JPH1175706A

JPH1175706A - 食用ペプチドの分画・濃縮法

Info

Publication number: JPH1175706A
Application number: JP25260097A
Authority: JP
Inventors: Kenji Sato; 健司佐藤; Asuka Akaboshi; 亜朱香赤星; Takashi Nakamura; 考志中村; Kozo Otsuki; 耕三大槻; Motoi Matsuura; 基松浦
Original assignee: NIPPON BIO RATSUDO LAB KK; Meiji Milk Products Co Ltd
Current assignee: NIPPON BIO RATSUDO LAB KK; Meiji Dairies Corp
Priority date: 1997-09-03
Filing date: 1997-09-03
Publication date: 1999-03-23
Anticipated expiration: 2017-09-03
Also published as: JP3105478B2

Abstract

(57)【要約】【解決手段】複数の導管によって、複数の分離室を直
鎖状に結合し、この中にタンパク質をタンパク質分解酵
素で分解した溶液を満たし、一端にアルカリ溶液を満た
して透析膜で仕切った電極を接合し（又は透析膜で包ん
だ電極を入れ）、他の一端に酸溶液を満たして透析膜で
仕切った電極を接合し（又は透析膜で包んだ電極を入
れ）、両電極に直流電流を定電力で電圧の上昇がなくな
るまで通電し、タンパク質分解物中のペプチドが移動し
なくなった時点で各々の分解室中に留まったペプチドを
回収する食用ペプチドの分画・濃縮法。【効果】大量の食用ペプチドの分画、濃縮が安全かつ
効率的に実施できる。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、食品に使用可能な
もしくは添加可能なペプチドの分離・分画・濃縮に関す
るものである。

【０００２】

【従来の技術】食品の機能には、栄養機能、感覚機能の
他に、第三次機能として生体調節機能が存することが知
られている。食品タンパク質のプロテアーゼ分解により
生じるペプチドにも多くの有益な生理機能が試験管内の
研究により見いだされている。しかし、数多くの機能が
見いだされている割には、その機能が実際に製品として
利用されている例は少ないのが現状である（平成８年５
月現在で、カルシウムの吸収促進を目的としたカゼイン
ホスホペプチド、血圧上昇抑制ペプチドのみが実用化さ
れているにすぎない）。これは、一部の例外を除き、タ
ンパク質の酵素分解物中に存在する生理活性を持ったペ
プチドは微量でも機能性を有する反面、タンパク質の酵
素分解物中には比較的微量しか含まれず、そのため、生
理機能を期待してタンパク質のプロテアーゼ分解物（多
種のペプチドの混合物）を摂取しようとすれば、かなり
多量の摂取が必要となることがその原因の一つとなって
いる。

【０００３】一例を挙げると、チーズの製造副産物であ
る乳清タンパク質の酵素分解によって得られるペプチド
の一つにイニシエーターの抑制活性を認めているが、こ
の機能を期待して乳清タンパク質の分解物を摂取すると
すれば、一日キログラム程度の摂取が必要となり、現実
的ではない。そのため、発ガン抑制のような有益な生理
機能を有効に利用するためには、生理機能を有するペプ
チドを他の成分から分離濃縮して比活性を上昇させ、摂
取量を減らす必要がある。一般にペプチドは苦味があ
り、多量のペプチドの摂取は継続が困難であるため、こ
の活性ペプチドの濃縮は非常に重要である。

【０００４】しかしながら、タンパク質の酵素分解によ
り生じるペプチドは非常に多種多様であり、この中から
目的の活性ペプチドを分離することはそれほど容易なこ
とではない。たしかに、実験室レベルの分離では、高性
能液体クロマトグラフィー、特に逆相クロマトグラフィ
ーの発達によりかなりの精度でペプチドの分離がおこな
われており、生理活性ペプチドの構造解析を目的とした
分離はほとんどがこの手法を用いている。しかし、高性
能液体クロマトグラフィーは比較的微量（通常ミリグラ
ム以下）の成分を分離するようにデザインされており食
品への応用を目的とした多量の成分の分離には以下の理
由で問題がある。

