 
−100が 0.1  f/dt。
エマルゲン920が0.4 i/dtの濃度になるよう
に、”d、IM・トリス緩衝液(1) H8,0)に溶
解した発色試液と、コレステロール200−1pを、イ
ソプロパツールに溶解して100−とじた被検試液を準
備する。
被検試液50μtに発色試液3.0−を加え、37℃恒
温槽中10分間インキュベートし、夫々試薬ブランクを
対照として、−波長560 nmに於ける吸光度を測定
する。
第1表に示す結果が得られ、本発明方法及び試薬に於け
る、フェノール類またはアミン類の添加効果が知られる
第1表 実施例2.(コレステロール) ニトロTBが2oη/dA、フェノール・が1.o6m
M/l、第2表のチオール化合物が0.65 mM/l
ノ、;−オキシダーゼが3001J/dt、コレステロ
ールオキシダーゼが15U/dtの濃度になるように、
9.1M・トリス緩衝液(p H8,0)に溶解した発
色試液と、コレステロール200 mfを、インプロパ
ノニルに、溶解して100 mlとした被検試液を準備
する。
被検試液50μtと発色試液3.0−で、実施例1と四
伊に測定、第2表に示す結果を得、チオール(ヒ合物の
添加効果が知られる。
第2表 実施例a(コレステロール) ニトロTBが10う/dt、フェノールが0.1チ、ト
リトンX−100が0.13チ、パーオキシダーゼ(バ
イオザイム社製)が600U/dt、コレステロールオ
キシダーゼ(大野製薬掬製、 2.1 bu/”f )
 カ15 U/dt、コレステロールエステラーゼ/d
t濃度液にしたものを第2発色試液さする。
検体Aはブランクとして蒸溜水、検体Bはコレステロー
ルの200 mf/dt するインプロパツール溶液、
検体Cは、従来の測定法によってコレステロールの定量
値が、289 m97dtとされた人血清であ゛る。
第1発色試液と第2発色試液とを、37℃に予備加温し
ておき、第1発色試液4−に第2発色試液100μtを
混じた液を検体の数だけ作り、夫夫15秒後に検体AS
B、及びCを個々に20μtずつ添加、37℃で各々を
正確に1o分間インキユヘートし、560nmの吸収(
0,D、560 ) 7i−測定、i@3表の結果から
、検体Cに含有されるコレステロールの量は、285m
fI/dtと算出される。
第3表 従来法でコレステロールの定量値が、155〜285−
g/dtと定量された18検体屹つき、実施例3の試薬
を以て定量したところ、相関係数0.923、回帰直線
y=1.oo2x−i 4.5を得た。
なお、第1発色試液番とE D T A 2.5 mM
o l/を添加した試液を用い、これに第2発色試液を
加えた場合の試薬ブランク(試薬盲検) l[Lの変化
はΔ実施例4.(アシルC0A) ニドI=lTBが10−g/dt 、 フェノールが0
.11、パーオキシダーゼ(西洋ワサビ由来、バイオザ
イム社製)が600U/dt、グルタチオン(還元型)
が20 ml/dt 、アシルCOAオキシダーゼ(東
洋醸造(横裂)が240 U /dtとなるように、0
.1M・トリス緩衝液(p H8,0)に溶解して発色
試液とする。
検体Aはブランクとして蒸溜水、検体Bはバルミトイル
C0A(東洋醸造(構製、含量93.6%)の2mM水
溶液である。
発色試液3−を2本の試験管にとり、各々に検体Aまた
はBを、夫□々100μを加え、37′″Gで10分間
加温する。直ちにAを対照にBの吸光度を、波長560
 nmで測定する。、また検体Bを蒸溜水で2倍及び4
倍に稀釈して検体B′及びB“とし、同様に操作して測
定する。結果は第4表であり、直線検量線が得られるこ
とが示される。
第4表 実施例&(グルコース) INTが10−ng/dt、3.5−ジメトキシ−N−
エヂルーN−(2−ヒドロキシ−3−ノジウムスルホプ
ロピル)アニリンが0.1%、パーオキシダーゼ(バイ
オザイム社製)が600 U/dt、グルタチオン(還
元型)が20mg/dt1グルコースオキシダーゼ(大
野製薬掬製)が300 oTJ/azの濃度になるよう
に、0.1 M・燐酸塩緩衝液(p H8,0)に溶解
して発色試液とする。
検体Altブランクとして蒸溜水、検体Bはブドウ糖の
200−g/dt水溶液、検体Cは従来の測定法によっ
てグルコースの定量値が、121η111/dtとされ
た人血清である。また検体Cを蒸溜水で2倍及び4倍に
稀釈して、夫々検体C′及びC“とする。
発色試液3−を5本の試験管に採り、各試験管37℃で
1q分間加温する。直ちにAを対照にB以下の吸光度を
、波長500 nmで測定する。吸光度を第5表に示す
第5表 これより検体Cのグルコース含量は、120”#/dt
と算出され、c、c’、及びC“から、検量線の直線性
が認められる。
実施例6(ピルビン酸) ニドOTBが201nfI/dt 、フェノールが0.
