JPH1171297A

JPH1171297A - 癌細胞アポトーシス誘導能増強剤及び癌細胞アポトーシス誘導性組成物

Info

Publication number: JPH1171297A
Application number: JP9250051A
Authority: JP
Inventors: Chikanari Takahata; 京也高畑
Original assignee: Kureha Corp
Current assignee: Kureha Corp
Priority date: 1997-08-29
Filing date: 1997-08-29
Publication date: 1999-03-16

Abstract

(57)【要約】【課題】従来公知の癌細胞アポトーシス誘導性化合物
よりも高い誘導率で、癌細胞に対してアポトーシスを誘
導することができる、癌細胞アポトーシス誘導性化合物
の癌細胞アポトーシス誘導能増強剤、及び癌細胞アポト
ーシス誘導性組成物を提供する。【解決手段】前記癌細胞アポトーシス誘導能増強剤
は、有効成分として、カワラタケ属に属する担子菌の菌
糸体、培養物、又は子実体から得られるタンパク多糖体
を含有する。前記癌細胞アポトーシス誘導性組成物は、
有効成分として、前記タンパク多糖体と、癌細胞アポト
ーシス誘導性化合物とを含有する（但し、前記タンパク
多糖体と前記癌細胞アポトーシス誘導性化合物とが同一
である場合を除く）。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、癌細胞アポトーシ
ス誘導性化合物の癌細胞アポトーシス誘導能の増強剤
（以下、単に癌細胞アポトーシス誘導能増強剤と称する
ことがある）、及びそれを含有する癌細胞アポトーシス
誘導性組成物に関する。

【０００２】

【従来の技術】癌の基礎研究又は臨床研究において、ア
ポトーシスを癌治療に利用する試みが行なわれており、
癌細胞に対してアポトーシスを誘導する作用を有する種
々の化合物（以下、癌細胞アポトーシス誘導性化合物と
称する）における抗癌作用が検討されている。例えば、
制癌剤として用いられるエトポシド、５−フルオロウラ
シル、及びアドリアマイシン（ＡＤＭ）や、癌のＢＲＭ
（ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｒｅｓｐｏｎｓｅｍｏｄｉ
ｆｉｅｒｓ：生物学的応答調節剤）療法で用いられるＰ
ＳＫ、ＯＫ−４３２、及びレンチナンなどが、癌細胞に
対してアポトーシスを誘導することが知られている［日
本癌学会総会記事，第４２１頁（平成７年１０月）；日
本癌学会総会記事，第５０７頁（平成８年１０月）；及
び日本癌治療学会総会予稿集，第１０７頁（平成７年９
月）］。

【０００３】

【発明が解決しようとする課題】本発明者は、種々の化
合物の有するアポトーシス誘導能及びその投与方法を鋭
意研究したところ、癌細胞アポトーシス誘導性化合物を
投与する際に、カワラタケ属に属する担子菌由来のタン
パク多糖体を併用投与すると、前記タンパク多糖体が癌
細胞アポトーシス誘導性化合物の誘導能を増強すること
ができることを見出した。前記タンパク多糖体の中には
アポトーシス誘導能を有するものがあることは従来から
知られていたが、そのようなタンパク多糖体が他の癌細
胞アポトーシス誘導性化合物の誘導能を相乗的に増強す
ることは、従来全く知られておらず、本発明は、こうし
た知見に基づくものである。

【０００４】

【課題を解決するための手段】本発明は、カワラタケ属
に属する担子菌の菌糸体、培養物、又は子実体から得ら
れるタンパク多糖体を有効成分として含有することを特
徴とする、癌細胞アポトーシス誘導性化合物（但し、前
記タンパク多糖体と前記癌細胞アポトーシス誘導性化合
物とが同一である場合を除く）の癌細胞アポトーシス誘
導能増強剤に関する。また、本発明は、カワラタケ属に
属する担子菌の菌糸体、培養物、又は子実体から得られ
るタンパク多糖体と、癌細胞アポトーシス誘導性化合物
とを有効成分として含有する（但し、前記タンパク多糖
体と前記癌細胞アポトーシス誘導性化合物とが同一であ
る場合を除く）ことを特徴とする、癌細胞アポトーシス
誘導性組成物にも関する。