【０００５】第一に、装置および分離用カラムが比較的
高価であり、相当に付加価値の高い製品にしか用いるこ
とが困難である。第２に、クロマトグラフィーに用いる
溶離液に水のみを用いることは希で、ほとんどの場合、
有機溶媒または塩類の添加が必要である。高性能液体ク
ロマトグラフィーで汎用されるメタノール、アセトニト
リルなどは人体に対して（環境に対しても）有害であ
り、食品成分の分離への利用は当然制限される。また、
食塩、酸、アルカリ、エタノールなどの食品への添加が
認められている成分は溶離液に添加可能であるが、最終
製品からほとんどの場合除く必要がある。そのためコス
トがさらに上昇する。第３に、サンプルに微粒子、非極
性成分などカラムに強く吸着する成分を含んだままでは
カラムの劣化が急速に生じ、これらの妨害成分の除去が
必要となる。そのために精密濾過などの前処理が必要と
なり、これもコストを上昇させる一因となる。

【０００６】一方、分取クロマトグラフィーは、通常カ
ラムを用い、各種の担体を充填して用いるが、これとは
別に、試料が帯電する性質を用いて特定成分を分画する
試みが行われている。即ち、等電点電気泳動である。こ
の方法は、タンパク質等の分取・分画に用いるために開
発・改良が行われており、濾紙、アクリルアミドゲル、
寒天ゲル等の支持体中に親水性の化学合成両極性担体を
混入し、両端に直流電流を付加して担体中に水素イオン
濃度の勾配を作成し、試料中の特定物質の電価がゼロに
なったところで移動しなくなることを原理としている。
また、細管やキャピラリー等の無担体中でも同様の試み
がなされている。

【０００７】しかしながら、この方法も分画を厳密に行
うことを目的として、水素イオン濃度勾配を厳密に作成
して分離能の向上を計っており、試料負荷可能な支持体
を極力小さくしたり、溶液に比重をつけたり、分離され
た成分間に多孔性の隔壁を置いたり、あるいは高価な親
水性の化学合成両極性担体を使用しており、分画物を食
品へ利用する場合には、前述と同様のコスト面と食品製
造に使用可能な薬剤等の法制面での問題を有する。

【０００８】

【発明が解決しようとする課題】上記したように、ペプ
チドには各種の有用な生理活性を有するものが多種存在
しており、これ（ら）を工業的に分離・濃縮して食用に
使用することは非常に重要である。しかしその際、食品
への工業的利用という特殊性から、大量処理、分離精
度、安全性、風味といった独特の問題点を解決しなけれ
ばならない。

【０００９】すなわち、食品への工業的利用という面か
ら、分離精度は医薬品レベルのように高純度に精製分離
する必要はないが、その反面、食品製造に認められてい
る薬剤のみを用いて大量に分離、濃縮できることが必要
であり、本発明が解決しようとする具体的課題は次のと
おりである。

【００１０】食用タンパク質由来の各種機能を有するペ
プチドの利用拡大を計るためには、それほど純粋でない
大量のペプチドサンプルに対応でき、安価で、安全で、
ある程度の分離能を持つ分画法が必要となる。また、食
品タンパク質由来の各種ペプチドを製造するとき及び／
又はしたときに生じる、好ましくない副産ペプチドを除
去し、安全なペプチド混合物を供給するためにも、ある
程度の分離能を持つ分画法が必要となる。

【００１１】

【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記した
課題を解決するために各方面から検討の結果、食用タン
パク質をタンパク質分解酵素で処理したときに生じるペ
プチドや遊離アミノ酸がプラスの電荷とマイナスの電荷
を有する両極性電解質であることに着目し、これを化学
合成両極性担体の代わりに用いてペプチド混合物から特
定のペプチドを単離、濃縮、あるいは除去することが可
能であろうと推定し、これを用いた食用ペプチドの単
離、濃縮、あるいは除去を試みた。更に、本分画法で用
いる試薬等はすべて食品製造に使用が認められているも
ののみを使用することで、前述の種々の問題を解決する
ことを試み、調製用等電点電気泳動装置をスケールアッ
プすることにはじめて成功し、これにより、これらの課
題を一挙に解決することに成功した。以下、本発明につ
いて詳述する。