1 %、パーオキシダーゼ(バイオザイム社製)が60
0U/dt、グルタチオン(還元型) カ10 =1/
d4、ピルビン酸オキシダーゼ(東洋醸造(…製)が7
00U/dt、フラビンアデニンジヌクレオチドが2 
mf@/dl−、チアミンピロホスフェートが44 g
/d7゜酢酸マグネシウムが0.15 %の濃度にな、
るように、(1,02M・燐酸塩緩衝液(pH7,1)
に溶解して発色試液とする。
検体Aはブランクとして蒸溜水、検体Bはピルビン酸リ
チウムをピルビン酸として10 m97dtとなるよう
に溶解した水溶液である。
発色試液3−を2本の試験管にとり、各々に検体A1並
びに検体Bを、夫々100μを加え、37“Cで15分
間加温する。直ちにAを対照iこしてBの波長560 
nmの吸光度を測定、0.042を得る。
実施例7 (コリン) ニトロTBが10う/dt−フェノールが帆1チ、パー
オキシダーゼ(バイオザイム社製)が600TJ/dz
、チオサリチル酸が10 w/dt 、 ニア 1Jン
オキシダーゼ(東洋醸造■製)が500U/dtとなる
ように、0.1M・トリス緩衝1(pHs、o)に溶解
して発色試液とする。
検体Aはブランクとして蒸溜水、検体Bは塩化コリンの
70−nf/dt水溶液である。検体Bを蒸溜水で2倍
及び4′倍に稀釈、夫々検体B′及びB“と発色試液3
−を4本の試験管にとり、各々に検体A、B、B’、及
びB“を夫々20μを加え、37℃で10分間加温する
。直ちにAを対照に、B以下の吸光度を波長5600m
で測定、第6表の結果を得る。
第6表 実施例&(グリセロール−3−燐酸) ニドOTBがi o m17dt 、フェノールが0.
05チ、パーオキシダーゼ(バイオザイム社製)が60
0U/dt、グルタチオン(還元型)が20−Ljl”
/dt、グリセロール−3−燐酸オキシダーゼ(東洋醸
造■製)が60 OL!/dtの濃度になるように、0
.1M・トリス緩衝液<pH8,0)に溶解して発色試
液とする。
検体Aはブランクとして蒸溜水、検体5.Bはグリセロ
ール−3−燐酸の10 mM(172−g/dl )水
溶液である。検体Bを蒸溜水で2倍及び4倍に稀釈、夫
々検体B′及びB#とする。
発色試液4−を4本の試験管にとり、各3偏i体A、B
、B’、及びB#を、夫hsopt加え、37℃で10
分間加温□する。直ちにAを対照にB以下□の吸光度を
、波長51i 0 nmで測定、第7表の結果を得る。
第7表 実施例a(グリセロール) □ニドOTBが10′7F+f/dt1フエノールが0
.05チ、パーオキシダーゼ(バイオザイム社製)カ6
00tJ/dt、グルタ≠オン(還元型)が2orrL
I+/dt1グリセロールオキシダーゼ(協和醗酵tt
ti)”□製)が600/dtとなるように、0.0’
5 M −燐酸塩緩衝液(p H8,0)に溶解して発
色試液とする。
検体Aはブランクとしての蒸溜水、検体Bはグる。
発色試液4−ずつを4本の試験管にとり、各々に検体A
、B、B’、及びB“を夫々50μを加える。37℃で
10分間加温し、直ちにAを対照に、B以下の吸光度を
、波長56Qnmで測定、第8表の結果を得る。
実施例10.(尿酸) ニド0 ’r Bが20′rnfl/dt、フェノール
が0.1%、パニ4″″ダI−tg(′<(”741社
製)が6°OU/dt、グルタチオン(還元型)が10
m4I/dt1ウリカーゼ(東洋紡績1横製)が30 
U/dtの濃度になるように、0.1M・トリス緩衝液
(pH7,1)に溶解して発色試液とする。
検体Aはブランク、とじて蒸溜水、検体B、は尿酸1、
0 mftをIq6炭酸リチウム水溶液100−に溶解
した10−g/dtの溶液、検体Cは従来法で12)/
dtと定量された高尿酸血清である。
発色試液3ゴを2本の試験管にとり、各々に検体A、B
、及びCを夫/z 6 (1p を加え、37°cで1
0分間加温する。直ちにAを対照にB、Cの吸光度を波
長560 nmで測定、第9表の結果から、検体Cの本
来による尿酸含有量21.8mg/di  を得た。
第9表 実施例11.(L−乳酸) ニトロTBが20−、g 7’dt、フェノールが帆1
%、パーオキシダーゼ(バイオザイム社製)が6oOU
/dt、グルタチオン(還元M ) カ1.0−=g 
/ di、L−乳酸オキシダーゼ(東洋醸造(割裂)が
85U″/dtとなるよう↓こ、0.1 M・トリス緩
衝液(pH7,5)に溶解して発色試液とする。
検体Aはブランクとして蒸溜本、検体BはL−乳酸す)
 IJウムの10mM水溶液である。
分間インキュベートする。直ちにAを対照にして1Bの