【０００５】

【発明の実施の形態】以下、本発明について詳細に説明
する。本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増強剤、
又は本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組成物にお
いて有効成分として用いるタンパク多糖体は、サルノコ
シカケ科（Ｂａｓｉｄｉｏｍｙｃｅｔｅｓ）のカワラタ
ケ属（Ｃｏｒｉｏｌｕｓｖｅｒｓｉｃｏｌｏｒ）に属
する担子菌から得られるタンパク多糖体である。本発明
において有効成分として用いることのできるカワラタケ
属に属する担子菌由来のタンパク多糖体は、例えば、特
公昭４６−１７１４９号、特公昭５１−３６３２２号、
特公昭５６−１４２７４号、特公昭５６−１４２７５
号、及び特公昭５６−１４２７６号各公報などに記載さ
れている。すなわち、カワラタケ属に属する天然の担子
菌、又はカワラタケ属に属する担子菌の人工培養によっ
て得た菌糸体、培養物、若しくは子実体を、水又は水系
溶媒によって抽出する。本明細書において、水系溶媒と
は、水を主体とした抽出溶媒であって、水に可溶性の
酸、塩基、塩、又は有機溶媒の１種以上を少量含む溶媒
を意味する。

【０００６】人工培養は、例えば、カワラタケ属に属す
る担子菌が着生している腐朽植物体の一部、あるいはそ
の植物体上に発生している子実体の組織、又は胞子を適
当な寒天培地に移植し、数週間培養し、この培養操作を
更に２〜３回繰り返し行って、雑菌の混入が無いことを
確認した後、これを母菌として液体培地又は固形培地に
接種して培養を行う。液体培地における培養には、例え
ば、静置、振盪、通気、及び通気撹拌培養等が含まれ、
固形培地としては、例えば、寒天、ゼラチン、澱粉、鋸
屑、木材、パルプ、海綿、合成樹脂、ゴム、又は砂粒等
を挙げることができ、それらを適宜組み合わせることも
できる。前記の担子菌を培養するための培地は、固体又
は液体の何れでも使用可能であるが、液体の方が取り扱
い及び生産性の点から非常に便利である。

【０００７】培養のための培地としては、通常の培養に
用いられる処方で十分であり、前記担子菌の発育に必要
な諸栄養素が含有されていればよい。すなわち、炭素源
としては、例えば、ブドウ糖、麦芽糖、乳糖、ショ糖、
デンプン、又は廃糖密などを使用することができ、窒素
源としては、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキ
ス、酵母、コーンステイーブリカー、アンモニウム塩
類、若しくは尿素などをはじめとする有機又は無機の窒
素含有物を使用することができる。他の無機塩類として
は、例えば、リン酸塩、マグネシウム塩、鉄塩、又はそ
の他の無機塩類を使用することができる。この他に生長
に必要なビタミン等を適宜添加することができる。培養
の初発ｐＨは約２〜７であり、２０〜３３℃において通
常２〜２０日間培養を行うのが好ましい。通気撹拌培養
を行う場合には、通気量０．１〜２．０リットル／リッ
トル（培地）／ｍｉｎ、撹拌速度３０〜８００ｒｐｍの
範囲で実施するのが適当である。

【０００８】カワラタケ属に属する担子菌は、抽出に際
しては、そのまま用いることもできるが、通常、前処
理、例えば、蒸留水、生理食塩水、又は各種緩衝液など
にて洗浄を行った後、乾燥して、親油性有機溶媒（例え
ば、ｎ−ヘキサン、ベンゼン、石油エーテル、クロロホ
ルム、又は四塩化炭素等）によって脱脂した後、細粉す
るか、あるいは細粉せずに抽出の原料とすることもでき
る。また、水性液体培地を用いてカワラタケ属に属する
担子菌の深部培養を行い、得られる培養混合物、すなわ
ち、菌体と培地における培養生成物との混合物であるブ
ロス（ｂｒｏｔｈ）を乾燥処理した後、水又は水系溶媒
により抽出し、さらに得られる抽出液より分子量５００
０以下の物質を除去することによって精製することもで
きる。すなわち、一旦、前記培養物を乾燥した後、水又
は水系溶媒で抽出することにより、目的とするタンパク
多糖体を得ることができる。