【００１２】本発明を実施するのに好適な食用ペプチド
の分画・濃縮装置について、その１例を図示した図面を
参照しながら説明する。図１は、分離室のひとつを図示
したものである。分離室１は、その形状、大きさ、機質
等に格別な限定はなく、例えば、寸法が１００×１２０
×５０ｍｍ程度の上部を開放した直方体からなるプラス
チック製のセルとしてもよい。

【００１３】分離室１には、導管を接続するための開口
部２をその表裏両面に設ける。開口部２は、その形状、
大きさ、設置数等に格別な限定はなく、例えば、図示す
るように、直径１５ｍｍの円形開口部を４個ずつ設けて
もよい。

【００１４】本発明の分画装置は、例えば図２に示すよ
うに、分離室１（例えば５００ｍｌ容のプラスチック製
セル）を導管３によって数個接続するとともに、その両
端に電極槽４、５を１つずつ接続してなる、泳動槽から
構成される。

【００１５】導管３は、導電性ハイドロゲル６で仕切ら
れている。導電性ハイドロゲルの仕切り６は、そのまま
でよいが、ナイロン製その他適宜の材料からなるメッシ
ュ等の支持部材で支持、サポートしておくのが好適であ
る。導電性ハイドロゲルとしては、本技術分野で常用さ
れるハイドロゲルがすべて使用可能であるが、例えば寒
天、もしくは寒天の純化物であるアガロース等が例示さ
れる。なお、本実施例においては、導電性ハイドロゲル
として、ナイロンメッシュで支持したアガロースゲル
（１．５％）を使用した。

【００１６】また、分離室（セル）１と電極槽（４、
５）の間は、それぞれ透析膜７で仕切った。透析膜７と
しては、すべての透析膜が使用可能であるが、本実施例
においてはセルロースの透析膜で仕切った。電極槽
（４、５）にはそれぞれ電極液を収容した。電極液とし
ては、常用される電極液がすべて使用可能であるが、陰
極には０．１ＭのＮａＯＨ、陽極には０．１ＭのＨ₃Ｐ
Ｏ₄を用いた。そして、アノードセル４及びカソードセ
ル５には、プラチナ電極その他常用される電極をそれぞ
れ挿入した。

【００１７】本発明の装置の構造は、基本的には、上記
したように電極槽−分離室−電極槽からなるものであっ
て、この基本的技術思想に包含される構造がすべて本発
明の範ちゅうに入るものであり、各種の態様が広く包含
される。

【００１８】例えば、本発明のフォーカシング装置の態
様として、電極液を電極槽内に収容したタイプのもの
（タイプＩあるいは単にＩということもある）、及び、
電極液を透析膜内に収容したタイプのもの（タイプIIあ
るいは単にIIということもある）が例示され、それぞれ
図２の上段及び下段に図示した。

【００１９】本発明を実施するには、分離室（セル）内
にタンパク質をタンパク質分解酵素で加水分解した溶液
を入れ、両電極に直流電流を通電することにより、ペプ
チドを分画することができ、しかも大量処理が可能であ
る。

【００２０】例えば、後記からも明らかなように、サン
プルとしてカゼインをトリプシン分解したものを用い、
ペプチドの分離は、逆相ＨＰＬＣの溶離パターンでモニ
ターした結果、５個のサンプルセルを用いて行った場
合、ｐＨ約２〜１０の範囲でｐＨグラジェントが形成さ
れた。また、逆相ＨＰＬＣによる各画分の溶出パターン
の比較を行ったところ、ｐＨの違いによってそのパター
ンが各画分で異なるという結果が得られた。これは、わ
ずか５個のサンプルセルにより数Ｌのサンプルのペプチ
ドの分画が行われたことを示すものである。

【００２１】また更に、サンプルセルの個数を増加させ
ても、同じｐＨを示す画分では、同じペプチド成分が含
まれていること、及び分画の終了は、定電力で電圧の上
昇がなくなったところであること、をそれぞれ見出し
た。また、１％のカゼイン消化物１Ｌを本法で分画する
場合に必要な時間（ｈ）と電力（Ｗ）の間には次に示す
関係が成り立つことも見出した：ｈ×Ｗ≒５００〜７０
０、好適には６００Ｗ・ｈであった。