波長56 Q nmの吸光度を測定、n、1ioを得た
実施例12.(コレステロール) 酸化型チトクロームC(ジグ−社製、タイプJI[)が
3 X 10−’モル、フェノールが0.1−、パーオ
キシダーゼ(バイオザイム社製)が6.00 U/di
、コレステロールオキシダーゼ゛(大野製薬(…製)が
15 tJ/atになるように、0.1M・トリス緩衝
液(p H8,0)に溶解した液を第1発色試液とし、
グルタチオン(還元型)を同じ緩衝液に溶解し、・80
0 mg/dtにしたものを第2発色試液とする。
検体Aはブランクとしてインプロパツール、検体Bはコ
レステロールが200−=g/dtのイソプロパツール
溶液、検体Cはコレステロールが従来法で230−、g
/dtと定量された血清である。また検体Cをインプロ
パツールで2倍及び4倍に稀釈して、夫々検体C′及び
C“とする。
両発色試竺を37℃に予備加温しておき、測定直前に第
1発色試液4ゴに、第2発色試液100ptと検体2 
、Op tを添加、37°゛Cで正確に2分間加温した
後、波長550 nmの吸収を測定する。
結果を第10表に示す。
第10表 コ4’j):’)、水沫による検体Cのコレステロール
定量1直は238キ10であり、検体c、c’、及びC
″の直は直線性を示し゛ている。
特許出願人 和光純薬工業株式会社

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 (1)基質にオキシダーゼを作用させて生成す、るスー
    パーオキサイドイオンを抑1.定する、基質の定量方法
    。 (2)スーパーオキサイドイオンの還元性を特徴する特
    許請求の範囲第1項に記載の定量方法。 (3)被還元性呈色試薬がスーパーオキサイドイオンに
    よって還元されることにより生ずる、呈色またはその変
    化を特徴する特許請求の範囲第1項又は第2項に記載の
    定量方法。 (4)  オキシダーゼの酵素反応即ちスーパーオキサ
    イドイオンの生成、及びスーパーオキサイドイオンの被
    還元性呈色試薬に対する還元反応を、パーオキシダーゼ
    、アミン類又はフェノール、類(ナフトール類を含む)
    、及びSH基をもつ化合物を特徴とする特許請求の範囲
    第1項、第2項又は第3項に記載の定量方法。 (5)  オキシダーゼの酵素反応即ちスーパーオキサ
    イドイオンの生成、及びスーパーオキサイドイオンの被
    還元性呈色試薬に対する還元反応を、キレート剤−を存
    ぎさせて、安定に進行させる、特許請求の範囲第1項、
    第2項、第3項又は第4項に記載の定量方法。 (6) 、 、フルコース、コレステロール、りIJ、
    、セロール、クリセロール燐酸エステル、コリン、アr
    ル′・′”、−2、t −+ 7 z’ −−t= ゛
     v x f o −7’7”f。 シダーゼ、グリセロールオキシダーゼ、グリセロール燐
    酸エステルオキシダーゼ、コリンオキシダーゼ、アシル
    COAオキシダーゼ、ピルビン酸オキシダーゼ、ウリカ
    ーゼ、キサンチンオキシダーゼ又は乳鍍オキシダーゼを
    組み合せて行われる、特許請求の範囲第1項、第2項、
    第′3項、第4項又は第1,5項に記載の定着方法、 <7)  オキシダーゼとノ市オキシダーゼよ、ア、ミ
    ン類又はフェノール類(ナフトール類を含む)と、SH
    基をもつ化合物と、被還元性呈色試薬とを組合せて成る
    、基質の定量用試薬。 (8)  オキシダーゼと、パーオキシダーゼと、アミ
    ン類又はフェノール類(ナフトール類を含む)と、SH
    基をもつ化合物と、キレート剤と、被還元性呈色試薬と
    を組合せて成る、基質の定量用試薬。 (9)  i 質カクルコース、コレステロール、グリ
    セロール、グリセロール燐酸エステル、コリン、アシル
    COA% ピルビン酸、尿酸、キサンチン又は乳酸であ
    る場合、オキンダチ3、夫・、グー・−スオキシダーゼ
    、コレステロールオキシダーゼ、グリセロールオキシダ
    ーゼ、グリセロール燐酸エステルオキシダーゼ、コリン
    オキシダーゼ、アシルCOAオキシダーゼ、ピルビン酸
    オキシダーゼ、ウリカーゼ、キサンチンオキシダーゼ又
    は乳酸オキシダーゼである、特許請求の範囲第7項又は
    第8項に記載の定量用試薬。
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