【０００９】前記の「深部培養法」とは、通気と撹拌と
を行いながら液中で培養する方法を意味し、菌体の増殖
は液体培地の表面ではなく、液層の深部において主とし
て行われる。この際の通気量は、一般には０．１〜２．
０リットル／リットル（培地）／ｍｉｎであり、撹拌速
度は３０〜８００ｒｐｍの範囲である。約７日間の培養
期間で、目的とするタンパク多糖体が十分に産生され
る。この培養物の乾燥は、好ましくは６０℃〜１５０
℃、より好ましくは９０℃〜１３０℃において、水分含
有率が約２０重量％以下になるように実施することが好
ましい。この乾燥処理に用いる乾燥手段は特に限定され
ることはなく、例えば、ドラムドライアー、フラッシュ
ドライアー、又はザンバイ等の一般的な乾燥手段を使用
することができる。

【００１０】カワラタケ属に属する天然の担子菌、ある
いはカワラタケ属に属する担子菌の人工培養によって得
た菌糸体及び／又は子実体、あるいは乾燥処理を施され
た培養混合物（ｂｒｏｔｈ）は、水又は水系溶媒によっ
て抽出することができる。抽出は撹拌下に行なうこと
も、又は撹拌せずに行なうこともできる。

【００１１】抽出処理では、カワラタケ属に属する担子
菌（カワラタケ属に属する担子菌の子実体又は菌糸体）
を０．０１Ｎ〜２Ｎのアルカリ水溶液を用いて抽出し、
得られる抽出液を限外濾過及び／又は逆浸透圧法により
処理することによって、その抽出液中に含有される分子
量５０００以下の低分子物を除去する処理が、好まし
い。特に限定するものではないが、０．０１Ｎ〜２Ｎの
アルカリ水溶液を、菌体原料（乾燥重量）に対して５〜
２００倍の量で使用するのが好ましい。０．０１Ｎ〜２
Ｎの濃度範囲のアルカリ水溶液を用いて上記担子菌を抽
出する場合、好ましくは５０℃〜１００℃、より好まし
くは８０℃〜９８℃の温度下で２０分〜１０時間程度の
処理で、充分に目的を達成することができる。また、上
記抽出操作は１回でもよいが、必要に応じ数回（２回〜
１０回、好ましくは３〜８回）反復して行なうこともで
きる。

【００１２】また、水又は希アルカリ水溶液により行
い、逐次高濃度のアルカリ水溶液を用いて多段階的に行
なうこともできる。すなわち、担子菌から目的物質を抽
出するには、水又は微量のアルカリを含む水系溶媒を最
初に使用し、ついで次第に高濃度のアルカリを含む水系
溶媒へと逐次高濃度のアルカリを含む水溶液を抽出溶媒
として使用することにより複数回抽出処理（すなわち、
多段的抽出）を行うものである。なお、上記抽出過程の
一部において、同一濃度の抽出液による抽出を反復する
ことも差し支えない。抽出操作を数回反復した際、抽出
の回数にかかわらず、上記温度下での加熱時間の合計は
２０時間以下であることが、有効成分の分解を防止する
うえから好ましい。使用することのできるアルカリとし
ては、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水
酸化カルシウム、又はアンモニア水などを挙げることが
できるが、特に水酸化ナトリウムが好ましい。このよう
にして得られる抽出液は、鉱酸（例えば、希塩酸）によ
り、常法通り中和した後、次の精製処理工程にかけるの
が好ましい。この場合、各抽出毎に抽出液を精製処理す
ることもできるが、また、各抽出液を合わせて精製処理
することもできる。

【００１３】精製処理工程は、例えば、透析、限外濾
過、逆浸透圧処理、ゲル濾過、イオン交換樹脂処理、硫
安などによる塩析、及び有機溶媒による沈殿処理などの
１種又は２種以上の方法の適用によって行なうことがで
きる。これらの内、特に効果的に適用することができる
方法は、限外濾過及び／又は逆浸透圧処理である。

【００１４】限外濾過法又は逆浸透圧法において用いる
ことのできる膜は、分画分子量５０００〜１５０００表
示の膜であり、標準物質としてチトクロームｃ（分子量
１３０００）に対して阻止率９８〜１００％以上を有す
るものが有効である。また、上記膜を用いて本発明によ
る抽出液を精製するための操作条件に関しては、例え
ば、装置の形状、又は抽出液の処理量などにより、若干
の変動があることは当然であるが、限外濾過の場合に
は、圧力は好ましくは０．５〜５ｋｇ／ｃｍ²、より好
ましくは１〜４ｋｇ／ｃｍ²の加圧下で行い、操作温度
は、膜の性状により異なるが、通常５〜７０℃で行うこ
とが一般的である。