【００２２】本発明は、これらの有用新知見を総合し、
更に検討の結果なされたものであって、複数の導管によ
って、複数の分離室を直鎖状に結合し、この中にタンパ
ク質をタンパク質分解酵素で分解した溶液を満たし、一
端にアルカリ溶液を満たして透析膜で仕切った電極を接
合し、他の一端に酸溶液を満たして透析膜で仕切った電
極を接合し、両電極に直流電流を定電力で電圧の上昇が
なくなるまで通電し、タンパク質分解物中のペプチドが
移動しなくなった時点で各々の分離室中に留まったペプ
チドを回収する食用ペプチドの分画・濃縮法、に関する
ものであり、この方法を実施するには、本発明の装置の
内、タイプＩの装置が好適である。

【００２３】また本発明は、上記のほか、複数の導管に
よって、複数の分離室を直鎖状に結合し、この中にタン
パク質をタンパク質分解酵素で分解した溶液を満たし、
一端にアルカリ溶液を満たして透析膜で包んだ電極を入
れ、他の一端に酸溶液を満たして透析膜で包んだ電極を
入れ、両電極に直流電流を定電力で電圧の上昇がなくな
るまで通電し、タンパク質分解物中のペプチドが移動し
なくなった時点で各々の分離室中に留まったペプチドを
回収する食用ペプチドの分画・濃縮法にも関するもので
あり、この方法を実施するには、本発明の装置の内、タ
イプIIの装置が好適である。以下、本発明の実施例及び
比較例を示す。なお、これらによって本発明が限定され
るものではない。

【００２４】

【実施例１：カゼイン加水分解物のペプチドの分画】カ
ゼインのトリプシン分解物の１％溶液を４００ｍｌづつ
５つのセルに入れ、５０Ｗの定電力を負荷した。各々の
セルにはマグネットを入れ、スターラーで攪拌を行っ
た。また、分画中の発熱を抑える目的で分画装置の周囲
に０．１℃の冷水、および内部は−２０℃のメタノール
を循環させた。

【００２５】経時的に各々のセルより一部を取り出し、
逆相ＨＰＬＣ（Csmosil AR5C18-300(4.6×50mm）を分離
カラムとして使用した）によりペプチド組成を検討し
た。１２時間後ではフラクション間の分離が充分ではな
く、２４時間後ではフラクション間の差異が明確となっ
た。４８時間後では２４時間後と大きな差異は認められ
なかった。従って、２Ｌの試料を５０Ｗの定電力を負荷
して分画を行うと２４時間で分画が終了することが判明
した。各セル間で形成されたｐＨカーブと電圧値を経時
的に見ると、分画開始後２４時間で電圧値の上昇は緩や
かになっており、また、緩やかなｐＨカーブが形成され
た。従って、電圧値が一定になる時間とｐＨカーブが形
成される時間はほぼ対応しており、これが分画の終点で
あると判断された。

【００２６】上記結果の内、ｐＨ勾配の形成と電圧値の
経時変化について、図３にまとめて示した。図中、Ａ−
１及びＡ−２は、タイプＩの分画装置を使用して得られ
た結果であり、Ｂ−１及びＢ−２はタイプIIの分画装置
を使用して得られた結果である。また、Ａ−１及びＢ−
１は酸性側より数字を付けた５個のセルの試料ｐＨを１
２時間後、２４時間後、４８時間後に測定してプロット
した結果であり、Ａ−２及びＢ−２は電圧値の経時変化
を示している。

【００２７】上記結果の内、各分画セル内の試料の逆相
ＨＰＬＣ溶出パターンについて、図４にまとめて示し
た。図中、上段がタイプＩの分画装置を用いて得られた
結果であり、下段がタイプIIの分画装置を用いて得られ
た結果である。