【００１５】一方、逆浸透圧法の場合には、圧力は、通
常、２０〜３５ｋｇ／ｃｍ²、好ましくは２０〜２５ｋ
ｇ／ｃｍ²の範囲において、操作温度は、膜の性状によ
り異なるが、５〜２０℃の範囲で行なうのが一般的であ
る。上記抽出液を精製するに当たっては、限外濾過法又
は逆浸透圧法を各々単独で適用することもできるが、両
者を併用することもできる。上記精製処理によって前記
抽出液から分子量５０００以下の低分子物質を除去した
後は、例えば、噴霧乾燥又は凍結乾燥した後、製品化す
るものである。

【００１６】上記のように、前記タンパク多糖体は、担
子菌の一種であるカワラタケ属に属する菌類を培養して
得られる菌糸体、培養物（Ｂｒｏｔｈ）、又は子実体か
ら抽出により得ることができる。前記タンパク多糖体
は、約１８〜３８％のタンパク質を含み、超遠心分離測
定法により測定する分子量が５，０００以上、好ましく
は５，０００〜１，０００，０００である。

【００１７】本発明の有効成分として用いることのでき
る、カワラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体
の代表例は、一般名でＰＳＫと呼称されているものであ
って、クレスチンという商品名で三共株式会社から市販
されている。ＰＳＫは、すでに臨床的に用いられてお
り、癌患者の生存期間を延長させる効果のあることが実
証されている［Ｎａｋａｚａｔｏ，Ｈ．，ｅｔａ
ｌ．，ＴｈｅＬａｎｃｅｔ，３４３，１１２２−１１
２６（１９９４）］。また、ＰＳＫについては、最近の
新薬（１９７７年）第２８集第１４〜１６頁、最近の新
薬（１９７８年）第２９集第９６〜１０１頁、又は医薬
品要覧（昭和５４年５月第６版、薬業時報社発行）第１
３４６頁等にも記載されている。その性状の一端を示す
と次のとおりである。

【００１８】ＰＳＫは、カワラタケ

【外１】ＣＭ−１０１株［ＦＥＲＭ−Ｐ２４１２（ＡＴＣＣ２
０５４７）］の菌糸体から得られるタンパク多糖体であ
って、その主要画分の糖部分はα−及びβ−Ｄ−グルカ
ンで、このグルカン部分の構造は、β１→３、β１→
４、及びβ１→６結合を含む分枝構造であり、主な構成
単糖は、グルコースやマンノースである。また、ＰＳＫ
は約１８〜３８％のタンパク質を含む。タンパク質の構
成アミノ酸は、アスパラギン酸やグルタミン酸等の酸性
アミノ酸と、バリンやロイシン等の中性アミノ酸が多
く、リジンやアルギニン等の塩基性アミノ酸は少ない。
水に可溶であるが、メチルアルコール、ピリジン、クロ
ロホルム、ベンゼン、又はヘキサンには殆ど溶けない。
約１２０℃から徐々に分解する。

【００１９】なお、本発明の出発原料に関しては、前記
のカワラタケ菌ＣＭ−１０１株のみならず、カワラタケ
属に属する他のカワラタケ菌株（例えば、ＦＥＲＭ−Ｐ
Ｎｏ．２４１３〜２４２６）、ニクスバタケ［Ｃｏｒ
ｉｏｌｕｓｃｏｎｓｏｒｓ（Ｂｅｒｋ．）Ｉｍａ
ｚ．］、ヤキフタケ

【外２】ミノタケ［Ｃｏｒｉｏｌｕｓｂｉｆｏｒｍｉｓ（Ｋｌ
ｏｔｚ．）Ｐａｔ．］、アラゲカワラタケ

【外３】サカズキカワラタケ［Ｃｏｒｉｏｌｕｓｃｏｎｃｈｉ
ｆｅｒ（Ｓｃｈｗ．）Ｐａｔ．］、又はハカワラタケ
［Ｃｏｒｉｏｌｕｓｐａｒｇａｍｅｎｕｓ（Ｆｒ．）
Ｐａｔ．］等の担子菌株も使用可能である。