【００２８】

【実施例２：分画時の電力の影響】カゼイン加水分解物
の１％溶液を４００ｍｌづつ５つのセルに入れ、負荷電
力が、５０Ｗ、１００Ｗ、１５０Ｗのときの各々の電圧
値の上昇曲線とｐＨカーブの形成を調べた。５０Ｗのと
きには２４時間前後で、１００Ｗのときには１２時間前
後で、又、１５０Ｗのときには８時間で電圧値の上昇が
認められなくなり、ほぼ一定の値を示した。各々の時間
でｐＨカーブが形成されており、負荷電力の増加に伴っ
て分画終点が短くなることが推定された。そこで、各々
の分画終点における各セルの試料を逆相ＨＰＬＣによっ
て分析に供すると、いずれもほぼ同じような溶出パター
ンを示した。従って、負荷電力を増すと分画終了の時間
が短縮されるが、最終的な分画物の組成には大きな違い
がないことが判明した。

【００２９】上記結果の内、ｐＨ勾配の形成と電圧値の
経時変化について、図５にまとめて示した。図中、Ｃ−
１、Ｃ−２は負荷電力５０Ｗの、Ｄ−１、Ｄ−２は負荷
電力１００Ｗの、また、Ｅ−１、Ｅ−２は負荷電力１５
０Ｗの負荷条件を用いた。Ｃ−１、Ｄ−１、Ｅ−１は各
々５０Ｗ、１００Ｗ、１５０Ｗの負荷電力の条件下での
各分画セルのｐＨ勾配の形成を各々２４時間、１２時
間、８時間後に測定した結果である。又、Ｃ−２、Ｄ−
２、Ｅ−２は各々５０Ｗ、１００Ｗ、１５０Ｗの負荷電
力の条件下での電圧値の経時変化を測定した結果であ
る。

【００３０】上記結果の内、各分画セル内の試料の逆相
ＨＰＬＣ溶出パターンについて、図６にまとめて示し
た。図中、左より負荷電力５０Ｗの条件下で２４時間後
の各分画セルの試料、負荷電力１００Ｗの条件下で１２
時間後の各分画セル内の試料、及び負荷電力１５０Ｗの
条件下で８時間後の各分画セル内の試料であり、酸性側
より分画セルの番号を１、２、３、４、５とした。

【００３１】

【実施例３：分画時のセル数の影響】分画時に用いるセ
ル数を増やしてカゼインのトリプシン分解物の分画を試
みた。実施例−２までは分画に用いるセルの数が５個で
あったが、９個に増やして分画を行った。ｐＨカーブ
は、酸性側で５個の場合に比べてやや緩やかになったも
のの、ｐＨ２〜１０の間で連続的なｐＨ勾配が形成され
た。電圧値の増加曲線は２５００分までは緩やかに増加
した後にほぼ一定の値となった。分画セル内のｐＨが５
個の場合と近似しているセルより試料を分取し、逆相Ｈ
ＰＬＣによって分析に供すると、いずれもほぼ同じよう
な溶出パターンを示した。従って、分画セルの数が変化
しても最終的なセルのｐＨが同じであれば、分画物の組
成はほぼ同じであることが判明した。

【００３２】上記結果の内、ｐＨ勾配の形成と電圧値の
経時変化について、図７にまとめて示した。図中、Ｆ−
１、Ｆ−２は分画セルが５つの場合であり、Ｇ−１、Ｇ
−２は分画セルが９つの場合である。また、Ｆ−１、Ｇ
−１は各々２４時間後、及び４８時間後に形成されたｐ
Ｈ勾配を示し、Ｆ−２及びＧ−２は電圧値の経時変化を
示した。

【００３３】上記結果の内、各分画セル内の試料の逆相
ＨＰＬＣ溶出パターンについて、図８にまとめて示し
た。図中、左より実施例−３記載の分画セルが５つの場
合、及び９つの場合である。

【００３４】（比較例１：分画セル間をつなぐ導管内に
アガロースゲルを用いなかった場合）実施例−１と同じ
試料を用い、各分画セル間をつなぐ導管内にアガロース
ゲルを用いずに分画を試みた。負荷電力１００Ｗの条件
下において４６時間分画を試みたが、各セル間に連続的
なｐＨ勾配は形成されず、また、逆相ＨＰＬＣカラムか
らの溶出パターンから判断すると、各セル間の分画物組
成にほとんど差異はみられなかった。従って、分画セル
をつなぐ導管内にメッシュのみでアガロースゲルがない
場合にはペプチドの分画が不可能であることが判明し
た。

【００３５】上記結果の内、ｐＨ勾配の形成の経時変化
について、図９にまとめて示した。図中、縦軸はｐＨ
を、横軸は各々の分画セルを表す。４６時間までの分画
を行った場合でも、各分画セル内のｐＨに大きな差異は
なかった。

【００３６】上記結果の内、各分画セル内の試料の逆相
ＨＰＬＣ溶出パターンについて、図１０にまとめて示し
た。図中、左より負荷電力１００Ｗの条件下で６時間
後、２４時間後、及び４６時間後の各分画セル内の試料
の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示した。各々の図の横軸
は逆相ＨＰＬＣカラムの保持時間であり、図中に記載し
た数字は、分画セルの番号であり、酸性側から順に番号
を付けた。

【００３７】（比較例２：市販の等電点電気泳動装置を
用いた分画）実施例−１と同じ試料を用い、この５０ｍ
ｌを市販の等電点電気泳動装置（ロトフォア、バイオラ
ッド社）を用いて負荷電力１２Ｗの条件下で２．５時間
分画を行った。各分画セル内の試料の逆相ＨＰＬＣ溶出
パターンについて、図１１にまとめて示した。各々のｐ
Ｈにおける分画物の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンは実施例
−３（図８）で得られたセルのｐＨが同じならば、ほぼ
同様の溶出パターンが得られた。

【００３８】カゼインのトリプシン加水分解物の１％溶
液（Ｅ：Ｓ＝１：１００）をサンプルとし、これを本発
明装置を用いて分画するのに要する負荷電力の試算を行
い（下記表１）、約６００Ｗｈ／Ｌの負荷電力が必要
であることが判明した。なお、対照として、市販の装置
（ロトフォア、バイオラッド社）を用いた結果もあわせ
て示した。

【００３９】

【表１】

【００４０】

【発明の効果】本発明装置に用いる装置・機械には耐圧
装置や精密工作の必要はなく、類似した原理に基づく電
気透析法は食品製造分野で既に実用化されており、容易
に生産規模への拡大が可能と考えられる。また、本発明
による装置を用いて単離・濃縮、あるいは特定の成分が
除去されたペプチド混合物が食品に利用可能となれば、
機能性を有する食品の開発にとっても有利であり、消費
者にとっても十分な利益があると考えられる。

【００４１】本分画装置に用いる溶媒は水と試料とはほ
とんど混合しない希酸および希アルカリ性の電極液であ
り、いずれも食品製造に使用が認められている。また、
泳動中に等電点沈殿が生じる場合があるが、本分画装置
は沈殿した試料も回収可能である。

【図面の簡単な説明】

【図１】本発明の装置に使用する分離室を示す。

【図２】本発明の分画装置（タイプＩ、タイプII）を示
す。

【図３】実施例１によって得られたｐＨ勾配の形成と電
圧値の経時変化を示す。

【図４】実施例１によって分画された各分画セル内の試
料の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示す。

【図５】実施例２によって得られたｐＨ勾配の形成と電
圧値の経時変化を示す。

【図６】実施例２によって分画された各分画セル内の試
料の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示す。

【図７】実施例３によって得られたｐＨ勾配の形成と電
圧値の経時変化を示す。

【図８】実施例３によって分画された各分画物の試料の
逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示す。

【図９】比較例１によって得られたｐＨ勾配の形成の経
時変化を示す。

【図１０】比較例１によって分画された各分画セル内の
試料の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示す。

【図１１】比較例２によって分画された各分画物の試料
の逆相ＨＰＬＣ溶出パターンを示す。

フロントページの続き (72)発明者赤星亜朱香京都市左京区下鴨半木町１−５京都府立大学食品科学講座内 (72)発明者中村考志京都市左京区下鴨半木町１−５京都府立大学食品科学講座内 (72)発明者大槻耕三京都市左京区下鴨半木町１−５京都府立大学食品科学講座内 (72)発明者松浦基東京都東村山市栄町１−21−３明治乳業株式会社栄養科学研究所内