【００２０】本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増
強剤によって、その癌細胞アポトーシス誘導能が増強さ
れる癌細胞アポトーシス誘導性化合物、あるいは、本発
明による癌細胞アポトーシス誘導性組成物において有効
成分として用いる癌細胞アポトーシス誘導性化合物とし
ては、それ自体単独で癌細胞にアポトーシスを誘導する
ことのできる化合物であって、しかも前記タンパク多糖
体でない限り特に限定されるものではなく、例えば、癌
治療に用いることのできる化学療法剤を挙げることがで
きる。前記化学療法剤としては、例えば、アルキル化剤
（例えば、メルファラン、カルボコン、又はシクロホス
ファミドなど）、抗生物質（例えば、アドリアマイシン
又はマイトマイシンＣなど）、代謝拮抗剤（例えば、Ａ
ｒａＣ、フルオロウラシル、又はメソトレキセートな
ど）、植物製剤（例えば、ビンクリスチン又はビンブラ
スチンなど）、又はＤＮＡトポイソメラーゼII阻害剤
（例えば、エトポシド）などを挙げることができる。こ
こで、「癌細胞アポトーシス誘導性」とは、ＤＮＡのヌ
クレオゾーム（ｎｕｃｌｅｏｓｏｍｅ）単位の分断化を
意味し、例えば、フローサイトメトリーによる分断化Ｄ
ＮＡ含有細胞の検出によって簡単に確認することができ
る。本発明の癌細胞アポトーシス誘導性組成物において
有効成分として用いる癌細胞アポトーシス誘導性化合物
としては、前記代謝拮抗剤を用いることが好ましく、フ
ルオロウラシル又はエトポシドを用いることがより好ま
しい。

【００２１】本発明において、前記の「カワラタケ属に
属する担子菌の菌糸体、培養物、又は子実体から得られ
るタンパク多糖体」は、仮にそのタンパク多糖体が癌細
胞アポトーシス誘導能を有している場合であっても、前
記の癌細胞アポトーシス誘導性化合物の癌細胞アポトー
シス誘導能を増強する目的で使用し、前記タンパク多糖
体自体を単独で癌細胞アポトーシス誘導性化合物として
用いることはない。

【００２２】本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増
強剤は、有効成分として、カワラタケ属に属する担子菌
由来のタンパク多糖体を含有し、所望により、製剤学的
若しくは獣医学的に許容することのできる通常の担体を
含有することができる。また、本発明による癌細胞アポ
トーシス誘導性組成物は、有効成分として、カワラタケ
属に属する担子菌由来のタンパク多糖体と癌細胞アポト
ーシス誘導性化合物とを含有し、所望により、製剤学的
若しくは獣医学的に許容することのできる通常の担体を
含有することができる。

【００２３】本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増
強剤、又は本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組成
物の投与剤型としては、特に限定がなく、例えば、散
剤、細粒剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁液、エマ
ルジョン剤、シロップ剤、エキス剤、若しくは丸剤等の
経口剤、又は注射剤、外用液剤、軟膏剤、坐剤、局所投
与のクリーム、若しくは点眼薬などの非経口剤を挙げる
ことができる。

【００２４】これらの経口剤は、例えば、ゼラチン、ア
ルギン酸ナトリウム、澱粉、コーンスターチ、白糖、乳
糖、ぶどう糖、マンニット、カルボキシメチルセルロー
ス、デキストリン、ポリビニルピロリドン、結晶セルロ
ース、大豆レシチン、ショ糖、脂肪酸エステル、タル
ク、ステアリン酸マグネシウム、ポリエチレングリコー
ル、ケイ酸マグネシウム、無水ケイ酸、又は合成ケイ酸
アルミニウムなどの賦形剤、結合剤、崩壊剤、界面活性
剤、滑沢剤、流動性促進剤、希釈剤、保存剤、着色剤、
香料、矯味剤、安定化剤、保湿剤、防腐剤、又は酸化防
止剤等を用いて、常法に従って製造することができる。

【００２５】非経口投与方法としては、注射（皮下、静
脈内等）、又は直腸投与等が例示される。これらのなか
で、注射剤が最も好適に用いられる。例えば、注射剤の
調製においては、有効成分としての、カワラタケ属に属
する担子菌由来のタンパク多糖体、又は前記タンパク多
糖体及び癌細胞アポトーシス誘導性化合物の他に、例え
ば、生理食塩水若しくはリンゲル液等の水溶性溶剤、植
物油若しくは脂肪酸エステル等の非水溶性溶剤、ブドウ
糖若しくは塩化ナトリウム等の等張化剤、溶解補助剤、
安定化剤、防腐剤、懸濁化剤、又は乳化剤等を任意に用
いることができる。

【００２６】また、本発明による癌細胞アポトーシス誘
導能増強剤、又は本発明の癌細胞アポトーシス誘導性組
成物は、徐放性ポリマーなどを用いた徐放性製剤の手法
を用いて投与してもよい。例えば、本発明による癌細胞
アポトーシス誘導能増強剤、又は本発明の癌細胞アポト
ーシス誘導性組成物をエチレンビニル酢酸ポリマーのペ
レットに取り込ませて、このペレットを治療すべき組織
中に外科的に移植することができる。

【００２７】本発明の癌細胞アポトーシス誘導性組成物
は、有効成分として、これに限定されるものではない
が、例えば、カワラタケ属に属する担子菌由来のタンパ
ク多糖体を、５０〜９８重量％、好ましくは７０〜９８
重量％の量で含有することができ、癌細胞アポトーシス
誘導性化合物を、２〜５０重量％、好ましくは２〜３０
重量％の量で含有することができる。

【００２８】本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組
成物は、動物、好ましくは哺乳動物（特にはヒト）に単
独で投与することができる。本発明の癌細胞アポトーシ
ス誘導性組成物を用いる場合の投与量は、投与対象であ
る動物の種類、年齢、性別、若しくは体重、疾病の種
類、又は投与方法などにより異なり、特に制限はない
が、本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組成物を、
通常、１個体当り、癌細胞アポトーシス誘導能増強剤で
あるカワラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体
３０ｍｇ〜３０ｇ程度と、癌細胞アポトーシス誘導性化
合物として１日常用量とを含む組成物の形で、１日１〜
４回程度にわけて、経口的に又は非経口的に投与するこ
とができる。更に、形態も医薬品に限定されるものでは
なく、種々の形態、例えば、機能性食品や健康食品、又
は飼料として飲食物の形で与えることも可能である。

【００２９】本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増
強剤においては、（１）癌細胞アポトーシス誘導性化合
物の癌細胞アポトーシス誘導能を増強することのでき
る、カワラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体
と、癌細胞アポトーシス誘導性化合物とを、有効成分と
して一緒に含有する単一製剤（すなわち、本発明による
癌細胞アポトーシス誘導性組成物）として投与すること
もできるし、あるいは、（２）癌細胞アポトーシス誘導
性化合物の癌細胞アポトーシス誘導能を増強することの
できる、カワラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多
糖体のみを有効成分として含む製剤として、本発明によ
る癌細胞アポトーシス誘導能増強剤を調製し、これとは
別に調製した癌細胞アポトーシス誘導性化合物を含有す
る製剤と一緒に、実質的に同時に投与することもでき
る。

【００３０】本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増
強剤において、前記癌細胞アポトーシス誘導能増強剤と
癌細胞アポトーシス誘導性化合物とを別々の製剤として
調製する場合には、これに限定されるものではないが、
本発明による癌細胞アポトーシス誘導能増強剤は、カワ
ラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体を、１０
〜１００重量％、好ましくは５０〜１００重量％の量で
含有することができる。本発明による癌細胞アポトーシ
ス誘導能増強剤において、前記癌細胞アポトーシス誘導
能増強剤と癌細胞アポトーシス誘導性化合物とを別々の
製剤として調製する場合には、動物、好ましくは哺乳動
物（特にはヒト）に、癌細胞アポトーシス誘導性化合物
を含有する製剤と、本発明による癌細胞アポトーシス誘
導能増強剤とを一緒に投与することができる。この場合
に、癌細胞アポトーシス誘導性化合物、及び本発明の癌
細胞アポトーシス誘導能増強剤の投与量は、投与対象で
ある動物の種類、年齢、性別、若しくは体重、疾病の種
類、又は投与方法などにより異なり、特に制限はない
が、通常、１個体当り、カワラタケ属に属する担子菌由
来のタンパク多糖体量として３００ｍｇ〜３０ｇ程度
を、１日１〜４回程度にわけて、経口的に又は非経口的
に投与することができ、一方、癌細胞アポトーシス誘導
性化合物としては１日常用量を、所定の方法に従って経
口的に又は非経口的に投与することができる。更に、形
態も医薬品に限定されるものではなく、種々の形態、例
えば、機能性食品や健康食品、又は飼料として飲食物の
形で与えることも可能である。