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】複数の導管によって、複数の分離室を直
鎖状に結合し、この中にタンパク質をタンパク質分解酵
素で分解した溶液を満たし、一端にアルカリ溶液を満た
して透析膜で仕切った電極を接合し、他の一端に酸溶液
を満たして透析膜で仕切った電極を接合し、両電極に直
流電流を定電力で電圧の上昇がなくなるまで通電し、タ
ンパク質分解物中のペプチドが移動しなくなった時点で
各々の分離室中に留まったペプチドを回収すること、を
特徴とする食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項２】複数の導管によって、複数の分離室を直
鎖状に結合し、この中にタンパク質をタンパク質分解酵
素で分解した溶液を満たし、一端にアルカリ溶液を満た
して透析膜で包んだ電極を入れ、他の一端に酸溶液を満
たして透析膜で包んだ電極を入れ、両電極に直流電流を
定電力で電圧の上昇がなくなるまで通電し、タンパク質
分解物中のペプチドが移動しなくなった時点で各々の分
離室中に留まったペプチドを回収すること、を特徴とす
る食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項３】分離室を結合する導管を導電性ハイドロ
ゲルで仕切ること、を特徴とする請求項１又は２記載の
食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項４】導電性ハイドロゲルはメッシュで支持さ
れること、を特徴とする請求項１又は２記載の食用ペプ
チドの分画・濃縮法。
【請求項５】導電性ハイドロゲルが寒天もしくは寒天
の純化物であるアガロースであること、を特徴とする請
求項１又は２記載の食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項６】分画・濃縮に用いる薬剤及び素材が食品
の製造に使用可能なもののみからなること、を特徴とす
る請求項１又は２記載の食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項７】分離・濃縮に親水性の化学合成両極性担
体を用いないこと、を特徴とする請求項１又は２記載の
食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項８】試料１Ｌ当たりの負荷電力が５００〜７
００Ｗ・ｈであること、を特徴とする請求項１又は２記
載の食用ペプチドの分画・濃縮法。
【請求項９】複数の導管によって、複数の分離室を直
列に結合するとともに、その一端にアルカリ溶液を満た
して透明膜で仕切った電極を接合し、他の一端に酸溶液
を満たして透析膜で仕切った電極を接合してなり、分離
室にはタンパク質をタンパク質分解酵素で分解した溶液
を収容し、両電極に直流電流を通電してペプチドを移動
せしめ、各々の分離室内に貯まったペプチドを回収する
ようにしてなること、を特徴とする食用ペプチドの分画
・濃縮装置。
【請求項１０】複数の導管によって、複数の分離室を
直列に結合するとともに、その両端に電極槽を接続し、
これらの電極槽の内、一端の電極槽にはアルカリ溶液を
満たして透析膜で包んだ電極を入れ、他の一端の電極槽
には酸溶液を満たして透析膜で包んだ電極を入れてな
り、分離室にはタンパク質をタンパク質分解酵素で分解
した溶液を収容し、両電極に直流電流を通電してペプチ
ドを移動せしめ、各々の分離室内に貯まったペプチドを
回収するようにしてなること、を特徴とする食用ペプチ
ドの分画・濃縮装置。
【請求項１１】分離室を結合する導管を導電性ハイド
ロゲルで仕切ること、を特徴とする請求項９又は１０記
載の食用ペプチドの分画・濃縮装置。
【請求項１２】導電性ハイドロゲルはメッシュで支持
されること、を特徴とする請求項９又は１０記載の食用
ペプチドの分画・濃縮装置。
【請求項１３】導電性ハイドロゲルが寒天もしくは寒
天の純化物であるアガロースであること、を特徴とする
請求項９又は１０記載の食用ペプチドの分画・濃縮装
置。
【請求項１４】分画・濃縮に用いる薬剤及び素材が食
品の製造に使用可能なもののみからなること、を特徴と
する請求項９又は１０記載の食用ペプチドの分画・濃縮
装置。
【請求項１５】分離・濃縮に親水性の化学合成両極性
担体を用いないこと、を特徴とする請求項９又は１０記
載の食用ペプチドの分画・濃縮装置。
【請求項１６】試料１Ｌ当たりの負荷電力が５００〜
７００Ｗ・ｈであること、を特徴とする請求項９又は１
０記載の食用ペプチドの分画・濃縮装置。