【００３１】動物、好ましくは哺乳動物（特にはヒト）
に、本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組成物を単
独投与するか、あるいは、本発明による癌細胞アポトー
シス誘導能増強剤を癌細胞アポトーシス誘導性化合物と
一緒に投与すると、従来公知の癌細胞アポトーシス誘導
性化合物よりも高い誘導率で、癌細胞に対してアポトー
シスを誘導することができる。本発明においては、カワ
ラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体が、癌細
胞アポトーシス誘導能を有するだけでなく、癌細胞アポ
トーシス誘導性化合物それ自体が有する癌細胞アポトー
シス誘導能を増強する作用を有する。本発明による癌細
胞アポトーシス誘導性組成物の癌細胞アポトーシス誘導
率は、公知の癌細胞アポトーシス誘導性化合物のみを単
独投与した場合の癌細胞アポトーシス誘導率、又はカワ
ラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体のみを単
独投与した場合の癌細胞アポトーシス誘導率よりも高い
のはもちろんのこと、それらの誘導率の単なる総和より
も高い値を示す。本発明による癌細胞アポトーシス誘導
性組成物においては、有効成分の１つとして含有される
カワラタケ属に属する担子菌由来のタンパク多糖体が、
もう１つの有効成分である癌細胞アポトーシス誘導性化
合物のアポトーシス誘導能を相乗的に高めることができ
る。

【００３２】

【実施例】以下、実施例によって本発明を具体的に説明
するが、これらは本発明の範囲を限定するものではな
い。

【実施例１】ヒト急性前骨髄性白血病細胞ＨＬ−６０
（ＡＴＣＣＣＣＬ２４０）を、１０％非働化ウシ胎
児血清（ＦＢＳ）、５０ｕ／ｍｌペニシリン、及び５０
μｇ／ｍｌストレプトマイシンを含有するＲＰＭＩ１６
４０培地（Ｇｉｂｃｏ社）を用いて継代培養した。前記
継代培養においては、細胞の植え継ぎを１週間に一度の
頻度で実施し、更に、培地の交換を１週間に一度の頻度
で実施した。なお、細胞の植え継ぎは、新鮮培地で１／
５に希釈すること、すなわち、培養細胞を含む培地を一
部取り出し、その培地量の４倍量の新鮮培地を加えるこ
とにより実施した。また、培地の交換は、前記の植え継
ぎを実施した日から３日後に実施した。以下の実験に
は、培地交換を実施してから２日目の対数増殖期の細胞
を使用した。

【００３３】対数増殖期の前記ＨＬ−６０細胞をリン酸
緩衝生理食塩水（ｐｈｏｓｐｈａｔｅｂｕｆｆｅｒｅ
ｄｓａｌｉｎｅ，以下、ＰＢＳと称する）で洗浄し、
細胞数が１×１０⁶個／ｍｌになるように無血清完全合
成培地［１０μｇ／ｍｌインシュリン−トランスフェリ
ン−セレンナトリウムサプリメント（Ｇｉｂｃｏ社）、
２０ｎＭプロゲステロン、及び５ｍｇ／ｍｌウシ血清ア
ルブミンを含有するＲＰＭＩ１６４０培地］に懸濁し
た。次に、滅菌したプラスチックチューブに前記細胞懸
濁液１ｍｌを分注し、癌細胞アポトーシス誘導性化合物
であるエトポシド（ラステット；日本化薬）、及びＰＢ
Ｓに溶解したＰＳＫ（商品名：クレスチン；三共株式会
社）を同時に添加した。エトポシドは最終濃度が１０μ
ｇ／ｍｌとなるように、そして、ＰＳＫは最終濃度が１
００μｇ／ｍｌとなるようにそれぞれ添加した。エトポ
シド及びＰＳＫを添加した後に、３７℃で６時間インキ
ュベートし、続いて、以下に述べるフローサイトメトリ
ー法によって、アポトーシス誘導率を決定した。なお、
比較例として、エトポシド及びＰＳＫを同時に添加する
代わりに、エトポシドのみを添加（最終濃度＝１０μｇ
／ｍｌ：比較例１）、又はＰＳＫのみを添加（最終濃度
＝１００μｇ／ｍｌ：比較例２）すること以外は、前記
の操作を繰り返した。また、対照試験として、エトポシ
ド及びＰＳＫを同時に添加する代わりに、エトポシド及
びＰＳＫのいずれも添加しないこと以外は、前記の操作
を繰り返した。

【００３４】フローサイトメトリー法による解析は、以
下のようにして実施した。すなわち、エトポシド及び／
又はＰＳＫを添加した後に、３７℃で６時間インキュベ
ートしたＨＬ−６０細胞を、ＰＢＳで２回洗浄し、７０
％エタノール２００μｌに懸濁して脱水固定した。次
に、脱水固定された細胞を４ｍＭクエン酸含有０．２Ｍ
リン酸緩衝液で洗浄し、分断化された低分子ＤＮＡを漏
出させた。続いて、得られた低分子化ＤＮＡ漏出細胞
を、０．１ｍｇ／ｍｌリボヌクレアーゼＡ（ウシ膵臓由
来ＲＮａｓｅＡ；ベーリンガー社）を用いて３７℃で
１時間処理し、ＲＮＡを分解した。ＰＢＳで洗浄した後
に、５０μｇ／ｍｌプロピジウムイオダイド（Ｓｉｇｍ
ａ社）で３０分間処理することによって、ＤＮＡ染色を
行なった。ＤＮＡ染色を実施してから４時間以内に、フ
ローサイトメーター（ＣｏｕｌｔｅｒＥＰＩＣＳ；Ｃｏ
ｕｌｔｅｒ社）を用いて、細胞内ＤＮＡ含有量を測定し
た。対照試験についても、エトポシド及び／又はＰＳＫ
を添加する代わりに、エトポシド及びＰＳＫのいずれも
添加しないこと以外は、前記の操作を繰り返した。

【００３５】実施例１、比較例１、比較例２、及び対照
試験について、フローサイトメーターを用いて測定した
細胞内ＤＮＡ含有量から全アポトーシス誘導率を求め、
実施例１、比較例１、及び比較例２における全アポトー
シス誘導率から、対照試験における全アポトーシス誘導
率を差し引いて、薬剤依存アポトーシス誘導率を算出し
た。結果を表１に示す。本発明による癌細胞アポトーシ
ス誘導性組成物の薬剤依存アポトーシス誘導率（４９．
３％）は、公知の癌細胞アポトーシス誘導性化合物であ
るエトポシドの単独投与による薬剤依存アポトーシス誘
導率（２２．６％）と、ＰＳＫの単独投与による薬剤依
存アポトーシス誘導率（１０．８％）との単なる総和よ
りも明らかに高く、本発明による癌細胞アポトーシス誘
導性組成物の有効成分の１つとして含有されるＰＳＫ
が、もう１つの有効成分であるエトポシドのアポトーシ
ス誘導能を相乗的に増強する効果を有することを確認し
た。

【００３６】

【表１】エトポシド添加濃度ＰＳＫ添加濃度薬剤依存アポトー（μg/ml）（μg/ml）シス誘導率（％）実施例１１０１００４９．３比較例１１００２２．６比較例２０１００１０．８

【００３７】

【発明の効果】動物、好ましくは哺乳動物（特にはヒ
ト）に、本発明による癌細胞アポトーシス誘導性組成物
を単独投与するか、あるいは、本発明による癌細胞アポ
トーシス誘導能増強剤を癌細胞アポトーシス誘導性化合
物と一緒に投与すると、従来公知の癌細胞アポトーシス
誘導性化合物よりも高い誘導率で、癌細胞に対してアポ
トーシスを誘導することができる。

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
培養物、又は子実体から得られるタンパク多糖体を有効
成分として含有することを特徴とする、癌細胞アポトー
シス誘導性化合物（但し、前記タンパク多糖体と前記癌
細胞アポトーシス誘導性化合物とが同一である場合を除
く）の癌細胞アポトーシス誘導能増強剤。
【請求項２】カワラタケ属に属する担子菌の菌糸体、
培養物、又は子実体から得られるタンパク多糖体と、癌
細胞アポトーシス誘導性化合物とを有効成分として含有
する（但し、前記タンパク多糖体と前記癌細胞アポトー
シス誘導性化合物とが同一である場合を除く）ことを特
徴とする、癌細胞アポトーシス誘導性組成物。